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Medicine

타액 기능 저하의 쥐 모델에서 Retroductal 턱밑 글 랜드 점적 및 현지화 된 분획 조사

Published: April 24, 2016 doi: 10.3791/53785

Introduction

건강한 조직의 담보 파괴는 암 치료의 해로운 부작용의 다수를 차지한다. 방사선 필드 거짓말 주요 침샘의 일부 또는 전부가 불가피하게 파괴된다. 따라서, 골수 이식 전에 경부암, 자궁 경관 임파종 또는 전신 조사를위한 방사선 치료를받은 대부분의 환자들은 방사선, 침샘의 기능 저하 2-6의 일반적인 영구 부작용을 겪는다.

침샘의 유체 생산 선방 세포는 방사선에 심하게 민감하다. 침샘의 손상은 타액의 흐름과 같은 타액 기능 저하라고하는 조건의 급격한 감소하는 발생합니다. 타액의 흐름에서 만성 감소는 저작, 연하, 음성, 맛,하지만 강렬한 통증, 점막 눈물, 연하 곤란, 기회 감염의 병적 인 후유증으로 키 구강 활동을 손상 및 충치는을 악화환자의 건강과 기능 2,3.

방사선 관련 타액선 세포 손실 비가역 때문에, 구강 건조증의 더 교정 치료는 없다. 인공 타액 대체 및 prosecretory 약물로 증상을 assuaging에 초점을 맞추고 현재 치료는 장기적인 구호 6 비효율적이다. 개선 된 방사 전달 기술은 증상의 중증도를 감소 도움이되지만, 정상 조직에 독성 및 부작용은 암 치료에 -6,7- 제한 요소 남아있다. 방사선 - 관련 합병증을 예방하는 선제 대책 따라서, 표준이되고있다. DNA 수리 자유 라디칼 산소 종, 위탁 셀 다시 채우기를 청소할 또는 향상 라디오 - 보호제는 타액 기능 저하 8-11을 피하기 위해 탐구되고있다.

외분비 침샘의 분비는 주요 배설 덕트를 통해 입으로 배출. 일의 내 경구 삽관조영제의 주입을위한 전자 배설 덕트는 외래 환자 절차로 정기적으로 수행됩니다. 유사한 방법을 이용 침샘 직접 국소 치료 (12)를 대상으로 할 수있다. 이 외에 전신 부작용의 위험을 감소에서, retroductal 선 점안 혜택을 추가했다. 도관 트리 주위 타액선 세포의 단층 배열은 모든 타액 상피 세포 표적화 수 있고, 장벽 그랜드 행위 섬유상 캡슐 불필요한 치료 확산을 줄이기 위해. 본질적으로, 침샘은 방사선에 의한 타액의 기능 저하 등의 글 랜드 고통의 표적 치료를위한 최적 적합하다.

주 동안 - (2.5 Gy를 / 분수 / 일, 주 5 일 1.8) 암 치료에 대한 기존의 방사선은 작은 용량으로 제공됩니다. 따라서, 실험 모델의 장기화 조사 방식에 대한 효능을 보여줍니다 라디오 보호 치료는 큰 임상 베어링을 보유하고 있습니다. COMPRO분획 후 방사능 mised 타액 함수 작은 동물에 기록하지만, 방사선 소스, 도즈 비율 및 사용되는 프로토콜은 다양한 9,10,13이다되었다.

이 보고서에 retroductal 배달 및 환자 관련 방사선 소스 및 용량 부분을 사용하여 쥐 턱밑 샘의 지역화 된 방사선하는 방법을 설정합니다.

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Protocol

모든 절차는 LSU 건강, 슈 리브 포트, 동물 관리 및 사용위원회의 승인 관리 및 실험 동물의 사용에 대한 NIH의 지침에 따라이었다 하였다.

