Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Environment

Надежный метод оценки всхожести семян, пок, и смертности в полевых условиях

Published: November 6, 2016 doi: 10.3791/54663

Summary

Здесь мы приводим протокол для оценки семян живучесть, прорастание и покоем в полевых условиях с использованием погребен, меченых семян полоски и хлорида тетразолия (TZ) тестирование жизнеспособности.

Introduction

Общая цель этого метода состоит в том надежно оценивать выживаемость семян в течение долгого времени в полевых условиях.

Семенные почвы банки являются резервом распылении, жизнеспособных семян еще непроросших распределенных либо на поверхности почвы, в пределах поверхности подстилки, или в пределах почвенного профиля, которые могут сохраняться или скоротечно в течение многих лет 1,2. Когда методы захоронения семян , похожие на те , представленные здесь , были применены к исследованию 17-летнего периода с использованием нескольких десятков видов, жизнеспособные семена были обнаружены во многих из испытанных видов 3. Семенной заторможенность представляет собой блок для прорастания семян до тех пор , соответствующее сочетание условий для рассады выживания не возникает 4. Оставаясь в состоянии покоя может позволить семена, чтобы выжить тяжелых условиях, таких как низкие зимние температуры, ограничение питательных веществ, или сезонной засухи, пока внешний триггер для спячки-релиз не позволяет для прорастания. Триггеры для спячки-релиз может варьироваться от воздействия холода, протяженных соединений, оставленных FIRE, или физическое нападение на семенной кожуры через ссадины или контакта с животным желудка кислотами 5. Поскольку прорастание сигналы могут быть или роды на конкретные виды и часто являются результатом прошедшего естественного отбора, неприспособленным прорастание семян то, что происходит в неподходящее время, и может привести к семян или всходов или плохой рост проростков. В то время как заторможенность была классифицирована на несколько типов , основанных на механизмах высвобождения покоя (например, физические покоя, физиологического покоя), 6 покой семян остается одним из наименее понятных тем в биологии растений. Таким образом, полевые исследования, которые позволяют для оценки состояния отдельных семян или групп семян в соответствующих экологических условиях имеют более высокую объясняющую способность, чем те, которые просто полагаются на стандартные тесты всхожести в лабораторных условиях.

Эксплуатация известных характеристик семян может дать представление о механизмах дремоты. Контроль покоя семян совместноmplex, включая генетический контроль физиологических и морфологических факторов. В то время как полное понимание широты механизмов неактивности еще предстоит выяснить, общая модель возникла, включая отношения обратной связи между двумя фитогормонов Гиббереллиновая кислота (ГК) и АБК (ABA) 7. В этой обобщенной модели для семян с физиологическим компонентом их дремоты, GA служит сигналом для высвобождения спячки, в то время как ABA служит для поддержания состояния покоя. Материнские генетические эффекты, а также окружающей среды материнский рост может влиять на покоем и другие семенные черты, такие как размер, через матерински генерируемых сигналов тканей и развития 8. По материнской линии генерируется внешние структуры (или семенные покрытия) может поддерживать дремоту, иногда в сочетании с физиологическими репликами. Так как матерински полученные семена покрытия находятся под контролем генов материнского растения, они могут не отражать фактический ядерный генетический состав семени в. У нас есть с намиЭ.Д. подсолнечник однолетний семянки из массива культур-дикого гибрид пересекает чесать эти генетические эффекты матери против эмбриона по семенному характеристикам 9,10. Таким образом, исследование конструкции , которые включают в себя различные виды, типы, кросс или генотипы можно почерпнуть информацию об операторе экология и генетика покоя семян, всхожесть и выживаемость.

Важным примером того, как прорастание семян и выживаемости фенотипа может повлиять на динамику популяции можно увидеть в гибридных зонах на полях дикорастущие. Выбор во время одомашнивания культурных растений устраняет большинство покоем и снижает способность семени, чтобы выжить вне сезона выращивания. Тем не менее, поток генов, или гибридизация между культивируемых и диких видов в гибридных зонах на полях дикорастущие может вновь ввести культур аллели (или генетические варианты) в дикой популяции, с возможным воздействием на динамику банка семян. Гибриды между культивируемых и диких родственников потенциально найдены в гибридных зонах на полях дикорастущие могут обладатьмножество промежуточных фенотипов неактивности, лишь несколько фенотипов ожидается , чтобы выжить условий за пределами культивирования (например, зимние месяцы) 11.

Цель этой рукописи, чтобы показать, как с помощью семян метод захоронения полосы, мы можем оценить всхожесть, пок, и выживание целого ряда видов семян в разные периоды времени, чтобы исследовать их естественные колебания в полевых условиях. В нашем примере мы использовали семена подсолнечника с 15-культур дикого гибридного кросс-типов, так как мы заинтересованы в матери и эмбриона генетических эффектов на семенных характеристик.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Сбор семян из нескольких видов или контролируемыми крестов одного вида

Примечание: В этом примере используется семя от 15 поперечных типов в пределах вида подсолнечник однолетний (подсолнечник) , используя дикий, гибрид, и типы культур как (семян производящий) родителя матери.

  1. В конце вегетационного периода, собирают зрелых семенах головы в маркированных мешках. Чистое семя от плевел и место семян в конвертах , помеченных родительского перекрестного типа в стандартном формате (то есть материнский х отцовской).
  2. Насыпная семена вместе в больших конвертов с использованием равного количества семян из равного числа идентичных родительских перекрестными типов. Например, 100 семян из 10 поперечных типов с одинаковыми материнскими и отцовскими родителей. Этикетка конверты с идентифицирующей (перекрестного типа) информации. Эти большие конверты семени мастера для использования в заполнении захоронения полос в разделе 2.
Материнский родитель
Отцовский родитель Дикий: WXw F 1: WXC Crop: CxC
Дикий: WXw 0% WXw 25% F 1 XW † 50% CXW †
BC: WxF1 или F1xW 12,5% WxBC 37,5% F 1 XBC 62,5% CxBC
F 1: WXC 25% WxF 1 50% F 1 Xf 1 75% CxF 1
F 2: F 1 Xf 1 25% WxF 2 50% F 1 2 Xf 75% CxF 2
Crop: CxC 50% WXC † 75% F 1 хс † 100% CxC

Таблица 1. Родительское крест тypes , полученные из рук опыление. подсолнечника урожая-дикого перекрестными типов гибридных были произведены с помощью ручного опыления для использования в захоронении семян эксперимента. Для всех типов кросс, материнский родитель первым в списке и отцовская указанный родитель второй. Перекрестные типы, отмеченные † являются частью взаимных пар перекрестного типа с теми же% урожая аллели, но разные матери родителей. Таблица была ранее опубликована в: Пейс, BA и др. (2015) 15.

2. Создание пользовательских Похоронные Полоски Seed

Примечание: Для этого примера, у нас было три процедуры удаления даты и 15 повторов, поэтому нам требовалось 45 полос общей сложности. В этом примере используется 15 отсеков в полосе так, что и требовалось достаточно узкопетлистый полиэфирной ткани или москитной сеткой, чтобы дом 15, 7 х 10 см отсеков. Смотри рисунок 1.

  1. Начните путем разрезания 20 х 105 см полоску ткани для каждой полосы семян.
  2. Измерьте и отметьте отсеки, а затем сложить ткань пополам. Использование HIGч температуры клей пистолет, печать один короткий (10 см) конец. После того, как клей остынет немного, но не полностью, при этом боковые ткани вместе, чтобы создать уплотнение.
    ВНИМАНИЕ: Высокотемпературные клей и клей советы пистолет может вызвать ожоги, если контакт с кожей затягивается.
  3. Клеевые линии от сложенного края к открытой короткой стороне на каждой отметке отсека. Нажмите на две стороны вместе ткани вдоль линий клея для обеспечения уплотнения без отверстий между отсеками. Семена, мигрирующие между отсеками способствуют погрешности эксперимента.
    Примечание: Теперь, когда отсеки были созданы, развернутая край должен оставаться открытым и готов к приему семян и их идентификационную информацию (имя типа кросс).
  4. Случайным назначить кросс семян типов отсеков для каждой полосы.
    1. Заполните семенные отсеки с равномерным количеством семян (20 для каждого отделения используются в данном примере). Для этикеток, используют промышленные постоянные маркеры на разрезе к монтажу пластиковые садовые дартс, так что они способнывыдерживают захоронение.
      Примечание: Альтернативные методы маркировки могут быть использованы.
    2. После того, как каждый отсек заполнен семенами и этикеткой, загерметизировать отсек непосредственно с клеевой пистолет высокой температуры. Продолжайте, пока вся полоса Семя не полностью герметична. Добавьте общую полосу в первом отсеке с блоком репликации и / или информации о лечении.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Для нашего исследования, так как у нас были временные абсорбцию, блоки и реплицировать полосы в пределах блоков, мы включили всю эту информацию.
    3. Проверьте наличие зазоров между отсеками и пятна клея по мере необходимости, прежде чем перейти к следующей полосе.

