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Limpia Muestreo y Análisis de río y estuarios, aguas de trazas metálicas Estudios

Published: July 1, 2016 doi: 10.3791/54073
Automatic Translation
*1, *2,3, 4
1Department of Oceanography, National Sun Yat-sen University, 2Institute of Oceanography, National Taiwan University, 3Taiwan Ocean Research Institute, National Research Laboratories, 4Department of Oceanography and Marine Sciences, Texas A&M University at Galveston
* These authors contributed equally

Introduction

Se ha reconocido comúnmente que algunos resultados de metales traza obtenidos para las aguas naturales pueden ser inexactos debido a los artefactos derivados de técnicas inadecuadas aplicadas durante la recogida de muestra, tratamientos y 1,2 determinación. Las concentraciones verdaderas (en sub-nm a rango nM en las aguas superficiales 3) de trazas de metales disueltos son ahora hasta dos órdenes de magnitud menor que los valores publicados anteriormente. La misma situación se ha encontrado en la química marina, donde las concentraciones de metales traza disueltos aceptados en aguas oceánicas han disminuido en varios órdenes de magnitud durante los últimos 40 años más o menos como se han introducido una mejor toma de muestras y métodos de análisis. Se han hecho esfuerzos para mejorar la calidad de los datos con la evolución de las técnicas de "limpias" encaminadas a la reducción o eliminación de la contaminación de metales traza en todas las fases de análisis de metales traza 4-8. Para la determinación de las concentraciones de metales en el ambienteniveles, a menudo es necesario preconcentración. Técnicas de intercambio iónico 8-12 se han aplicado comúnmente para la preconcentración eficiente.

La contaminación puede surgir de las paredes de los contenedores, la limpieza de los contenedores, la toma de muestras, manipulación de muestras y almacenamiento y conservación de muestras y de análisis de 7,13. Todos los estudios que utilizaron métodos de limpieza realizadas más recientemente indican que las concentraciones de metales traza en aguas naturales son por lo general muy por debajo de los límites de detección de los métodos de rutina 7. Desde el reconocimiento de los datos de metales traza sospechosos en la década de 1990, los métodos de limpieza se han incorporado a la EPA (Environmental Protection Agency) Directrices para la determinación de trazas de metal 14 y el Servicio Geológico de Estados Unidos ha adoptado métodos de limpieza para su monitoreo de la calidad del agua se proyecta 15. Métodos de limpieza para los estudios de metales traza necesitan ser empleado en todos los proyectos con el fin de crear una base de datos de empresas y precisa.

Distribución y el comportamiento de los metales traza en ambientes acuáticos tales como aguas superficiales y subterráneas pueden verse afectadas por desastres naturales (por ejemplo, a la intemperie) y antropogénicos (por ejemplo, efluentes de aguas residuales) factores, así como otras condiciones ambientales, tales como la rela geología regional, la morfología, el uso del suelo y la vegetación, y el clima 16-19. Esto puede dar lugar a diferencias en los parámetros físico-químicos tales como las concentraciones de partículas en suspensión (SPM), carbono orgánico disuelto (DOC), ligandos antropogénicas (por ejemplo, ácido etilendiaminotetraacético, EDTA), sal, potencial redox y pH 17-20. Por lo tanto, los estudios de metales traza precisos y relevantes requieren recolección adecuada de la muestra para el análisis de trazas de metales, así como para la determinación de los factores relacionados y parámetros.

