Summary
Ein Protokoll , ein Poly (N iso-propylacrylamid) (PIPAAm) beschichtet Mikro für effektive Erfassung und thermoresponsive Freisetzung von lebenden zirkulierenden Tumorzellen (CTC) präsentiert zu nutzen. Diese Methode ermöglicht Erfassung von CTC aus dem Blut des Patienten und die anschließende Freisetzung von lebensfähigen CTC für Downstream-Off-Chip-Kultur, Analysen und Charakterisierung.
Abstract
Wir zeigen ein Verfahren zur Größe basierte Erfassung von lebenden zirkulierenden Tumorzellen (CTC) aus Vollblut, zusammen mit der Freisetzung dieser Zellen aus Chip für Downstream-Analyse und / oder Kultur. Die Strategie setzt die Verwendung eines Porenmikro neuartigen Parylene C Membran Schlitz zu erfassen CTC und eine Beschichtung aus Poly (N -iso-propylacrylamid) (PIPAAm) für thermoresponsiven tragfähige Freisetzung des eingefangenen CTC. Das Einfangen von lebenden Zellen wird durch die Nutzung der Gestaltung eines Schlitzes Porengeometrie mit spezifischen Abmessungen ermöglichte die Scherspannung zu verringern, die typischerweise mit den Filtrationsprozess verbunden. Während die Filter nicht mit einer hohen Abscheidegrad aufweist, ist die Freisetzung dieser Zellen nicht trivial. Typischerweise sind nur ein kleiner Prozentsatz der Zellen freigesetzt wird, wenn Techniken wie Umkehrströmung oder Zell Schaben verwendet werden. Die starke Haftung dieser epithelialen Krebszellen auf die Parylene C-Membran ist auf unspezifische elektrostatische Wechselwirkung. Entgegenzuwirken thEffekt ist, verwendet wir die Verwendung von PIPAAm Beschichtung und ihre Wärme ansprechenden Grenzflächeneigenschaften ausgenutzt, die Zellen von dem Filter zu lösen. Blut wird zuerst bei Raumtemperatur filtriert. Unter 32 ° C, ist PIPAAm hydrophil. Danach wird der Filter entweder in Kultur platziert Medien oder einem Puffer bei 37 ° C gehalten wird, die in der PIPAAm führt hydrophoben Drehen und anschließend die elektrostatisch gebundenen Zellen freigesetzt wird.
Introduction
Metastasierten Erkrankung ist verantwortlich für die meisten Todesfälle durch Krebs. Die Entwicklung prognostischen und diagnostischen Begleit Biomarker für die Metastasierung ist in der Krebs Management und Behandlung von entscheidender Bedeutung. Zirkulierende Tumorzellen (CTC) spielen eine zentrale Rolle bei der Tumorausbreitung und Metastasierung. Des Weiteren als "flüssige Biopsie Biomarker leicht zugänglich zu sein, CTC bei Krebspatienten Tummelplatz" für Krebs Biomarker-Forschung 'peripheren Blut wurde als gestiegen ". 3 - CTC wurden als prognostischer Biomarker bei verschiedenen Krebserkrankungen, einschließlich Brust-, Prostata- und Darmkrebs 1 gut validiert. Jüngsten Fortschritte in der CTC - Feld hat jedoch darauf hingewiesen , dass die bloße Aufzählung dieser seltenen Zellen klinischen Nutzen beschränkt hat, als 4 in der interventionellen klinischen Studien gezeigt. Somit gibt es eine wachsende Nachfrage nach Technologien, die für die molekulare und funktionelle Charakterisierung von CTC ermöglichen. Derzeit sind nur wenige Technologien existieren, mit denen for Nicht-Antigen voreingenommen, durchführbare Erfassung und Freigabe von CTC und ermöglicht robuste nachgeschalteten molekularen und funktionellen Analyse 5,6. Mehrzahl dieser mikrofabrizierten Geräte an mikrofluidischen Plattformen gekoppelt und damit einen begrenzenden Faktor in der Menge von Blut, die die verarbeitet werden können, die von 2 bis 4 ml 7 reicht - 10. CTC sind seltene Ereignisse in einem einzigen Rohr aus Blutentnahme (7,5 ml), daher weiter die Menge an Blut zu reduzieren, die verarbeitet werden können, stark behindert die Chancen für die Erfassung und diese Zellen von Interesse zu isolieren.