쥐 턱밑 침샘의 1 캐 뉼러

  1. 주사기 - 튜브 어셈블리의 제조
    1. 메스로 PE10 폴리에틸렌 튜브의 10cm 길이를 잘라. 집게 손가락과 엄지 손가락 사이의 관의 양쪽 끝을 잡고. 부드러운 불꽃 상기 튜브의 중간 부분을 가열, 부드럽게 양쪽을 잡아 당겨 길이를 두 배로 연화 튜브를 스트레칭.
    2. 테이퍼 끝 각 - 2 캐 뉼러를 얻기 위해 45 오의 각도로 메스와 중간에 튜브를 잘라. 0.5 CC의 인슐린 주사기의 29 G 바늘 이상을 맞춤으로써 캐 뉼러의 비 테이퍼 끝을 확장합니다.
    3. 정맥을 제거하고 주사기로 생리 식염수 220 μl를 그립니다. 공기 방울을 제거하기 위해 누릅니다. cannul를 장착바늘을 통해, 공기를 배출하고 정맥을 통해 솔루션의 자유로운 흐름을 보장하기 위해 주사기 플런저를 밀어 넣습니다. 200 μL에 볼륨을 조정합니다.
  2. 턱밑 글 랜드 덕트의 내부 구강 캐 뉼러
    참고 : 오토 클레이브 악기 절차 이전에, 뜨거운 구슬 살균기 절차 사이에 소독.
    1. 스프 라그 돌리 쥐의 무게를 측정하고, 피하 주사기에서 계산 된 케타민의 볼륨 (42 ㎎ / ㎏) / 자일 라진 (8 ㎎ / ㎏) / 아세 프로 마진 (1.4 ㎎ / ㎏) 혼합 분배.
    2. 검지 한 손의 엄지 손가락 사이의 꼬리의 기부를 파악하고 파악 몸체 위에 다른 손으로 밀어 동물을 억제. 엄지 손가락과 나머지 손가락으로 몸통을 누르고있는 동안 머리의 측면을 따라 색인과 중간 손가락을 휴식.
    3. 뒷다리 근육에 마취제를 주입한다. 발가락 핀치와 눈꺼풀 반사에 의한 마취의 깊이를 확인합니다. 건조의 동안을 방지하기 위해 눈 윤활제를 적용동물 마취입니다.
    4. 특수하게 설계된 플랫폼 (그림 1)에 동물을 배치하고 가로 막대의 위쪽 앞니의 치아를 참여. 아래 앞니 주위에 고무 밴드를 반복하고 플랫폼에 고정하여 아래 턱을 아래로 당깁니다.
    5. 혀를 통해 멸균 봉합을 전달하고 구강의 바닥 인상을 올립니다. 지혈과 봉합을 고정하고 가로 가로대 위를 전달합니다.
    6. 사용자 정의 내장 뺨 스프레더 (그림 1)과 함께 뺨을 확장하고 해부 현미경 입의 바닥에 설하 용의자를 찾습니다.
    7. 섬세한 집게를 사용하여 예비 성형 PE10 튜브의 테이퍼 끝을 잡고. 조심스럽게 설하 유두의 유관 구멍에 정맥의 끝을 조작 할 수 있습니다. 이 3 스레드에 의해 정맥의 위치를​​ 확인 - 덕트에 5mm를; 이 장애물없이 통과 있는지 확인합니다.
  3. 턱밑 글 랜드 Instillation
    1. 목의 목덜미에 피하 아트로핀 (0.5 ㎎ / ㎏)을 주입하고, 타액 분비의 감소를 위해 10 분을 기다립니다.
    2. 시아 노 아크릴 레이트 (접착제)의 드롭 덕트 구멍을 캐 뉼러를 고정하고, 건조 할 수 있습니다. 천천히 50 μL / 분 ~의 속도로 시린지 플런저를 가압하여 마개 (200 μL / 샘)의 용액을 주입.
    3. 지혈제와 튜브를 분쇄, 조심스럽게 주사기를 제거합니다. 동물이 의식을 회복 할 때까지 60 분 - 30 덕트에 튜브를 유지. 혀를 보유하고 봉합사를 제거합니다.
    4. 별도의 케이지에 동물을 전송하고 복구하는 동안 따뜻한 유지하기 위해 가열 램프를 사용합니다. 이 흉골 드러 누움을 유지하기 위해 의식을 회복 할 때까지 무인 동물을 두지 마십시오.
    5. 동물이 완전히 외래되면, 음식과 물에 대한 무제한 접근 할 수있는 동식물 사육장에서 그것을 집.