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Protocol

1. Preparación Sampler

  1. Dechado
    1. El montaje del muestreador
      1. Conectar una tubería de 4 m de largo etileno propileno fluorado (FEP) (0,635 cm ID, OD 0.95 cm o similares) a un tubo de bombeo de silicona resistente químicamente 1,5 m (OD 0,635 cm).
      2. Insertar un polipropileno conector en Y en el tubo de bombeo, y conectar un tubo de bombeo 50-cm para una salida, y un filtro de cápsula de 0,45 micras (por un tubo de bombeo 20-cm) a la otra.
      3. Montar los tubos en una habitación limpia (banco) después de que se limpian (véase más adelante), y almacenar el conjunto en dos capas de bolsas de polietileno.
    2. muestreador de limpieza
      1. Llenar (conectando el tubo de bombeo de 1,5 m sobre una bomba peristáltica) del conjunto de tubos con una solución de detergente de laboratorio y en remojo durante 24 horas. Enjuague el juego de tubos con agua desionizada, y luego llenarlo con 10% (v / v) HCl (grado reactivo) y remojar durante 48 horas.
      2. Lave minuciosamente el juego de tubos con desionizada water varias veces, y almacenar el conjunto de bolsas de plástico. Limpiar los conectores-Y y tubos cortos de bombeo sumergiéndolos en un HNO 50% (v / v) de 3 (grado reactivo) durante 24 horas.
    3. Las cápsulas
      1. Limpiar los filtros de cápsula por primera lavado con agua desionizada, (v / v) de solución, entonces 10% de HCl de una etapa de remojo de 48 horas.
      2. Después de remojar el ácido, lave los filtros con agua desionizada y añadir 1 ml de 21% (peso) solución de NH4OH (sub-hervida) en cada filtro para neutralizar el ácido.
      3. Sellar filtro individual con un bucle de 30 cm de tubo de limpiado de bombeo de la conexión de la entrada y la salida, y guardar en bolsas con cierre de polietileno.
  2. Los contenedores de muestras
    1. Utilizar polietileno (PE, 1.000 ml) y FEP (500 ml y 1.000 ml) botellas de contenedores para la determinación de trazas de metales.
      1. Limpiar las botellas sumergiéndolos primero en detergente (1%), a continuación, en 50% (v / v) HNO 3(Grado reactivo) y (v / v) Soluciones de HCl al 10% (grado reactivo) para 24, 48 y 24 horas, respectivamente, y enjuagar las botellas con agua desionizada entre las dos etapas de remojo.
      2. Después de un remojo final de HCl, enjuagar las botellas a fondo con agua desionizada (DIW) y secar las botellas (con tapa de sellado) en una sala limpia de clase-100 o mesa de trabajo limpia.
      3. botellas limpias de sellado en bolsas con cierre de polietileno y colóquelos en doble bolsa en bolsas de polietileno para el transporte.
    2. botellas de vidrio limpias para la determinación de carbono orgánico disuelto (DOC)
      1. Remojar las botellas de vidrio de borosilicato de color ámbar (40 ml), para el análisis del carbono orgánico disuelto (DOC), en HCl al 10% durante 48 horas. Enjuague botellas de vidrio limpias con agua desionizada, y la combustión en los 480 ° C durante 2 horas antes de su uso. Sellar las botellas individualmente en bolsas con cierre de polietileno para el transporte.

2. Toma de muestras

  1. recogida de muestras de agua
    1. UPOn llegada al lugar de muestreo, marca de número de identificación de la muestra en la bolsa exterior, y mantener las botellas en sus bolsas originales.
    2. En la orilla del río o en un barco, tenga una persona abra la bolsa con la toma de muestras y coloque el tubo FEP 4-m a un poste de polipropileno de 3 m (limpiado). Extender el polo tan lejos de la orilla como sea posible y mantener la entrada del tubo FEP de aproximadamente 30 cm por debajo de la superficie del agua corriente río antes de que la bomba está encendida.
    3. Haga que otra persona coloque el tubo de bombeo a la cabeza de la bomba de una bomba peristáltica (bomba de muestreo con baterías internas). Arrancar la bomba y drene el agua (aguas abajo) al menos 3 veces el volumen total de toma de muestras. Póngase los guantes libres de polvo y abrir la bolsa de botellas y tapones para comenzar a llenar las botellas de muestra.
      1. Alternativamente, si otra persona está disponible, tiene una tercera persona sea la encargada de abrir las bolsas interiores y las tapas de muestra, y sosteniendo el tubo de muestreo que drena la muestra en el bottle.
    4. Recoger una muestra no filtrada en una botella de plástico de 125 ml para las mediciones de conductividad, la temperatura y el pH en el campo.
    5. Recoger muestras no filtradas (500 ml o 1000 ml para la recogida de muestras de partículas) primero (a través de la salida sin filtro) y luego cerrar la salida con una abrazadera de plástico para forzar el agua a pasar por el filtro de cápsula para recoger una muestra de agua filtrada (1 -L para la determinación de trazas de metales disueltos).
    6. Recoger muestras filtradas (a través de la salida con el filtro) en botellas de vidrio ámbar de 40 ml para las mediciones DOC y EDTA.
    7. Recoger muestras de agua a un caudal de aproximadamente 500 ml / min a 1000 ml / min. Cambie los filtros de la cápsula cuando la presión comienza a acumularse (según la especificación de los filtros). Para cada tipo de muestra, recoger muestras adicionales, así como blancos de campo, en lugares seleccionados para servir como alícuotas de control de calidad.
    8. Coloque las botellas de vidrio de 40 ml en hielo seco y almacenados in un pecho de hielo y botellas de polietileno en hieleras.
  2. Colección de la materia particulada en suspensión (SPM)
    1. Recoger SPM en filtros de membrana de 0,4 micras de policarbonato (PC) (lavado con ácido y previamente pesada) por filtración al vacío, usando un embudo de filtración de plástico y el recipiente.
    2. Congelación de filtros de membrana en seco en el laboratorio para producir concentraciones de SPM y proporcionar muestras de partículas para la determinación de trazas de metales en partículas.