Wir haben für die Erfassung von CTC zwei Arten von Parylene C Membranmikro Geräte entwickelt , die die Größenunterschiede zwischen größeren Tumorzellen und den kleineren normalen Blutzellen 11,12 auszunutzen. Wir haben zuvor auf dem runden Poren Enumeration Filter berichtet und verglichen sie mit einer FDA-zugelassenen Plattform, wo die Mikro in CTC - Capture - Effizienz überlegen gezeigt wurde ,für Krebspatienten Blutproben 13,14. Jedoch eine Begrenzung des Rundfilters ist die Notwendigkeit, eine Formaldehydbasis Fixiermittel vor der Filtration zu verwenden. Dieser Prozess bewahrt die Zellen Morphologie, während es ihnen ermöglicht, die Scherspannung und Druck während des Filtrationsprozesses zu widerstehen. Während Aufzählung und molekulare Untersuchungen können auf dem Chip 13 durchgeführt werden, beeinträchtigt die Fixiermittel die Fähigkeit , funktionelle Charakterisierung durchzuführen. Um diese Einschränkung zu begegnen, entwickelten wir einen Schlitz Porenfilter, der die Notwendigkeit negiert zu fixieren Zellen vor der Filtration (Abbildung 1). Die Schlitzporengeometrie (6 & mgr; m Breite x 40 & mgr; m Länge Schlitzporen) ermöglicht es den Tumorzellen, während nur teilweise eine Pore und somit noch ermöglicht einen freien Durchgang für andere Blutzellen und die Linderung der Druckanstieg Okkludieren erfasst werden, die zu Zellschäden führen würde und schließlich Platzen 15,16 der Schlitz Poren Kartusche besteht aus zwei Acrylstücke , die Sandwichder Schlitz Porenfilter , der zwischen dem oberen und unteren Teil mit Polydimethylsiloxan (PDMS) , die als eine Dichtung , die eine lecksichere Dichtung 14,15 (Figur 1) zu liefern.
Während die Abscheidungseffizienz des Schlitzes Porenfilter ist hoch, (Tabelle 1), werden die erfassten CTC an die Membran gebunden Parylene C durch starke unspezifische elektrostatische Wechselwirkungen statt extrazellulären Matrix (ECM) 15 vermittelte Adhäsion. Verfahren wie Umkehrströmung oder die Verwendung von Zell-Schaber versagen die Zellen von dem Filter effektiv zu lösen, oder in Zellschädigung und Zelltod führen. Wir erkundeten einen unkonventionellen Einsatz von PIPAAm Release - Strategie 15 zu formulieren. PIPAAm ist ein Polymer , das bei einer Lösungstemperatur von 32 ° C 17 eine reversible untere kritische Lösungstemperatur (LCST) Phasenübergang erfährt. Traditionell ist diese Eigenschaft von PIPAAm für Tissue-Engineering-Anwendungen weit erforscht. Typischerweise werden Zellenkultiviert auf PIPAAm bei 37 ° C beschichteten Oberflächen wenn PIPAAm hydrophob ist. Die Zellen können dann als Folie abgenommen werden , wenn die Kulturtemperatur auf unter 32 ° C verschoben wird, wo die beschichtete Oberfläche PIPAAm hydratisierten 17,18 wird. Wir nutzten diese thermische Eigenschaft durch das Filtrationsverfahren bei Raumtemperatur durchführt (unter 32 ° C) und dann ermöglicht Zellfreisetzung durch den Filter in Kulturmedien platziert bei 37 ° C gehalten. Bei dieser Temperatur wird die PIPAAm Polymerschicht hydrophob ist , wodurch die Freigabe der elektrostatisch gebundenen Zellen 15 (Abbildung 1).
Obwohl die Temperatur ansprechende Methode sowie andere Methoden haben tragfähige CTC - Capture zu erreichen erfolgreich umgesetzt und Release 19-21, ein Schlüssel durch diese Technologien gemeinsam genutzt möglicher Nachteil berichtet, dass sie alle eine Antigen-abhängige Prinzip für CTC - Capture verwenden. Antigen basierte CTC-Capture, wie gezeigt previously, führen zu verzerrten CTC - Analyse 11,14. Zum Beispiel verwenden viele Affinität-basierten Technologien Antikörper, der EpCAM für CTC-Capture bindet. Allerdings CTC wurde verschiedenen Ebenen von EpCAM, was zu einer Auslassung von EpCAM niedrig und EpCAM negativen CTC durch diese Technologien zum Ausdruck gezeigt. Auch können Einschränkungen auftreten, wenn CTC aus nicht-epithelialen Ursprungs von Interesse ist, wie CTC in Melanom und Sarkom-Einstellungen. Somit ist eine Technologie, die ohne Potentialvorspannung für tragfähige CTC Erfassung und Freigabe ermöglicht durch Antigen-basierende Datenerfassung eingeführt ist höchst wünschenswert.
