Summary
ここでは、個々のナノ粒子のゼータ電位を決定するために用いることができる粒子転速度の測定を介してナノ粒子表面化学を特徴づけるために、抵抗パルスセンシング技術に一体化ポリウレタン可変ナノポアを使用します。
Abstract
抵抗パルスセンサ（RPS）と総称ナノポア技術は、検出、定量化、およびタンパク質分子とナノ粒子を特徴付けるために使用されています。調整可能な抵抗パルスセンシング（TRPS）がリアルタイムに変化させることができる調整可能な細孔を組み込んRPSへの比較的最近の適応です。それらは、DNA濃度および構造の関数として調整可能なポアメンブレンを横切るようにここでは、DNA修飾ナノ粒子の移動時間を監視するためにTRPSを使用する（ すなわち 、一本鎖、二本鎖DNAに）。
TRPSは、印加された電界に応じて安定したイオン電流を確立エラストマー細孔膜で分離された2つのAg / AgCl電極、に基づいています。様々な光学ベースの粒子特性評価技術とは異なり、TRPSは、マルチモーダルサンプルを容易に分析することを可能にする、サンプル集団の中で個々の粒子を特徴づけることができます。ここでは、ゼータ電位測定を実証します既知の標準粒子転速度を介して、したがって、それらの分析物のゼータ電位を測定し、その結果、検体転時間をサンプリングするためにこれらを適用します。
同様に、平均ゼータ電位の値を取得するなど、サンプルが全て例えば、サンプル母集団の分布を介して与えられたサンプルについての詳細を示す粒子ごとの粒子の視点を用いて測定されます。そのような中で、この方法は、医療や環境分野の両方のためのセンシングアプリケーション内で可能性を示しています。
Introduction
官能化ナノ粒子は、両方の医療や環境分野におけるバイオセンサーとしてますます人気が高まっています。 DNAと、ナノ粒子の表面の化学的性質を変化させる能力は、例えば、標的化薬物送達システム1のために有用な証明及びDNAタンパク質相互作用2-4を監視しています。バイオアッセイおよび治療薬の送達に利用されてますます一般的ナノ粒子の宿泊施設には、超常5です。超常磁性粒子（のSPP）は、複雑な混合物から特定の検体を識別し、除去するのに非常に有用であり、単一の磁石の簡単な使用して行うことができます。一旦除去、分析物結合粒子の特徴及び目的に適合して分析することができます。
ナノ粒子の検出および特徴付けのために使用される従来の方法は、そうでなければ、光子相関分光法として知られているような、動的光散乱（DLS）のような光学技術を含みます。ハイテクが、GHスループット技術は、DLSは、平均に基づく技術であることに制限され、専門のソフトウェアを追加することなくマルチモーダルサンプルを分析する場合、より大きな粒子が6,7完全に気づか小さな粒子の一部を残して、はるかに支配的な信号を生成します。粒子によって粒子特性評価技術は、ナノ粒子と、官能化ナノ粒子システムを解析することがはるかに有利です。
RPSベースの技術は、試料に電界を印加し、合成または生物学的ナノポアを通って粒子の輸送機構を監視周りに基づいています。 RPSに基づいて、比較的最近のナノ粒子検出および特性評価技術は、波長可変抵抗パルスセンシング（TRPS）8-16です。 TRPSは、エラストマー、調整可能な細孔膜によって分離された2つの電極システムです。形状17と大きさの範囲の検体は、それらのトランスを介して測定するための調整可能なポア方法が可能に細孔を通してポートメカニズム。調整可能な細孔は、以前に、このような透過電子分光法（TEM）10のような他の技術に匹敵する結果を生成する小さい粒子（70〜95 nmの直径）の検出のために使用されてきました。電界が印加されると、イオン電流が観測された粒子/分子が細孔を通過するように、それらは、一時的に「遮断事象」と定義することができる電流の減少を引き起こし、細孔をブロックします。試料中の各粒子が封鎖振幅、Δに基づいて個別に特徴づけることができるように、それぞれの遮断イベントは、単一粒子の代表であります
、および全幅半値、FWHM、ならびに他の封鎖特性。 TRPSとしてマルチモーダルサンプルが正常にかつ効果的にアモンのサイズの粒子の範囲を識別することができるために、彼らはナノ細孔を通過する個々の粒子を分析することが有利です単一のサンプルをGST。調整可能な抵抗パルスセンシングは、単一の実行で同時にサイズ10、ゼータ電位12,18と濃度15測定を完了し、したがって、依然として同様のサンプルを区別、そうでない場合は、それらの表面電荷19によって同じサイズすることができます。代替サイジング技術に勝る利点。