3. El tratamiento previo de la muestra (disuelto metales traza)

  1. Para la determinación de trazas de metales disueltos, añadir 2 ml de HNO concentrado sub-hervida 3 (por 1 litro de muestra) en botellas de muestra. muestras de metales traza de transferencia disuelto (acidificado) en botellas de FEP. Como alternativa, se pueden tomar muestras directamente en las botellas de FEP. UV-irradiar las muestras en botellas de FEP durante 24 horas (8 de 15 vatios lámparas UV).

4. preconcentración y tratamientos para el análisis de trazas de metales

  1. Pesar 2 g de resina de intercambio catiónico en un pequeño (10 a 30 ml de capacidad) vaso de plástico y añadir una pequeña cantidad de 2 N solución de HNO 3 en la taza. Se vierte la resina en una columna de cromatografía capacidad de 10 ml. Limpiar la resina por lavado de la columna con 5 ml de 2 N HNO 3 (sub-hervida) dos veces, y enjuague con agua de alta pureza (HPW) 3 veces.
  2. Añadir 10 ml de 1 M NH4OH (sub-cocidos) en la columna para convertir la resina de NH4 + -forma.
  • solución tampón (1 M de acetato de amonio)
    1. Añadir 57 ml de ácido acético glacial (sub-cocidos) en aproximadamente 800 ml de HPW. Añadir ~ 60 ml de hidróxido de amonio (21%, sub-hervido) y se mezcla con ácido acético. Ajustar el pH final a 5,5 y el volumen final a 1.000 ml.
  • procedimiento de preconcentración (disuelto metales traza)
    1. Ajustar el pH de las muestras acidificadas, irradiados con UV a 5,5 ± 0,3 mediante la adición de 30 ml de 1 M ACET amoniocomió solución tampón y algunos (~ 2,8 ml) NH4OH (sub-hervida) en las muestras.
    2. Coloque la botella de muestra ~ 30 cm por encima de la columna de relleno con resina de intercambio catiónico (Sección 4.1) y conectar la botella de muestra y la columna de preconcentración por un ~ 60 cm de tubo FEP y la tapa de la cromatografía y el conector (hembra Luer).
    3. Control de la velocidad de flujo a 3-5 ml / min utilizando una llave de paso de 2 vías, conectado encima de la columna. Dejar que las muestras pasen a través de las columnas de preconcentración. Después de que las muestras han pasado la columna, desconectar los tubos y las tapas de las columnas.
    4. Tratar las columnas con 2 HPW x 5 ml y 4 x 5 ml de acetato de amonio 1 M (pH 5,5), y 2 x 5 ml de HPW para separar grandes cationes de otros metales traza.
    5. Colocar una botella de PE-lavado con ácido 30-ml justo debajo de la columna y lavar la columna con 7 x 1 ml de 2 N HNO 3 (sub-hervida) en la botella de PE.
    6. Determinar el volumen de 2 N HNO 3 efluente (~ 8,0 ml) mediante la obtención del peso unaND Gravedad específica del efluente 2 N HNO 3.
  • La digestión de la materia particulada en suspensión
    1. Congelar PC filtros secos con muestras de SPM y pesarlos después del secado. Muestras SPM lugar, con filtros, en alcanos perfluoroalcoxi previamente pesados ​​(PFA) los buques de capacidad (60 ml), y añadir 3 ml de HNO3 concentrado en los vasos.
    2. Apretar los buques a un par constante de 2,5 kg-m, y se digirió en un horno convencional a 130 ° C durante 12 horas. Después de enfriar, abrir los vasos y añadir 2 ml de HF en los vasos.
    3. Apretar los buques a un par constante de 2,5 kg-m, y se digirió en un horno convencional a 130 ° C durante 12 horas. Después de enfriar, abrir los vasos y añadir 16 ml de solución de ácido bórico 4,5% en los vasos.
    4. Apretar los buques a un par constante de 2,5 kg-m, y digerir en un horno convencional a 130 ° C durante 12 horas. Pesar cada buque y determinar la gravedad específica de cada solución de digestiónpara dar volumen final de extracto.
    5. Calcular un factor de dilución para cada digestión del volumen final y el peso de SPM en el filtro (final de digerir volumen dividido por el peso de la muestra en el filtro).

