Introduction
0.5-10 L / dk 2 akış oranları arasında yapmaktadır veteriner kullanımı için uygun bir çok hassas vaporizörler vardır. aralık kendi küçük solunum dakika hacmi ile karşılaştırıldığında yüksek olduğu gibi bu debileri, kemirgenler için ideal değildir. Yüksek debi nedeniyle hipotermi ve solunum yolu 3,4 kurutulması kendi tanıtımına veteriner pratikte tavsiye edilmez. Ayrıca, pek çok ortak veteriner buharlaştırıcı üretici kılavuzları yüksek akış oranları karşı basınç dalgalanmaları meydana artışa neden olabileceğini uyarısında bulunuyor. Aynı zamanda, pek çok standart püskürteç 500 ml / dakika akış hızları aşağıda doğru hale olduğu gösterilmiştir ve bu oran, veterinerlik alanında 5-7 küçük bir akış oranı olarak kabul edilir.
Bir hayvan, bir T-parçası devresi üzerinde bulunan veya 1.5-2.2 katı hayvanın dakika hacmi 8-10 kadar düşük bir akış oranı kullanılarak, Bain devre değiştirilebilir. Bu akış oranları sufficien kabul edilirt süresi dolmuş gazların geri solunumunu engeller ve kan karbondioksit konsantrasyonları 8 artış önlemek için. Bu akış hızı tavsiye kullanarak, 30 g fare 52 ml kadar düşük bir akış oranında muhafaza edilebilir / dakika, geleneksel bir buharlaştırıcı kabul 500 ml / dakika minimum göre yaklaşık on kat daha az.
Geleneksel buharlaştırıcı gaz akışı ve pasif anestezik buharlaşma için atmosferik basınç bağlı iken, direkt enjeksiyonlu buharlaştırıcı toplam taze gaz akışını ölçer ve gaz akımına 2 doğrudan buhar enjekte eder. Bazı direkt enjeksiyon püskürteç gaz akımına anestezi yönetmek için bir şırınga pompası kullanmaktadır. Bilgisayarlı kontroller bu sistemler otomatik olarak anestezik istenen konsantrasyona ulaşmak için gerekli olan sıvı maddenin hacmini enjekte şırınga pompası hızını ayarlamak için izin verir. Şırınga tahrik püskürteç mevcut klinik ve pediatrik kullanım için onaylanmış ve birçok benzer yapılandırmaları bir olarak kabul edilirestetik klinik pratikte 11-16 cihazları koruyucu. Kısa bir süre onaylandıktan sonra, şırınga pompası vaporizers ile anestezik olan koruyucu cihazlar hayvan çalışmalarında 8,17,18 kullanılmak üzere adapte edilmiştir. Geleneksel bir buharlaştırıcı farklı olarak, bir şırınga pompası kullanılarak, bir doğrudan enjeksiyon sistemi doğruluğunu sağlamak için, küçük bir akış oranı ile sınırlı değildir. Bu nedenle, bu teknoloji, kemirgen anestezi ve düşük akış oranları gerekli olan diğer durumlarda kullanım için idealdir. Bu buharlaştırıcı tasarımı ile bağlantılı faydalar ve potansiyel maliyet tasarrufu kemirgenler 1,19,20 için özel olarak tasarlanmış yeni anestezi sistemlerinin geliştirilmesi ilham kaynağı oldu. Bu yeni sistem, aynı zamanda içeren dahili bir hava pompası, kullanıcı bir sıkıştırılmış gaz kaynağı gerektirmeden anestezi yönetmek için izin. Ek bir fayda olarak, sistem önceden kalibre edilmiş izofluran ve sevofluran hem kullanım içindir. laboratuar hayvanları alanında bu buharlaştırıcı teknolojisinin başlamasıyla, bent sıkıştırılmış gaz için gerek kalmadan yakın önerilen düzeylere akış hızlarında küçük laboratuar hayvanları uyutmak için artık mümkün.