ゼータ電位は、剪断20の面に静電電位として定義され、そしてそれらは、細孔19を通過するように粒子速度から算出されます。個々の粒子のゼータ電位測定は、このように転座のメカニズムと溶液中のナノ粒子系、応用範囲のためのナノ粒子アッセイ設計の未来のための貴重な情報の挙動への洞察を提供します。このような性質の粒子によって粒子分析はまた、より多くの情報oを可能にする、探求するサンプル集団の中でゼータ電位値の普及と流通を可能にします溶液中のn個の反応速度論（例えば、二本鎖DNAを一本鎖）と粒子安定性が達成されます。
ここでは、非修飾およびDNA修飾両方SPP面を検出し特徴付ける技術が記載されています。本明細書に記載されたプロトコルは、無機および生物学的ナノ粒子の範囲に適用可能であるが、我々はアプリケーションの彼らの広い範囲のためにDNA修飾された表面を使用して手順を示しています。技術は、ユーザは、このように粒子転位細孔系を介して速度およびそれらのゼータ電位に基づいて、ナノ粒子表面上に一本鎖および二本鎖DNA標的を区別することを可能にします。
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Protocol
1.のTween-20（PBST）緩衝液でリン酸緩衝生理食塩水を作ります
- 200ml中に脱イオン水（18.2MΩセンチ）を一度PBS錠（0.01 Mリン酸緩衝液、0.0027 M塩化カリウム、0.137 M塩化ナトリウム、pH7.4）に溶解します。
- 界面活性剤として200ミリリットルの緩衝溶液に100μlの（0.05（v / v）の％）のTween-20を追加します。
2.カルボキシルポリスチレン粒子基準の準備
- 粒子の単分散性を作り出す80ワットで2分間超音波処理の前に30秒間の較正粒子を渦。
- 30秒間PBST緩衝ボルテックスで1×10 10粒子/ mlの濃度に校正粒子100 1を希釈。
3.準備ストレプトアビジン被覆粒子
- 単分散性を確保するため、80ワットで2分間超音波処理の前に30秒間の粒子を渦。
- 交流のPBST緩衝液中に100でストレプトアビジン被覆粒子1を希釈30秒間得1×10 9粒子/ mlの濃度と渦をhieve。
注：典型的なサンプルの容量は200μlです。例えば、調査している場合5 DNA濃度は、希釈したストレプトアビジンでコーティングされた粒子の1ミリリットルを用意します。
オリゴヌクレオチドの4準備
- 100μMの結果の濃度になるように脱イオン水を有するオリゴヌクレオチドを再構成します。
ストレプトアビジン被覆粒子に捕捉プローブ（CP）DNAの5追加
- DNA結合に先立って、渦80ワットで2分間の超音波処理に続いて30秒間、ストレプトアビジンでコーティングされた粒子（200μlのサンプル容量）。
- 供給業者によって提供される結合能力（4,352ピコモル/ mgで）に基づいて、10、20、30、40、47、95、140、および210 nmのDNAの濃度を生じるために粒子にDNAの適切な濃度を加えます。
- 室温で回転ホイール上で10秒と場所のためのサンプルをボルテックス30分には、ストレプトアビジン - ビオチン相互作用を介して粒子表面に結合するDNAを可能にするため。
- キャプチャDNAは、ストレプトアビジンでコーティングされた粒子を添加してインキュベートした後、30分間磁気ラック上にサンプルを置くことにより、磁気分離を介して、溶液中の余分なDNAを除去。
- 磁石に最も近い粒子の新たに形成されたクラスタを乱さないように注意しながら、上清を除去し、新しいPBST緩衝液の同量と交換してください。
前記CP粒子に相補的なDNAにハイブリダイズ
- 到達した最大結合可能な標的を確実にするために（500 nmでの過剰で）標的DNAの必要量を加えます。
- ボルテックス室温で30分間回転ホイール上で10秒と場所のためのサンプル。
- ハイブリダイゼーションが完了すると、30分間磁気ラック上にサンプルを置くことにより、磁気分離を介して過剰の標的DNAを除去。
- 上清を除去、磁石に最も近い粒子の新たに形成されたクラスタを乱し、そして新しいPBST緩衝液の同量と交換しないように注意して。
- 繰り返しは6.1二連のサンプル6.4に段階的に説明し、DNAハイブリダイゼーション時間を調査するために16時間室温で回転ホイール上でこれらのサンプルを配置します。
7. TRPSのセットアップ
- 代わりにソフトウェアを備えたコンピュータシステムに楽器を接続します。
- キャリパーを使用して初期ストレッチを調整します。
- 二つの平行な顎の外側との間の距離を測定します。
- 「機器の設定」タブで「ストレッチ」フィールドにストレッチを入力し、タブの下に「ストレッチをキャリブレーション」をクリックして、ソフトウェアに入力します。
- 横方向に上向きにナノ細孔のID番号を持つ顎に分析するための適切なサイジングのポリウレタンナノ細孔膜にフィット。次に、使用して分析に必要なストレッチに顎を伸ばします楽器側のストレッチ調整ハンドル。 43と48ミリメートルの間に顎を伸ばします。
注意：その校正粒封鎖のサイズは、少なくとも0.3 nAにあるので、ストレッチの正確な値は、印加電圧と一緒に決定されます。ストレッチは既にステップ7.2でソフトウェアに入力され、ジョーが引き伸ばされるように自動的に調整されます。 - 確実に、ナノ細孔の下に、下の流体セルにPBST緩衝液の80μLを置き、測定に影響を与える可能性が存在する気泡はありません。見ての気泡がある場合は、バッファを取り外して交換。
- 所定の位置に上部流体セルをクリックして、そこにバッファ40μlのを置き、再び確保気泡が存在はありません。気泡が上部流体セル内に存在する場合、液体を交換することによってそれらを除去します。
- 再現性のあるベースライン電流は緩衝液で上部流体セルを交換するから到達したときに、「目をクリックすることで、上部流体セルと対策への試料の40μlを添加しますソフトウェア画面上のデータ収集」タブ」の「アート。
注：これは（ '解析設定」と「抵抗封鎖」の下で）「Analyseをデータ」タブを介してソフトウェアを使用して変更することができるが、データの取得は、0.05 nAのの封鎖の大きさの下限値と周波数50kHzで完了する。 - 測定上の電気バックグラウンドノイズを低減するために、流体セルシステムの上にファラデーケージを置きます。
- サンプルに圧力または真空を適用するために可変圧力モジュール（VPM）を使用します。
- 外部圧力が上位流体セルにノズルを接続し適用するには、その後、圧力アームを回転させ、（正圧（PRE）または真空（VAC）が適用されるかどうかに応じて）所定の位置にクリックします。
- VPMの上に位置する圧力ステージノブを使用して、「センチ」や「ミリメートル」のスケールに圧力を適用します。 T 'センチ'規模で圧力を適用し、上方向に引っ張ってダウンノブを押しO 'ミリメートル'規模で圧力をかけます。
TRPS解析のための8の準備のサンプル
- 80ワットで2分間30秒、超音波処理のための渦サンプルTRPS分析の前に。
9.ゼータ分析のためのナノ細孔のキャリブレーション
- 上部流体セルに40μlの校正粒子（1×10 10粒子/ ml）を配置した後、3は印加電圧で（セクション7のようにセットアップ）TRPSの測定を完了。 「+」をクリックすることで、電圧を変化させ、 ' - 'ソフトウェアの「機器の設定」タブ内の電圧スケール上のボタン。
- NAは3電圧は約140、110のバックグラウンド電流を返すことを確認し、80。中電圧で校正粒子は少なくとも0.3 nAの平均封鎖の大きさを生成することを確認してください。
- 校正粒子の平均半値全幅（FWHM）の期間は、少なくともあるように圧力を適用します0.15ミリ秒。可変圧力モジュールに取り付けられた圧力アームを使用して手動でこれを行います。それが所望の位置にクリックし、ステップ7.8.2での設定の指示に従って、それに応じて適用するまで、アームを回転させることにより、選択圧（PRE）または真空（VAC）。これらの条件が達成されたら、「データ収集」タブにソフトウェア上の「スタート」をクリックして実行を開始します。
- 少なくとも500個の粒子を測定した（測定時のソフトウェア画面の下部にある「粒子数」を参照）、ランが30秒を超えた場合に「データ収集」タブで「停止」を押すことで実行を完了します（参照 'また、画面の下に向かって実行時間」）。
- 新しいナノ細孔は、ステップ9.1から9.4を完了することによって導入されるか、または分析の各新しい一日のためにされるたびに説明したように、キャリブレーションの実行を完了することによって、システムのキャリブレーションを行います。
10.サンプルの実行
- 最高でサンプルを実行しますか、同様の（±10 NA）を確保することで、キャリブレーションサンプルとしての第2の最大電圧、そうでない場合と同じ、ベースラインの電流。
- 適切なベースライン電流が達成されると、サンプルの40μlの上部流体セル内の電解液を交換してください。試料が導入されると、封鎖は、信号トレースに見られるであろう。 「ファイル名を指定して実行を参照してください（「データ収集」タブで「開始」および500個の粒子の最小値を記録（信号トレースの下に位置する「粒子数」を確認してください）と実行時間を確保クリックして実行したサンプルは、30秒の最小値です開始また、信号トレースの下に位置する時間 '）。
- 測定を完了するためには、「データ収集タブ」で「停止」をクリックして、データファイルを保存します。
- ファイル、次の形式で入力ファイル情報を保存するには、 「調査」は、ファイルが保存されるフォルダで、「ナノポアID」は、使用されている細孔のシリアル番号である「パーツ＃ 'Iそれはキャリブレーションやサンプル測定であるかどうかを「キャリブレーションまたはサンプル」の詳細、気孔のタイプ（ すなわち 、NP150 / NP200）、「サンプルID」は、サンプルの名前です。■サンプルを希釈した場合、「希釈は'（使用されています（cm単位でサンプルを100倍に希釈した場合は100を入力し）、「圧力」は、サンプルに加えられた圧力である - セクション7.8を参照）、「電解IDが ''バッファサンプルがで構成されているの名前であり、注意事項は、「サンプルまたは実行に関する個人的なメモです。
- 各サンプル実行の間に、上部流体セルに数回PBST緩衝液の40μLを配置し、様々な圧力を適用することによって、システムを洗浄（通常、-10 -5センチ（真空）、および5〜10センチ（正圧））までこれ以上の封鎖イベントがシステム内に残っていない残留粒子とサンプル間のためノークロスコンタミネーションがない確実に、存在しています。 WELとして実行する各繰り返し試料の間に完成し、この洗浄工程を三連で実行したサンプル異なるサンプル間としてリットル。
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Representative Results
磁気精製およびTRPS測定の方法の 1 模式図を 図 。 A）過剰な、未結合の捕捉プローブDNAを含む試料で開始サンプルの磁気精製の例。B）TRPS測定例をi）は、粒子がナノポアを通過すると、ii）粒子から製造遮断イベントが一時的に一時的な低下を引き起こす細孔中のイオンを吸蔵現在で;粒子転速度を計算するために使用された情報です。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
いずれも報告しないよう試料から粒子の表面に結合していない余分なDNAの除去は、TRPSの分析に重要な前です「偽陽性」の結果。 SPPを抽出し、洗浄するために磁石を使用する能力は、TRPS（ 図1A）のための巨大な利益である。 図1Bは、粒子が細孔を横断するように達成TRPS測定と、例えば「封鎖イベント」の基本的な例を説明します。まず、我々はTRPSは、同様のサイズのが、かなり異なる電荷のサンプルを区別することができるハイスループット技術であることを実証しました。一回の測定で同時にサイズおよび電荷の分析の両方を完了させる能力は、 図2に見ることができる。 図2）のサイズと無修飾（ライトピンクデータセット）でストレプトアビジン被覆粒子のb）のゼータ電位分析の一例であり、表面上の一本鎖DNA（青データセット）で飽和させ、ストレプトアビジン被覆された粒子。両方のサンプルは、同様のサイズであったが、ゼータ電位が大きく異なるとDNAがfunctiたときにはるかに大きかったです粒子の表面にonalized。
図2.サイズおよびDNA修飾および非修飾ストレプトアビジンコーティングされたナノ粒子のゼータ電位解析。淡いピンクのバーが変更されていないストレプトアビジン被覆された粒子を表し、青いバーは、DNA修飾粒子を表す。A）周波数（％）粒子径（nm）を対。ゼータ電位（mVの）対B）周波数（％）。ブランデルら 19に補足データから適応図。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
技術は非修飾およびDNAで修飾粒子を区別することができるだけでなく、TRPSもパーにハイブリダイズしたDNAの異なる濃度のサンプルを区別することができますticle面。 図3サイズおよびストレプトアビジンコーティングされた粒子にハイブリダイズしたDNAの最低（10 nMの、ライトグリーンデータセット）と最高（210 nMで、青色データセット）濃度のサンプルのために展示し、ゼータ電位データを示しています。大きいゼータ電位値は、DNAのより高い濃度でハイブリダイズ粒子のために記録されています。
図3.同時サイズとシングルTRPS測定から取り込まれゼータ電位データ。 青色のバー/データポイントが210 nmのCPのDNA及びライトグリーンバーとハイブリダイズし、ストレプトアビジンコーティングされた粒子の代表的なものである/データ点は10 nmのCPのDNAとハイブリダイズし、ストレプトアビジン被覆された粒子を表します。ブランデルらから適応図。19。 表示するには、こちらをクリックしてください。この図の拡大版。
散布図の各データポイントは、すべてのサンプルと深さの粒子ごとの粒子の分析を可能にする、サンプル集団の間で単一の粒子を表していることに注意することは有益である。 図4は、DNA構造の小さな変化を決定する手法の有効性をサポートしています（一本鎖および二本鎖DNA）、ならびに同じ大きさの標的DNAの試料の差異を同定するが、感度の高いレベルを示す捕捉プローブの異なる領域に結合した（ すなわち 、中間結合図示結合標的を終了図4で）。左から右に、図4に示される粒子は、以下の表面修飾を有するものです。捕捉プローブ（CP）DNAのみ、CPと完全に相補的なDNA標的、CPと中間結合DNA標的、CPおよびエンド結合DNA標的、CPと張り出しDNA標的。
。DNA標的の範囲を図4. DNA標的の範囲を有するDNA修飾粒子について測定ゼータ電位の相対的な変化私から、ゼータ電位、mV単位の変更）CP官能粒子。 ⅱ）完全に相補的、ⅲ）ミドル結合、iv）の結合、v）のオーバーハングターゲットを終了します。エラーバーは、標準偏差、N = 3を表します。ブランデルらから適応図。19。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
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Discussion
ゼータ電位の計算はArjmandi らが仕事に関連するキャリブレーションに基づく方法を使用する。21。それらはナノ細孔を横切るように、粒子の移動の持続時間は、通常、円錐形細孔の全体にわたる平均電界及び粒子速度を使用し、印加電圧の関数として測定されます。電気泳動移動度は、検知ゾーンの長さの二乗、Lを乗じた電圧に対して1 / Tの誘導体（Tは遮断期間である）、です。検知ゾーンを通る複数の基準点の平均速度は、この方法を用いてゼータ電位を計算する際に最小の誤差を許容するために測定されます。
細孔の較正は、検知ゾーン内の各基準点の電圧、V、対1 / Tの線形性に基づいています。キャリブレーションサンプルの粒子の動電粒子速度、"/> / 54577 / 54577eq2.jpgをアップロードし、 
それぞれ、それらのゼータ電位に関連しています、 
そして
、スモルコフスキー近似12,20に与えられるように、2つの間の直線関係を仮定し、式（1）に示すようにキャリブレーションおよびサンプルの両方のためのネットゼータ電位の値は、粒子のゼータ電位と膜のゼータ電位の違いです
。ポリウレタン細孔のゼータ電位は、この研究のためにPBSのように-11 mVの流動電位技法12,18を使用して測定しました。
（1）
各個々の粒子のゼータ電位は、I、 
時間の後、細孔内の粒子の位置であり、tがT xを =、及び
相対位置L xでの単一のサンプル粒子Iの粒子速度です。 
、 
、P、およびV単位電圧あたりの動電速度、単位圧力あたりの対流速度は、サンプル用の圧力や電圧を印加しているそれぞれ実行し、この式の完全な導出は、ブランデルらの仕事で見つけることができます。19。
ストレプトアビジンコーティングされたナノ粒子に捕捉プローブDNAを結合すると、研究者が溶液中に残って過剰、未結合の捕捉プローブDNAを除去することが重要です。これは、のSPPと新しいPBST緩衝液を用いて上清の迅速かつ容易な交換を可能にする簡単な磁石を使用して簡単に行われます。過剰捕獲DNAが溶液中に放置し、標的とされた場合、DNAは、標的DNAはむしろSPP表面上よりも、溶液中の遊離捕捉DNAに結合することができる、追加しました。標的DNAは、粒子の表面上の捕獲プローブの存在に結合する場合、粒子速度およびゼータ電位の変化は、観察されます。
TRPSを使用日数を横切る分析及び多数のサンプルの比較は、複数の孔膜の使用を必要とし得ます。いくつかの細孔は、製造プロセスに、これらの場合には、それらの大きさのいくつかのマイナーな違いを持つことができ、ユーザが確認する必要があり、ベースライン電流は、すべてのRUで同一のままナノ秒。同じベースライン電流が観察された場合、得られた結果は、細孔間で同程度です。ベースラインが以前の実行と同じであると、ユーザーが細孔を横断する粒子転速度の正確な決意を可能にするために、キャリブレーションとサンプル実行間変わらないストレッチを保つことが不可欠です。
TRPS技術は、実験中に容易かつ迅速に分解することができる比較的簡単なセットアップを有します。問題のトラブルシューティングを行う場合は、このプロセスは非常に簡単に行うことができます。例えば、分析を行ったときに下側流体セル又は上部流体セル内の任意の気泡を許可しないことが重要です。これは、不安定なベースライン電流につながります。気泡が上部流体セル内に存在する場合、試料を取り出して交換することができます。気泡が低い流体セルに表示された場合は、バッファーを除去し、新鮮な緩衝液と交換する必要があります。気泡は、永続的な問題である場合、あまりにも多くの界面活性剤が存在してもよいです溶液中でこれは（我々は唯一の0.05％のTween-20を使用）16を減少させることが必要になることがあります。そのサイズは、孔サイズを超えた場合、または、試料の濃度が高すぎる場合、いくつかのサンプルは、細孔をブロックすることができます。これを是正するために、孔径は延伸またはサンプルを増やすことによって増加させることができるより低い粒子濃度16に希釈することができます。現在の大きな凝集物が多い場合は、単一粒子分析のために、試料はまた、細孔をブロックすることがあり、TRPSを通してそれを実行する前に、サンプルをボルテックスし、超音波処理することが重要です。
他の方法の中で、TRPSは、同時に、個々の粒子の大きさおよび電荷の測定を完了するための能力を含む種々の利点を有します。マルチモーダルサンプルはこの方法を使用して効果的に分析することを可能にします。一つの利点は、Δ<、生成された信号/封鎖は、単に封鎖の大きさを得るために、ストレッチや電圧を変更することにより、特定のサンプルについて数分で最適化することが可能です/ em>の 、バックグラウンドノイズよりも有意に大きい（封鎖は、バックグラウンドノイズ<10 Paと比較してのNa尺度です）。細孔径が当該検体の大きさに関連して調節することができるように細孔のストレッチを変更できることは、固体細孔技術上の方法は、より汎用性の高いなります。そのような凝集およびそれが元の固体細孔径範囲を超える検体のサイズをもたらし得るDNA結合タンパク質などの効果を調査する際に特に有用です。 TRPSのもう一つの有利な態様は、技術と感性のレベルです。結合標的DNAの位置に基づいて（DNAの同量を加え電荷（同量）を添加されたサンプルは、同じサイズである場合）、DNA結合の微妙な違いを検出する能力は、この分野で非常に深いあります分析と将来のナノ粒子アッセイデザイン・プラットフォームのための偉大な使用になります。各微妙に異なりますレンスを検出しTRPS技術の粒子による粒子の性質を用いて単離することができます。この分析は超えるような動的光散乱または単にサンプル集団の平均を分析ゲージになり、マルチモーダルサンプル6,7の例では区別できません光子相関分光法などのアンサンブルの技術。
小さな固体ナノポア（100-200 nm）は、粒子のダイナミクスを監視するために使用されており、粒子の直径がナノ細孔22,23のそれに接近し始めると、粒子の移動度が影響を受けることができることを見出しました。 （本研究で使用されるように）分析される粒子よりもはるかに大きいナノ細孔は、細孔内の粒子の移動度に影響し、従って、転動態の少ないを有します。マルチモーダルサンプル内およびこれを超える粒子からなるので、もしこの研究で使用細孔がしかしそれらの検体のサイズの範囲に制限され、例えば、NP150は、60から480ナノメートルのサイズ範囲を有します限界は、それらがブロックされてしまうことがあり、細孔と同じ細孔上で分析することはできません。両方がサイズ分析範囲内にあるが、60および480 nmの粒子（細孔のより低い絶対と高い限界でそれら）を含む二峰性の試料を測定、例えば、異なるストレッチや電圧条件が必要になることに注意することも重要です細孔の。より大きな粒子に必要なストレッチは、サンプルの実行中にバックグラウンドノイズとみなし、したがって、必ずしも測定されていないことができた（低抵抗に基づいて）特に小さい封鎖の大きさの小さな粒子につながるためです。
下位または上位流体セル内に気泡としてサンプルの実行を完了することができないために、不安定なベースライン電流を、作成された気泡は、サンプルの測定に問題があることができます。発泡性の性質の電解質（例えば、いくつかの高度に濃縮された生物学的媒体は、）REQしたがって、サンプルを実行し、することが困難な場合がありますこれらの特定の媒体中の懸濁液をuiringすることは問題になることがあります。ほとんどのサンプルしかし、非常に希釈されたまたはTRPS分析の前に別の緩衝液に懸濁することができます。
この方法は、適応可能であり、タンパク質、DNA、低分子、凝集アッセイ17,24及び生物学的に関連する粒子の分析を含む、ナノ粒子ベースの分析物の範囲を分析するために使用することができます。検体の広大な範囲の特性を明らかにするのにTRPSの汎用性は、このような薬物送達1,25、26から28をバイオセンシング、および環境試験などの分野の範囲内の潜在的な技術を示しています。
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Disclosures
ELCJBはIZONサイエンス社によってサポートされています
Acknowledgments
著者は彼らのサポートのためにIZONサイエンス株式会社に感謝します。仕事は研究（PCIG11-GA-2012から321836 Nano4Bio）のために欧州委員会によってサポートされていました。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Phosphate buffered Saline (PBS) | Sigma Aldrich, UK | P4417 | 1 tablet dissolved in 200 ml deionized water to make buffer solution. |
| Tween-20 | Sigma Aldrich, UK | P1379 | 0.05% (v/v) in PBS buffer as a surfactant |
| Carboxyl polystyrene nanoparticles | Bangs Laboratories, US | CPC200 | Nominal diamter of 220 nm, raw concentration of 1 x 1012 particles/ml, specific surface charge of 86 µeq/g (equivalent to a surface charge density of 3.2 x 1019 C/nm2. |
| Streptavidin coated nanoparticles | Ademtech, France | 3121 | Batch had binding capacity of 4,352 pmol/mg (188 nM theoretical DNA binding capacity) at a raw concentration of 1.1 x 1011 particles/ml. |
| Biotinylated oligonucleotides | Sigma Aldrich, UK | VC00001 | Supplier spec: Reverse Phase 1 purification (0.05 Scale); Biotin modification at 3' end; Lyophilized powders reconstituted to 100 µM using deionized water, and diluted as required. Sequences: CP 5'ATGGTTAAACCTCACTAC GCGTGGC[Btn]3' |
| Standard olignonucleotides | Sigma Aldrich, UK | VC00001 | Supplier spec: Reverse Phase 1 purification (0.05 Scale); Lyophilized powders reconstituted to 100 µM using deionized water, and diluted as required. Sequences of DNA targets: Fully complementary - 5'GCCACGCGTAGTGA GGTTTAACCAT3', Middle binding - 5'GTAGTGAGGT3', End binding - 5'GTTTAACCAT3', Partially complementary overhanging - 5'GTGAGGTTTAACCAT TTTTTTTTTTTTTTT3'. |
| Izon qNano | Izon Science, NZ | Inherent pressure on system of 47 Pa | |
| Izon Variable Pressure Module (VPM) | Izon Science, NZ | Each 'cm' of pressure is equivalent to approximately 100 Pa. | |
| Polyurethane nanopore membranes | Izon Science, NZ | NP150 | Analyte size range 60-480 nm, pore diameter of calculated to be 799 nm at a 45 mm stretch. |
| Magrack 6 | GE Healthcare, UK | 28-9489-64 | |
| Sonic Bath | Fisher Scientific, UK | 10692353 | 80 Watts |
| Vortexer | IKA, Germany | 0003365000 | |
| Rotary Wheel | Labnet International, US | H5500-230 V |
References
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