Рисунок 1
Рисунок 1. Захоронение семян полосы схематичными. Пример захоронения полосы с указанием идентификации перекрестного типа для отдельных отсеков. Материнский родитель первым в списке с отцовской родителем, перечисленных второй. Цвета указывают на различную материнскую происхождение,с желтым для дикой природы, синий для F 1 гибрид, и красный для урожая. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

3. Бери Seed Полоски в области

  1. Dig участков на заданную глубину до дома полос. Назначают полосы на отдельные блоки, в которых полосы расположены случайным образом, чтобы на дату удаления, которые будут использоваться в качестве основного сюжета и идентичности купе (в данном примере, кросс типа) в качестве подзаговоре в анализе.
  2. Накладками с землей. Вырезать металлической сетки ткани аппаратных средств, чтобы быть на 10 см больше, чем участки и места над заглубленных полос. Используйте U-образные штифты, чтобы закрепить края и края крышки ткани с землей.
    Примечание: Это покрытие для исключения роющих семян хищников. В качестве другого варианта, Мерсер и др. 13 построены и похоронил коробки ткани аппаратных средств , которые окружали семенные полосы из - за сильного давления суслик в поле их Locaции.)
  3. Поместите флаги цветные землемера различать даты определения местоположения полосы и удаление в дополнение к четкие письменные записи.

4. выкопать Полоски и оценка Seed

  1. Выкопайте семенных полос, назначенных на определенную дату удаления. Поддерживать полоски в прохладном влажной среде, пока они не достигают лаборатории, где оценка семян будет иметь место. Это может быть достигнуто путем обертывания полосы в мокрую газету и помещая их в холодильнике для транспортировки или ночь судоходства.
  2. Промойте грязь и почву от полос в воде до тех пор, пока полоски достаточно чистыми, что внешние обломки не затеняет семена.
  3. Используйте ножницы, чтобы разрезать одно отделение за раз. Граф пророщенные семена и удалить их. Граф ясно мертвые семена (например, гниения, или разложившийся семена). Поместите непроросших семена на маркированный мокрой Петри размера промокательной бумаги для того чтобы отличать непроросших, спящие, и мертвые семена.
    1. Поместите чашки Петри с непроросшихсемена в набор камеры роста для стандартных условий проращивания: 25 ° C / 10 ° C 12 ч день / ночь. Разрешить семена одну неделю, чтобы прорасти. Любые, которые, учитывать их в качестве жизнеспособной, но непроросших, так как они не прорастали в полевых условиях.
  4. После обработки камеры роста, испытания оставшиеся непроросших семена для жизнеспособности с использованием хлорида тетразолия (TZ) 13. Для достижения этой цели , составляют процентный раствор TZ подходящих для данного вида исследования с использованием AOSA тетразолия тестирования Руководство 14. Для этого примера, используют 1% -ный раствор.
    1. Вырезать непроросших семена пополам и положите половину были зародыш и эндосперм открыты в чашке Петри, содержащей достаточное количество раствора TZ, чтобы покрыть семена (семена могут плавать, это нормально).
    2. Поместите TZ чашки Петри в инкубатор при температуре 30 ° C и подождать 3 часа. Примечание: Более высокие температуры приведут к более быструю реакцию, если это желательно, но overstaining риск.
  5. <LI> Удалить чашки Петри из инкубатора и оценить. Семена, которые окрашивается в красный цвет в их эмбрионов germinable, в то время как неокрашенные семена мертвы. Обратитесь к AOSA Справочник тетразолии тестирования для более детальной информации о отличительного предельных случаях и отдельных видов.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Перекрестные типы с разнообразными отцовство и растениеводство аллеля процент материнской (таблица 1) различалась даты удаления в процентах проращивают, непроросших, и мертвых семян (рис. 2 и 3). Используя TZ тестирование непроросших семян, мы обнаружили некоторые действительно спящие семена на втором удалении (ранняя весна) (таблица 2), в то время как все семена непроросших третьим удалением (весна) были найдены , чтобы быть действительно в состоянии покоя.