Wichtig ist, dass der Mikrofilter-Aufnahmegerät rein bemessen basiert und die Trennstrategie unabhängig auf das Vorhandensein von bestimmten Oberflächenmarker. Wir glauben, dass der Einsatz der Mikro PIPAAm beschichtet wird dazu beitragen, unser Verständnis des metastatischen Prozesses zu erweitern, durch die Möglichkeit bietet, effektiv und effizient zu erfassen und zu lösen CTC für Downstream-Analysen. Dies kann potentaussetzen mathematisch neue Moleküle, für die neuartige gezielte systemische Therapien als auch gerichtet werden könnten als Biomarker zur Verfügung stellen, die einfach und Hilfe bei der Krebspatientenmanagement überwacht werden kann.
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Protocol
Ethikerklärung: Um die Rechte der menschlichen Probanden zu schützen, wurden Blutproben unter den von der University of Miami Institutional Review Boards unter IRB 20150020 genehmigten Protokollen nach einer informierten Zustimmung erhalten.
HINWEIS: Blut für CTC-Capture gefiltert werden soll verhindern Koagulation in einem EDTA-Röhrchen gesammelt werden.
1. Beschichtung der Mikrofilter mit Poly (N-iso-Propylacrylamid) (PIPAAm)
- Wiegen PIPAAm aus 10% w / v Lösung in Butanol herzustellen. Mischen mit einem Vortex, bis die Lösung klar ist.
- Cut Kunststoff-Objektträger in etwa 12 mm x 12 mm Quadrate entweder mit einer Schere oder scharfe Klinge. Als Alternative kann eine Guillotine.
HINWEIS: Diese Quadrate als Halterung für den Filter während des Spin-Coating-Verfahren dienen wird. - Mit einem scharfen Paar gerader Kante Schere, schneiden Sie den Schlitz Porenmikro Wafer in 8 mm x 8 mm Quadrate.
- Unter Verwendung eines Polyimid-Folie Klebeband, um die Cut-Filter auf die Kunststoff squa sichernres geschnitten zuvor in Schritt 1.3. Übernehmen der Film nur an den Rand und der Ecke des Filters, so dass mindestens 7 mm x 7 mm Filterfläche durch das Band unbedeckt ist.
Abbildung 2:. Repräsentative Darstellung des Mikrofilter - Set-up für PIPAAm Beschichtung 8 mm x 8 mm Mikro auf die 12 mm positioniert x 12 mm Kunststoff quadratisch geschnitten aus einem Kunststoff - Objektträger. Polyimide Band wird verwendet , um die Mikro an Ort und Stelle zu sichern Mantel zu spinnen die PIPAAm.Reproduced mit Genehmigung aus Lit. 15. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
- Setzen Sie den Mikrofilter, die auf dem Kunststoff-Platz, auf dem Vakuumspannfutter der Schleuder befestigt ist.
- Programmieren Sie die Spin-Coater auf das folgende Rezept: Start, 500 Umdrehungen pro Minute für 10 Sekunden, 6000 rpm für 60 Sekunden bei 500 Umdrehungen pro Minute für 10 Sekunden, Stopp.
- Dispense genug 10% w / v PIPAAm Lösung (hergestellt in 1.1) vollständig die Mikro Oberfläche mit einem Standard-Kunststoff Transferpipette abdecken und die Spin Coater starten.
- Entfernen Sie die PIPAAm beschichteten Mikrofilter vom Spin-Coater, nachdem der Beschichtungsprozess abgeschlossen ist. Lassen Sie die mit dem Kunststoff Platz angebracht Filter während der Lagerung.
HINWEIS: Die beschichtete-Filter kann für bis zu 3 Monate bei Raumtemperatur gelagert werden.
2. Montage der Filtrationskassette mit PIPAAm Beschichtete Mikrofilter
- Rehydrate PIPAAm beschichtete Mikro bei Raumtemperatur durch die Mikro Platzierung noch auf dem Kunststoff-Quadrat in eine Petrischale gesichert. In 1x PBS, bis die Mikro vollständig untergetaucht ist und lassen Sie sich für 5 Minuten stehen.
- Nach dem Hydratisierungsschritts, lassen Sie den Filter aus dem Kunststoff Quadrat durch die Polyimid-Filmband mit einem Paar Scherenschnitt.
HINWEIS: Achten Sie auf welcher Seite des Filtersdie PIPAAm Beschichtung. - Montieren Sie den Mikrofilter in die Filterkassette, gebildet, indem die Mikro zwischen dem oberen und unteren Acryl Stück zusammen mit den 2 Polydimethylsiloxane (PDMS) Stücke als Dichtung / Dichtung wirkt. Klemmen Sie die Acryl-Kassette mit Clips den Filter und bieten eine gute Abdichtung zu sichern.
HINWEIS: Die PIPAAm Beschichtung nach oben zeigen sollte, um die Probe durch filtriert, werden die Zellen auf PIPAAm beschichtete Oberfläche des Filters (1) erfasst werden.