2. 현지화 된 분획 조사턱밑 글 랜드의

  1. 전술 한 바와 같이 동물을 억제하고, 뒷다리의 근육 내 케타민의 투여 (33 ㎎ / ㎏) / 자일 라진 (6 ㎎ / ㎏) / 아세 프로 마진 (1 ㎎ / ㎏)으로 마취 믹스. 마취의 깊이를 확인하고 눈에 윤활제를 적용합니다.
  2. 선형 가속기 탁상에 동물 부정사를 놓고 머리를 기울여 목을 확장합니다. 흉골의 상단 하악골의 하부 경계에서의 영역을 포함하는 방사선 필드 (3cm 슬릿 폭)을 시준.
  3. 이 지역에 걸쳐 1cm 조직 - 상응하는 덩어리를 놓고 방사선 소스와 100cm에 덩어리의 상단 사이의 거리를 조정합니다.
  4. 선형 가속기의 6 MV 광자 빔을 사용하여 동물 (2.5 Gy의)을 조사한다. 노출 시간을 지시한다 표면 루스하도록 방사선 소스로부터 레이트, 필드 크기 및 거리 복용량. 설정된 전류, 동물 ~ 1 Gy의 / 분의 투여 량 비율을 조사 하였다.
  5. 노출을 반복; 8 개의 2.5 Gy의 / 일일; 사일 / 사이에 2 일 간격으로 주. 복구하는 동안 동물을 따뜻하게 유지. 완전히 외래 후 사육장으로 동물을 이동.
  6. 선 기능 (14)을 측정하는 방사선 후 자극 턱밑 글 랜드 타액 8 주 수집합니다. 차가운 4 % 파라 포름 알데히드 / 인산염 완충 식염수 산도 7.2의 심장 재관류에 의해 마취하에 동물을 안락사. 조직 학적 및 면역 조직 화학 (14)를 분석하기위한 턱밑 샘을 근절.

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Representative Results

최소한의 침습적 sialography 기술을 적응, 주요 침샘의 지역 치료는 가능하다. 쥐 턱밑 침샘에서 Retroductal 정부는 와튼의 덕트의 내부 경구 삽관 (그림 2)에 의해 시도되었다. 입의 바닥에있는 하위 언어 용의자에 열려 와튼의 타액 덕트,하지만 구멍은 쉽게 볼 수 없습니다. 캐 뉼러의 삽입은, 그러므로, 부드러운 프로빙에 의해 수행되었다. 캐 뉼러를 배치하는 동안 부적당 한 출혈 또는 덕트 천공을 방지하기 위해, 더 힘이 사용되지 않았다. 덕트의 캐 뉼러의 부드러운 저항 자유 통로는 튜브의 부드러운 전후 이동에 의해 확인되었다.

초기 실험 중 삽관 (그림 3) 헤 마톡 실린 또는 트리 판 블루 용액으로 선을 주입하고, 안락사 동물에서 선 염색을 평가하여 확인 하였다. 미군 병사볼륨이 extirpated 동맥에 도관 트리의 염색을 시각화하여 확인 하였다 채우십시오. (150) 무게 동물 - 용액 250 μL - 250g을, 글 랜드의 완전한 충전 200 달성했다. 빠른 주입 동맥 압력을 증가 biospread 부상의 위험을 높일 수있다. 조직 파괴를 방지하기 위해, 용액을 ~ 50 μL / 분의 속도로 서서히 투여

쥐 턱밑 샘 방사선 (15)에 자신의 감도 이하선에 필적한다. 그들이 선택적으로 심각한 오프 대상 효과를 (그림 4)을 발생시키지 않고 조사 할 수 있기 때문에 턱밑 샘 대상으로 하였다. 구강과 구강 점막염과 동물의 건강과 실험 결과에 급성 구강 건조증의 영향을 최소화 이하선의 많은 양의 스페어 링. 쥐에서 우리의 이전 연구는 하나의 큰 방사선 11,16 투여하지만, FRAC 수행 하였다tionated 투여는 임상에 더 적절하다. 동물의 목 부위는 따라서, 방사선의 일일 소량으로 노출된다. 피부 표면 근처에있는 악하선 내의 방사선 량의 균일 한 형성을 달성하기 위해, 1.03 g / cc의 밀도와 균일 한 겔로부터 제조 된 연조직 상당 루스 방사선 중에 목부 위에 배치 하였다.

