Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

אישור של שריר לב איסכמיה ופציעת reperfusion בעכברים באמצעות אלקטרוקרדיוגרפיה Pad Surface

Published: November 24, 2016 doi: 10.3791/54814

Introduction

שמחלות לב הן סיבת המוות המובילה בעולם 1,2. לא רק החדר השמאלי (LV) החדר שהרירי ביותר, אחראי שאיבת דם מן הלב אל הגוף כולו 3, הוא אוטם משותף לב פגיע באתר שלאחר לבבי 4. מוות חדרית רקמות שמאל לעתים קרובות תוצאות אי ספיקת לב סיסטולית. במודלים של בעלי חיים של מחלות לב הן הכרח לקידום מחקר לב וכלי דם ביו. זן C57Bl / 6 של עכברים היה בחירה פופולרית עבור במודלים של בעלי חיים עקב זמן רבייה המהיר שלהם, עלות הנמוכה וקל ב שינויים גנטיים. רוב הדגמים כירורגית בעכברים לחקר מחלות לב לערב חסימה של הסניף LAD של העורק הכלילי השמאלי. הנער הוא המכונה לעתים 5,6 השולי הקהה השמאל. הנער המספק דם הקדמי של החדר השמאלי וקירות לרוחב אנטרו. מחקרי חסימת LAD מכוונים גרימת אוטם קדמי, לפעמים הארכת into אזורי הקיר הנחותים לרוחב 7.

שני מודלים המשמשים לעתים קרובות ללימודים אוטם שריר הלב כוללים אוטם שריר הלב חסימה כרונית שריר הלב איסכמיה / פציעה reperfusion. החסימה הכרונית נוצרה בניתוח ידי תפירה סביב ולצמיתות חסימת זרימת דם דרך LAD. פציעת איסכמיה / reperfusion נוצרה הרבה באותה הדרך יחידה עם חולף, בדרך כלל 30-60 דקות, תקופה איסכמי. כדי להשיג איסכמיה חולפת, קשרי תפר occluding ברחבי LAD ושפופרת PE-10 קטנה אשר ממוקם במקביל LAD על פני שטח epicardial של הלב, ואחריה תקופת reperfusion שבו צינורות תפר occluding מוסר ודם הוא מותר שוב לזרום דרך העורק אל שריר הלב. ניתוח איסכמיה / reperfusion כבר ייחשב להיות רלוונטי קליני בשל האופי של פגיעת reperfusion במקביל לטיפול אוטם אדם הכולל לנשףאנגיופלסטיקה ו סטנט כלילי pt של העורק, או מעקפים. בדרך כלל, במהלך ניתוחים אלה, איסכמיה של LV בתוך לב עכבר היא אושר על ידי חיוורון גלוי של קיר שריר הלב. עם זאת, פשוט על ידי ביצוע הניתוחים על כרית רל (א.ק.ג.) בתנאי ניטור מתמיד, שינויים נראים לעין ניתן להבחין בצורת גל א.ק.ג., ובכך המאשרים איסכמיה ו reperfusion של שריר לב העכבר.

למרות הלב בעכברים דומה ללב האדם במובנים רבים, כולל מבנה ארבעה חדרים שלה, את ליבם גם יש הבדלים. הבדל ברור הראשון הוא קצב לב במנוחה הממוצע של עכברים בוגרים הוא 600 - 700 פעימות לדקה (BPM) ואילו לזו של בני אדם מבוגרים ~ 60-100 8,9 BPM. בנוסף, בעכברים הגלים repolarization, J ו- T, לעתים קרובות להתמזג עם QRS קומפלקס שלילת קוטביות ביצוע קשה במקטע ST ברור להבחין 10. כדי לסבך את התהליך של electrocardiographically המאשר איסכמיה לבבית, זה לעילוי T-גל ואת מקטע ST אשר משמשים כסמנים לאבחון איסכמיה ופציעה אוטם שריר הלב אצל בני אדם, קלינית המכונה ST דואר levation מ yocardial אני nfarction או STEMI. אחד ההבדלים העיקריים בין אדם וצורות גל בעכברים היא כי S-גל מיד אחריו להיות גל J-המעביר ישירות לתוך T-גל שלילי. במהלך איסכמיה לבבית חריפה בעכברים משרעת של ירידות S-גל והוא בעקבות ישירות על ידי J-גל נורמלי ו 11 T-גל הפוך. ה- T-גל לא נראה להוות חלק משמעותי של repolarization בעכברים 11. למרות מינוח ועכבר מול הבדלים אנושיים, אישור א.ק.ג. של איסכמיה לבבית murine ו reperfusion הוא עדיין ריאלי יחסית פשוט. למען פישוט פרשנות צורת גל, בקטע שבין SJT המכונה ST-segmeNT בזאת.

הנחיות STEMI שפורסמו בשנת 2013 ממליצות זמן מדלת בלון חולה של פחות מ -90 דקות 12 .זה אומר כי מסגרת הזמן מזיהוי של החסימה של העורקים הכליליים של המטופל עד העורק נפתחת מחדש צריך להיות פחות מ 90 דקות. הלב הפועם פועל באופן מתמיד ולכן, יש מטבוליזם חמצונים גבוה ורמה גבוהה של צריכת חמצן 3. כדי לספק לכך, רשת של נימים זמינה לכל myocyte 3. זה לוקח רק לב כמה פעימות למצות החמצן שלה ואספקה ​​של חומר מזין. בחלון 90 דקות, אזור לב איסכמית אדם יהיה נחסם מלקבל בין 5,400 ל -9,000 לב פועם שווה של דם עשיר בחמצן. באותה חלון 90 דק ', עכבר יצטרך 54,000 עד 63,000 פעימות הלב. נקודות זמן הניסוי בגין נזקי איסכמיה / reperfusion בעכברים הם בדרך כלל בין 30 ל -60 דקות.

חשיבותה של לפתחing שיטה משלימה של מאשר איסכמיה ו reperfusion שריר לב במודל בעכברים יש השלכות מרחיקות לכת על עקביות השחזור של נתונים במחקרי איסכמיה / reperfusion שריר לב. הנוהג הקיים של ראיית התבוננות בלב לשם שינוי בצבע רקמה אינו מספיק בתור עצמאי אבחון. בנוסף, reperfusion לאחר הסרת צינורות תפר אינו מובטח. למרות שעורק כבר לא נקשר, העורק יכול להיות נזק שנגרם במהלך ההליך ושעשויים אפשר reperfuse. זה יהיה מועיל יש תיעוד של שינוי באק"ג כדי לאשר reperfusion ולא להסתמך על תצפיות של חיוורון שריר הלב rubor (צבע אדום). לבבות שאינם להראות סמנים של פציעה איסכמיה / reperfusion אז יכול להיות מסומן במהירות החלטה כיצד להמשיך יכול להתבצע על ידי החוקרים.

לבסוף, הקמת תיעוד של א.ק.ג. משנת מתחילת המחקר ברחבי הדואר תקופות איסכמי ו reperfusion מאפשר לחוקרים להמשיך לפקח על הלב לאחר הניתוח הראשוני. חוקר כעת לאבד את הלב ברגע הניתוח הושלם. אק"ג היא דרך פשוטה כדי לקבל תובנה שינויים המתרחשים בשעות שריר הלב כדי ימים לאחר הניתוח. א.ק.ג. רשם בנקודות זמן לאחר הניתוח יכול לחשוף מאחרים להתפתח Q-גלים המצביעים על המשך או חמרה למוות של רקמות. עם זאת, כדי להעריך ביעילות סמנים באק"ג חדשים או החמרה, א.ק.ג. הבסיס חייב להיות זמין להשוואה.

פרוטוקול זה יהיה להדגים כיצד להכין, להשיג, ולפרש את א.ק.ג. לאשר איסכמיה ו reperfusion של הלב העכבר באמצעות 8 - 12 בשבוע עכברים C57Bl / 6 גבר בן.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

כל הליכי כירורגיים המבוצעים על בעלי חיים צריכים להתבצע בהתאם מדריך לטיפול ושימוש בחי מעבדת 13 או קווים מנחים אתיים מתאימים אחרים. פרוטוקולים צריכים להיות מאושרים על ידי ועדת רווחת בעלי החיים במוסד המתאים לפני שתמשיך.

1. הכנות לקראת א.ק.ג.

הערה: לפני תחילת, דון ציוד אישי מגן כולל כפפות, משקפי שמש ומעיל מעבדה נקי או שמלת הפנויה.

  1. נקה את משטח א.ק.ג. באמצעות פתרון טיהור שאינה מבוסס אלכוהול ולא אקונומיקה. בעדינות להשתמש משימה עדינה לנגב למחוק את הפתרון עודף על מנת להבטיח כי כרית אלקטרודה לא להינזק.
  2. אם משטח א.ק.ג. יש תכונת חימום, להשתמש בו. בעכברים מורדמים נוטים לאבד חום גוף במהירות. מחמם את הכרית ל- C 40-42 מעלות כדי לשמור על טמפרטורת גוף normothermic של 37 מעלות צלזיוס לאורך כל הניתוח 14. צג קור הגוףature באמצעות מדחום רקטלי. ניתן לשנות את טמפרטורת משטח ככל שיידרש כדי לשמור על טמפרטורת הגוף ~ 37 מעלות צלזיוס.
  3. כמו רוב thoracotomies מבוצעות עם העכבר שוכב על גבו (שכיבה), להבטיח כי Toggle הוא התהפך להגדרה "פרקדן". יש רפידות א.ק.ג. רבות פונקציה כדי לעבור בין עמדות מועדים שכיבה. אי כדי לבחור את הכיוון הנכון יכול לגרום עיוות של אירועים באק"ג.
  4. להרדים העכבר באמצעות isoflurane 5% שנשאף 1 L / min חמצן. לאחר העכבר הוא הרדים, עכבר העברת לרפד א.ק.ג. מצויד הרדמה האף-קונוס ולהפחית isoflurane עד 2% לבין 1 L / min חמצן. אשר הרדמה תקין על ידי הבטחת עכבר לא מגיב כשכף רגלו של העכבר הוא צבט עם מלקחיים.
  5. למרוח שכבה דקה של משחת סיכת עין על העיניים של העכבר כדי למנוע יובש ניזק קרני ואילו בהרדמה.
  6. נקה את הכפות של העכבר עם מגבון להסיר את כל המצעים הגלוייםשעשוי להיות תקוע על הכפות או עלולים להפריע העברת דחפים חשמליים מן הכפות לרפד ECG. כפות יבש עם לנגב.
  7. למרוח כמות קטנה (מעט קטן יותר אגורה USD) של ג'ל אלקטרוליט מוליך מאוד לכל אחת מארבע אלקטרודות מתכת על כרית אק"ג.
    הערה: הקפד להחיל רק כמות קטנה של ג'ל כמו יותר מדי ג'ל מקשה לרסן את הכפות לרפד באמצעות קלטת. בנוסף, הכפות צפוי לחמוק האיפוק במהלך ניתוח אם הם היו רטובים לפני יישום קלטת.
  8. עם העכבר במצב שכיבה, השתמש קלטת רפואית ברורה לרסן כל כפת האלקטרודה המתאימה לו (איור 1). לחיצה ראשונה כל כפת חתיכת הסרט שלה ולאחר מכן לדבוק את הקלטת לרפד ECG. ודא שכל כפה מאופקת נמצאת בקשר עם הג'ל אלקטרוליט האלקטרודה.

2. רכישת א.ק.ג.

  1. בהתאם לציוד המשמש לרכישת א.ק.ג., configure המכונה כך צורת גל א.ק.ג. ניתן מדמיין בזמן אמת. עבור קלטות א.ק.ג. באמצעות הגדרות ניטור הפיזיולוגיות על מכונת אקוקרדיוגרפיה, תמונה B-במצב חי תהיה צורת הגל א.ק.ג. רץ לאורך החלק התחתון של המסך.
    הערה: ראה מדריכים למשתמש מכונית שונים כדי לקבוע מהי הדרך הטובה ביותר להגדיר ציוד זה.
  2. אפשר ויזואליזציה בזמן אמת של צורת גל א.ק.ג. ידי לחיצה על מקש B-mode על מכונת אקוקרדיוגרפיה או שווה ערך על מכשירי הקלטה א.ק.ג. אחרים.
    1. להתאים את הרזולוציה כדי להסביר את ההבדלים משרעת. אם הפסגה של גל R או השוקת (העמק) של Q-הגל נמצאת מחוץ למסגרת החזותית, להתאים את הרזולוציה עד למלוא גובהה של צורת הגל ניתן לצפות.
      הערה: ניתן לעשות זאת תחת לשונית הגדרות הפיזיולוגיות על מכונת אקו. לחץ על להגדיל או להקטין חצים עד הגל כולו גלוי.
  3. בכל פעם שתמונה היא להיות OBTained, נקה את המשטח של כלי ECG. לגעת בעכבר במהלך ההקלטה א.ק.ג. עם מלקחיים או אצבעות יפריע צורת הגל. ודא כי העכבר הוא עדיין זכה וטהורה על כרית א.ק.ג. לפני ההקלטה כל ECGs.
  4. השתמש בתכונת "שיא" או "חנות" של המכשיר לפני ביצוע כל חתכים כירורגיים על העכבר. תמונה זו תשמש כבסיס להשוואה מאוחר יותר.

3. הליך כירורגי א.ק.ג. הקלטה

  1. להזריק עכבר הרדים עם משכך כאבים (עצירות, 1.5 מיקרוגרם, intraperitoneal) לפני תחילת. הפרטים של איסכמיה / reperfusion הליך כירורגי ניתן למצוא גם במקומות אחרים 5.
  2. הסרת שיער סביב האתר כירורגית כימית או מכנית ולחטא את האזור עם פתרון בבטאדין. השתמש אזמל לעשות במקביל חתך אנכי אל הוושט ואת קנה הנשימה. בעדינות להזיז את הבלוטות הלימפה לכל צד של החתך עד הרקמה הדקה המכסה את קנה הנשימה היאחָשׂוּף. בעזרת מלקחיים, להפריד את הרקמה בעדינות עד טבעות הסחוס הלבנות של קנה הנשימה גלויות.
    הערה: אנו משתמשים בדרך כלל קרם להסרת שיער תאייר. הקרם מוחל באתר כירורגית דקות ~ 1. תאיר הוא אז ביסודיות לשטוף באמצעות מי מלח או מים. זוהי שיטה מועדפת, במעבדה שלנו כי אקו ברזולוציה גבוהה (אשר יכול לזהות זקיקי שיער) מתבצע לפני ואחרי הניתוח. עם זאת, יש לנקוט זהירות כדי למנוע אזורים רגישים כגון איברי מין, ולאחר מכן באופן יסודי שטיפה תאייר את כדי למנוע כוויות בעור פוטנציאליות.
  3. להסיר במהירות את האף של העכבר מן-חרטומו וכנס צינורות אוורור לתוך הפה של העכבר לכיוון הגרון. כאשר הקצה של צינור האוורור גלוי דרך אזור הצוואר החשוף, ליישר את הצינור עם תחילת קנה הנשימה. בעדינות לכשכש בצד הצינור אל הצד תוך הפעלת לחץ כלפי מעלה עד שקופיות הצינור לתוך קנה הנשימה אשר ניתן לאשר באופן חזותי tדרך עינית קנה הנשימה השקופה.
  4. ודא העכבר נשאר בהרדמה במהלך הליך אינטובציה. השהה מ אינטובציה ולהחזיר את העכבר אל-חרטומו אם הוא מתחיל לעורר.
  5. באמצעות לולאה של חוט, קרס השיניים הקדמיות של העכבר דרך הלולאה ואת קלטת את המחרוזת מסתיימת לרפד ECG כדי לייצב את הראש של העכבר על מנת להבטיח את צינורות אוורור לא זז במהלך הניתוח. במהירות לצרף צינורות אוורור כדי הנשמה מכרסמת ולהתאים הגדרות אוורור לפי משקל העכבר. צינורות אוורור סרט במקום.
  6. מכסים את קנה הנשימה החשוף של העכבר עם גזה טבול מלח חמים כדי לשמור רקמות מהתייבשות.
  7. ביצוע חתך אנכי באמצעות אזמל לאורך הצד השמאלי של החזה.
  8. בעזרת מלקחיים, להפריד את שכבת fascia בעדינות משכבת ​​שרירים. בזהירות לחתוך את שכבות שריר הבסיסיות בלי לחתוך כלי דם גלויים.
  9. בעזרת מלקחיים, לתפוס את הצלע השלישית ולמשוךכלפי מעלה בעדינות. לשמור על אחיזה על צלע ביד אחת ולהשתמש מספריים כירורגיות כדי לחתוך את הרקמה צלעי בזהירות בין הצלע השלישית והרביעית. ודא כי הריאות אינן פגומות.
    הערה: ריאות תהיינה לסגת עמוק לתוך חלל החזה כמעט מייד לאחר חלל החזה הוא נקב ידי החתך הניתוחי עקב האובדן של הפרש לחצים. מתן עד הריאות יש חזרו בו לפני שתמשיך.
  10. שימוש במלקחיים כדי לתפוס בעדינות להפריד בין שכבה דקה של קרום הלב העוטף את הלב.
  11. הכנס כתיבה או ידני להשתמש במלקחיים כמו כתיבת צלעות כדי להזיז את הצלעות למצב שבו הלב גלוי בין הצלעות.
    הערה: נהוג להעביר את הכף השמאלית התחתונה של העכבר, כך שהוא חופף את כפה הימנית התחתונה במהלך המיקום של ליגטורה. זה עוזר למקם את הלב, כך תוספת פרוזדורי השמאל, או האפרכסת, גלויה בקלות במהלך ההשמה של המייתר. עליך להיות מודע לכך בתוקף א.ק.ג. waveforms לא יושג בעוד הכפה השמאלית התחתונה כבויה של האלקטרודה. מסיבה זו רצוי להחזיר את כפת אלקטרודה שלה לאחר ליגטורה התפירה עוברת דרך רקמת שריר הלב אבל לפני פקעת מתהדקת.
  12. אתר את LAD חזותית, מתחת אפרכסת שמאל. במהירות להכניס מחט תפירה קוני משי 7-0 לתוך שריר הלב עמוק מספיק כדי לעבור תחת LAD אבל לא כל כך עמוק כמו לחדור חלל LV. משוך את ליגטורה תפירת הדרך עד שלא יהיה כ -4 סנטימטרים של משי התפירה עזב בצד (לא מחט) חינם של ליגטורה התפירה.
  13. בגין לקשור קשר תפר פשוט. לאחר הקצה החופשי של משי התפירה כבר משך דרך הלולאות כדי ליצור את הקשר, להשהות.
  14. מחזיק בשני הקצוות בחינם מחט של משי התפירה עם מלקחיים, הכנס קטע סנטימטר ~ 1 של צינורות PE-10 מתחת הקשר להרכיב על גבי משטח epicardial.
  15. אם כפיתי השמאלי של העכבר הוא חצה, להחזיר את הכפה פרו שלהלכל אלקטרודה. הדק קשר כך צינורות PE-10 הוא sutured אל הלב. שחרר את כל המגע הפיזי עם העכבר כדי לאפשר א.ק.ג. שיירשם.
  16. אפשר waveform ECG כדי לעבור עבור ~ 10 שניות. בדוק א.ק.ג. waveform חזותית ולהקליט waveform כמו "זמן של ספיגה". אם T-גל אינו מעלה משרעת בתוך דקות 1, להעריך מחדש את המיקום של ליגטורה.
    1. אם משרעת T-הגל אינה מעלה, או להשליך את החיה מן המחקר או לנסות לתקן את בעית המיקום ליגטורה.
  17. ראייה לבדוק את הצבע של שריר הלב כדי לאשר מחוויר איסכמי של LV.
  18. אם שינויים א.ק.ג. ושינויים בצבע שריר לב עולים איסכמיה, קשר כפול התפר סביב צינור PE-10.
  19. מכסה את חלל החזה הפתוח עם גזת מלח חמה.
  20. שיא א.ק.ג. כל 5-10 דקות למשך תקופת איסכמי.

4. אישור של reperfusion באמצעות א.ק.ג.

  1. סור מפרצון גזה מלוחהלצלצל חלל החזה לדמיין את הלב.
  2. השתמש סכין כדי לחתוך את משי התפירה גבי צינורות PE-10. לאחר ליגטורה נחתכה, להסיר את החלק של צינורות PE-10 ובעדינויות להסיר את ליגטורה התפירה מן שריר הלב.
  3. שחרר את כל המגע הפיזי עם העכבר ולאפשר צורת גל א.ק.ג. ~ 10 שניות כדי לעבור. צורת גל רשומה בשם "זמן של רה-פרפוזיה." המשך להקליט גל א.ק.ג. כל 5-10 דקות עד לנקודת זמן מסוימת ניסוי הרצוי הוא הגיע.
  4. כוונו את הרזולוציה עבור שינויים באמפליטודה לפי הצורך. אם T-גל לא משנה עם הסרת צינורות PE-10 ו ליגטורה, רה-פרפוזיה לא אישר.
    1. אם T-הגל לא משנה עם הסרת צינורות, או להשליך את החיה מן המחקר או לנסות לתקן את בעית המיקום ליגטורה.
  5. ראייה לבדוק שריר הלב בנוסף לאשר reperfusion ידי חזרה באדום.
  6. חלל חזה בקרבת תפירת שטח צלע עם 5-0תפר משי תוך הפעלת לחץ עדין על החזה של העכבר לגרש אוויר עודף כי חתמה במהלך הניתוח. ואז תפר את שכבות שריר ולבסוף, עור. הערה: הפעלת לחץ על בית החזה עלולה שלא להספיק כדי לפנות את חלל החזה של אוויר בכל העכברים. לכן, השיטה מזרק ומחט של פינוי צריך להיות מועסק על מנת להבטיח כי כל האוויר כבר גורשו.
  7. רשום את א.ק.ג. האחרון לפני שפנה הרדמה בשאיפה את והסרה הכפות של העכבר מן האלקטרודות. גדל חמצן 2 ליטר / דקה ולתחזק אוורור עד שהעכבר להכרתו.
  8. אפשר עכבר כדי להתאושש בסביבת מבוקרת טמפרטורה קבועה, כרית חימום למשל או חממה חמה, כדי למנוע השתנות אוטמת. פנק את העכבר עם עצירות 24 שעות לאחר הניתוח ולאחר מכן לפי צורך כפי שצוין על ידי סולם עווית עכבר.
    הערה: נוהל reperfusion נדון גם בפירוט על ידי שו ואח '5.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

א.ק.ג. בעכברים נורמליים מוצג באיור 2 עם סמנים האלפביתי לאירועים חשמל P, Q, R, S, J וט P הוא שלילת קוטביות פרוזדורים הראשונית. QRS הוא גל שלילת קוטביות על החדרים. J הוא repolarization מוקדם T מייצג repolarization הטרוגנית הידוע גם בשם התאוששות 11. יצוין כי מעבדות רבות לא להשתמש המינוח J-גל ובמקום להתייחס קטע SJT כמו מקטע ST 10,15-17. התוצאות כאן וניתוחים יציגים ונוגעים מבוסס על הנחה של תצפיות במעבדה של 40 עכברים. רוב העכברים הציגו התקדמות גל דומה במהלך הניתוח. עכברים ולא הציגו גל דומה מסומנים לניתוח נוסף ונחשבו בהמות שאינן אוטמות. תוצאות waveform דומות גם דווחו על ידי יונג et al. 15.

לבבות Murine suffering מ איסכמיה האזורי בשל חסימת LAD בדרך כלל להראות משרעת המוגבר של גל R וכן לשיא hyperacute של קטע JT ואחריו העלאה הסופית של קטע ST איור 3 מציג את הסימן הראשון של איסכמיה בשריר לב.; לשיא hyperacute של גל T. כפי שניתן לראות בנתון זה, גל T גדל ב משרעת מתנאה בסיס. עם זאת, זה עדיין לא גובה מקטע ST משום S-הגל עדיין מקרין עמוק שלילי כפי שהיא עושה על צורת גל הבסיס.

תצורת Baseline א.ק.ג. מציגה S-גל מקרין באופן שלילי (איור 2). ככל שהזמן מתקדם, שינויים א.ק.ג. מצוינים. The-קטע ST מוגדר בקטע שבין סוף S-גל ואת תחילת גל T. ST מגזר זה הנו ברור בבני אדם. בשל קצב לב גבוה, מגזר זה התמזג בעכברים וכן ספטמבר נוסף, מוקדם repolarization "J-גל"arates את גלי T S- ו. לכן, הגובה של S-גל לקו איזואלקטרית ומעלה צריך להיחשב כגרסה בעכברים של תעלות במקטע ST. באיור 4 את התקדמות איסכמיה אוטם מוקדם ניתן לראות על ידי העלאת במקטע ST. כאן S-גל מציג ב משרעת גבוהות, מעל לקו איזואלקטרית. J-גל ומתעלה גם, במיוחד כשמשווים את צורת הגל הבסיס (איור 2). לכן, קטע ST מורם אשר מעיד על פגיעה / אוטם 10.

איור 5 עוקב אחר ההתקדמות של עכבר אחד מנקודת ההתחלה עד סוף reperfusion. צורת הגל הראשונה מציגה קצב סינוס נורמלי שהיה הבסיס המוקלט. צורת הגל השנייה מציגה את דקות א.ק.ג. 1 לאחר ליגטורה נקשרה העורק הפכה מוסתר. העיגול האדום על שורה זו מציינת לשיא hyperacute T-גל. אם wi לעומתה "Baseline," ברור כי גל T הוא מוגבה. צורת הגל השלישי מציגה את גובה מקטע ST להשלים בנקודת זמן 5 דקות. בתמונה "1 דקות איסכמיה", S-גל עדיין מקרין באופן שלילי, לעבור את הקו איזואלקטרית. עם זאת, ב -5 דקות את חלק S של המתחם לא מסוגל להגיע למרחק שלילי כמו שצריך לפני ההתקדמות לתוך גלי T J- ו. זה מתואר העלאת במקטע ST כי בקטע שבין S- ו- T-גלים ומתעלה מקו איזואלקטרית. סמן אלקטרו נוספת של איסכמיה האזורי מתרחב של 16 QT-מרווח המשתרע מתחילת במתחם QRS ונמשך עד סוף-גל T. בגיל 20 דקות של איסכמיה, את מרווח QT התרחב ואת מקטע ST עדיין גבוה. אחרי 45 דקות של איסכמיה, שרידי QT-interval התרחבו ואת מקטע ST נשאר גבוה.

Reperfusion של שריר הלב כי ישכבר איסכמי למשך 30 דקות או פחות אמורים לגרום א.ק.ג. חוזר חזרה לתנאי בסיס עכבר. Preda ו Burlacu הוקמו מתאם בין שינויים באק"ג בעכברים, זמן איסכמי, ואת אוטם חומרה 17. היה נראה כי בתקופות איסכמי של 30 דקות לא לגרום לשינויים א.ק.ג. קבע ואילו תקופות איסכמי של 1 hr לא לגרום לשינויים א.ק.ג. קבע. בנוסף, reperfusion של העורק המוסתר לאחר 24 שעות של איסכמיה לא היה הצלת אפקט 17. בדרך כלל, Q-גלים ניתן לזהות תחזית הירידה הקלה ממש לפני שלילת הקוטביות QRS-מורכבת. מהותיים, או פתולוגיים Q-גלים יכולים לפתח זמן קצר לאחר תחילת איסכמיה לבבית כמות שרירים ניכר מתחיל לשקוע ב 10. גלי Q משמעותיים מוגדרים לפחות 1/3 גובה-גל R המתאים או על ידי הזמן המוארך שלהם, וכתוצאה מכך ש-גל רחב. תוצאות Q-גל משמעותי מאזור של electrica להסיט שריר הלב מתזרמי l מן האלקטרודה 7. אחרי 5 דקות של reperfusion, עדות עמוקה, גלי Q משמעותיים מתחילים להופיע (איור 5). בנוסף, T-גל חוזר אל קו איזואלקטרית (איור 5). לאחר 30 דקות של reperfusion, את גלי Q שלילי להישאר מראים נזק בלתי הפיך סביר. בנקודה זו בזמן, Q-גלים רחבים ועמוקים, ומציינים כי רקמת לב גוסס הוא להסיט זרמים חשמליים ברחבי האזור הפגוע (איור 5).

לאחר איסכמיה רציפה, ההתקדמות בכל הנוגע לפגיעה ואוטם מוביל הקרנת T-גל שלילי משופרת (איור 5, 30 reperfusion דקות, העיגול אדום שני). הקרנת T-גל משופר עקב אוטם נכון בדרך כלל תהיה קבועה 7. העיגול האדום השני בצורת גל reperfusion 30 דקות מראה מה שנראה גל T הפוך (איור 5). אם 5 אnd 30 דקות גל T מושווה ברור כי T-הגל הוא מקרין באופן שלילי יותר. עובדה זו, יחד עם Q-גלים משמעותי מספק ראיות עבור נזק לרקמות בלתי הפיך הלב הזה. יצוין כי הרדמת isoflurane בשאיפה מפחיתה קצב לב, ולכן מגדיל-מרווחי QT. עם זאת, משרעת של T-גלי התאוששות נותר ללא שינוי 18.

השינויים הנ"ל ניתן לנתח באופן כמותי מבחינת מתח. איור 6 מראה כי ייצוא נתונים פיזיולוגיים כקובץ csv תספק כמות גדולה מאוד של נתונים. בנוסף מציעים ערכי א.ק.ג. (אמפליטודות) בשעה שברה-של-האלפית שני השיעורים ייתכנו אפשרויות לכלול נתונים אחרים מעמוד נשימות, בדיקות טמפרטורה, מכשירי מדידת לחץ דם וכו 'אם רוצה כל כך. נתונים כמותיים אלה ניתן בגרף כפי שמוצג באיור 7. Graphing סדרה של צורות גל מ P-גל-גל P מסייע לחזות א.ק.ג.מגמת תצורה. פרק הזמן של 500 ms הוא מסגרת זמן טובה לדמיין מאז בכל עת פחות לא יכולה לגרום מספיק גל וכל זמן נוסף יהפוך את הגרף מופיע אירועים מבולגנים אלקטרו עלולים לרדת לטמיון או קשה לזהות מתי נצפו על צג מחשב רגיל .

איור 1
איור 1:. נכון המיקום של העכבר על משטח א.ק.ג. עכבר זה ממוצבת במצב שכיבה. כל אחד הכפות של העכבר מוקלט על אלקטרודות המקביל על משטח משטח א.ק.ג.. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 2
איור 2: רגילה Murine Baselineא.ק.ג. צורת גל. אק"ג הבסיס בעכברים נורמליים מתויג עם האותיות P, Q, R, S, J ו- T אשר משמשים כדי לתאר אירועים חשמליים בלב. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 3
איור 3:. T-גל העלאה ידוע גם כ hyperacute T-גל או לשיא. ה- T-גל מוגבר גבוה יותר מרמת הבסיס T-גל (איור 2). נא ללחוץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 4
איור 4:. במקטע ST Elevation displ נתון זהays במקטע ST העלאה אשר ניתן לצפות כמו קטע ST היא גבוהה יותר מאשר נקודת isoelectric. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 5
איור 5:. שינויים א.ק.ג. אופייניים במהלך ניתוח איסכמיה / reperfusion נתון זה כדלקמן עכבר אחד על משך ניתוח איסכמיה / reperfusion שריר לב. צורת הגל הראשונה מציגה קצב סינוס נורמלי שהיה הבסיס האחרון (Baseline). צורת הגל השנייה (1 איסכמיה דקות) מציגה את דקות waveform 1 לאחר ליגטורה נקשרה העורק הפכה מוסתר. העיגול האדום על קו זה מראה hyperacute לשיא T-גל. העיגול האדום על צורת גל השלישית (5 דקות איסכמיה) מציג את ההעלאה במקטע ST המלאה. העיגול האדום על fou RTH צורת גל (20 דקות איסכמיה) מציגה QT-interval התרחב S-הגל עדיין גבוה. העיגול האדום על צורת הגל החמישית (45 דקות איסכמיה) מציג התרחב QT-קטע מוגבה-קטע ST. צורת הגל השישי (1 reperfusion דקות) מציג שינויים משמעותיים לעומת 45 דקות עיגול אדום ischemia.The על צורת הגל השביעי (5 reperfusion דקות) מציג עמוק, טופס-גל Q משמעותי. המעגל האדום הראשון בצורת הגל השמיני (30 reperfusion דקות) מציג גלי Q משמעותיים, בעוד העיגול האדום השני מציג שיפור T-גל אפשרי. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 6
איור 6:. פיזיולוגיים נתונים נתון זה מראה את הנתונים הפיזיולוגיים כפי שהוא מיוצא כקובץ csv לגיליון אלקטרוני.נ"צ = "https://www.jove.com/files/ftp_upload/54814/54814fig6large.jpg" target = "_ blank"> לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 7
איור 7:. בגרף ערכי mV הגרף המוצג בנתון זה מראה ערכי mV משלושה גלים רצופים ומלאים באמצעות קובץ נתונים הפיזיולוגי (איור 6). הגרף הוא גרף קו פשוט באמצעות נקודות מקובץ הנתונים הפיזיולוגי. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

בעזרת שינויי ECG כשיטה משלימה לצורך וידוא איסכמיה לבבית ו reperfusion מבטיח מיקום מדויק של ליגטורה הגורם לחסימה. דיוק של מיקום ליגטורה הוא קריטי לצמצום השתנות נתונים בקרב בעלי חיים. הנער בתוך לב עכבר הוא עורק קשה לדמיין. לכן, השלמת חיוורון ויזואלי עם שינויים באק"ג יעזור להבטיח את המיקום הנכון של נזק לרקמות ליגטורה וכתוצאה מכך.

מאז כרית א.ק.ג. מציעה נוף בלתי פולשני של הלב, ECGs המרובה ניתן להשיג במהלך המחקר. זה יכול לעזור לספק הבנה טובה יותר של שינויי לב המתרחשים במהלך ואחרי הניתוח. זה קריטי כדי להשיג א.ק.ג. בסיס להשתמש להשוואה לאחר ההליך הכירורגי. מאוחר יותר רקמות בשלב המוות ואפילו חדרית מפרצת ניתן לצפות על ידי סטיות של אותות אלקטרו ושינויי תצורה ECG. זה עשוי לספק תובנהלתוך התקדמות אי ספיקת לב.

היתרונות של מדידת א.ק.ג. באמצעות מכונת אקו כוללים מדידת סימולטני של פרמטרים מבניים ותפקודיים של הלב לפני או אחרי ניתוח איסכמיה / reperfusion. המגבלות של המערכת ECG השיא כוללות את העלות הגבוהה לרכישת מכונת אקו. עם זאת, אם הניסויים דורשים ניטור אק"ג קבוע לאורך ימים מרובים, יש מגוון של מנגנונים זמינים עבור הקלטת א.ק.ג. כולל יחידות מרחוק telemetric א.ק.ג. עם מקביל תוכנה שניתן programed להקליט ולנתח גל במרווחי זמן שונה. עם זאת, רב של יחידות טלמטריה א.ק.ג. דורש הליך השתלה או בתי גידול מיוחדים. בנוסף, אפשרויות אלקטרודה alterative רבות קיימות כולל קליפים אלקטרודה ומחטים. איסכמיה / reperfusion הניתוח באמצעות פתיחת בית החזה הוא הליך פולשני מאוד. יתרונות לשימוש כרית א.ק.ג. עם מק אקוקרדיוגרפיהHine כוללים הליך פולשני ללא חוטים המחוברים החיה במהלך הניתוח ולא מתקיים הליך כירורגי נוסף. עם זאת, החוקרים צריכים לקבוע את הציוד הטוב ביותר עבור המעבדה שלהם לצרכים ניסיוניים.

כאמור, הרדמה isoflurane מקטין את קצב הלב. בנוסף, isoflurane יכול להיות הלב באמצעות הפעלה של ערוצי ATP K ולכן להקטין את גודל האוטם, כפי שכבר מצאו בכלבים 19. הרדמה כללית בעכברים יכול להיגרם באמצעות סוכנים בזריקות. הרדמת משאיפת אינה מספקת ביטחון רב יותר, במיוחד עבור הליכים ממושכים. עם זאת, הרדמת משאיפת דורשת ציוד מורכב ויקר כמו במכשירי אידוי דיוק מדידת זרימה, מערכות נשימה ספציפיות, ומערכות הדחה יעילות למניעת זיהום. החסרונות של הרדמה בזריקות כוללים קושי בבחירת מינון ראשוני, אין סיכוי במדויק ויסות עומק Ane הממושךsthesia, התאוששות ממושכת, וכו 'הבחירה של הרדמה צריכה להיות מותאמת על פי אורכו של ההליך ואת מטרת המחקר 20.

באמצעות ECG כשיטה משלימה לצורך וידוא פציעה איסכמיה / reperfusion בעכברים יעזור לשפר עקביות שחזור של אוטם אלא גם פותח את האפשרות עבור יישומים עתידיים של הטכניקה באמצעות הקמת מגמות כמותיים. חוקרים עשויים להבחין בתצורות א.ק.ג. דומות בתוך קבוצות ניסוי מסוימות. לדוגמה, קבוצה של בעלי חיים מהונדסים גנטית עשוי להפגין באופן חריג QT-במרווחים לחוץ לאחר הניתוח בהשוואה סוג בר. נתונים אינפורמטיבי זה היה לפספס אם החוקרים להשתמש שינויי צבע שריר לב כאישור בלעדי של איסכמיה ופציעת reperfusion. עבור מחקרים השוואתיים בין סוג בר עכברים מהונדסים, שיקולי ההנחיות המוסכמות למבת יכולים להיות גם בעל ערך, במיוחד בכל קשור לגיל, מין, סנוור אקראי של חיות 21.