    • Análisis 5. Muestra

    1. Rastrea metales
      1. Determinar metales traza (Cd, Co, Cu, Fe, Mn, Ni, Pb y Zn) las concentraciones en plasma de pre-concentrado disuelto muestra y la solución de partículas usando espectrometría de absorción atómica, horno de grafito espectrometría de absorción atómica, y / o acoplado inductivamente espectrómetro de masas.
      2. Determinar las principales concentraciones de iones y algunos metales traza, en sub-muestras extraídas antes de la preconcentración y resúmenes de las partículas en suspensión, por una espectrometría de emisión atómica de plasma acoplado inductivamente.
    2. parámetros auxiliares
      1. Determinar temperatura de la muestra, el pH, la salinidad y la conductividad en el campo, el uso de dispositivos portátiles.
      2. Determinar disuelto oganic de carbono (DOC) las concentraciones de un Analizador de carbono orgánico total, basado en la oxidación húmeda con detección de dióxido de carbono mediante espectrometría infrarroja 21. Determinar la concentración de EDTA total mediante una cromatografía líquida de alta resolución (con un detector SPD-M10AV Diodearray) siguiendo los procedimientos establecidos 22,23.

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    Representative Results

    Con el desarrollo y el uso de "técnicas limpias", ahora se reconoce ampliamente que el fin de obtener las concentraciones de metales precisos en las aguas ambientales, preconcentración de los metales traza en muestras de aguas es una práctica común. Aunque la mayoría de los criterios de calidad del agua para los metales traza en aguas naturales están en el rango de baja g / L, se necesitan los límites de detección más bajos para investigar los efectos geoquímicas y biológicos sobre metales traza en las concentraciones ambientales en ambientes acuáticos.

    Con límites de detección mejorados tras el uso de "técnicas limpias", se demostró claramente a partir de un conjunto de datos de 141 muestras de agua del río recogidas al azar de ríos de Texas, que preconcentración se necesita (Figura 1). El histograma de los datos de trazas de metales Cd, Cu, Ni, Pb y muestra que, si bien algunas concentraciones de elementos específicos pueden ser relativamente fácil deterNed (por ejemplo, Cu), algunos elementos (por ejemplo, Cd y Pb) tienen concentraciones en las aguas ambientales muy por debajo de los límites de detección de los métodos analíticos de rutina. La comparación se hizo con el conjunto de datos río de Texas contra los métodos USEPA 1637, 1638, 1639, 1637 y 1640. Métodos y 1640 son las técnicas para la determinación de metales traza con preconcentración y detectada por horno de grafito espectrometría de absorción atómica o acoplado inductivamente espectrometría de masas con plasma, respectivamente. Métodos de 1639 y 1638 son para la determinación de metales traza en aguas ambientales de los instrumentos antes mencionados, sin preconcentración.

    Figura 1
    Figura 1. Histograma de los datos recogidos de Texas, USA ríos, y la comparación con los límites de detección del método USEPA para Cd (a), Cu (b), Ni (c), y Pb (d). Un total de 141 muestras, recogidas al azar desde diferentes lugares,fueron procesados ​​utilizando el protocolo de muestreo y análisis que aquí se describe. La comparación de las distribuciones de datos y los límites de detección de la EPA muestra que tendrá que ser preconcentrado con el fin de obtener la mejor calidad de los datos de una gran fracción de las muestras de ríos de Texas. Los límites de detección (LD) que se muestran en los gráficos son los enumerados en los métodos USEPA 1637, 1638, 1639, y 1640 (ver detalles de método de texto). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

    Los resultados de los límites de detección, recuperaciones para un material de referencia (SRM), y las concentraciones de los blancos de campo en blanco, agua de alta pureza traído al campo y tratada y procesada como muestras, muestran la efectividad de las técnicas "limpias" (Tabla 1). La reducción de los resultados de contaminación en los límites de detección más bajos, buenas recuperaciones SRM, y muy baja concentración de campo en blancos. Los resultados mostrados en la Tabla 1 se obtuvieron basan en el procesamiento de 1 L de muestras en blanco. Los límites de detección bajos implican que las concentraciones de metales se pueden obtener con una buena resolución de los datos, lo cual es crítico cuando las distribuciones de metales traza se van a comparar a las condiciones ambientales (parámetros) que traza la influencia geoquímica de metal 20. Al comparar nuestros resultados (límites de detección del método) con los de los métodos de la EPA se ha mencionado anteriormente, el cual, sin embargo, no incluyen el muestreo de campo, comparables o mejores límites de detección (inferiores) se obtuvieron utilizando el protocolo proporcionado aquí. También se logró una buena precisión, como lo demuestran los resultados similares de blancos de campo. Replicar las muestras se recogen y procesan por separado para algunas muestras de campo y las diferencias de las concentraciones de metales fueron en general menos del 10%.