Protocol
Tüm çalışmalar, düzenleyici ve kurumsal kurallarına uygun olarak tamamlanmıştır. Bu çalışmanın hayvan yönleri Purdue Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (PACUC) tarafından onaylanan Kent Scientific Corporation Hayvan Kullanım Programı tarafından değerlendirilir ve Laboratuvar Hayvanları 22 Bakımı ve Kullanımı için Kılavuz uygun olarak yapıldı.
Not: Bu protokolde kullanılan düşük akımlı dijital anestezi sistemi entegre pulse oksimetre ile donatılmıştır.
1. Entegre Pulse Oksimetre Düşük akımlı Anestezi Sistemi Kurma
- İsofluranın Teslim
- Bir taşıyıcı gaz kaynağı seçin. İç hava pompası kullanmak için, emme oda havası iç pompa izin arkasındaki Giriş Noktası sökün.
- port egzoz kömür teneke kutu bağlayın.
- düşük akım, dijital anestezi sistemi ön Y adaptörünü bağlayın. t beyaz dalları bağlamak için renk kodlu klipleri kullanınO burun konisi ve indüksiyon odasına mavi dalları.
- Kapat beyaz klip kelepçeler ve açık mavi klibi odasına hava akışını yönlendirmek için kelepçeler.
- 2 ml şırınga seçin.
- Fizyolojik İzleme, Entegre pulse oksimetre kullanılması
- "AUX" etiketli düşük akımlı anestezi sisteminin arkasında, bağlantı noktasına pulse oksimetre pençe sensörünü bağlayın.
2. Ayarlarını Yapılandırma
- Anestezi
- anestezi sistemi üzerinde güç ve Kurma menüsüne erişmek. Basın kırmızı Ana Menü> Anestezi> Ayarlar erişmek için Kurma.
- anestezik madde seçin. Basın Set Up kırmızı Tipi Anest vurgulamak için. İsofluranın seçmek için Yukarı ve Aşağı okları kullanın.
- Şırınga boyutunu ayarlayın. Basın Siri Boyutu vurgulamak için Kurma. 2 ml şırınga seçmek için Yukarı ve Aşağı okları kullanın.
- Boş pozisyon ayarlayın. Basın h Kurmaighlight kırmızı Boş ayarlayın. Şırınga Holding Kelepçe şırınga metal yaka oturacak şekilde şırınga koyarak Şırınga Tutma Blok boş, tamamen basılı cam şırınga edin. İtici Blok şırınga pistonu üst ışık temas edinceye kadar İtici Blok taşımak için Yukarı veya Aşağı oklarına basın. Basın boş konumunu ayarlamak için seçin.
- Basın kırmızı kaldır vurgulamak için Kurma. şırıngayı çıkarın ve şişe üst adaptörü kullanarak izofluran ile şırınga doldurun.
- anestezi sistemine Şırınga bağlayın.
- Başbakan anestezik teslim boru. Basın kırmızı Başbakan Tube vurgulamak için Kurma. anestezi kadar basın Aşağı şırınga yoluyla ve buharlaştırıcı blokta siyah montaj içine geçecek.
- anestezi etkinleştirin. Basın kırmızı Enable vurgulamak için Kurma. Evet seçmek için Yukarı ve Aşağı okları kullanın. Basın Run / Geri Ana Menüye dönmek için.
- a seçinir arz ve dakika hacmi. Basın Set Up kırmızı Hava İkmal vurgulamak için. İç Pompası seçmek için Yukarı ve Aşağı okları kullanın. Basın kırmızı Dakika Vol vurgulamak için Kurma. 250 ml / dak sabit akış hızı.
- Fizyolojik İzleme
- Fare (240) minimum tespit kalp atış hızını ayarlayın. Ana menüye erişmek için Kurma> tuşuna basın MouseStat. Yukarı ve aşağı oklarını kullanın asgari kalp hızını ayarlamak için.