3. Filtration von Blut-Probe mit Capture und Freisetzung von CTC aus dem Mikrofilter
- Da jede Spritzenpumpe Marke eine eigene Benutzeroberfläche hat, beziehen sich auf die Bedienungsanleitung der Pumpe und programmieren Sie die Spritzenpumpe mit einer Rate von 75 ml / h zu fließen und das Volumen auf 20 ml eingestellt.
- Warm 3 ml McCoys (im Handel erhältlich) Zellkulturmedium (hergestellt durch Zugabe von in 10% fötales Rinderserum und 1% Penicillin und Streptomycin) bis 37 ° C.
- 7.5 ml von im Handel erhältlichem Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) zu der 7,5 ml der Blutprobe anzusaugen und dieses verdünnte Blut in eine 25 ml Spritze.
HINWEIS: Stellen Sie die Lautstärke von HBSS , so dass die Blutprobe mit dem gleichen Volumen von 1: 1 verdünnt wird mit HBSS Wenn zB 10 ml Blut verwendet wird, dann mit dem gleichen Volumen von 10 ml HBSS mischen 1 zu erzielen. 1 Verdünnung. - Aktivieren Sie die Filterkassette mit der Spritze und setzen Sie sie in die Spritzenpumpe. Legen Sie eine 50-ml-Röhrchen im Grunde die Strömung durch und starten Sie die Pumpe zu sammeln.
HINWEIS: Die Filtration sollte etwa 10- 12 min dauern. Alle Filtrationsschritte ausgeführt werdenout bei normaler Raumtemperatur (20-25 ° C), einschließlich Schritt 3.8 - Nach der Filtration abgeschlossen ist, lösen die Filtrationskassette Kenntnis nehmend, welche Seite die Spitze, die die Zellen auf der PIPAAm beschichtete Oberfläche gefangen hat. Aspirat 1 ml der warmen Kulturmedien in eine neue Spritze.
- Re-Eingriff mit der Filtrationskassette mit der Spritze, die die Medien enthält, aber zu diesem Zeitpunkt das untere Ende der Kassette eingreifen, so dass die PIPAAm beschichtete Oberfläche des Filters abgewandten von der Spritze.
Hinweis: Dies wird alle Zellen freizusetzen, die sanfte Rückfluss durch die Anwendung in die Schlitz Poren eingebettet werden kann. - Legen Sie die Spritze wieder auf die Spritzenpumpe und halten eine kleine Petrischale oder 6-Well-Platte direkt unter der Filtrationskassette. Stellen Sie die Durchflussrate auf 100 ml / h und die Pumpe starten.
- Führen Sie alle Medien durch den Filter und sammeln die Durchströmung in der Petrischale. Warten Sie alle Medien durchlaufen und dann die Pumpe zu stoppen und die Spritze ein entfernennd Filtrationskassette von der Pumpe.
- Lösen Sie die Filterkassette aus der Spritze und öffnen Sie den Filter aus der Kassette abzurufen. Setzen Sie den Filter mit der PIPAAm Oberfläche in der gleichen Petrischale nach unten verwendet, um den Rückfluss zu sammeln, wenn die Zellen aus den Poren freigesetzt wird. Fügen Sie den Rest der warmen Medien und legen Sie die Petrischale in eine Kulturbrutschrank bei 37 ° C eingestellt.
- Nach 30 min werden die Zellen alle vom Filter gelöst werden. Allerdings lassen Filter in der Petrischale für bis zu 24 Stunden alle Zellen, um sicherzustellen, lösen.
HINWEIS: Alternativ können die freigesetzten Zellen in einem Mikrozentrifugenröhrchen gesammelt werden weiter stromabwärts Analyse durchzuführen, wie beispielsweise PCR, ELISA, Western Blot, ein paar Beispiele zu nennen. - Nach 24 Stunden in Kultur, entfernen Sie vorsichtig die Mikro Pinzette.
HINWEIS: Der Filter kann zu dieser Zeit verworfen werden, da die Zellen daraus freigesetzt wurden. - Pipette vorsichtig das Kulturmedium nach oben und unten ein 1000 & # verwenden181; l-Pipette, um erneut zu suspendieren, die Erythrozyten und Pbmc (PBMC), die mit dem CTC auf dem Filter und freigegeben in die Platte eingeklemmt werden. Führen Sie diese Aktion sorgfältig und vorsichtig lose befestigt Krebszellen Ablösen zu vermeiden. Entfernen Sie vorsichtig die resuspendierten Erythrozyten und PBMC während Verlassen hinter den beigefügten Krebszellen und Ersatz mit frischem Medium vorgewärmt auf 37 ° C, um das gesamte Medium enthält.
HINWEIS: Dieser Schritt kann einmal wiederholt werden, wenn übermäßige Erythrozyten nach einer Wäsche vorhanden sind.
4. CTC Viability Bewertung
- Bewerten kultiviert CTC Lebensfähigkeit 8 eine Live / Dead - Assay verwendet wird .
HINWEIS: Zahlreiche Live / Dead-Assays sind im Handel erhältlich. Nach dem Protokoll des Herstellers wird dringend empfohlen. Bitte beachten Sie die Materialien / Reagenzien Liste für die im Handel erhältlichen Test-Kit für dieses Experiment verwendet.
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Representative Results
Mit gesunden Spendern Blut (erhalten unter einem Protokoll, das von der University of Miami IRB 20.150.020 im Anschluss an eine informierte Zustimmung genehmigt) gespickt mit kultivierten Krebszellen, die thermoresponsive Technik zur Freisetzung von lebenden zirkulierenden Tumorzellen (CTC) erzielte Erfassung, Freigabe und Wieder Effizienz von 94% ± 9%, 82% ± 5% und 77% ± 5% (Tabelle 1) 15. Im Vergleich dazu waren die Freisetzung und Wiedergewinnungseffizienz von unbeschichteten Filter deutlich geringer (7% ± 1% Freisetzungseffizienz und 6% ± 1% Wiedergewinnungswirkungsgrad) (Tabelle 1) 15. Um die Lebensfähigkeit von CTCs aus Filter, ~ 1000 SK-Br-3-Zellen wurden versetzt in 7,5 ml gesunden Spenderblut, gefiltert durch den PIPAAm beschichtete Schlitzfilter und freigegeben unter Verwendung der oben beschriebenen Verfahren gelöst zu bewerten. Ein Live / Dead-Test wurde durchgeführt, die die Lebensfähigkeit der Zellen vor Spike in Blut zu bewertenund nach der Entlassung. Die Pre-Spitze Lebensfähigkeit betrug 98% (592 von 602 Zellen gezählt) und die Lebensfähigkeit von Zellen aufgenommen und von Blut freigesetzt betrug 95% (540 aus 567 Zellen gezählt) 15 (3A). Parallel dazu nahmen die Zellen und Nachverbrennung Filtration aus der Blutprobe kultiviert wurden in 5A Kulturmedium McCoy. Bilder bei Tag eingenommen wurden 3 und Tag 10. Wie in 3B gezeigt ist , aus dem Filter freigesetzten Zellen nicht lebensfähig blieben nur, aber rasch in Kultur expandiert, damit ihre Lebensfähigkeit Nachfiltervorrichtung herzustellen.
Abb . 1: PIPAAm Slot Filter Coated Capture and Release zirkulierender Tumorzellen aus Blut (oben) (A) Hell Bild von PIPAAm beschichtet Schlitz - Filter; (B) Filtration von Vollblut für CTC - Capture. (C) Schematische Darstellung der ter Mikrofilter Kassette, wo die, PIPAAm beschichtet Schlitz Filter zwischen der oberen und unteren Kassette angeordnet ist. (Bodenplatte) (D) Schematische Darstellung des Prozesses freizugeben CTC von PIPAAm beschichtet Schlitz Filter erfasst. Wiedergabe mit freundlicher Genehmigung aus Lit. 15. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 3:. Erfassung, Freigabe und Kultur von lebenden Tumorzellen Zellen Brustkrebs (SKBR-3) versetzt in normalen Spenderblut wurden gefangen genommen und veröffentlicht eine PIPAAm beschichtete Mikro verwenden. Die Zellen blieben tragfähige nachträglicher und rasch in Kultur expandiert. (A) Live - toten Test durchgeführt auf den vom Filter freigesetzten Zellen. 95% (540 aus 567 gezählten Zellen) der Zellen zeigte lebensfähig zu sein(Grün) nach der Veröffentlichung. Tote Zellen sind rot markiert. (F) Tag 3 bis Tag 10 der Kultur der aus PIPAAm beschichtet Schlitz - Filter freigesetzten Zellen. Die Zellen blieben lebensfähig und in Kultur expandiert. Maßstabsbalken = 100 μm.Reproduced mit Genehmigung aus Lit. 15. Bitte hier klicken , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 4: Messung der Pore Parameter Vor- und Nach - PIPAAm Beschichtung Hell Bilder von Schlitzfilter (A) vor und (B) post- PIPAAm Beschichtung.. (C) Porenlänge wurde um 7,3% ± 2,1% gesunken nach PIPAAm Beschichtung und Porenweite von 15,3% ± 5,6% nach PIPAAm Beschichtung verringert wurde. Wiedergabe mit freundlicher Genehmigung aus Lit. 15.Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Abbildung 5: Contaminating Erythrozyten und Leukozyten werden entfernt von Gentle Wäscht Rund 1.000 SKBR-3 - Zellen wurden aus dem Blut zurückgeholt durch PIPAAm beschichtet Schlitz - Filter und wurden auf einer 48-Well - Platte plattiert.. (A) bei 16 Stunden in Kultur, SKBR-3 Tumor Kulturplatte geklebt Zellen (grüne Pfeile), während apoptotische Erythrozyten und Leukozyten wurden Absetzen auch an der Unterseite der Platte (rote Pfeile). (B) Nach dem Waschen, nicht haftenden Zellen wurden entfernt, so dass anhaftende Tumorzellen auf der Platte (grüne Pfeile). Wiedergabe mit freundlicher Genehmigung aus Lit. 15. Bittehier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Tabelle 1:. Erfassung, Freigabe und Retrieval Effizienz von PIPAAm Coated Slot Filter Abscheidegrad = Zellzahlen erfasst auf Filter vor der Freigabe / Zellzahlen versetzt in das Blut. Lassen Sie Effizienz = Zellzahlen veröffentlicht von den Filter / Zellzahlen auf dem Filter vor der Freigabe eingefangen. Retrieval Effizienz = Zellzahlen aus dem Filter / Zellzahlen veröffentlicht versetzt in blood.Reproduced mit Genehmigung aus Lit. 15.