    Discos compactos co </ Td> Cu Fe Minnesota Ni Pb Zn
    ng / L mg / L mg / L mg / L mg / L mg / L ng / L mg / L
    MDL 1 0.01 0.06 0,3 0,1 0,1 10 0,1
    SLRS-3 (N = 11)
    Certificado 13 0,027 1.35 100 3.9 0.83 68 1.04 Medido (promedio) 12.6 0,026 1.29 97.2 3.86 0,77 71 1.13
    La desviación estándar 0,9 0,008 0.09 4.2 0.20 0.06 9 0.12
    Recuperación(%) 97 97 96 97 99 93 105 109
    blanco el campo 1 0,2 0.000 0,003 0.03 0.00 0.01 2.5 0.02
    blanco el campo 2 0,2 0.000 0,011 0.02 0.01 0.00 2.9 0.03 3 campo en blanco 0,1 0.000 0,011 0.03 0.00 0.00 2.5 0.01

    Tabla 1. Resultados de calidad de los datos obtenidos utilizando el protocolo de muestreo y análisis descrito aquí. Los límites de detección, los resultados estadísticos para un material de trazas de metales patrón de referencia (SLRS-3) y la ilustración de las concentraciones de metales traza en 3 espacios en blanco (presentadas alta pureza del agua tratada como muestras en el campo) indican la eficacia del protocolo descrito. Unidades de concentración están ng / l para el Cd y Pb, y mg / L para los otros elementos. Se lograron bajos límites de detección, buenas recuperaciones para un material de referencia estándar, y bajo concentraciones de campo en blanco.

    Los resultados obtenidos utilizando el protocolo de muestreo y análisis descrito aquí demuestra que nosólo produce información de rastreo de metal con bajos límites de detección, sino que también proporciona una amplia gama de aplicaciones. Como se muestra en la Figura 2 con la comparación de las concentraciones de metales traza determinada por dos métodos independientes, buena correlación (R 2> 0,994) con una pendiente de regresión lineal cerca de 1 indican que estas técnicas se pueden aplicar en ambientes acuáticos. Puesto que una técnica de preconcentración de intercambio iónico se utiliza para generar los resultados, el intervalo lineal indican que el protocolo descrito se puede aplicar en distintivamente diferentes ambientes acuáticos donde las concentraciones de metales traza varían en un amplio intervalo.

    Figura 2
    Figura 2. Comparación de las concentraciones de metales traza obtenida a partir de dos métodos independientes. Se encontró muy buen acuerdo entre las concentraciones de metales traza determinada utilizando dos indmétodos t en alícuotas separadas de las mismas muestras. Una muestra se analizó directamente mediante espectrometría de emisión atómica de plasma acoplado inductivamente y el otro fue preconcentrado mediante técnicas de intercambio iónico después de la determinación por par inductivamente espectrometría de masas de plasma. Intervalo de concentración grande implica que las técnicas son adecuadas para los estudios de metales traza en distintivamente diferentes entornos en los que las concentraciones de metales traza muestran diferencias significativas. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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    Discussion

    La obtención de datos fiables de metales traza en aguas naturales requiere gran cuidado como destacó durante la recogida de muestras, el procesamiento, tratamientos previos, y el análisis que tienen como objetivo reducir la contaminación. Rastrear las concentraciones de metales en las aguas naturales obtenidos utilizando técnicas "limpias" en las últimas dos décadas ha encontrado que las concentraciones pueden ser varios órdenes de magnitud inferior a la reportada previamente. Criterios de calidad del agua para los metales traza en aguas ahora se evalúan con más facilidad cuando los niveles de metales traza se miden con precisión lo que resulta en una mejor evaluación de los efectos nocivos para los seres humanos y los organismos superiores. Biodisponibilidad y toxicidad de los metales traza en ambientes acuáticos requieren investigaciones más rigurosas en los intervalos de concentración más bajos. Esta no es una tarea fácil, ya que la distribución y el comportamiento de los metales traza son controlados por muchos otros parámetros físico-químicos en el medio ambiente, y debido a eso, evaluaciones fiables de biodisponibilidad y toxicidad de metales trazason un reto. Toma de muestras y análisis de los parámetros auxiliares relacionadas con metales traza necesitan ser incluidos en tales evaluaciones.