3. Anestezi Teslimat başlayın
- Fare indükleyin
- Basın Run / Geri iki kez çalıştırmak moduna girmek ve hava akışını başlatmak için.
- sıkıca kapağını kapatarak, indüksiyon odasında fare yerleştirin. % 3 Anestezik Ajan Konsantrasyon düğmesini ayarlayın.
- Fare refleksi kaybı ile tespit anestezi istenen düzlemi, ulaşana kadar izleyin. gerektiği gibi Anestezik Ajan Konsantrasyon ayarlayın.
- Hayvan kendi düzeltilmesi refleks a kaybeder keznd yeterince anestezi,% 0 Anestezi konsantrasyon düğmesini çevirin. Yazarlar, daha önce hava akımı sağlayan 30-60 sn anestezi derinliği 1 ters olmayacak şekilde odayı temizlemek için yeterli olan endüksiyon odası temizlemesini bulmuşlardır.
- Hızla yüz maskesine hava yönlendirmek için beyaz kelepçeler açın ve indüksiyon odasına giden mavi kelepçeleri kapatın.
- Araştırmacı uzak odasına açın fareyi çıkarın ve hemen burun konisi uygun.
- Bir geri besleme döngüsü üzerinde bir rektal prob ile 37 ° C'de vücut ısısını korumak için ayarlanmış bir kızılötesi ısınma pad üzerinde hayvan ortalayın.
- Fare burun konisi istikrarlı olduğunda Anestezik Ajan Konsantrasyon düğmesini çevirerek bakım gerektiği gibi,% 1.5 izofluran konsantrasyonu ayarlayabilir veya.
- bakım için dakika hacmini azaltmak. hayvan desteklemek için minimum akış hızı, 30 g fare için 1.5-2.2 kat hayvanın dakika hacmi (eşittir52 ml / dakika) ve en az. burun konisi stiline özgü ayar önerilen akış hızı için üreticinin talimatlarına bakın ve gerektiği gibi ayarlayın. Ana Menüye erişmek için Kurma ve ardından Dakika Vol kırmızı vurgulanır kadar Kurma tuşuna basın. Hedef akışını ayarlamak için Yukarı ve Aşağı okları kullanın. Basın Run / Geri ana ekrana dönmek için.
- Bir birlisme tutam sırasında geri çekme refleksi eksikliği ile belirlenen anestezi derinliği onaylayın. anestezi sırasında kurumasını önlemek için gözleri oftalmik merhem sürün.
4. Fizyolojik İzleme başlayın
- arka ayak pedi üzerinde sensörü yerleştirin. kırmızı ışık pençe altında olduğunu ve pençe aydınlatır böylece sensörü yerleştirin. oxiwave görüntülemek için ekranda yukarı ve aşağı okları kullanın. Hayvan şimdi güvenle düşük akış, şırınga odaklı, dijital buharlaştırıcı kullanılarak anestezi.
5. Hayvan kaldır
- KapatmaAnestezi Dağıtım.
- anestezi teslim durdurmak için, Min (ya da% 0) için Anestezik Ajan Konsantrasyon düğmeyi çevirin ve yüz maskesi hayvan kaldırmak.
- Anestezi kurtarma sırasında fare izleyin. Fare tamamen ayaktan hale geldikten sonra, kafes iade.
Representative Results
Hayvanlar
3 yetişkin C57 / BL6NTac dişi fareler (Taconic, yaş 6-7 hafta; ağırlık 15 +/- 1 gr) anestezi ve kalp hızı, oksijen doygunluğu, ve solunum hızı izlendi ise 1.3-1.5% izofluran ile korundu. tesise gelmeden önce rutin satıcı testi ile belirlenen tüm fareler Fare Patojen Free idi. Hayvanlar grubu yerleştirilmiş microisolation kafes ve şişe standart kemirgen yemi ve su serbest erişim sağlanmıştır.
İsofluranın Kullanımı
düşük akımlı anestezi sistemi kullanım sırasında şırınga kalan anestezik madde miktarını ölçer. Anestezi sistemi ile ölçülmüş hayvan bakım döneminin sonunda tekrar burun konisi aktarılmış ve gibi şırıngaya hacmi, not edilmiştir. Nihai hacim Bbaşlangıç hacminin çıkarılır şekilde idame periyodu (Şekil 1) sırasında tüketilen anestezi miktarını belirlemek için.
fizyolojik Parametreler
Kalp hızı, SpO 2, ve solunum hızı pulse oksimetre (- 4 Şekil 2) üzerinden bakım sırasında izlendi. Vücut sıcaklığı, bir kızıl ötesi ısıtma yastığı ile 37.5 ° C 'de muhafaza edilmiştir. Bir interdijital tutam gelen geri çekme refleksi eksikliği ile tespit edilen her bir fare başarıyla 60 dakika boyunca anestezi cerrahi düzlemi altında oda hava / dakika, 100 ml, düşük akış hızlarında tutuldu. Fare uyanık vermedi ya da bakım döneminde aralıklı olarak uygulanan birlisme tutam yanıt. Hayvanların kalp hızları (Şekil 2), kan oksijen (Şekil 3) ve solunum sayısı (Şekil 4) relat kalmıştırÇalışma boyunca ively istikrarlı. Nedeniyle hayvan ve sensör konumlandırma, Fare 1 ve fare 3 den solunum hızı sinyali aralıklı ve ölçüm kesildi. Hayvanın konumlandırma ayarlandı, sinyal geliştirilmiş ve ölçülen solunum oranı benzer zaman noktalarında başkalarına karşılaştırılabilir. Düşük akımlı bir dijital anestezi cihazı idame periyodu (Şekil 1), 60 dakika boyunca izofluran 0.63 ml'lik bir ortalama kullanılmıştır.
Şekil 1:.. İsofluranın Kullanımı dijital düşük akımlı anestezi sistemi kullanılarak anestezi bakım 1 saat boyunca üç farklı fareler için ml kullanılan izofluran miktarı bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 2:.. Nabız dakika (bpm) dijital düşük akımlı anestezi sistemi ile ilk anestezi indüksiyon sonrası 5-60 dk başına atım üç farelerin kalp hızı bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 3:.. Oksijen Doygunluk üç fareler dijital düşük akımlı anestezi sistemi ile ilk anestezi indüksiyon sonrası 5-60 dk kan oksijen doygunluğu seviyesi (%) bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 4:.. Solunum Hızı min (bpm) dijital düşük akımlı anestezi sistemi ile ilk anestezi indüksiyon sonrası 5-60 dk başına nefes üç farelerin solunum hızı bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Discussion
Dijital düşük akımlı anestezi sistemi kullanıcı etkin bir şekilde herhangi bir sıkıştırılmış gaz kullanmadan çok düşük akış hızlarında fareler uyutmak için izin verir. Bu yaklaşık 500 ml / dakika minimum akış hızlarında sıkıştırılmış bir gaz kaynağına ihtiyaç olan standart pasif püskürteç, büyük ölçüde farklılık gösterir. Standart püskürteç geçişleri arasındaki kesinlikten yoksun aramalar kullanmak ve onlar doğruluğunu sağlamak için her yıl bakımı yapılmalıdır. Bir şırınga tahrik anestezi sistemi şırınga pompası tam gerekli hızını hesaplamak için sabit akış hızında anestetik için belirli bir konsantrasyonu sağlayabilir. Rutin kalibrasyonlar ek maliyet ve zaman tasarrufu ile sonuçlanan gereksizdir.
önerilen minimum debisi olmayan bir geri soluma devresinde bir hayvan korumak için 1.5-2.2 kat hayvanın dakika hacmi olduğunu. Bu çalışmada kullanılan 100 ml / dakika akış hızı, hayvanlar için yeterli anesteziğin verilmesinde, bu en az aştı. akış hızı AyarAkış hızı doğrudan belirli bir süre için kullanılan izofluran miktarına bağlı olarak gs, bu anestezik teslim tekniği için kritik öneme sahiptir. Düşük akış hızlarında kullanıldığında hayvan hala etkili 1,19-21 anestezi ise, bu teknik büyük ölçüde kullanımı sırasında gerekli izofluran miktarını azaltabilirsiniz.
Geleneksel vaporizers ve düşük akımlı dijital vaporizers arasında yeni ekipman maliyetleri karşılaştırılabilir. Ancak, dijital düşük akımlı anestezi sistemi izofluran ve sevofluran teslim etmek yeteneğine sahiptir. Bu belirlenen izofluran ve sevofluran hassas püskürteç, anestezik ajanlar her ikisini de kullanarak grup için ilk ekipman maliyetlerinin düşürülmesi ihtiyacını ortadan kaldırır. Düşük akış dijital buharlaştırıcı 1,19,20 kullanırken buharlaştırıcı teknolojileri arasındaki son yayınlanan karşılaştırmalar zamanla maliyet tasarrufu ettiler. Bu karşılaştırmaların sonuçları, bir yıl boyunca potansiyel maliyet tasarrufu yaklaştığı kullanılabilir. Gibi52 hafta boyunca haftada 2 saat aralıklarla, 5 gün içinde yapılan tipik kullanım ayarlarını tüketen, geleneksel izofluran buharlaştırıcı izofluran 3.8 L, ya da on iki 250 ml'lik şişe tüketecektir. aynı frekansta kullanılan düşük akımlı dijital buharlaştırıcı sadece 0.32 L, ya da iki 250 ml'lik şişe tüketmek olacaktır. Kömür bidonu tüketimi de azalır. Her kutu yaşlandırma atık gazın 50 gr tutan varsayarsak, geleneksel buharlaştırıcı bir yıl boyunca yaklaşık 21 kömür kutuları dolduracaktır. Buna karşılık, düşük akımlı dijital buharlaştırıcı 6 veya daha az gerektirir. Geleneksel buharlaştırıcı 9500 L. dijital düşük akım buharlaştıcıların bazı modellerde mevcut iç hava pompası, kapasiteli yılda yaklaşık 5 büyük gaz tüpleri, her gerektirir, sıkıştırılmış gaz gereksinimini ortadan kaldırır. Sıkıştırılmış gaz kullanılacak olsaydı, sistem yıllık 1 başına sadece 1 silindir kullanmak istiyorsunuz.
teknik ihtiyaca göre değiştirilebilir. Düşük akımlı dijital vaporizers kullanıcı hızlı ve hassas anestezi derinliğini ayarlamak için izin verir. anestetik derinliği artırılabilir veya azaltılabilir gerekiyorsa, kullanıcı sistemi üstündeki kadranı kullanarak% 0.1 artışlarla anestezik konsantrasyonunu artırabilir. işlem boyunca gerektiğinde akış oranı da ayarlanabilir. daha büyük bir şırınga boyutları daha uzun işlemler için uygun olmasına rağmen, bu protokol, 2 ml şırınga kullanmaktadır. İç hava pompası kullanıcılara sıkıştırılmış gaz kaynağı gerektirmeden hayvanları uyutmak için bir seçenek sunar. Sıkıştırılmış gaz veya oksijen desteği gerektiren işlemler için, kullanıcı yerine çevredeki havayı kullanarak daha düşük akış sistemi bir gaz kaynağı bağlamak için seçeneği vardır. kullanıcı işlem boyunca seçilen hava kaynağı sağlamak için devam edebilir, ya da iç pompa ve gerektiği gibi sıkıştırılmış bir gaz kaynağı arasında geçiş yapabilirsiniz. Örneğin, kullanıcı indüksiyon ve bakım sırasında iç pompa vasıtasıyla oda havasını sunmak için sistem kurulumu, ancak ek oksi teslim edebilirkurtarma sırasında gen.
Düşük akımlı dijital buharlaştırıcı kullanmanın birçok avantajı olmasına rağmen, aynı zamanda sınırlamalar vardır. Bir vana dahil değildir, çünkü elle açmadan önce temiz hava odasına kızarma indüksiyon odasına temizlemek için tek yoldur. Bu sistem sadece düşük akış hızlarında çalışacak şekilde tasarlanmıştır ve geleneksel püskürteç 10 L / dk'ya kadar akış hızlarında kullanılabilir 800 ml / dk, akış oranlarının üzerinde anestezi teslim etmez. Bu özel sistem bu nedenle küçük hayvan türleri için uygundur. Ayrıca, sistem geleneksel bir buharlaştırıcı ile karşılaştırıldığında daha az anestetik madde tutar. Şırınga bir prosedür sırasında yenilenmeleri gerekir durumlar olabilir. Ancak, dolum sırasında gecikmeler boş şırıngayı yerine yakın bir ikinci şırınga önceden doldurarak azaltılabilir. 10 ml kadar şırınga boyutları orta prosedür şırıngalar dolum ihtiyacını azaltmak için kullanılabilir. Son olarak, geleneksel bir buharlaştırıcı farklı olarak, düşük-fow dijital buharlaştırıcı elektrik gerektirir. elektrik kullanılamaz veya güç kesintisi durumunda olduğu Piller durumlarda kullanım için mevcuttur.
Önceki çalışmalar, düşük akımlı dijital sistemler geleneksel anestezi sistemine 1,19,20 kıyasla daha az izofluran, taşıyıcı gaz ve kömür metal kapları tüketmek olduğunu göstermiştir. daha fazla çalışma bu alanlarda ihtiyaç duyulan olsa kirleticilerin alınmasına yönelik anestezik gaz azalma da, atık anestezik gaz bir azalma tespit olabilir. Kızılötesi gaz spektroskopisi atık izofluran üretimini izlemek için kullanılabilir, ve dozimetre rozetleri gelecek karşılaştırmalarda laboratuvar personeline izofluran maruz kalma ölçmek için kullanılabilir.
Özetle, anestezi teslimat için bu teknik sayesinde geleneksel sistemler üzerinde geliştirilmiş güvenlik, etkinlik ve hassas kemirgen anestezi yapmadan gruplarına yararlı olacaktır.
Disclosures
Bu proje Kent Scientific Corporation, CJ Goergen Amerikan Kalp Derneği (SDG18220010) ve Purdue Üniversitesi tarafından ekipman ve finansmanı ile desteklenmiştir. Yazarlar Krista Bigiarelli ve Irina Toore Bu makalede kullanılan ekipman üreten Kent Scientific Corporation çalışanlarıdır. Bu yazının açık erişim yayın Kent Scientific Corporation tarafından desteklenmektedir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anesthetic Equipment | |||
| SomnoSuite Low-Flow Digital Anesthesia System | Kent Scientific Corporation | SOMNO | Includes anti-spill, anti-vapor bottle top adapter; Y adapter tubing; charcoal scavenging filter |
| MouseSTAT Pulse Oximeter & Heart Rate Monitor | Kent Scientific Corporation | SS-MSTAT-Module | Integrated into SomnoSuite |
| MouseSTAT Mouse Paw Sensor | Kent Scientific Corporation | MSTAT-MSE | |
| 2 ml Glass Syringe | Kent Scientific Corporation | SOMNO-2ML | |
| Low-Cost Induction Chamber, 0.5 L | Kent Scientific Corporation | SOMNO-0705 | |
| Low Profile Facemask, x-small | Kent Scientific Corporation | SOMNO-0304 | |
| Animal Warming | |||
| PhysioSuite Physiological Monitoring System with RightTemp Homeothermic Warming | Kent Scientific Corporation | PS-RT | Includes infrared warming pad, rectal probe, and pad temperature probe |
| Anesthetic Agents and Medications |
|||
| Isoflurane (250 ml bottle) | Piramal Healthcare | ||
| Puralube Opthalmic Ointment | Perrigo |
References
- Damen, F. W., Adelsperger, A. R., Wilson, K. E., Goergen, C. J. Comparison of traditional and integrated digital anesthetic vaporizers. JAALAS. 54 (6), 756-762 (2015).