לסיכום, אישור משלים של פגיעת reperfusion שריר לב איסכמיה / מציע יתרונות מרובים. באמצעות ECG כטכניקה משלימה יכולה לעזור להקים עקביות הניתוח. זה עשוי לעזור להפחית את מספר בעלי החיים המשמשים, תוך מתן נתונים באיכות גבוהה יותר. זה גם מאפשר לחוקרים לעקוב אחר פציעת לב, מות רקמות ו / או שיפוץ הלא פולשני לאורך זמן. לבסוף, באמצעות ECG כאישור של שריר הלב איסכמיה / reperfusion מציעה את האפשרות של הקמת מגמות אלקטרו כמותית.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Vevo 1100 Fujifilm
Visual Sonics
Echocardiography Machine
Mouse Handling Plate Fujifilm
Visual Sonics
Heated ECG plate
Signa-Gel  Highly Conductive Multi-
Electrode Gel Parker 15-25 Purpose Electrolyte
Transpore Medical Tape 3M 1527-0
PI-Spray II Pharmaceutical Innovations NDC 36-2013-25 Cleaning agent for ECG plate
C57Bl6 Mice The Jackson Laboratory 000664 Male, 8 - 12 wk
IsoThesia-Isoflurane Henry Schein NDC 1169-0500-1
Excel Microsoft
Systane Nighttime Lubricant Eye Ointment Alcon 65050935
7-0 Perma-Hand Silk Sutures Ethicon 640.O32
5-0 Perma-Hand Silk Sutures Ethicon K809.O32
Surgical Scissors ROBOZ RS-5881
Forceps Fine Science Tools 11052-10
Gauze Bio Nuclear Diagnostics Inc DIS-022B
Needle Holder Fine Science Tools 12565-14
Buprenex CIII  Patterson Veterinary 0-891-9756 Buprenorphine Hydrochloride Analgesic 
Betadine Purdue Products 67618-150-08
Nair Church and Dwight Co. NRSL-22339-05

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kochanek, K. D., Murphy, S. L., Xu, J. Deaths: Final Data for 2011. Natl Vital Stat Rep. 63 (3), 1-120 (2015).
  2. World Health Organization. The 10 leading causes of death in the world. , Available from: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs310/en/ (2012).
  3. Klabunde, R. E. Cardiovascular Physiology Concepts 2edn. , Wolters Kluwer Health Lippincott Williams & Wilkins. Philadelphia. 243 (2012).
  4. Bhardwaj, R., Kandoria, A., Sharma, R. Myocardial infarction in young adults-risk factors and pattern of coronary artery involvement. Niger Med J. 55 (1), 44-47 (2014).
  5. Xu, Z., Alloush, J., Beck, E., Weisleder, N. A murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury through ligation of the left anterior descending artery. J Vis Exp. (86), (2014).
  6. Fernández, B., et al. The coronary arteries of the C57BL/6 mouse strains: implications for comparison with mutant models. J Anat. 212 (1), 12-18 (2008).
  7. Thaler, M. S. The Only EKG Book You'll Ever Need. , Lippincott Williams & Wilkins. Philadelphia. 4 edn (2003).
  8. Poirier, P. Exercise, heart rate variability, and longevity: the cocoon mystery? Circulation. 129 (21), 2085-2087 (2014).
  9. Boudoulas, K. D., Borer, J. S., Boudoulas, H. Heart Rate, Life Expectancy and the Cardiovascular System: Therapeutic Considerations. Cardiology. 132 (4), 199-212 (2015).
  10. Wehrens, X. H., Kirchhoff, S., Doevendans, P. A. Mouse electrocardiography: an interval of thirty years. Cardiovasc Res. 45 (1), 231-237 (2000).
  11. Boukens, B. J., Rivaud, M. R., Rentschler, S., Coronel, R. Misinterpretation of the mouse ECG: 'musing the waves of Mus musculus. J Physiol. 592 (21), 4613-4626 (2014).
  12. O'Gara, P. T., et al. ACCF/AHA guideline for the management of ST-elevation myocardial infarction: executive summary: a report of the American College of Cardiology Foundation/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines: developed in collaboration with the American College of Emergency Physicians and Society for Cardiovascular Angiography and Interventions. Catheter Cardiovasc Interv. 82 (1), E1-E27 (2013).
  13. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. , National Academies Press. Washington DC. 8 edn (2011).
  14. Gao, S., Ho, D., Vatner, D. E., Vatner, S. F. Echocardiography in Mice. Curr Protoc Mouse Biol. 1, 71-83 (2011).
  15. Jong, W. M., et al. Reduced acute myocardial ischemia-reperfusion injury in IL-6-deficient mice employing a closed-chest model. Inflamm Res. 65 (6), 489-499 (2016).
  16. Nadtochiy, S. M., et al. In vivo cardioprotection by S-nitroso-2-mercaptopropionyl glycine. J Mol Cell Cardiol. 46 (6), 960-968 (2009).
  17. Preda, M. B., Burlacu, A. Electrocardiography as a tool for validating myocardial ischemia-reperfusion procedures in mice. Comp Med. 60 (6), 443-447 (2010).
  18. Speerschneider, T., Thomsen, M. B. Physiology and analysis of the electrocardiographic T wave in mice. Acta Physiol (Oxf. 209 (4), 262-271 (2013).
  19. Kersten, J. R., Schmeling, T. J., Pagel, P. S., Gross, G. J., Warltier, D. C. Isoflurane mimics ischemic preconditioning via activation of K(ATP) channels: reduction of myocardial infarct size with an acute memory phase. Anesthesiology. 87 (2), 361-370 (1997).
  20. Gargiulo, S., et al. Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: anesthetic considerations in preclinical research. ILAR J. 53 (1), E55-E69 (2012).
  21. Curtis, M. J., et al. The Lambeth Conventions (II): guidelines for the study of animal and human ventricular and supraventricular arrhythmias. Pharmacol Ther. 139 (2), 213-248 (2013).

Tags

רפואה גיליון 117 הלב רל איסכמיה / reperfusion איסכמיה / פגיעה reperfusion אוטם שריר הלב
אישור של שריר לב איסכמיה ופציעת reperfusion בעכברים באמצעות אלקטרוקרדיוגרפיה Pad Surface
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Scofield, S. L. C., Singh, K.More

Scofield, S. L. C., Singh, K. Confirmation of Myocardial Ischemia and Reperfusion Injury in Mice Using Surface Pad Electrocardiography. J. Vis. Exp. (117), e54814, doi:10.3791/54814 (2016).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter