Summary
在组织的动态平衡和吞噬功能不足的维护工作在病理上被牵连的小胶质细胞的吞噬作用是至关重要的。然而， 在体内评估小胶质细胞的功能在技术上具有挑战性。我们已经开发出一种简单而坚固的技术用于精确监测和量化小胶质细胞的吞噬潜力在生理环境。
Introduction
该方法的总的目标是要准确评估和体内小胶质细胞吞噬量化。小胶质细胞是中枢神经系统（CNS）的组织驻留的巨噬细胞。它们执行各种功能，以确保组织稳态的维持。这些包括免疫监视，神经营养因子的分泌，并为至关重要，吞噬作用1。小胶质细胞的吞噬作用是在诸如无关突触（突触修剪）和去除神经元凋亡2-4的吞噬大脑和视网膜的发育过程中的几个重要事件的关键。此外，损坏或凋亡细胞，细胞碎片和入侵微生物的小胶质细胞的吞噬作用已被证明是通过成年5维持CNS动态平衡是至关重要的。最后，小胶质细胞的吞噬作用已牵涉几种神经变性疾病，包括阿尔茨海默病和与年龄有关的发病黄斑变性，它已被认为有缺陷或不足的吞噬能力可能有助于淀粉样蛋白β（Aβ）斑块和玻璃疣，分别6,7的积聚。
小胶质细胞功能紧密可以通过微调节，特别是通过可溶性因子如肿瘤生长因子β或细胞 - 细胞相互作用。神经元组成型表达几个细胞表面配体，例如CD200和CX3CL1，而小胶质细胞只表达相应受体CD200R和CX3CR1。这些受体包含在它们的细胞内部分基于免疫受体酪氨酸的抑制基序（ITIMs）。这些抑制剂受体是用于防止小胶质细胞的过度刺激，从而可以向神经炎症的关键。因此，在正常生理条件下，神经元和小胶质细胞之间的细胞 - 细胞相互作用保持小胶质细胞处于静止状态。在组织损伤，然而，神经细胞可下调EXP这些配体的ression，除去小胶质细胞活化的抑制效果。小胶质细胞的功能（包括吞噬），因此紧密相连的微环境8。然而，到目前为止，还没有标准的测定法来研究小胶质细胞吞噬作用在生理环境或在完全复制其中枢神经系统微环境的一种方式。
几个实验已经开发来测量体外 ，其中primary胶质或小胶质细胞系是与靶细胞（ 例如 ，神经细胞凋亡），或荧光标记的珠培养的小胶质细胞的吞噬活性。那么目标摄取使用荧光显微成像或者流式细胞仪9-12评估。这些检测允许药理或遗传操纵可能会如何影响小胶质细胞的吞噬功能，虽然信息量大，无法完全复制体内环境的复杂的测试。审查小胶质细胞吞噬间接的方法在体内已经报道：这些是由被认为参与在吞噬作用（ 例如，CD68）分子的染色来实现，评估小胶质细胞和目标吞噬（ 例如 ，受损的神经元或突触元素）的物理接近度，或通过吞噬的免疫组化检测小胶质细胞内的目标（ 例如，Aβ）13-17。两项研究使用更直接的方法来评估在体内的小胶质细胞的吞噬功能。休斯和他的同事用成像技术来衡量通过颅内航线18条交付珠小胶质细胞摄取。塞拉等人开发了一种精制方法定量评估使用复杂的成像技术4凋亡细胞的小胶质细胞吞噬作用。然而，这些方法涉及用于组织制备，切片，成像和分析复杂的协议。我们在以前使用的流式细胞仪分析，以评估感光吞噬了通过在培养19视网膜色素上皮（RPE）细胞器段。这里，我们描述了协议来快速评估摄取荧光标记颗粒视网膜小胶质细胞在体内的小胶质细胞的吞噬作用的定量量度。
我们在这里描述的协议允许在三个关键步骤在不到6小时视网膜小胶质细胞吞噬的可靠和定量测量：（1）荧光标记的粒子的玻璃体内递送，（2）收获并制备视网膜组织的，和（3）流流式细胞仪分析。我们开发的方法是，以评估视网膜的小神经胶质细胞吞噬一个健壮的方法，它可以成功地用于测试各种不同的化合物或遗传操作如何改变在生理设置该键小胶质细胞的功能。由于中枢神经系统的一个专门区域，视网膜是研究小神经胶质细胞功能20的方便模式系统。虽然这种方法是在T开发他的眼睛，我们相信它可以为研究小神经胶质细胞吞噬功能全部神经学家有用。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
所有动物均按照由斯克里普斯研究所制定的道德准则处理。
1.注射材料的制备
- 消毒一个33克的针头和注射器：在115οC.拆卸和高压灭菌器通过在无菌磷酸盐缓冲盐水（PBS）上升准备用于注射的针。
- 解冻在室温下进行5荧光标记的粒子 - 10分钟。通过重构在无菌PBS 50毫克/毫升溶液中钙 /镁离子制备颗粒溶液注射。
注：已验证的吞噬检测真菌来源的AF488标记的粒子在这个协议中21-23使用。为了达到最佳的吸收，准备颗粒新鲜，并立即注射前。
注2：颗粒浓度可为每个特定实验进行优化。
2.珠解决方案的玻璃体腔注射
注：两个P需要eople执行注射，在某种程度上，使得执行注射可按住鼠标和保持的焦点上的眼球，而其他人传递加载的注射器和推动柱塞的人。
- 麻醉以100毫克/毫升氯胺酮和10mg / ml的甲苯噻嗪腹膜内注射的啮齿动物的剂量20微升/ 10克体重的。注射前，用脚趾捏来评估麻醉水平。
注：异氟醚对髓样细胞功能具有深刻的影响，因而，其在本测定法中使用，应避免24,25。 - 负载针用0.5微升荧光标记的颗粒溶液。
- 莱鼠标侧身手术显微镜（ 图1A-B）之下。使用软质材料， 如凝胶包，为鼠标的更好的定位。对于年轻小鼠中，眼睛还没有开放，轻轻创建一个fissu打开细45°直角钳的帮助下眼睑沿切口重新从眼睑最终将打开。
- 以优良的45°直角钳的帮助下仔细施加压力，周围的眼睑，使眼球轻微突出插槽。用两个手指就在耳朵上面并由其下颚握住头和并行皮肤轻轻拉伸到眼皮稍微保持眼睛从插座中。要小心，不要抓太靠近咽喉（ 图1B）。
- 穿刺眼球，将注射器的针头在角膜缘（其中角膜和巩膜连接）。这是在色素小鼠灰色圆圈可见。缩回针稍微驱逐玻璃体液中的一小体积，然后注入。在进行注射用一只手，并与其他的针应轻轻握住鼠标的人;第二个人应该慢慢推柱塞。
- 慢慢地缩回注射器。敷眼滴保湿，保持眼部水分。</ LI>
- 让啮齿动物在笼子里过隔热垫恢复，并继续监测动物。如果有幼崽时，请勿动物恢复到与其他动物的警戒，直到呼吸，并且能够自发运动的笼子。如果与成人的工作，不要啮齿动物恢复到与其他警报动物笼子里，直到它重新获得胸骨靠着。
3.视网膜组织的收获
注：从眼睛与荧光标记的颗粒注入视网膜组织应当收集作为流式细胞分析控制。虽然该试验可以使用单个视网膜中进行，以获得最佳性能，二视网膜应一起合并。
- 荧光标记的粒子的玻璃体内注射后收集视网膜组织3小时。
注意：当颗粒溶液注射后时间可以为每个特定实验进行优化，我们发现，在注射后3小时，粒子的摄取可以在大多数的层ö看出F中的视网膜（ 图1C-D）。 - 通过颈椎脱位牺牲小鼠。
- 通过对细45°角度的钳的帮助下proptose眼球眼睑轻轻按压收集眼球。放置眼球和拉后面的钳子。
- 解剖解剖显微镜下视网膜。转移眼球到含有PBS中少量与钙 /镁离子培养皿。在培养皿的干燥区域，穿孔与超细镊子的末端的角膜缘的眼球。
- 握住精45 度直角钳的帮助下，眼球和使用弹簧剪刀削减各地的角膜缘，直到角膜缘周围的大约一半被切断。
- 握住精45 度直角钳眼球和带来眼球到PBS。随着第二对罚款45°直角钳撕裂的角膜和巩膜分开。该晶状体和视网膜会出来我ntact。
- 分离晶状体和视网膜。收集视网膜和转移到含2毫升的PBS与钙 /镁离子一5.4毫升聚苯乙烯试管中。
4.准备单细胞悬液
- 准备使用具有小的修改，以制造商的说明一个神经元组织解离试剂盒单细胞悬浮液。简而言之，磨碎视网膜吹打向上和向下P1000的吸管和无晃动表演在37℃酶消化。
5.染色单细胞悬浮液的流式细胞仪分析
- 悬浮细胞在200μl染色缓冲液（Dulbecco氏磷酸盐缓冲盐水含有0.2％牛血清白蛋白（BSA）和0.09％叠氮化钠），并转移到一个U型底96孔板中。离心机在130×g下5分钟。
注：叠氮化钠对人体是有害和环境。使用适当的个人防护设备第二，根据当地法规丢弃垃圾。 - 反转板在水槽上方，以弃上清。要阻止Fc受体，悬浮细胞在25微升含有抗CD16鼠/ CD32抗体的5微克/毫升，每孔染色缓冲。孵育在室温下5分钟。
- 添加25微升含0.5微克/毫升的抗小鼠的Ly6C-APC-Cy7的的，抗小鼠Ly6G-PE-Cy7的0.5微克/毫升和2.5微克/毫升的抗小鼠的CD11b-AF650的染色缓冲液中。孵育在黑暗中在室温下15分钟。
- 离心机在130×g下5分钟。反转板弃上清。通过在200μl的染色缓冲液中重悬浮细胞洗。
- 离心机在130×g下5分钟。重悬在200μl含有0.5微克/毫升碘化丙啶（PI）的染色缓冲液中。转移至1.2ml微量管。
- 洗井用另外100微升的染色缓冲液中含有0.5微克/毫升PI和池与前将200μl的1.2毫升微量管。得到的300微升染色的细胞的总体积。
6.流式细胞仪分析
- 使用传统的三个激光（紫色，蓝色和红色激光），避免PE，PerCP-经Cy5.5，BV510，并且由于显著溢出从非常明亮的荧光AF488粒子PI染料。使用的第四（黄色）激光来优化该试验中，因为它允许在PE标记的抗体和PI（在mCherry通道代替PerCP-经Cy5.5通道）的使用（ 图2）。
注意：如果一个黄色激光不可用，在另一个信道使用死细胞排除染料。 - 门上的PI阴性细胞（PI-）排除死细胞（ 图2B）。
- 不含死细胞，对细胞CD11b阳性细胞（细胞CD11b +）门之后，这将包括所有的骨髓细胞（ 图2C）。
- 内的CD11b +人口，门上的Ly6C - / Ly6G -排除嗜中性粒细胞（细胞CD11b + / Ly6G +）和单核细胞（细胞CD11b + /的Ly6C +; 图2D）。门控小胶质细胞（ - / Ly6G -这里被定义为的CD11b + /的Ly6C为简单起见）后，两个明显的群体应该是可见的;一个负和一个正对荧光标记的粒子。吞噬细胞将已经采取了粒子，因此是AF488 +（ 图2E）。
注：的Ly6C积极或Ly6G阳性群体也可以利用分析这种染色方法来测量粒子的吸收。吞噬细胞CD11b +细胞的百分比与吞噬小胶质细胞的百分比（ 图2F）良好相关。研究人员不流式细胞经验，可以进行单独的CD11b染色更简单的分析，尽管这将包括吞噬嗜中性粒细胞和单核细胞，以及小胶质细胞。在此的CD11b + /的Ly6C - / Ly6G - </ SUP>人口，这些细胞> 99％的小胶质细胞通过用标记F4 / 80和CX3CR1染色来判断;这些标记可以添加，但并不在我们手中必要的。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
在这里，我们描述了一种方法，使用流式细胞术分析（ 图2）迅速且可靠地量化在生理环境吞噬视网膜小胶质细胞的数量，该方法可适于测试上的吞噬能力的化合物和/或遗传操作的效果小胶质细胞（ 图3A，3B）。 （ - 1天产后10）或成年小鼠（ 图3C）也可在年轻使用。不同剂量的脂多糖（LPS）的腹膜内给药。 24小时后LPS攻击，这里所描述的协议被用来评估视网膜小胶质细胞吞噬功能（ 图3A）。与载体对照相比（ 图3B）时，正如所预料的26的1.42毫克/ kg的剂量的LPS诱导的吞噬小胶质细胞的百分比在统计学上显著增加。
图1： 玻璃体内注射的设置和代表视网膜显示部分在视网膜层荧光标记的颗粒。 （A）凝胶袋注入荧光标记的颗粒可以看作遍及大部分视网膜层后3小时定位在解剖显微镜下。（B）的啮齿动物被保持如图所示来定位眼玻璃体内注射（C）（D ，E）CX3CR1 GFP / GFP小鼠和标有红色荧光颗粒，使用小胶质细胞可视化的粒子吸收。在更深的（D），小胶质细胞和表面的（E）层占用颗粒。比例尺- 20微米请点击此处查看该图的放大版本。
图2： 门控战略选择吞噬小胶质细胞 （A）从P10鼠标从视网膜组织单细胞悬浮液进行分析（B），不包括死细胞（PI +）后，（C）的CD11b +细胞选择（四）。只选择对小胶质细胞，细胞CD11b +中性白细胞（Ly6G +）和单核细胞（的Ly6C +）除外。（E） -吞噬小胶质细胞将已经采取了荧光标记的粒子。（F）的吞噬细胞CD11b +细胞的数目是相似的小胶质细胞的（细胞CD11b + Ly6G -的Ly6C - ）。 N = 9，来自三个独立实验汇集;误差棒表示平均±SEM。rget =“_空白”> 点击此处查看该图的放大版本。
图 3： 小胶质细胞吞噬功能可以LPS刺激后的小狗和成年小鼠进行评估 （A）年轻小鼠（P10）分别以不同的剂量腹腔LPS的挑战，评估吞噬前24小时（B）挑战与1.42毫克/。相比载体对照（p值= 0.0021）时千克导致吞噬视网膜小胶质细胞的显著增加百分比。（C）的该协议可以被用于测量在小狗和成年小鼠一样视网膜小胶质细胞吞噬功能。相比年轻（P10）小鼠（p值= 0.019）不与LPS攻击时，有在成年小鼠吞噬小胶质细胞的显著较小百分比。 N = 9 -12，从三到四汇集独立的实验;误差棒表示平均±SEM。 请点击此处查看该图的放大版本。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
有在该方法中三个关键步骤：（1）荧光标记的粒子的玻璃体内注射液; （2）收集和准备视网膜组织;及（3）流式细胞仪分析。我们建议研究实行前履行我们在座的方法，玻璃体内注射。白化小鼠（ 例如 BALB / c）和有色溶液（ 例如，荧光标记的颗粒）可用于针的容易可视化和注入溶液。玻璃体内注射是具有挑战性的，如果不正确执行会导致偏见和不同的结果。与注射技术差相关的常见问题是在透镜和/或损害视网膜，这可能会导致出血和炎症的穿孔。为了尽量减少创伤到眼睛的风险，啮齿动物应该以最小的头部运动一个稳定的位置。穿透眼球，注射器应缓慢而不是插入推得太远，避免击球镜头。另一种常见的并发症是注射材料的回流出眼球。为了避免这种情况，柱塞应缓慢压下和，在注射后，眼球应该允许缩回到眼窝和注射器应缓慢缩回。最好玻璃体内注射以低水平激活的小胶质细胞，但未经处理的组和治疗组之间有明显的差异可以被测量。至关重要的是，适当的对照（ 例如，非攻击小鼠）在各实验中用于建立基线吞噬水平。需要实践本方法的另一个方面是视网膜剥离。为了确保整个标本的单相媲美细胞制剂，视网膜组织必须迅速并以最小可能的组织破坏收集。表演在PBS解剖的最后一个步骤（见3.4 - 3.7）将有利于集合。最后，为了术正确准备用于流视网膜组织是重要的。小胶质细胞活化的Fc上调受体，因此非特异性结合到抗体的Fc部分，可能会发生7。必须执行的Fc块，以防止非特异性染色。适当的荧光团和补偿设置的选择也很重要27。
我们经常使用年龄在10〜20日龄这些实验老鼠。然而，该协议也可以用来评估在成年小鼠（ 图3C）小神经胶质细胞吞噬功能。注，由于玻璃体脉管的存在，外源骨髓细胞（的Ly6C +或Ly6G +）的群在年轻小鼠更加突出-比成人（所有的约5％（约40所有的CD11b +细胞的50％）的CD11b +细胞）。研究人员应该确定最适合他们的实验岁。这里介绍的协议允许吞噬小胶质细胞在视网膜的水平的鲁棒检测。不过，我们建议三到四个生物人复制在每个实验中被使用，并且所执行的至少三个独立的实验。虽然在本协议中使用的颗粒已经被验证为吞噬测定21-23，如果需要额外的验证时，可以进行与特定的吞噬标记颗粒的免疫组化共定位。
这种方法的一个潜在的局限性是小胶质细胞对颗粒的差的访问。在正常的视网膜，小胶质细胞驻留在两个层，更深的外丛状层，和更浅内丛状层，其更靠近玻璃体7。一旦刺激，或在老化过程中，小胶质细胞可以在所有视网膜层迁移。在该方法中，荧光标记的颗粒被注入到玻璃体内。注射后三小时这导致粒子堆积在整个视网膜和尤其沿着玻璃体表面。研究人员可以进一步优化concentrati在注射他们的实验后的颗粒或时间。它很可能是更接近玻璃体胶质必须将颗粒更容易获得。尽管如此，我们表明，分布在视网膜上的粒子，并在所有的层，但不是在视网膜色素上皮（RPE）细胞采取了由小胶质细胞，这可能是由于有限的珠存取（ 图1C-E）。我们还没有确定视网膜下的小胶质细胞（其可以与年龄积累）是否会获得颗粒。如果这是研究人员重要，该协议能后的颗粒小心视网膜下注射来进行。另一个重要的考虑是，有可能是在中枢神经系统的其它区域的视网膜小胶质细胞和小胶质细胞之间固有的不同的行为。它公知的是特定脑区域具有不同的敏感性疾病。例如，在帕金森氏病，黑质中的神经元大多受到影响，而在Alz的海玛病，海马神经元的主要影响28。因此，研究的特定疾病的病理时，大脑区域很可能是一个重要因素。类似的协议，以这里所描述的人们可以颅内注射之后进行探索视网膜和大脑胶质细胞之间的吞噬反应的电位差。视网膜具有与脑的其他区域，包括血液-视网膜屏障20的存在许多共同的特征。视网膜小胶质细胞和小胶质细胞的脑从相同卵黄囊祖细胞起源和出现关于形态学和细胞表面标记物表达7,29非常相似。此外，几个脑疾病（ 例如，阿尔茨海默氏病，中风和多发性硬化）具有眼部表现，表示视网膜也影响20。虽然研究人员应该意识到潜在的地区差异，我们认为这是一个信息模型所有的小胶质细胞的研究，并建议研究小神经胶质细胞吞噬所有的神经科学家可以使用这个协议。
一个显着的优势，进行这种测定的眼睛是多个技术已被开发，以诱导不同的神经原性应力在视网膜和应激反应可以在体内使用标准化协议30进行监测和定量。通过诱导神经性应力，然后执行此处描述的测定法中，研究人员可以分析不同，在严重程度损伤的广谱小胶质细胞的功能。最后，当用流式细胞仪分选技术结合，该协议具有的优点在免疫组化，它可能允许在深度吞噬小胶质细胞（ 如 ，定量PCR，细胞培养，蛋白质组学）的分析。
颗粒的摄取先前已用于测量吞噬功能，无论是在体外 和体内系统。洛杉矶tter涉及颗粒，收获和脑组织，cryosectioning，染色，成像和成像后分析18冻结颅内注射。这里介绍的协议允许视网膜小胶质细胞吞噬功能的更快量化。它具有这样的优点超过了高度敏感的小神经胶质细胞不从微环境移除，允许在生理上下文吞噬功能的评估在体外系统。具体地，它应能使如何在其他细胞类型的缺陷（ 例如 ，在神经元的基因的遗传消融）影响小胶质细胞的吞噬功能的测试。它还具有这样的优点超过体内测定以前，它使用流式细胞仪，从而实现了快速，定量，和准确的检测吞噬细胞群。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Stereomicroscope | Nikon | Discontinued | |
| Hamilton syringe, 600 series | Sigma | 26702 | |
| 33 gauge, Small Hub RN NDL, 0.5 in, point style 4 - 12o | Hamilton | 7803-05 | |
| Zymosan A (S. cerevisiae) BioParticles, Alexa Fluor 488 conjugate | ThermoFisher Scientific | Z-23373 | Prepare immediately before injection |
| DPBS | Corning | 21-030-CV | |
| Dumont #5/45 Forceps | Fine Science Tools | 11251-35 | Need two |
| Dumont #5SF Forceps | Fine Science Tools | 11252-00 | |
| Vannas Spring Scissors - 3 mm Cutting Edge | Fine Science Tools | 15000-10 | Curved |
| Neural Tissue Dissociation Kit – Postnatal Neurons | Miltenyi Biotec | 130-094-802 | |
| 5 ml Polystyrene Round-bottom Tube | Falcon | 352054 | |
| 96 well U-bottom plate | Falcon | 353077 | |
| Stain Buffer (BSA) | BD Biosciences | 554657 | |
| CD11b-BV650 Antibody | BioLegend | 101259 | |
| Ly6C-APC-Cy7 | BioLegend | 128025 | |
| Ly6G-PE-Cy7 | BioLegend | 127617 | |
| Propidium Iodide | BD Biosciences | 556463 | |
| Purified anti-mouse CD16/32 Antibody | BioLegend | 101301 |
References
- Gomez-Nicola, D., Perry, V. H. Microglial dynamics and role in the healthy and diseased brain: a paradigm of functional plasticity. Neuroscientist. 21, 169-184 (2015).
- Tremblay, M. E., Lowery, R. L., Majewska, A. K. Microglial interactions with synapses are modulated by visual experience. PLoS Biol. 8, e1000527 (2010).
- Schafer, D. P., et al. Microglia sculpt postnatal neural circuits in an activity and complement-dependent manner. Neuron. 74, 691-705 (2012).
- Sierra, A., et al. Microglia shape adult hippocampal neurogenesis through apoptosis-coupled phagocytosis. Cell Stem Cell. 7, 483-495 (2010).
- Sierra, A., Abiega, O., Shahraz, A., Neumann, H. Janus-faced microglia: beneficial and detrimental consequences of microglial phagocytosis. Front Cell Neurosci. 7 (6), (2013).
- Chan, G., et al. CD33 modulates TREM2: convergence of Alzheimer loci. Nat Neurosci. 18, 1556-1558 (2015).
- Murinello, S., Mullins, R. F., Lotery, A. J., Perry, V. H., Teeling, J. L. Fcgamma receptor upregulation is associated with immune complex inflammation in the mouse retina and early age-related macular degeneration. Invest Ophthalmol Vis Sci. 55, 247-258 (2014).
- Ransohoff, R. M., Perry, V. H. Microglial physiology: unique stimuli, specialized responses. Annu Rev Immunol. 27, 119-145 (2009).
- Derecki, N., Cronk, J., Kipnis, J. Assay of phagocytic function in primary murine microglia. Protoc Exchange. , (2012).
- Fricker, M., Oliva-Martin, M. J., Brown, G. C. Primary phagocytosis of viable neurons by microglia activated with LPS or Abeta is dependent on calreticulin/LRP phagocytic signalling. J Neuroinflammation. 9, 196 (2012).
- Koenigsknecht-Talboo, J., Landreth, G. E. Microglial phagocytosis induced by fibrillar beta-amyloid and IgGs are differentially regulated by proinflammatory cytokines. J Neurosci. 25, 8240-8249 (2005).
- Neher, J. J., et al. Inhibition of microglial phagocytosis is sufficient to prevent inflammatory neuronal death. J Immunol. 186, 4973-4983 (2011).
- Fricker, M., et al. MFG-E8 mediates primary phagocytosis of viable neurons during neuroinflammation. J Neurosci. 32, 2657-2666 (2012).
- Mildner, A., et al. Distinct and non-redundant roles of microglia and myeloid subsets in mouse models of Alzheimer's disease. J Neurosci. 31, 11159-11171 (2011).
- Neher, J. J., et al. Phagocytosis executes delayed neuronal death after focal brain ischemia. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, E4098-E4107 (2013).
- Perego, C., Fumagalli, S., De Simoni, M. G. Temporal pattern of expression and colocalization of microglia/macrophage phenotype markers following brain ischemic injury in mice. J Neuroinflammation. 8, 174-174 (2011).
- Preissler, J., et al. Altered microglial phagocytosis in GPR34-deficient mice. Glia. 63, 206-215 (2015).
- Hughes, M. M., Field, R. H., Perry, V. H., Murray, C. L., Cunningham, C. Microglia in the degenerating brain are capable of phagocytosis of beads and of apoptotic cells, but do not efficiently remove PrP(Sc), even upon LPS stimulation. Glia. 58, 2017-2030 (2010).
- Westenskow, P. D., et al. Using flow cytometry to compare the dynamics of photoreceptor outer segment phagocytosis in iPS-derived RPE cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 53, 6282-6290 (2012).
- London, A., Benhar, I., Schwartz, M. The retina as a window to the brain-from eye research to CNS disorders. Nat Rev Neurol. 9, 44-53 (2013).
- Fritzenwanger, M., Jung, C., Goebel, B., Lauten, A., Figulla, H. R. Impact of short-term systemic hypoxia on phagocytosis, cytokine production, and transcription factor activation in peripheral blood cells. Mediators Inflamm. , 429501 (2011).
- Ragsdale, R. L., Grasso, R. J. An improved spectrofluorometric assay for quantitating yeast phagocytosis in cultures of murine peritoneal macrophages. J Immunol Methods. 123, 259-267 (1989).
- Stokes, L., Surprenant, A. Dynamic regulation of the P2X4 receptor in alveolar macrophages by phagocytosis and classical activation. Eur J Immunol. 39, 986-995 (2009).
- Kotani, N., et al. Intraoperative modulation of alveolar macrophage function during isoflurane and propofol anesthesia. Anesthesiology. 89, 1125-1132 (1998).
- Xu, X., Feng, J., Zuo, Z. Isoflurane preconditioning reduces the rat NR8383 macrophage injury induced by lipopolysaccharide and interferon gamma. Anesthesiology. 108, 643-650 (2008).
- abd-el-Basset, E., Fedoroff, S. Effect of bacterial wall lipopolysaccharide (LPS) on morphology, motility, and cytoskeletal organization of microglia in cultures. J Neurosci Res. 41, 222-237 (1995).
- Menon, V., Thomas, R., Ghale, A. R., Reinhard, C., Pruszak, J. Flow cytometry protocols for surface and intracellular antigen analyses of neural cell types. J Vis Exp. , (2014).
- Jackson, W. S. Selective vulnerability to neurodegenerative disease: the curious case of Prion Protein. Dis Model Mech. 7, 21-29 (2014).
- O'Koren, E. G., Mathew, R., Saban, D. R. Fate mapping reveals that microglia and recruited monocyte-derived macrophages are definitively distinguishable by phenotype in the retina. Sci Rep. 6, 20636 (2016).
- Usui, Y., et al. Angiogenesis and Eye Disease. Annu Rev Vision. 1, 155-184 (2015).