팔주에서 2.5 Gy의 단위에 매일 노출이 급격히 타액의 흐름을 감소 후 방사선 쇼를 결정 타액의 흐름에 분별 방사선 방식의 효과. 14, 타액 출력에 가까운 10 배 감소는 비 조사 동물 (그림 5 양면 학생의 T- 테스트, P <0.01) 대조적으로 조사 된 동물에서 기록되었다. 결과는 동물의 방사선 - 유도 된 타액 기능 저하의 확립을 확인 하였다.


그림 사용자 정의 된 플랫폼의 1. 건설 뺨-스프레더. 뻣 뻣 4mm 와이어 그림과 같이 3면 사각형 (11cm 높이 X 13cm 폭)으로 절곡하고, 가로 막대가 중앙에 절을 하였다. 와이어의 단부는 루프로 절곡하고, 나사는 플라스틱 기판 (25cm 길이 X 15cm 가로 x 0.8 cm 깊이)에 어셈블리를 고정하도록 통과 하였다. 중앙 나사는 와이어 어셈블리에 5cm의 후방을 삽입 하였다. 플레어 끝으로 "U는 모양"에서 일회용 1mm 두께의 와이어 구부려 만든 맞춤형 뺨 스프레더 :. 그것은 아래턱 삽입 된 오픈 뽑아 고무 밴드를 고정하기 위해 봉사했다. 플라스틱 호스는 와이어가 구강 점막의 손상을 방지하기 위해 종료 통과했다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

: 유지-together.within 페이지 = "1"> 그림 2
그림 2. 쥐 턱밑 글 랜드 배설 덕트의 캐 뉼러. 혀는 입의 바닥을 상승 상승, 폴리에틸렌 캐 뉼러 입의 바닥에있는 턱밑 덕트 구멍에 삽입되었다. 의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오 이 그림.

그림 3
턱밑 글 랜드에서 헤 마톡 실린 솔루션 그림 3. 주입은 기술을 확인합니다. 글 랜드 염색은 턱밑 샘에서 솔루션의 성공적인 관리에 증명. 왼쪽 상단에있는 설하 선이 염색되지 않습니다. 비 주입 된 제어 선은 왼쪽에 표시됩니다.e.com/files/ftp_upload/53785/53785fig3large.jpg "대상 ="_ 빈 ">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 4
조사에 대한 동물의도 4를 요구함. 동물은 선형 가속기 테이블 앙와위 배치되고, 상기 헤드는 목 위로 연장 표제. 시준 슬릿 폭 3 cm이다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 5
턱밑 글 랜드 기능. 식염수에 분획 방사선 그림 5. 효과는 방사선 전에 턱밑 샘에 주입했다. 동물의 목을 8 일 동안 2.5 Gy의 / 일의 분획을 조사 하였다. 날엔도시 된 8 주 방사 방식의 종료 후 자극 턱밑 침샘 유량의 ± SEM 평균이다. 그림은 인간의 유전자 치료, 메리 앤 Liebert는, 주식 게시자 15에서 저작권 권한으로 재생된다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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Discussion

침샘은 종종 머리 목 암, 목 노드의 선택 과목 절제, 또는 지역 혈액 종양에 대한 방사선 치료를받은 환자에서 조직 복구의 임계 값을 초과 방사선 량을받을 수 있습니다. 그랜드 유체 분비 선포 세포는 말기 분화되어 있지만, 이들은 역설적 방사선에 민감하다. 분비 기능은 만성 낮은 타액 출력에 복사하고, 돌이킬 수없는 선 피해 결과의 첫 주 이내에 삭제합니다. 가난한 선 기능과 계속된다 구강 건조를 방지하기 위해, 보존 또는 분비 기능의 회복은 매우 중요하다. 방사선 손상을 방지 또는 복구하는 소설 요법, 16 ~ 20는 1 8-11 연구되고있다.

치료의 전신 투여가 아닌 대상 조직에서 원치 않는 효과의 고유 위험을 운반합니다. 침 분비하는 것을 목표로 배달 이러한 위험을 감소. Retroductal 유전자 치료 또는 예방에 효과적방사선 관련 침샘의 고통 1, 9, 11, 16,17,20 또는 치료. 그러나, 동일한 기술을 사용하여, 침샘도 ectopically 발현 단백질을 분비하기 위해 재 설계 될 수있다. 타액선 세포의 기저 호르몬 분비 경로를 악용 혈액으로 유전자 발현 및 분비 호르몬 (21)를 얻을 수있다. 침샘에 유전자 전달은 따라서 효과적으로 특정한 내분비 질환의 보정에 확장 될 수있다.

작은 동물의 타액선 관의 삽관이 까다로운 일이 될 수 있지만, 실제로는 기술을 연마 핵심이다. 캐 뉼러의 테이퍼 끝은 삽입시 쉽게 꼬, 및 주입 어렵게 만들 수 있습니다. 솔루션을 추방하는 튜브의 굽힘의 미리 경고한다 동안 다시 압력을 증가하고, 필요성이 다시 cannulate하기 위해 덕트. 입 제한 병리와 함께 이러한 비정상적인 덕트 구멍 또는 증가 덕트 비틀림 등의 해부학 적 변화,개구 장애 또는 점막 밑 섬유증과 같은 개방 턱밑 글 랜드 배달 도전 할 수 있습니다. impermeant 염료의 주입이 기술을 연습하는 것은 정확한 배달의 유용한 지표가 될 수있을 때. 캐 뉼러 부드러운 저항없이 주입의 적절한 배치는 프로 시저의 성공을위한 중요한 요소입니다.

암 환자는 종종 선형 가속기에서 생성 megavoltage 광자로 처리됩니다. 방사선 주 과정을 통해 작은 용량으로 매일 제공됩니다. 방사선은 건강한 조직에 독성을 감소시키고 종양을 민감 할 사이에 용량 분별 복구 기간을 제공합니다. 선형 가속기의 고 에너지 투과 광선 고질적 인 종양의 치료에 유용하다. 또한, 피부에 가까운 종양의 치료, 조직 상당 루스 광자의 침투 깊이를 감소시키기 위해 사용된다. 로컬 subma을 조사하는 임상 마찬가지로, 선형 가속기 전달 분획 방사선이 사용될 수있다작은 동물의 ndibular 샘. 그러나, 즉시 피부 밑 동맥의 위치는 볼 루스의 위치는 동맥 내> 90 %의 방사선 량을 달성하기 위해 필요로한다. 루스의 두께는 광자의 에너지 및 조직 침투의 원하는 깊이에 따라서 계산된다.

이 글에서, 우리는 retroductal 턱밑 글 랜드 점안 및 쥐 턱밑 샘의 지역 분별 조사를 수행하기위한 실험 지침을 제공합니다. 강조 방법은 침샘의 방사성 분야로 향한 연구자에 대한 실험 장치를 도움이 될 우리의 희망입니다.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
Intramedic Polyethylene tubing (PE10) Becton Dickson 427401
1/2 cc Insulin Syringe U-100 Becton Dickson 309306
Artificial Tears Miller Vet Supply  5098-9840-64
Hot Bead Sterilizer Fine Science Tools 18000-45
Perma-Hand silk suture Ethicon K833H
Graefe forcep Fine Science Tools 11051-10
Olympus SZX16 Stereo Microscope Hunt Optics and Imaging
6 MV Linear Accelerator Elekta
Bolus - Skinless  Civco MTCB410
Heat Lamp Braintree Scientific HL-1 110V

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References

  1. Delporte, C., et al. Increased fluid secretion after adenoviral-mediated transfer of the aquaporin-1 cDNA to irradiated rat salivary glands. Proc Natl Acad Sci U S A. 94 (7), 3268-3273 (1997).
  2. Chambers, M. S., Rosenthal, D. I., Weber, R. S. Radiation-induced xerostomia. Head Neck. 29 (1), 58-63 (2007).
  3. Sciubba, J. J., Goldenberg, D. Oral complications of radiotherapy. Lancet Oncol. 7 (2), 175-183 (2006).
  4. Rodrigues, N. A., et al. A prospective study of salivary gland function in lymphoma patients receiving head and neck irradiation. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 75 (4), 1079-1083 (2009).
  5. Coracin, F. L., et al. Major salivary gland damage in allogeneic hematopoietic progenitor cell transplantation assessed by scintigraphic methods. Bone Marrow Transplant. 37 (10), 955-959 (2006).
  6. Jensen, S. B., et al. A systematic review of salivary gland hypofunction and xerostomia induced by cancer therapies: management strategies and economic impact. Support Care Cancer. 18 (8), 1061-1079 (2010).
  7. de Castro, G. Jr, Federico, M. H. Evaluation, prevention and management of radiotherapy-induced xerostomia in head and neck cancer patients. Curr Opin Oncol. 18 (3), 266-270 (2006).
  8. Epperly, M. W., Carpenter, M., Agarwal, A., Mitra, P., Nie, S., Greenberger, J. S. Intraoral manganese superoxide dismutase-plasmid/liposome (MnSOD-PL) radioprotective gene therapy decreases ionizing irradiation-induced murine mucosal cell cycling and apoptosis. In Vivo. 18 (4), 401-410 (2004).
  9. Cotrim, A. P., Sowers, A., Mitchell, J. B., Baum, B. J. Prevention of irradiation-induced salivary hypofunction by microvessel protection in mouse salivary glands. Mol Ther. 15 (12), 2101-2106 (2007).
  10. Zheng, C., et al. Prevention of radiation-induced salivary hypofunction following hKGF gene delivery to murine submandibular glands. Clin Cancer Res. 17 (9), 2842-2851 (2011).
  11. Palaniyandi, S., et al. Adenoviral delivery of Tousled kinase for the protection salivary glands against ionizing radiation damage. Gene Ther. 18 (3), 275-282 (2011).
  12. Baum, B. J., Voutetakis, A., Wang, J. Salivary glands: novel target sites for gene therapeutics. Trends Mol Med. 10 (12), 585-590 (2004).
  13. Limesand, K. H., et al. Insulin-like growth factor-1 preserves salivary gland function after fractionated radiation. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 78 (2), 579-586 (2010).
  14. Timiri Shanmugam, P. S., et al. Recombinant AAV9-TLK1B administration ameliorates fractionated radiation-induced xerostomia. Hum Gene Ther. 24 (6), 604-612 (2013).
  15. Coppes, R. P., Vissink, A., Konings, A. W. T. Comparison of radiosensitivity of rat parotid and submandibular glands after different radiation schedules. Radiother Oncol. 63 (3), 321-328 (2002).
  16. Sunavala-Dossabhoy, G., Palaniyandi, S., Richardson, C., De Benedetti, A., Schrott, L., Caldito, G. TAT-mediated delivery of Tousled protein to salivary glands protects against radiation-induced hypofunction. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 84 (1), 257-265 (2012).
  17. Baum, B. J., et al. Transfer of the AQP1 cDNA for the correction of radiation-induced salivary hypofunction. Biochim Biophys Acta. 1758 (8), 1071-1077 (2006).
  18. Tran, S. D., et al. Paracrine effects of bone marrow soup restore organ function, regeneration, and repair in salivary glands damaged by irradiation. PLoS One. 8 (4), e61632 (2013).
  19. Nanduri, L. S., et al. Salisphere derived c-Kit+ cell transplantation restores tissue homeostasis in irradiated salivary gland. Radiother Oncol. 108 (3), 458-463 (2013).
  20. Arany, S., Benoit, D. S., Dewhurst, S., Ovitt, C. E. Nanoparticle-mediated gene silencing confers radioprotection to salivary glands in vivo. Mol Ther. 21 (6), 1182-1194 (2013).
  21. Voutetakis, A., et al. Reengineered salivary glands are stable endogenous bioreactors for systemic gene therapeutics. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (9), 3053-3058 (2004).

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Nair, R. P., Zheng, C., Sunavala-Dossabhoy, G. Retroductal Submandibular Gland Instillation and Localized Fractionated Irradiation in a Rat Model of Salivary Hypofunction. J. Vis. Exp. (110), e53785, doi:10.3791/53785 (2016).

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