    La eliminación de la contaminación y en última instancia, la reducción de los límites de detección de las concentraciones de metales traza en aguas ambientales, por lo tanto, exigir a los científicos a prestar especial atención a todas las fases de análisis de trazas de metales. A partir de materiales de laboratorio, los engranajes de toma de muestras, contenedores de muestras, aparatos y materiales utilizados durante los tratamientos previos de muestras y reactivos, productos químicos, a la configuración instrumental, la contaminación se convierte en aditivo y todos los factores mencionados más arriba deben especificarse al informar de los resultados de análisis de trazas de metales. Por lo tanto, los procedimientos para preparar engranaje de toma de muestras, contenedores de muestras, y los materiales utilizados para procesar y analizar muestras son pasos críticos hacia la obtención de datos de alta calidad para los metales traza en los ambientes acuáticos. Cuando se compara con los métodos existentes (por ejemplo, métodos USEPA), los datos obtenidos usando el protocolo outlined anteriormente resultan en mejores o comparables límites de detección muy bajos y espacios en blanco. Un gran conjunto de elementos traza (8, Tabla 1) se puede evaluar.

    El protocolo descrito aquí se puede aplicar fácilmente a la colección de diferentes tipos de muestras acuáticas, además de los ríos y estuarios aguas, por ejemplo, los océanos, lagos y aguas subterráneas. Desde preconcentración de la muestra puede llevar mucho tiempo, el protocolo proporcionado aquí puede ser modificado de acuerdo a las características específicas de los diferentes ambientes acuáticos. En aguas muy afectadas, las muestras todavía deben recogerse limpiamente, pero pueden ser determinados directamente por los instrumentos adecuados si se encuentra ninguna interferencia de la matriz. Volumen de la muestra se puede ajustar si se requieren mayores o menores factores de preconcentración. En los casos en que la capacidad de intercambio de iones debe aumentarse, mayores cantidades de resina pueden ser utilizados.

    Este trabajo demuestra que, la determinación de metales traza de Estados Unidosing "técnicas limpias" que incluyen el muestreo y pre-concentración, junto con la determinación de parámetros medioambientales relacionados, la distribución de los metales traza en el medio acuático puede ser mejor evaluada, teniendo en cuenta las condiciones ambientales específicas y el alcance de las influencias naturales y antropogénicos 20. La gran concentración oscila que este protocolo es capaz de aplicar dar a entender que las investigaciones de las distribuciones de metales traza y comportamiento también pueden llevarse a cabo en entornos que cambian con el tiempo y el espacio.

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    Materials

    Name Company Catalog Number Comments
    Nitric Acid Seastar Chemicals Baseline grade
    Ammonium hydroxide Seastar Chemicals Baseline grade
    Acetic Acid Seastar Chemicals Baseline grade
    Nitric Acid J. T. Baker 9601-05 Reagent grade
    Hydrochloric acid J. T. Baker 9530-33 Reagent grade
    Chromatographic columns Bio-Rad 7311550  Poly-Prep
    Column stack caps Bio-Rad 7311555
    Cap connectors (female Luers) Bio-Rad 7318223
    2-way stopcocks Bio-Rad 7328102
    Cation exchange resin Bio-Rad 1422832  Chelex-100
    Portable sampler (sampling pump) Cole Palmer EW-07571-00
    FEP tube Cole Palmer EW-06450-07 6.4 mm I.D., 9.5 mm O.D.
    Pumping tube Cole Palmer EW-06424-24 6.4 mm I.D. C-Flex
    Capsule filter (0.4 mm) Fisher Scientific WP4HY410F0 polypropylene casing
    1 L low density polyethylene bottle NALGE NUNC INTERNATIONAL 312088-0032
    1 L (or 500 ml) FEP bottle NALGE NUNC INTERNATIONAL 381600-0032

    DOWNLOAD MATERIALS LIST

    References

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    Jiann, K. T., Wen, L. S., Santschi, P. H. Clean Sampling and Analysis of River and Estuarine Waters for Trace Metal Studies. J. Vis. Exp. (113), e54073, doi:10.3791/54073 (2016).

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