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Discussion
Der Prozess der Erfassung tragfähige CTC aus Vollblut und aus dem Mikrofilter Freigabe ist relativ einfach; aber ein paar kritische Punkte sind erwähnenswert. Es ist zwingend notwendig, wie bei allen Zellkultur, die eine sterile Zustand durch den gesamten Prozess aufrecht erhalten wird. Der erste Schritt des Beschichtens des Filters mit PIPAAm kritisch ist, als Grundlage für die Technik der Zellen aus der Filter Freisetzung beruht PIPAAm des auf Temperatur ansprechenden Grenzflächeneigenschaften zu nutzen. Um zu gewährleisten, hat der Filter effektiv, messen die Größe einer Pore (Breite und Länge eines Schlitzes Pore) auf dem Filter unter einem Mikroskop vor der Beschichtung und messen erneut eine Porengröße Post Beschichtung beschichtet worden ist. Die Porengröße ist sowohl von 1 um von der Breite verringert werden , und die Länge (Abbildung 4). Wie bereits erwähnt, effizient der Schlitz-Filter, während CTC Erfassung, fängt auch einige große Zellen PBMC jedoch diese Zellen nicht-adhärenten Zellen und damit during Schritt 3.13 werden aus der Kultur entfernt hinter den anhaftenden Krebszellen verlassen (Abbildung 5).
Geringfügige Modifikationen am Protokoll kann erforderlich sein, wenn unterschiedliche Mengen von Blut gefiltert oder in Fällen, wenn die Viskosität extrem hoch ist. Wie im Protokoll erwähnt, ist es kritisch, Blut zu verdünnen 1: 1 mit HBSS. Die Viskosität von Blut ist von Patient zu Patient, aber in den meisten Fällen wird dies die Filtration nicht beeinflussen. Es werden bestimmte Fälle, in denen die Viskosität extrem hoch ist oder große Klumpen vorhanden sind, in welchem Fall die Spritzenpumpe wird das Blut zu zwingen, durch den Filter nicht in der Lage sein. Es wird in diesen Fällen empfohlen, die Spritzenpumpe zu stoppen, lösen Sie die Kassette aus der Spritze, öffnen Sie den oberen Teil der Kassette, aber den Filter noch mit dem Unterteil befestigt lassen. Große Blutgerinnsel wird auf dem Filter leicht sichtbar sein. Pipette vorsichtig 1 ml HBSS auf den Filter, während die Kassette in einem leichten ang Haltele das Gerinnsel zu waschen zu lassen. Sobald das Gerinnsel entfernt wurde, schließen Sie die Kassette, wieder einrasten an der Spritze und Filtration fortzusetzen.
Während die PIPAAm beschichteten Filter für die spätere Verwendung in Chargen und gespeichert vorgenommen werden können, haben wir herausgefunden, dass die Haltbarkeit dieser vorbeschichteten Filter etwa 3 Monate. Die effektive Erfassung und Freigabe der Zellen können aufgrund der PIPAAm erniedrigender im Laufe der Zeit teilweise verringert werden.
Einer der limitierenden Faktoren eine Kultur von Patient CTC zu etablieren in der Anzahl der CTC liegen wird, die in der Blutprobe vorhanden sind. Niedrige Zahlen werden wahrscheinlich die Fähigkeit machen die Zellen extrem schwierig, wenn nicht unmöglich, zu erweitern. Allerdings helfen, wie zum Beispiel in einem einzigen Bohrloch von 96-Well-Platte anstelle einer 6-Well-Platte kann eine Probe mit geringer Zellzahlen in kleinere Kulturbereiche maskieren. Die Identifizierung von Kulturmedien oder Modifikation von im Handel erhältlichen Medien, das wird bieten die optimale Umgebung fodiese Zellen r zu wachsen, ist eine weitere Herausforderung, die überwunden werden müssen.
Molekulare und zelluläre Analysen von CTC liefern wertvolle Informationen für die Prognose von Krebs und kann Antriebs Präzision Medizin 15 helfen. Die Lebensfähigkeit der aus dem Capture-Filter freigesetzten Zellen ist eine wichtige Entwicklung in Richtung auf die Fähigkeit zur Kultur Patienten CTC für Arzneimittelempfindlichkeit und Screening-Tests. Es ist seit langem bekannt, dass CTC neigen dazu, aus dem Primärtumor zu unterscheiden und damit die Notwendigkeit, beide entsprechend zu behandeln. Als Beispiel Schneeweiss et al. in metastatischem Brustkrebs (MBC), unterscheiden sich in Antigenprofilen von metastatischem Gewebe und Primärtumor bis zu 20% der Patienten berichteten, dass. Neubeurteilung prädiktive Marker, einschließlich der humanen epidermalen Wachstumsfaktor-Rezeptor 2 (HER2) Ausdruck, könnte helfen, MBC Behandlung zu optimieren. Während Gewebeentnahme ist invasive und oft schwer zu wiederholen, erfordert CTC Analyse einer Blutprobe und sind möglicherweise eine einfach zu wiederholen, in Echtzeit & # bieten34; Flüssigkeit Biopsie "Ansatz 22.
Eine wesentliche Bedeutung der Technik liegt darin, dass, während mehrere Plattformen gewöhnlich in CTC capture verwendet und Analysen in der molekularen und zellulären Analysen beschränkt werden als Fixiermittel für die Verarbeitung der Probe oder der CTC immobilisiert sind auf der Plattform erforderlich ist. Ferner Affinität basierte Systeme, die für eine tragfähige CTC Erfassung und Freigabe zu ermöglichen, können potenziell 15 durch die Wahl des Zielantigens voreingenommen sein. Alternativ stellt der Schlitz-Filter mit dem PIPAAm Beschichtung eine markierungsfreie Plattform, die in der Aufnahme und Freisetzung von lebenden CTC aus Vollblut wirksam und effizient ist. Diese Methode bietet die Möglichkeit zur weiteren Charakterisierung von lebenden CTC, einschließlich einzelne Zelle phänotypischen und genomische Analysen sowie ex vivo CTC Kultur.
Derzeit wird daran gearbeitet, diese Technologie für klinische Anwendungen einzusetzen. Die Fähigkeit, effektiv Kultur CTC von patient Proben werden an einem Patienten Formulierung einer wirksamen Therapie Regimenter führen Basis zu Patient, neue Angriffspunkte für Medikamente zeigen, und für die Entwicklung von wirksamen Chemotherapeutika führen.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Slot Filter | Circulogix Inc. | MSF-01 | Different size filters available based for filtration for CTC from blood or urine (www.circulogixinc.com) |
| poly(N-iso-propylacrylamide) (PIPAAm) | Ploysciences Inc. | 21458 | Non-Hazardous. Store at room temp. |
| 1-Butanol | Sigma Aldrich | B7906 | Use in well ventilated area |
| Plastic Microscope Slides | Cole-Parmer | 48510-30 | Any plastic slides or alternatively any sort of square (Metal, Acrylic etc.) can be used if it will be bale to hold the 8mmx8mm filter square |
| Spin Coater | Specialty Coating Systems | SCS G3 Spin Coater | Instrument |
| Polyimide Tape | Uline | S-7595 | Polyimide is the generic name for Kapton Tape which can be purchased form multiple vendors (Amazon, Kaptontape.com) |
| HBSS- Hank's Balanced Salt Solution | Gibco | 14025-092 | |
| 1x PBS | Gibco | 10010-023 | |
| Falcon Petri dishes 35 x 10 mm | VWR | 25373-041 | |
| Microfilter Cassette | Circulogix Inc. | FC-01 | Custom catridges are avilable based on filtration for CTC from blood or urine |
| Syringe 20 ml | BD Scientific | 302830 | |
| Syringe Pump | KD scientific | 78-0100V | Any syringe pump capable of holding a 25 ml syringe may be used |
| Cellstar 50 ml Centrifuge tube | VWR | 82050-322 | |
| Greiner Bio One 6 well plate | VWR | 89131-688 | Any brand can be used, as long as the surface is compatiable for cell adesion and not repellant |
| SKBR3 Cells | ATCC | HTB-30 | |
| Live Dead Assay | Life Technologies | L3224 | Any assay that can provide a reasonable analysis to evaluate live cells will work |
| Cell Culture Incubator | VWR | 98000-368 | Any incubator that can be used for cell culture will suffice |
References
- Cristofanilli, M., Budd, G. T., et al. Circulating tumor cells, disease progression, and survival in metastatic breast cancer. N Engl J Med. 351 (8), 781-791 (2004).