В целом, более низкие проценты аллель урожая снижается дезадаптивное прорастание поздней осенью (рис. 2). В начале весеннего удаления, все поперечные виды имели высокую всхожесть, но отличались по их доле мертвых и непроросших (рис. 3). В частности, кросс-типы с урожая материнского происхождения имели более высокий уровень смертности в то время как материнские дикие перекрестные виды были более вероятно, останутся непроросших. К весне,всхожесть снизилась для некоторых типов кросс. В то время как нелогичным, это, вероятно, из-за семян смертности в погребальных полос для ранее прорастающих крест типов. Соответственно, смертность была выше для более сельскохозяйственных культур, как кросс - типов (т.е. те , с аллель проценты выше урожая) , производимых сельскохозяйственных материнских родителей (рис. 3)

фигура 2
Рисунок 2. Всхожесть при первом удалении в конце осени. Всхожесть подсолнечника урожая-дикого поперечных типов на первом свидании удаления, в конце осени. Перекрестные типы организованы по оси у за счет увеличения урожая аллели проценты, как отмечено. Материнской линии указаны первыми для каждого перекрестного типа. Прорастание квадратов наименьших (с решеткой как таковые) следуют той же буквой значимо не отличаются с помощью регулировки Тьюки-Крамера для множественных сравнений. Рисунок был ранее опубликован в: Pacе, и др. (2015) 15. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 3
Рисунок 3. Процент Проросшие, непроросших, и смертность во второй удаления (ранняя весна) и третьего удаления (весна). Процент проросших для ранней весной (A), пружину (B), процент непроросших для ранней весной (С), весна ( D), и процент мертвых для ранней весной (E) и даты снятия пружины (F). Подсолнечника гибрид кросс-типы культур дикого организованы за счет увеличения урожая аллель проценты, с наиболее культур, как на верхней части оси у и наиболее дикого типа в нижней части оси у. Кросс тип материнской линии указаны первыми. Наименьших квадратовсредство для проросшего, непроросших и мертвых семян (с решеткой) как таковые следуют той же буквой значимо не отличаются с помощью регулировки Тьюки-Крамера для множественных сравнений. Рисунок был ранее опубликован в: Пейс и др (2015) 15.. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Крест тип TZ Бездействующий Стандартная ошибка
WXw 0,071 0,0131
WxBC 0,041 0,0126
WxF1 0.089 0,0136
WxF2 0.054 0,0126
F1xW 0 0,0126
F1xBC 0,013 0,0126
WXC 0.075 0,0131
F1xF1 0.007 0,0126
F1xF2 0,013 0,0126
CXW 0 0,0126
CxBC 0 0,0126
F1xC 0 0,0126
CxF1 0 0,0126
CxF2 0 0,0126
CxC 0 0,0126

Таблица 2. Семена , которые могут способствовать к постоянному семенного банка. Наименьших квадратов для процентов законсервированных фракции непроросших семян на второй (ранняя весна) удаления. Семена были признаны жизнеспособными с использованием тетразолия хлорноязь после инкубации в благоприятных условиях прорастания семян. Таблица была ранее опубликована в: Пейс и др (2015) 15..

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Здесь мы представляем методы использования семян погребальные полосок для наблюдения прорастание семян, покоем и смертности разнообразных запасов семян в предварительно выбранных периодов времени в полевых условиях. Преимущества использования полос, а не отдельные пакеты лежат в (1) скорости полосы и строительства отсека над созданием отдельных пакетов; и (2) легкость и скорость удаления нескольких отсеков в одном движении без опасности пропуска пакета или удаление одного ненамеренно. Как два из дат удаления в примере, представленные здесь, были в течение зимних месяцев, когда почва твердая и полевых условиях холода, этот метод снижает как рабочую силу и потенциал человеческой ошибки. Семенной полосы также помогают экспериментальные логистики, позволяя исследователям рандомизировать полигамное места в лаборатории таким образом, который не может быть изменен путем человеческой ошибки в поле. Благодаря выбору времени удаления, который охватывает широту предполагаемого времени естественный проращивания мы былив состоянии сделать выводы о динамике банка семян в нашем примере потенциал гибридные семена сохраняться в банке семян и внести свой вклад в будущие населения. Одним из недостатков этого способа состоит в том, что некоторые миграции семян между отсеками могут быть неизбежными, в зависимости от размера семян. По этой причине (и, как указано в протоколе), важно, чтобы следователи перепроверить высокие уплотнения клея температуры между отсеками для сведения к минимуму миграции семян.

Некоторые проблемы с экспериментами погребальных семян можно избежать, думая, проницательно о сроках. Выберите захоронение и удаление даты в разы, имеющие отношение к природным циклам видов исследования и целей исследования. Лучше всего сажать, как только после того, как естественное семя пролить, как это возможно. Сроки удаления должны быть выбраны на основе наблюдений за пиковое время появления всходов для оценки нормального поведения всхожесть; добавление более ранние сроки также позволяет исследователям захватить раннее прорастание. BecAUSE наша предыдущая работа указала , что некоторые неадекватные прорастание происходит из - за полного отсутствия покоя в некоторых поперечных типов, мы выбрали очень раннюю дату удаления только через несколько недель после похорон (удаление 1, поздняя осень) 15, 16.

Преимущество полос над отдельными пакетами, что дюжина или более отсеков может быть похоронен, удалены, и оценивается как один, что позволяет для сложных экспериментальных конструкций, включающих все, от нескольких дат удаления до орошения или питательных процедур. Следователи должны позаботиться, чтобы построить блоки, которые позволяют обработок они наиболее обеспокоены с пониманием, чтобы быть основной эффект. Наш пример подчеркнул поведение семян в течение долгого времени, но и другие методы лечения могут применяться, которые требуют рассмотрения макета поля и повторить расположение в пределах блоков в ходе экспериментального этапа проектирования. Путем случайного назначения полосы положение захоронения внутри блоков, время удаления могут быть проанализированы в качестве основного эффекта.

<р класс = "jove_content"> После удаления семенных полос, приготовление предварительно меченных стопка Петри размера промокательной бумаги для всей полосы до начала оценки снижает процент ошибок. Кроме того, открытие и оценки единого отделения в то время помогает поддерживать точность. При размещении непроросших семян в камеры роста, убедитесь, что дневные и ночные температуры соответствуют оптимальные условия для прорастания семян видов исследования. В то время как стандартные условия для проращивания (25 ° С / 10 ° С 12 ч день / ночь) могут быть подходящими для самых разнообразных видов, это не так для всех видов.

Рассмотрим, что применение лечения TZ и оценка семян образцов окраски сильно влияет на результаты исследования. При оценке непроросших семян после обработки камеры роста, обратитесь к литературе (или AOSA тетразолия Testing Руководство 14) для правильной концентрации TZ для данного вида. Хотя судя индивидуальной TZ витражное seeds, важно помнить разницу между жизнеспособностью семян и способность к семенам, чтобы прорасти-слабо окрашенные семена могут указывать дышащие ткани, что может не выйти из почвы и производят саженец. Это сказано, действительно покоящиеся семена являются те, которые остаются непроросших при оптимальных условиях проращивания, но при тестировании все еще сильно жизнеспособны. Эти семена являются единственными семена, которые могут способствовать к постоянному семенного банка и прорастают в последующие годы.