- Chakravarti, S., Basu, S. Modern Anaesthesia Vapourisers. Indian J Anaesth. 57 (5), 464-471 (2013).
- Carroll, G. Small Animal Anesthesia and Analgesia. , Blackwell Publishing. Ames, IO. (2008).
- Lumb and Jones' veterinary anesthesia and analgesia. Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A. , John Wiley & Sons. Hoboken, NJ. 23-86 (2013).
- Ambrisko, T. D., Klide, A. M. Evaluation of isoflurane and Sevoflurane vaporizers over a wide range of oxygen flow rates. Am J Vet Res. 67 (6), 936-940 (2006).
- McKelvey, D. H. Veterinary Anesthesia and Analgesia. , Mosby. St. Louis, MI. (2003).
- Thomas, J., Lerche, P. Anesthesia and Analgesia for Veterinary Technicians. , 4th ed, Mosby. St. Louis, MI. 335 (2011).
- Flecknell, P. Laboratory animal anaesthesia. , Academic Press, Elsevier. London, UK. (2009).
- Mapleson, W. W. The elimination of rebreathing in various semiclosed anaesthetic systems. Brit J Anaesth. 26 (5), 323-332 (1954).
- Ward, C. S. Physical principles and maintenance. Anaesthetic equipment. , W. B. Saunders. London. (1985).
- El-Attar, A. M. Guided isoflurane injection in a totally closed circuit. Anaesthesia. 46 (12), 1059-1063 (1991).
- Lockwood, G., Chakrabarti, M. K., Whitwam, J. G. A computer-controller closed anaesthetic breathing system. Anaesthesia. 48 (8), 690-693 (1993).
- Lowe, H. J., Cupic, M. Dose-regulated automated anesthesia (Abstract). Br. J. Clin. Pharmacol. 12 (2), 281-282 (1971).
- Soro, M., et al. The accuracy of the anesthetic conserving device (Anaconda) as an alternative to the classical vaporizer in anesthesia. Anes Analg. 111 (5), 1176-1179 (2010).
- Walker, T. J., Chackrabarti, M. K., Lockwood, G. G. Uptake of desflurane during anaesthesia. Anaesthesia. 51 (1), 33-36 (1996).
- Weingarten, M., Lowe, H. J. A new circuit injection technic for syringe-measured administration of methoxyflurane: a new dimension in anesthesia. Anes Analg. 52 (4), 634-642 (1973).
- Enlund, M., Wiklund, L., Lambert, H. A new device to reduce the consumption of a halogenated anaesthetic agent. Anaesthesia. 56 (5), 429-432 (2001).
- Kelly, J. M., Kong, K. L. Accuracy of ten isoflurane vaporisers in current clinical use. Anaesthesia. 66 (8), 682-688 (2011).
- Matsuda, Y., et al. NARCOBIT - A newly developed inhalational anesthesia system for mice. Exp Anim. 56 (2), 131-137 (2007).
- Matsuda, Y., et al. Comparison of newly developed inhalation anesthesia system and intraperitoneal anesthesia on the hemodynamic state in mice. Biol Pharm Bull. 30 (9), 1716-1720 (2007).
- Voightsverger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
- Garber, J., et al. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. , 8th edn, The National Academic Press. Washington DC. (2011).