- de Bono, J. S., Scher, H. I., et al. Circulating tumor cells predict survival benefit from treatment in metastatic castration-resistant prostate cancer. Clin Cancer Res. 14 (19), 6302-6309 (2008).
- Cohen, S. J., Punt, C. J. a, et al. Prognostic significance of circulating tumor cells in patients with metastatic colorectal cancer. Ann. Oncol. 20 (7), 1223-1229 (2009).
- Smerage, J. B., Barlow, W. E., et al. Circulating Tumor Cells and Response to Chemotherapy in Metastatic Breast Cancer: SWOG S0500. J. Clin. Oncol. 32 (31), 3483-3490 (2014).
- Mach, A. J., Kim, J. H., Arshi, A., Hur, S. C., Di Carlo, D. Automated cellular sample preparation using a Centrifuge-on-a-Chip. Lab chip. 11 (17), 2827-2834 (2011).
- Ozkumur, E., Shah, A. M., et al. Inertial Focusing for Tumor Antigen-Dependent and -Independent Sorting of Rare Circulating Tumor Cells. Sci. Transl. Med. 5 (179), 179 (2013).
- Nagrath, S., Sequist, L. V., et al. Isolation of rare circulating tumour cells in cancer patients by microchip technology. Nature. 450 (7173), 1235-1239 (2007).
- Hosokawa, M., Kenmotsu, H., et al. Size-Based Isolation of Circulating Tumor Cells in Lung Cancer Patients Using a Microcavity Array System. PLoS ONE. 8 (6), (2013).
- Bhagat, A. A. S., Hou, H. W., Li, L. D., Lim, C. T., Han, J. Pinched flow coupled shear-modulated inertial microfluidics for high-throughput rare blood cell separation. Lab on a chip. 11 (11), 1870-1878 (2011).
- Tan, S. J., Lakshmi, R. L., Chen, P., Lim, W. -T., Yobas, L., Lim, C. T. Versatile label free biochip for the detection of circulating tumor cells from peripheral blood in cancer patients. Biosens. Bioelectron. 26 (4), 1701-1705 (2010).
- Vona, G., Sabile, A., et al. Isolation by size of epithelial tumor cells a new method for the immunomorphological and molecular characterization of circulatingtumor cells. Am. J. Pathol. 156 (1), 57-63 (2000).
- Marrinucci, D., Bethel, K., et al. Case study of the morphologic variation of circulating tumor cells. Human pathology. 38 (3), 514-519 (2007).
- Lin, H. K., Zheng, S., et al. Portable filter-based microdevice for detection and characterization of circulating tumor cells. Clin. Cancer Res. 16 (20), 5011-5018 (2010).
- Williams, A., Rawal, S., et al. Clinical translation of a novel microfilter technology Capture, characterization and culture of circulating tumor cells. PHT. , 220-223 (2013).
- Ao, Z., Parasido, E., et al. Thermoresponsive release of viable microfiltrated Circulating Tumor Cells (CTCs) for precision medicine applications. Lab Chip. 15, 4277-4282 (2015).
- Xu, T., Lu, B., Tai, Y. C., Goldkorn, A. A cancer detection platform which measures telomerase activity from live circulating tumor cells captured on a microfilter. Cancer Res. 70 (16), 6420-6426 (2010).
- Okano, T., Bae, Y. H., Jacobs, H., Kim, S. W. Thermally on-off switching polymers for drug permeation and release. J. Control. Release. 11 (1-3), 255-265 (1990).
- Yamada, N., Okano, T., Sakai, H., Karikusa, F., Sawasaki, Y., Sakurai, Y. Thermo-responsive polymeric surfaces; control of attachment and detachment of cultured cells. Die Makromol. Chemie, Rapid Commun. 11 (11), 571-576 (1990).
- Deng, Y., Zhang, Y., et al. An integrated microfluidic chip system for single-cell secretion profiling of rare circulating tumor cells. Sci. Rep. 4, 7499 (2014).
- Hou, S., Zhao, H., et al. Capture and stimulated release of circulating tumor cells on polymer-grafted silicon nanostructures. Adv. Mater. 25 (11), 1547-1551 (2013).
- Xiao, Y., Zhou, H., et al. Effective and selective cell retention and recovery from whole blood by electroactive thin films. ACS Appl. Mater. Interfaces. 6 (23), 20804-20811 (2014).
- Wallwiener, M., Hartkopf, A. D., et al. The impact of HER2 phenotype of circulating tumor cells in metastatic breast cancer: a retrospective study in 107 patients. BMC cancer. 15 (1), 403 (2015).