Ряд приложений для этих методов возможны помимо тех, которые изложены здесь. Семенной захоронения полосы могут быть настроены для практически любого числа экспериментальных установок и опытных образцов. Они могут быть применены для сравнения различных видов, размеров семян, или условия / лечения. Основываясь на этих методов имеет потенциал для углубления знаний основной биологии семян многих видов в экологически соответствующем контексте.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Small coin envelopes Any
Large coin envelopes Any
fine meshed polyester mosquito netting Any
high-temperature glue gun Any
high-temperature glue stick refills Any
Industrial permenant markers Any
plastic garden labels Any
scissors Any
Shovel Any
Metal mesh hardward cloth Any
Surveyor's flags, multiple colors Any
Wet newspaper Any
cooler Any
blotter paper Any
petri dishes Any
Temp. controlled growth chamber Any
razor blades Any
Petri dishes Any
Tetrazolium chloride Any
water Any
heat incubator Any

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Walck, J. L., Baskin, J. M., Baskin, C. C., Hidayati, S. N. Defining transient and persistent seed banks in species with pronounced seasonal dormancy and germination patterns. Seed Sci Res. 15 (3), 189-196 (2005).
  2. Alexander, H. A., Schrag, A. M. Role of soil seed banks and newly dispersed seeds in population dynamics of the annual sunflower. Helianthus annuus. J Ecol. 91, 987-998 (2003).
  3. Burnside, O. C., Wilson, R. G., Weiseberg, S., Hubbard, K. Seed longevity of 41 weed species buried 17 years in eastern and western. Weed Sci. 44 (1), 74-86 (1996).
  4. Baskin, C. C., Baskin, J. M. Seeds: Ecology, biogeography, and evolution of dormancy and Germination. , Academic Press. San Diego, CA. (2001).
  5. Finch-Savage, W. E., Leubner-Metzger, G. Seed dormancy and the control of germination. New Phytol. 171, 501-523 (2006).
  6. Baskin, J. M., Baskin, C. C. A classification system for seed dormancy. Seed Sci Res. 14 (1), 1-16 (2004).
  7. Donohue, K., et al. Environmental and genetic influences on the germination of Arabidopsis thaliana in the field. Evolution. 54 (4), 740-757 (2005).
  8. Roach, D. A., Wulff, R. D. Maternal effects in plants. Ann Rev Ecol Syst. 18, 209-235 (1987).
  9. Pace, B. A., Alexander, H. M., Emry, J. D., Mercer, K. L. Seed fates in crop-wild hybrid sunflower: crop allele and maternal effects. Evol Appl. 8 (2), 121-132 (2015).
  10. Alexander, H. M., Emry, D. J., Pace, B. A., Kost, M. A., Sparks, K. A., Mercer, K. L. Roles of maternal effects and nuclear genetic composition change across the life cycle of crop-wild hybrids. Am J Bot. 101 (7), 1176-1188 (2014).
  11. Stewart, N. C., Matthew, J., Halfhill, D., Warwick, S. I. Transgene introgression from genetically modified crops into their wild relatives. Genetics. 4, 806-817 (2003).
  12. Mercer, K. L., Shaw, R. G., Wyse, D. L. Increased germination of diverse crop-wild hybrid sunflower seeds. Ecol Appl. 16, 845-854 (2006).
  13. Delouche, J. C., Still, T. W., Rapset, M., Lienhard, M. The tetrazolium test for seed viability. Mississippi Sta Uni Ag Exp Sta Techn Bull. 51, 1-63 (1962).
  14. Association of Official Seed Analysts. Tetrazolium Testing Handbook. , 653 Constitution Avenue NE, Washington, DC 20002, USA. (2010).
  15. Alexander, H. M., Emry, D. J., Pace, B. A., Kost, M. A., Sparks, K. A., Mercer, K. L. Roles of maternal effects and nuclear genetic composition change across the life cycle of crop-wild hybrids. Am J Bot. 10 (7), 1176-1188 (2014).
  16. Weiss, A. N., Primer, S. B., Pace, B. A., Mercer, K. L. Maternal effects and embryo genetics: germination and dormancy of crop-wild sunflower hybrids. Seed Sci Res. 23, 241-255 (2013).

Tags

Науки об окружающей среде выпуск 117 банки семян заторможенность жизнеспособность семян семян экология семян долговечность материнские эффекты
Надежный метод оценки всхожести семян, пок, и смертности в полевых условиях
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Pace, B. A., Alexander, H. M., Emry, More

Pace, B. A., Alexander, H. M., Emry, D. J., Mercer, K. L. Reliable Method for Assessing Seed Germination, Dormancy, and Mortality under Field Conditions. J. Vis. Exp. (117), e54663, doi:10.3791/54663 (2016).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter