Summary
このプロトコルは、ニューロン - グリア相互作用の区画化分析のための間接的なニューロン、星状細胞共培養を説明します。
Abstract
適切な神経細胞の発達と機能の開発と成人の脳の前提条件です。しかし、複雑な神経回路網の高度に制御形成と維持のメカニズムは完全にこれまで理解されていません。健康と病気のニューロンに関する未解決の問題は、人間の関連する病状、 例えば、アルツハイマー病や統合失調症を調査する基本的な開発を理解することから、多様で到達しています。ニューロンのほとんどの詳細な分析は、 インビトロで行うことができます。しかし、神経細胞は、細胞を要求し、その長期生存のためのアストロサイトの追加支援を必要としています。この細胞異質は、ニューロンとアストロサイトの分析を分析することを目的と矛盾しています。物理的でありながら、私たちは、ここで同じ化学的に規定された培地を共有する純粋な一次ニューロンとアストロサイトの長期的な共存培養を可能にする細胞培養アッセイを提示します分離しました。この設定では、培養物は、4週間まで生存し、アッセイは、ニューロン - グリア相互作用に関する研究の多様性に適しています。
Introduction
過去数十年間を通して、神経膠細胞機能の一般的な解釈は、神経機能1についての積極的な規制の役割に向かって単に支持するの帰属から進化してきました。そのため、健康と病気2における脳の恒常性に対するその顕著な影響のため、アストロサイトは、科学界のために特別な関心があります。過去数年間において、研究の多様性は、in vivoおよびin vitro 3ニューロン-グリア相互作用に焦点を当てています。しかし、培養系のほとんどは、両方の細胞型のとそれぞれのsecretomesの独立した分析を可能にするものではありません。
いくつかのアプローチは、長期的な生存および生理学的に関連する神経回路網の開発4-6を達成するために、ニューロンとグリアの直接共存培養を利用します。物理的に分離された7両方の細胞型を維持しながら、本プロトコルは、同じ目標に到達します。 conditioneに比べてD媒体は、我々のシステムは、ニューロンとアストロサイト間の双方向通信を勉強することができ、8,9近づきます。細胞は、共有媒体に成熟さながら分泌シグナル伝達分子の発現をモニターすることができます。アストロサイトは、それによってニューロンの成長を調節する、例えば、サイトカイン、成長因子および細胞外マトリックス分子10,11として可溶性因子を放出し、7,12機能として、この機会は、特に関連性があります。したがって、 インビトロでの網膜神経節細胞のトロンボスポンジンの添加は、シナプス13の形成を誘導することが実証されています。しかし、他の未知の要因が13、機能的シナプスをレンダリングするために必要です。また、星状細胞により放出された分子は、ニューロン - グリア相互作用の基礎を理解するために識別されなければなりません。
マウスおよびラットからの一次ニューロンとアストロサイトの栽培は、以前に14から16に記載されています。ここで間接共培養法で両方の細胞型を結合するエレガントで汎用性の高いツールを提示します。二つの文化は、物理的に同じ媒体を共有まだ分離されているため、ニューロン、星状細胞および可溶性分子の影響は、別々に、したがって神経グリア相互作用研究のための強力なツールを作成し、分析することができます。
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Protocol
マウスを用いた実験では、畜産の神経科学のガイドラインについては、ドイツの法律とドイツ社会に従いました。ルール大学ボーフムの動物の世話と利用委員会が適切な許可を付与しています。
1.準備と皮質アストロサイトの栽培
注：ニューロンが用意されている前に、星状細胞培養物がコンフルエントな単層に策定すべきであるとして、次のステップに進む前に、プロトコル、少なくとも7日間のこれらのステップを完了して下さい。初代星状細胞は、生後日（P）0-3の周りの仔マウスから得られた混合グリア培養物から誘導されます。 T75フラスコあたり3頭（6皮質）が使用されます。
- 無菌条件下で10％v / vのウマ血清および0.1％（v / v）のゲンタマイシンを含むダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）を補完することにより、星状細胞培地を準備します。 2週間まで4℃でメディアを保管してください。
- コート3倍T75フラスコののwi6％（v / v）のCO 2の存在下、37℃で少なくとも1時間;（細胞培養グレードの水中でPDL）を10μg/ mLのポリ-D-リジン番目。コーティング後、結合していない陽イオンを除去し、9 mLの星状細胞培地を追加するためにリン酸緩衝食塩水（PBS）で2回フラスコを洗浄します。
- 脳の調製のために、（関係なく使用される脳の数の）15 mLチューブを1Xに10センチメートルペトリ皿と1 mLのHBSSを1Xに10 mLのハンクス平衡塩溶液（HBSS）を追加します。手術用はさみ、2細かい鉗子と手続きのための手の届くところに双眼鏡のペアを保管してください。
- 手術用ハサミで素早く3仔を刎ねると、空の10cmの皿に頭を収集します。
- 両眼の下の皮質の準備を行います。 2微細な鉗子を使用して、目のレベルに向かって首アップから始まる、正中線で頭蓋骨から背部皮膚を削除します。その後、その血管と脳は、頭蓋骨の下に表示されます。
- ピンセットで吻側端に頭を修正し、頭蓋骨の正中線を切開、後端から始まります。その後、脳を公開する権利と頭蓋骨の左半分をオフにクリップ。
- 鉗子の先端を閉じて、脳の下に腹側にそれを配置します。頭蓋骨から脳を持ち上げ、HBSSに満ちた10センチメートルペトリ皿にそれを転送します。すべての脳を皿に収集されるまで、残りの検体と同じように進んでください。
- 脳を収集した後、ハサミのような鉗子のペアを使用して後脳からつまんで皮質の分離で始まります。鉗子の1組と2つの半球間の正中切開を行います。慎重に鉗子で脳を固定し、中脳皮質の半分で終わるために第2の鉗子を使用して、嗅球を遮断します。
- 鉗子の1ペアで1皮質の半分を修正して、fは、それらを取り外すことにより半球から髄膜を剥離横方向のエッジをROM、その後、第二の鉗子を使用して、皮質表面からそれらを引きます。
- 皿に向かって下方に向き、その表面に皮質の半分を反転。慎重に鉗子の一組を使用して、三日月状海馬を解剖し、削除します。個々の皮質を運ぶために1つの閉じた鉗子を使用して円錐形の15 mLチューブに単一の皮質を転送します。
- すべての皮質を収集した後、無菌層流フードへのトランジットと皮質組織の解離のための準備を始めます。
- 2 mLの反応管に1mLのDMEMを加えるとvのパパイン（30単位）/ wの0.1％を追加します。清澄溶液を（約3分）を発症するまで37℃の水浴中で懸濁液をインキュベートします。 0.24ミリグラム/ mLのL-システインおよび20μg/ mLのDNA分解酵素を加え、穏やかに振ります。
注：消化のために、酵素溶液約1ミリリットルが必要です。 - 加える前に1 mLの滅菌溶液を得るために、フィルタ（0.22μmの孔径）それ皮質組織へ。 （水浴において、すなわち 、）、37℃で1時間- 30分間チューブをインキュベートします。
注：1.11ステップ - 1.14は重要であり、15分以内に完了する必要があります。 - 消化反応を終了するには、1 mLのアストロサイト培地を追加し、慎重に1 mLのピペットを用いて消化された組織を粉砕します。トリチュレーションのために、優しく、それによって吸引し、皮質組織懸濁液を押し出し、ピペットプランジャーを移動します。
- 組織を単細胞懸濁液に解離された後、216×gで5分間、5mLの星状細胞培地と遠心分離機を加えます。
- 得られたペレットから慎重に上清を吸引除去し、1 mLのアストロサイト培地中で細胞を再懸濁。
- 9 mLのアストロサイト培地（1.2を参照）を補充T75フラスコに細胞懸濁液を追加します。
- 6％v / vのCO 2の存在下でのインキュベーター中37℃で細胞をインキュベートします。 4日後、（最初の完全な培地交換を行います10mL）で。 3日 - その後、培養液ごとに2を変更します。
- 細胞がコンフルエントな単層を形成した場合は7日後、確認してください。文化の完全な合流が達成されるまで3日 - いない場合は、別の2を待ちます。
注：アストロサイトが大きい扁平な細胞体を表示するには、フラスコの底に局在し、顕著な細胞プロセスを開発することはありません。彼らは、単層17の上に常駐する小さな位相コントラスト明るい前駆細胞およびミクログリアは異なります。 - 前駆細胞を取り除くと、純粋なアストロサイトの文化を取得し、オービタルシェーカー上でT75フラスコを置き、250rpmで培養O / Nを振るするために。温度を37℃に調整し、フラスコのフィルタは、CO 2の蒸発を防止するために、実験用フィルムで密封されていることをされていることを確認してください。
- eliminaに20μMのシトシン-1-β-D-アラビノフラノシド（AraCの）を補充翌日、培地を吸引し、10 mLを加え、新鮮な培地TE残留分割細胞。
注：2のためのAraCとのインキュベーション- 37℃のインキュベーターで3 dは、6％CO 2は、純粋なアストロサイトの文化になります。 - 光学顕微鏡下での目視検査により星状細胞培養物の純度を監視します。残留位相コントラスト明るい前駆細胞およびミクログリアはまだアストロサイト単分子層17の上に存在する場合、繰り返しは1.18と1.19ステップ（ステップ1.16参照）。
注：コンフルエントと純粋な星状細胞単層は、次のステップに進む前に、インキュベーター内で最大14日（37℃、6％v / vのCO 2）で維持することができます。培地の半分を3日毎に変更してください。これらの細胞は格納手順を介して自分の神経細胞の支持特性を失うことになるとして、アストロサイトを、収集凍結と解凍しないでください。
間接共培養のためのアストロサイトの準備2
注：48から72時間をセルにニューロン、転送アストロサイトを準備する前にリットル培養インサート。一般的に、単一のT75フラスコは、1つの製剤を用いて得られた神経細胞培養をサポートするために十分な数の細胞を提供します。
- 24ウェルプレートに必要な数のインサートを配置します。被膜37℃で約1時間の10μg/ mLのPDL（細胞培養グレードの水に溶解）とそれぞれのインサート6％（v / v）のCO 2。インキュベーション後、PBSで2回インサートを洗います。一方で、アストロサイトの準備を進めます。
注：アストロサイトの細胞懸濁液が使用可能になるまでPBSで満たされたインサートを保持することができます。 - （AraCを持つ）アストロサイト培地を吸引し、任意の残留血清が削除されていることを確認するために10 mLのPBSと文化1時間を洗います。
- フラスコに0.05％トリプシンEDTA（エチレンジアミン四酢酸）の3 mLを加え、約10分間、37℃、6％v / vのCO 2でのトリプシン処理のために細胞をインキュベートします。
- 顕微鏡とfacilitaを使用して目視検査によって細胞の剥離を制御しますデスクトップに対するフラスコの側面をタップすることで細胞の剥離をTE。
注：2.5ステップ - 2.8が重要であり、15以内に終了する必要があります - 20分。 - トリプシン処理の後、穏やか7 mLの星状細胞培地中で再懸濁細胞を、15 mLの試験管に細胞懸濁液を移します。 216×gで5分間遠心分離します。
- 注意深く上清を吸引し、1 mLのアストロサイト培地中で細胞ペレットを再懸濁します。
- 計数チャンバーを用いて細胞を数えます。
- 500μLのアストロサイト培地で24ウェルプレートのウェルの底を記入し、各個々のインサートに500μLのアストロサイト培地中で25,000細胞を移します。 37°C、6％v / vのCO 2で培養物をインキュベートします。
注：42後 - 72時間培養物が約100％コンフルエンスに到達します。この段階で、培養物の純度は11免疫細胞化学によって確認することができます。コンフルエントな培養物に進むまでに7日間維持することができます次のステップ。培地の半分を3日毎に変更してください。
初代海馬ニューロンの調製
注：プライマリマウスの海馬ニューロンはE15.5から導出されるべきである - 時限妊娠マウスのE16胚。
- 0.6％とニューロン培地（10mMのピルビン酸ナトリウムとのMEM、0.1％W / Vオボアルブミン、2％（v / v）のB27培地補充物、0.1％（v / v）のゲンタマイシン（滅菌を濾過））、および調製培地（HBSSを準備/ワットVグルコースおよび10mMのHEPES（4-（2-ヒドロキシエチル）-1-ピペラジンエタンスルホン酸））。前暖かく、37°C、6％（v / v）のCO 2でのフィルタフラスコ内で前平衡化ニューロン媒体。
- （細胞培養インサートで使用するための切り欠きされている特殊なカバースリップを使用）を24ウェルプレートのウェルにガラスカバースリップ（直径12mm）を配置します。
- 37℃の水（細胞培養グレード）中の15μgの/ mLのポリDL-オルニチンを有する少なくとも1時間コート。ことを確実にするために、ウェルあたり少なくとも500μLを使用しますカバーガラスを完全に覆われています。 PBSでウェルを2回洗浄します。細胞をプレーティングするまでウェル中にPBSを残します。井戸が乾燥していないことを確認してください。
- 海馬を分析するには、準備媒体で満たされた3×10cmの皿と1 mLの準備培地で1×2 mLチューブを準備します。はさみと2細かい鉗子を準備します。
- 頸椎脱臼により妊娠中のマウスを生け贄に捧げる、70％v / vエタノールで洗浄することにより腹部を殺菌し、鋭いハサミを使用して腹部を開きます。はさみで慎重にビーズの子宮を切除し、準備媒体で満たされた1×10cmの皿に臓器を移します。
- 次に、子宮から胚を削除します。慎重に子宮を切開し、2鉗子を使用して胚を損なうことなく羊膜を除去します。その後、ハサミで各胚を刎ねると準備媒体が供給される第2の10cmの皿に頭を移します。
- preparに類似（ヘッドの準備に進みます1.7） - ationが1.4で説明しました。
- ピンセットで頭を固定化し、中枢神経軸に垂直な後脳に近いネック領域に頭蓋骨と皮膚を切開。頭蓋骨と皮膚をカバー両方を持ち上げ、それによって脳を露出させ、頭の吻側端に向かって柔らかいスカルキャップを曲げるために鉗子の第二の対を使用してください。
- 2鉗子の助けを借りて、頭蓋腔から脳を切り離します。この鉗子の、1に近いペアを行うと、嗅球から始まり、後脳に向かって移動する頭蓋骨から脳を分離します。準備媒体で満たされた別の10cmの皿に脳を収集します。
- アストロサイトの準備（ステップ1.6）のために上記のように皮質部分から海馬を解剖。各半球から海馬を取り出して、準備媒体で満たされた2 mLのチューブにそれらを収集。
- 解剖を完了した後、無菌層流ベンチとdigesにチューブを移しますパパインを含む1mLの消化液と海馬組織をtは。 1.10、代わりにDMEMをMEMを使用する - ステップ1.9で説明したように消化溶液を準備します。
注：3.9ステップ - 3.12は重要であり、10以内に完了しなければならない - 15分。 - 消化が完了した後、慎重にピペットで穏やかな吸引により消化溶液を引き出します。
- 順次追加した後、慎重に洗浄サイクル当たり1 mLの新鮮な培養培地を吸引することによって、海馬をニューロン培地で3回洗浄します。細胞懸濁液を遠心しないでください。
- 最後の洗浄工程の後、慎重に1mLのニューロン培地中で組織を粉砕します。
- 計数チャンバーを用いて細胞をカウントし、24ウェルプレート（3.2で述べたプレート）の1ウェルあたり500μLニューロン培地中の35,000細胞をプレー。
注：必要に応じて、細胞のアリコートを細胞調製物の活力を評価するために、トリパンブルーで対比することができます。視覚的検査により、めっき密度を制御顕微鏡を用いたイオン（典型的には90 - 標準の10倍の対物レンズの視野あたり110細胞）。 - 37°C、1時間の6％v / vのCO 2のインキュベーターに入れニューロン。
- 、インキュベーションを投稿準備インサートを取るインキュベータのうち（コンフルエント星状細胞単層を播種）（ステップ2.8を参照してください）。アストロサイトの培地を吸引し、500μlの新鮮なニューロン培地に置き換えることにより、メディアを交換します。
注： - 3 DIV（in vitroでの日数）インサートは2の後、コンフルエント星状細胞単層を保有する必要があります。 - 慎重に滅菌ピンセットを用いて、神経細胞培養（ステップ3.13）を含有するウェルにアストロサイトに挿入を置きます。
- バック、37℃、6％v / vのCO 2インキュベーター中に生じた間接的なニューロン、星状細胞共培養を置きます。
注：これらの条件下で、ニューロンが完全に定義された培地中で最大4週間培養することができます。いいえ培地交換は必要ありません。長期培養のためには、電子メールを記入することをお勧めします24ウェルプレートからの蒸発を低減するために、滅菌水でmpty井戸。 - 実行in vitro細胞解析後の培養期間を希望する（ 例えば、免疫細胞化学、PCR、ウエスタンブロット、電気生理学的記録（パッチクランプまたは多電極アレイ）のための）7,15,18。
注：培養系はまた、培養物11の急性および慢性の薬理学的治療に適しています。
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Representative Results
間接的共培養システムを介して神経細胞培養物の分析は、多種多様であり、培養成熟の異なる段階で行うことができます。細胞は、最大4週間維持することができるという事実のために、培養物の長期的な研究が可能です。
図1の中央の左側のパネルで概略的には、共存培養のセットアップを示しています。星状細胞単層（上左パネル）および神経ネットワーク（左下パネル）の位相コントラストの写真によって例示されるように、このシステムを使用して、両方の細胞型の生細胞イメージングを行うことができます。右上と右下のパネルに示すように固定した後、免疫細胞化学的な評価が可能です。
ニューロンは、我々のモデルでは約7 DIV始まるシナプス接続を（データは示していない）を確立し始めます。 14 Dにより、前と後シナプスマーカーを組み合わせた免疫細胞化学的検出（ 図1、右下のパネル）によって識別されるようIV複数のシナプスは、神経回路網内に形成されています。重要なだけでなく、シナプスマーカー斑点の量を可視化し、このアプローチを使用して定量することができるだけでなく、ネットワーク接続に貢献する可能性が最も高い構造的完成シナプス。
星状細胞培養物は、ニューロン11への栄養サポートを提供するだけでなく、神経可塑性に関与するいくつかの分泌因子19,20を合成するだけでなく。これらの要因、すなわちマトリックスメタロプロテアーゼ2（MMP2）の1の発現は、 図1の右上のパネルに示されている。興味深いことに、2つの異なるMMP2-アイソフォームは、ウエスタンブロット（ 図1、右中央のパネルを使用して、共存培地中に検出されました）。潜在的にアストロサイトの中にMMP2を分泌しますhared媒体は、したがって、神経細胞の可塑性に影響を与えます。また、テネイシンC、軸索伸長、細胞遊走および分化21の既知のレギュレータの複数のアイソフォームが同定されました。
まとめると、これらの結果は、2つの例を示し、それによって、星状細胞、ニューロン、および本明細書に記載の間接的共培養法を用いて実現することができ、それらの相互通信の調査の様々な原理の証明を提供します。
。図1：間接アストロサイト、ニューロンの共培養システムは、星状細胞、ニューロン及び分泌分子メディエーターの個別の分析を可能にする トップパネルには、左 ：アストロサイトのフォームの単層を細胞培養インサート膜、位相コントラストに。スケールバー：250ミクロントップパネル、右 ：としてtrocytesはグリア酸性繊維状タンパク質（GFAP）（マウスクローンGA5）およびマトリックスメタロプロテアーゼ2（MMP2）（ウサギポリクローナル）について免疫染色されています。スケールバー：250ミクロン中央のパネルは、左 ：スキームは、間接共培養のセットアップを示しています。二つの文化が物理的に分離されているが、それらは同じメディアを共有する中央のパネルは、右 ：ニューロン-グリア相互作用の2分泌分子メディエーターは、ウエスタンブロットを用いて、共培養培地中で明らかにされています。テネイシンC（TNC）、神経突起伸長レギュレータ、およびMMP2、細胞外マトリックス修飾剤の複数のアイソフォームは、文書化されている底板、左 ：一次ニューロンは、栽培の14日目により位相コントラストを高度に相互接続されたネットワークを開発すること。スケールバー：250ミクロン底板、右 ：免疫細胞化学標識により検出されるように、in vitroで 14日から始まる、複数のシナプス結合は、神経細胞の間で確立されています。スケールバー：50ミクロン。シナプス後PSD95の足場タンパク質（マウスクローン6G6-1C9）とのシナプス前マーカーファゴット（ウサギポリクローナル）の共局在は、構造的に完成したシナプスの形成が記載されています。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
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Discussion
共有媒体でそれらを維持しながら、現在のプロトコルの主な目標は、完全に独立した神経細胞とアストロサイトの培養物です。このため、得られた培養物の純度は、手順の開始時に確認されるべきです。私たちは、オリゴデンドロサイト前駆マーカーおよびミクログリアを識別するためにIBA1タンパク質としてO4抗原、アストロサイトのマーカーとしてGFAP、神経細胞のマーカーとして、ニューロン特異的チューブリン、ニューロフィラメントまたはNeuNのタンパク質の使用をお勧めします。
ステップの説明の前に「注意」によって指定されるように、プロトコルの重要なステップを実行するときに特別な注意を払ってください。ニューロンとアストロサイトの両方の初代培養物はかなり敏感であることを考慮に入れます。したがって、いくつかの問題は、手順の開始時に発生する可能性があります。アストロサイトは、10 DIV（プロトコルセクション1）の後にT75フラスコ中のコンフルエントな単層に到達しない場合、（有効期限のための）星状細胞培地の成分を確認してください。加えて、（フラスコ当たり10皮質まで）文化を開始する準備皮質組織の量を増加させます。アストロサイトは、72時間（プロトコルセクション2）の後、細胞培養インサート上のコンフルエントな単層に達しない場合は、新たに調製した培養液をプレートアウトするアストロサイト媒体と（有効期限のため）PDL .Tryのコンポーネントをチェック、生存の割合を決定しますそれに応じて細胞数をプレーティングし、調整する前の細胞（ 例えば 、トリパンブルー対比染色を使用します）。神経細胞の低い生存率を24時間後に検出された場合、海馬組織は、組織を解離するときに気泡の形成を回避するために、（プロトコルステップ3.11）穏やかに十分.Pay注意を粉砕していませんでした。ニューロンの生存を著しく7の後に低下した場合 - 14 DIVニューロンが3の凝集体形成している場合 - 7 DIVの後に5個の細胞を、アストロサイトで新たに調製したインサートを使用し、免疫細胞化学により、アストロサイトの純度をチェックし、ニューロン培地成分を確認してください。ニューロン（10以上の細胞）の大きな凝集体がVであればisible、海馬組織が十分に不完全な解離（プロトコルステップ3.11）、その結果、磨砕しなかった可能性があります。サスペンションの均質性に注意してください。神経培養は非神経細胞（ミクログリア、アストロサイト、オリゴデンドロサイト前駆細胞など ）で汚染されている場合は、完全に海馬に隣接する隣接皮質組織（ステップ3.7）を除去し、また、神経細胞の培地成分を確認してください。
一次ニューロンとアストロサイトの提案間接共培養は、ニューロン - グリア相互作用の長期的な調査のための多目的なツールを提供しています。重要なのは、このプロトコルは、マウスの遺伝的モデルを実装するための視点を開き、マウス細胞、最適化されています。なぜなら2の細胞型の完全な物理的分離により、異なる遺伝子型のニューロンおよび星状細胞は、所望の方法で組み合わせることができます。
種々の用途の中でも、このアプローチは、INVに用いることができますニューラルネットワークの開発、シナプス形成、ネットワークアクティビティとアストロサイトニューロンシグナリングをestigate。ニューロンとアストロサイトの間接的な共培養は、それらの隔離分析や長距離のシグナル伝達のための広大な機会を開きますが、直接接触の欠如は、シナプス可塑22の微妙な調節を損なう可能性があります。したがって、星状細胞突起および神経シナプスとの間の相互作用の欠如は、このモデルを使用する場合、慎重に扱わなければなりません。
アッセイは、星状細胞およびニューロンの製剤14,17のための2つの以前のプロトコルに基づいており、過去数年間のコースで改善されました。アプローチは、もともとマウス7のために設立され、11細胞をラットされています。研究室の前の出版物は、細胞の生存、シナプス形成および得られた細胞7,11,15,18の電気生理学的特性評価に関するアッセイの詳細な特性を提供します。また、トン彼アッセイは、マイクロ電極アレイ（MEAの）7などの他の設定に適合させることができます。将来のアプリケーションのために、読者は、シナプス形成23の詳細な調査のためだけでなく、in vitroでの MEA分析のために他のプロトコルを考慮する必要があります。結論として、アッセイは、ニューロン - グリア相互作用のさまざまな側面に焦点を当てた研究室のための多目的なツールを提供しています。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagents | |||
| B27 | Gibco (Life Technologies) | 17504-044 | |
| Cell-culture-grade water | MilliQ | ||
| Cytosine-β-D-arabinofuranoside (AraC) | Sigma-Aldrich | C1768 | CAUTION: H317, H361 |
| DMEM | Gibco (Life Technologies) | 41966-029 | |
| DNAse | Worthington | LS002007 | |
| Gentamycin | Sigma-Aldrich | G1397 | CAUTION: H317-334 |
| Glucose | Serva | 22700 | |
| HBSS | Gibco (Life Technologies) | 14170-088 | |
| HEPES | Gibco (Life Technologies) | 15630-056 | |
| Horse serum | Biochrom AG | S9135 | |
| L-Cysteine | Sigma-Aldrich | C-2529 | |
| MEM | Gibco (Life Technologies) | 31095-029 | |
| Ovalbumin | Sigma-Aldrich | A7641 | CAUTION: H334 |
| Papain | Worthington | 3126 | |
| PBS | self-made | ||
| Poly-D-lysine | Sigma-Aldrich | P0899 | |
| Poly-L-ornithine | Sigma-Aldrich | P3655 | |
| Sodium pyruvate | Sigma-Aldrich | S8636 | |
| Trypsin-EDTA | Gibco (Life Technologies) | 25300054 | |
| Equipment | |||
| 24-well-plates | Thermoscientific/Nunc | 142475 | |
| 24-wells-plate (for the indirect co-culture) | BD Falcon | 353504 | |
| Binocular | Leica | MZ6 | |
| Cell-culture inserts | BD Falcon | 353095 | |
| Centrifuge | Heraeus | Multifuge 3S-R | |
| Counting Chamber | Marienfeld | 650010 | |
| Forceps | FST Dumont (#5) | 11254-20 | |
| glass cover slips (12 mm) | Carl Roth (Menzel- Gläser) | P231.1 | |
| Incubator | Thermo Scientific | Heracell 240i | |
| Micro-tube (2 mL) | Sarstedt | 72,691 | |
| Microscope | Leica | DMIL | |
| Millex Syringe-driven filter unit | Millipore | SLGV013SL | |
| Orbital shaker | New Brunswick Scientific | Innova 4000 | |
| Parafilm | Bemis | PM-996 | |
| Petri dishes (10 cm) | Sarstedt | 833,902 | |
| pipette (1 mL) | Gilson | Pipetman 1000 | |
| Sterile work bench | The Baker Company | Laminar Flow SterilGARD III | |
| Surgical scissors | FST Dumont | 14094-11 | |
| Syringe | Henry Schein | 9003016 | |
| T75 flask | Sarstedt | 833,911,002 | |
| tube (15 mL) | Sarstedt | 64,554,502 | |
| Water bath | GFL | Water bath type 1004 |
References
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