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Medicine

Transiente Artéria Cerebral Média Oclusão Modelo de AVC neonatal em ratos P10

doi: 10.3791/54830 Published: April 21, 2017

Introduction

Acidente vascular cerebral durante o período neonatal é uma importante causa de morte e incapacidade, ocorrendo em até 1 em 2.300 nascidos vivos 1. Isto leva ao desenvolvimento do sistema nervoso central alterada e o aumento da morbidade a longo prazo, incluindo o aumento da incidência da epilepsia, da paralisia cerebral, retardo mental cerebral, e outros tipos de motor ou disfunção cognitiva. Os efeitos ao longo da vida de acidente vascular cerebral precoce fazer modelos animais translacionais essencial para examinar os mecanismos de lesão e reparação nesta população, incluindo estratégias para proteger o cérebro ferido ou para melhorar a reparação.

Diferentes modelos de isquemia têm sido utilizados para estudar a lesão cerebral em animais adultos, e enquanto o arroz-Vannucci (modificação Levine) 2 procedimento é comummente utilizado para estudar lesão hipóxico-isquémica no cérebro em desenvolvimento, focal isquemia-reperfusão é um mecanismo distinto da lesão causando lesão focal, com um núcleo de feridos e Penumbra e tecido remoto ileso. Os Koizumi 3 e 4 Longa modelos foram desenvolvidos em ratos adultos para atingir a oclusão da artéria cerebral média transiente através da artéria carótida comum (ACC) e a artéria carótida externa (ECA), respectivamente. Em ambos os modelos, a ligação permanente e cauterização dos ramos da artéria são importantes para minimizar o sangramento e para agilizar o procedimento cirúrgico, o que também provoca efeitos adversos sobre a capacidade do animal para se alimentar e ganho de peso após a lesão. Por outro lado, existem mecanismos de lesão distintos no cérebro imaturo e padrões específicos de lesão vistos como um resultado.

Mais recentemente, acidente vascular cerebral photothrombotic (método de Rose Bengal-) 5 e permanente ligadura MCA 6 têm sido usados para estudar acidente vascular cerebral neonatal e adulto. Ambos acidente vascular cerebral photothrombotic e MCA ligadura criar alterações permanentes no fluxo sanguíneo cerebral que resultam numa falta de reperfusíon. A reperfusão é um componente crítico no desenvolvimento e progressão da lesão focal, com o aumento da excitotoxicidade, formação de radicais livres, e produção de óxido nítrico, levando à morte celular retardada que envolve a cascata de sinalização que são distintas a partir da fase isquémica 7. Hipóxia-isquemia envolve permanente ligação da carótida unilateral seguido por hipoxia global, que também difere da causa de lesão hipóxico-isquêmica em seres humanos e não causa um padrão de lesão focal consistente, fazer estudo do núcleo ferido e penumbra mais desafiador.

Foi anteriormente descrito um modelo de acidente vascular cerebral isquemia-reperfusão não-hemorrágica no rato imaturo usando a oclusão da artéria cerebral média transiente (MCAO) 8, 9, 10. Este é um método menos invasivo que acede e provoca a oclusão da ACM através da artéria carótida interna sem ligati permanenteon ou cauterização. Isto fornece um modelo de lesão semelhante à causa mais comum de acidente vascular cerebral no período perinatal 11, 12. Este modelo de isquemia-reperfusão dos resultados de lesão em danos para o corpo estriado ipsilateral e córtex parietal e temporal. Este modelo de tMCAO também permite o controle sobre a gravidade da lesão através da variação da duração da oclusão. O exame das vias de sinalização e alterações histológicas no núcleo lesionado e penumbra e no tecido não lesionado contralateral e ipsilateral pode adicionalmente elucidar os mecanismos de lesão e reparação no cérebro imaturo. Este estudo irá demonstrar este modelo lesão importante para o desenvolvimento cerebral.

Protocol

Toda a pesquisa animal foi aprovado pela Universidade da Califórnia, o Comitê de San Francisco em Pesquisa Animal e foi realizada de acordo com o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório (Departamento de Saúde e Serviços Humanos, Publicação No. 85-23, 1985 EUA ). Os animais foram acompanhados de perto por veterinários da Comissão de UCSF Institucional animal Cuidado e Uso (IACUC), credenciado pela AAALAC. Obteve-se uma fêmea Sprague-Dawley com uma maca oito dias de idade (10 filhotes por ninhada). A mãe e seus filhotes receberam comida e água ad libitum e alojados em uma instalação de cuidados de animais com temperatura e luz controlada com o enriquecimento diário, por protocolo IACUC, até que os filhotes foram 10 dias de idade. Todos os instrumentos cirúrgicos utilizados neste procedimento foram autoclavados para garantir a esterilidade. Sterility de dicas de instrumento é mantida durante toda a cirurgia.

1. Oriente oclusão da artéria cerebral

  1. Pesar o filhote e assegue que é o peso adequado (19-21 g). Anestesiar a cinzento em 3% de isoflurano em 100% de O2 e assegurar que não há resposta a uma pitada pé. Manter a temperatura da superfície do corpo entre 35,5 ° C e 37 ° C com o uso de uma almofada de aquecimento sob o estrado cirúrgico.
  2. Garantir o animal em decúbito dorsal com fita adesiva em todas as regiões do ombro. Usando cotonetes estéreis, pincelar a área cervical anterior com uma solução de povidona-iodo seguido por uma haste de 70% de etanol em água destilada duas vezes, alternando entre cada solução durante quatro cotonetes totais.
  3. Localmente infiltrar bupivacaína a 0,25% para o local da incisão planeada. Usando um estereoscópio, fazer uma linha média incisão cervical de 5 a 7 mm anterior para expor a artéria carótida comum (ACC). Coloque 2-4 retratores para manter a cavidade aberta ea artéria exposta.
  4. Localizar a artéria carótida interna (ICA), artéria occipital (OA), e a artéria carótida externa (ECA). Noivo artérias para obter uma visão clara. Seja de carroeful para não perturbar o nervo vago.
    NOTA: Para filhotes sham-operado, o inicision é deixada em aberto e as artérias estão expostos, após o qual a incisão é suturada fechada. O tempo total de anestesia é equivalente ao da cirurgia de oclusão.
  5. Cortar 1,5 cm de seda 6-0 fio trançado de sutura. Unbraid a sutura, puxando cadeias simples. Certifique-se de que as cadeias simples são puros e não desgastado.
    NOTA: Se necessário, alisar as extremidades desgastadas por imersão a cadeia simples em ua estil e preparar o filamento com pontas fórceps.
  6. Enquanto segura o fio de sutura com uma pinça de 45 graus, mova a pinça em um movimento de arco varrendo para ir ao abrigo do AIC para que as pontas fórceps emergir entre o ICA e OA.
    NOTA: Se a dissecção é bem feito, esta etapa será relativamente fácil. Se o ICA e OA se tocam, ter cuidado para não romper as artérias ao usar a pinça para isolar o ICA. Se ocorre sangramento, aplicar pressão à artéria com a pinça atéo sangramento pára. Absorver o sangue com uma zaragatoa estéril.
  7. Agarre o fim do fio de sutura que é realizada pelas pinças e puxá-lo para que o final é de fácil acesso. Libertar a cadeia a partir dos fórceps e voltar a pinça para fora de debaixo da AIC, invertendo o movimento no passo 1.5 (Figura 1A).
  8. Amarrar uma ligadura temporária em torno do ACI na base, mais próxima de onde ele se separa do CCA.
    NOTA: É importante para o nó de modo a que a extremidade do fio que irá ser puxada para remover o nó é o tempo suficiente (superior a 1 mm, menos do que 3 mm) para agarrar facilmente com uma pinça, assegurando ao mesmo tempo que há uma quantidade apropriada de fio de sutura sobre o outro lado do nó para retracção.
  9. Cuidadosamente retrair o ICA lateralmente e usar um grampo para prender o fio para o excesso de pele perto da região da axila do lado oposto ao da incisão. Certifique-se de que esta cadeia de retracção é tenso suficiente para parar o fluxo de sangue antes de prosseguir para o próximo passo, aminimizar o risco de sangramento descontrolado. Observa-se que a artéria é plana e pálido.
    NOTA: Não excesso de retração, pois pode causar uma ruptura parcial ou total do ICA. A retracção pode ser ajustado apenas antes de fazer a arteriotomia puxando sobre o fio, no lado oposto ao grampo.
  10. Usar 45 ° pinça para agarrar um outro fio de sutura soltos e ciclo-lo sob e em torno do ACI, como no passo 1.5. Posicionar este cordão lateralmente à cadeia de retracção (Figura 1B).
    NOTA: Este passo também pode ser feito antes de retração. Se não tiver certeza sobre a qualidade da retração, este nó pode ser muito vagamente amarrado antes da próxima etapa.
  11. Cortar uma arteriotomia a meio caminho entre os 0,2 milímetros e amarradas ligaduras não ligados, erring mais perto da ligadura amarrado.
    NOTA: O sangue restante na artéria amarrado-off pode esvaziar por meio da arteriotomia, mas não deve ser superior a 5 mL. Se a hemorragia persistir, puxar cuidadosamente o fio de retracção para aumentar a retracção, com o cuidado de umvazio danificar a artéria a partir de uma tensão excessiva.
  12. Usando uma régua métrica, medir a sutura de oclus e cortar o fio de sutura com uma redução adicional de 2-3 mm para a remoção do oclusor durante a reperfusão. Segure o oclusor com uma pinça de 45 graus e utilize uma pinça reta para criar uma curva no comprimento adequado para chegar ao MCA, marcando um ponto de parada para o avanço.
    NOTA: Um comprimento de oclus 10 mm a partir da extremidade da ponta de silicone para a curvatura é usado para P10 Sprague Dawley ou ratos Long Evans crias nesta gama de peso.
  13. Usando fórceps 45 °, alimentar a sutura oclusão de nylon revestido a silicone para o arteriotomia e avançar o fio de sutura para a curvatura que marca a distância pré-determinada para a MCA (Figura 1C). Certifique-se de que o avanço é suave; parar imediatamente o avanço se sentir resistência. Durante o avanço, o objectivo da sutura numa direcção que é paralela ao CC / CEA, para a cabeça.
    NOTA: Se a sutura é dorsalmente avançado, em direçãoespinha do animal, ele pode ser executado na artéria pterigopalatina (PTA). Se houver resistência depois de 3-5 mm de avanço, a sutura tenha atingido a junção PTA. Cópias do oclusor para fora da artéria até que a cabeça de silicone é perto da arteriotomia antes de ajustar a direcção do avanço. Não é necessário para remover completamente o oclusor da arteriotomia.
  14. Fixar o oclusor atando uma ligadura temporária, utilizando o filamento a partir do passo 1.10 (Figura 1D).
  15. Remova o clipe afastador. Aparar os fios de ambas as ligaduras temporárias de modo que a cadeia do nó que é puxada para remover o nó é fácil de agarrar com fórceps rectas e é mais longo do que o cordão que é puxada para apertar o nó.
    NOTA: Os fios devem ser curto o suficiente para que eles não se enredar na cavidade após o encerramento.
  16. Retire os retratores e fechar a cavidade utilizando seda 6-0 trançado para criar três a quatro suturas interrompidas.
  17. Remover o filhote deanestesia e colocá-lo em uma almofada de aquecimento em ar ambiente. Monitorar o filhote até que ele recuperou a consciência suficiente para manter decúbito esternal e garantir que ele está totalmente recuperado antes de voltar para a represa. Certifique-se de que o cachorro mantém uma temperatura da superfície do corpo entre 35,5 ° C e 37 ° C.
  18. Durante a oclusão, imagens de ressonância magnética ponderadas por difusão (DW-MRI) sob anestesia com isoflurano pode ser utilizado para verificar a iniciação adequada de lesão. A Figura 2 demonstra a lesão isquémica em curso detectada por DW-MRI durante tMCAO 9.
    NOTA: A difusão ponderada rotação de imagem planar eco é realizada 10-15 minutos antes da reperfusão. Todo o cérebro é representada por imagem com secções coronais de 2 mm de espessura em série usando as seguintes configurações de sequências de pulso: TR / TE = 5000/60 ms, 4 médias, campo de visão = 35 mm, matriz de dados = 128x128, duração gradiente de difusão = 20 ms, a separação = 29,7 ms, de amplitude = 70mT / m, e b-factor = 1,045 s / mm 2.Os animais que exibem uma falta de envolvimento cortical ou lesão isquémica atípica, tal como na base do cérebro, estão excluídos.

2. A reperfusão

NOTA: A oclusão é realizada durante 3 horas para fazer com que uma quantidade moderada a grave de lesões envolvendo o corpo estriado e ctex.

  1. Em cerca de 2 h e 50 min após a oclusão da MCA, anestesiar a cinzento em 3% de isoflurano em 100% de O2. Manter uma temperatura de superfície corporal entre 35,5 ° C e 37 ° C com o uso de uma almofada de aquecimento sob o estrado cirúrgico.
  2. Retirar as suturas interrompidas a partir do passo 1.16 e localizar a junção, que é marcada por as duas ligaduras e a extremidade de cauda da sutura de oclus.
    NOTA: animais sham-operados são induzidas e permanecem sob anestesia por um período de tempo equivalente ao dos animais obstruídos. A incisão é novamente aberta e suturada fechada. Para os animais sham-operado, vá para o passo 2.11.
  3. cuidadosamente desataro nó mais lateral previamente amarrados no passo 1.14, puxando o fio mais longo.
    NOTA: Se houver resistência em desatar o nó, pare para garantir que o fio correto do nó está sendo puxado. Se a resistência continua, aumentar a ampliação para uma melhor visualização. Seja cauteloso quando desatar, como é possível danificar a artéria durante esta etapa.
  4. Remover o fio de sutura a partir da cavidade.
  5. No exactamente 3 h após a oclusão MCA, lentamente para trás a sutura de oclus para fora da artéria. Não haverá resistência.
    NOTA: Na maioria dos casos, não haverá sangramento. Se uma pequena quantidade de hemorragia ocorre, aplicar pressão com a artéria no local da arteriotomia.
  6. Utilizar uma pinça para aplicar pressão à arteriotomia, como o passo seguinte restaura o fluxo de sangue para ICA reperfusão.
  7. Cuidadosamente desatar o nó medial utilizando o mesmo método que no passo 2.3.
  8. Remover o fio de sutura a partir do corpo e aplicar um agente hemostático para o arteriotomia para parar a hemorragia. Certifique-se de que o sangramento parou.
    NOTA: O Retorno de forma original da artéria e cor vermelha confirma que o fluxo sanguíneo ICA foi restaurado.
  9. Retire os retratores e fechar a cavidade com três a quatro suturas interrompidas de seda 6-0 trançado.
  10. Remover o filhote da anestesia e colocá-lo em uma almofada de aquecimento em ar ambiente. Monitorá-lo até que tenha recuperado a consciência suficiente para manter decúbito esternal e garantir a recuperação total antes de voltar para a represa. Certifique-se de que o cachorro mantém uma temperatura da superfície do corpo entre 35,5 ° C e 37 ° C.
  11. Inspeccionar os filhotes por dia durante 5 dias. Recprd seus pesos e inspecionar os locais de incisão de perto para a cura apropriada. Retirar as suturas após 7-14 dias. Lesão pós-tMCAO pode ser trabalhada com MRI, se desejado 9.
    NOTA: Os animais podem perder até 1 g de peso no primeiro dia, mas normalmente recuperar o peso sem intervenção e estar dentro de um semelhante pesart gama de controlos por dia 4-5. Raramente, um cachorro pode perder o excesso de peso ou têm dificuldades de alimentação, o que requer sonda oral alimenta durante 2-3 dias.
  12. Em P21, as lesões podem ser fiavelmente avaliada com testes comportamentais sensório-motores, tais como a criação de rotarod ou cilindro. Testes cognitivos pode ser realizado tão cedo quanto 4-6 semanas de idade usando avaliações tal como novo reconhecimento de objectos ou do labirinto de água de Morris 13.
  13. Eutanásia os ratos por injecção intraperitoneal de Euthasol (50 mg / kg) para a colheita cérebro 11, 12.
  14. A análise histológica para avaliar o volume da lesão ou resposta a intervenções podem ser realizadas com violeta de cresilo ou coloração de H & E (Figura 3) 10.

Representative Results

A gravidade da lesão causada por tMCAO é altamente dependente tanto o tempo de oclusão e da experiência do cirurgião. A 90-minutos de oclusão, muitas vezes produz um padrão de lesão ligeira a moderada, enquanto 3 h produz uma lesão moderada a grave. A gravidade da lesão pode ser avaliada através de uma variedade de métodos, incluindo ressonância magnética, histologia, ou análises de comportamento de curto ou de longo prazo. Figura 2 demonstra um exemplo de DW-RM realizada 75 min para uma oclusão de 90 minutos, confirmando a lesão isquémica envolvendo o hemisfério ipsilateral. Difusão de imagem ponderada demonstra um aumento da difusão no estriado ipsilateral e a maior parte do córtex ipsilateral, sem alterações contralateral, durante a fase aguda isquémica. Isso se correlaciona com um nível moderado de danos a longo prazo que envolve tanto o córtex ea substância cinzenta profunda.

Oclusão dos resultados da ACM emmorte celular que começa no striatum de lesão menos grave e desenvolve agravamento lesões corticais e do hipocampo para tempos de oclusão mais longos e lesão mais grave. Durante a optimização da técnica cirúrgica, tal como a determinação do comprimento de inserção da sutura, RM é altamente recomendada, uma vez que permite a confirmação da colocação do fio de sutura adequado e visualização de edema e progressão da lesão durante a oclusão 14, 15, 16. Se IRM não está disponível, H & E ou coloração com violeta de cresilo são métodos histológicos simples e fiáveis ​​para determinar a morfologia lesão e pode ser usado em ambos os pontos de tempo precoces e tardios após a tMCAO. Figura 3 demonstra um padrão de lesão moderada a grave no exame histopatológico após uma oclusão 3 h, demonstrando a formação de cistos e o volume do corpo estriado ipsilateral e córtex.

10.

Mesmo com lesão leve, alterações do aparelho locomotor, tal como circulando e hemiparesia, são observadas durante o período de oclusão. Com lesão mais grave, estas mudanças irão persistir após a reperfusão. teste comportamental adicional pode ser usado para avaliar a gravidade da lesão, incluindo rotarod ou cilindro testes de criao para função sensório-motora e o labirinto de água de Morris parafunção cognitiva 13.

figura 1
Figura 1: Imagens cirúrgicas ao vivo do Procedimento tMCAO. (A) A primeira cadeia de sutura está enrolado em torno do ACI, como detalhado no passo 1.6. (B) A primeira ligadura temporária está ligado e o ICA é retraído. O segundo fio de sutura está enrolado em torno do ACI, lateral para o primeiro fio de sutura, tal como descrito na etapa 1.9. (C) O silicone revestido sutura oclusão é alimentado para o local da arteriotomia, como detalhado no passo 1.12. (D) A segunda ligadura temporária está ligado para assegurar a oclusão no lugar, tal como detalhado no passo 1.14. Escala da barra = 1 mm.

Figura 2
Figura 2: RM Durante OCCLusion Demonstra o apropriado lesão unilateral. Anterior para posterior, as fatias de imagem coronais do DW-MRI, realizados durante um 90 minutos de oclusão, demonstram o aumento de difusão envolvendo o hemisfério ipsilateral (setas), o que é consistente com a lesão isquémica em curso na fase aguda. Reproduzido com permissão do curso 11. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3
Figura 3: unilateral lesão envolvendo o estriado e córtex em 4 semanas seguintes tMCAO. Posterior para anterior, cresilo-coradas com violeta secções cerebrais coronais (cada 50 um) colhidos a partir de P38 animais demonstram lesão bastante grave (as setas mostram a formação de cistos ipsilateral e reduzida e corticalo volume do corpo estriado) na sequência de um 3 h tMCAO em P10. O orifício redondo no lado esquerdo representa um identificador hemisfério contralateral. Barra de escala = 5 mm. Reproduzido com permissão do Neurobiology of Disease 12. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Discussion

passos críticos dentro do protocolo

Em primeiro lugar, é importante para manutenção da temperatura a partir do início da anestesia até à recuperação total, como não são conhecidos os efeitos de ambos hipotermia 17 e hipertermia 18 sobre a progressão da lesão cerebral, tanto em animais imaturos e maduros. Em segundo lugar, ao mesmo tempo garantir o animal e retracção da incisão, o posicionamento ideal para monitorizar a respiração e para assegurar que a traqueia é livre de compressão é essencial. Terceiro, evite espremer ou esticar o nervo vago, pois isso pode causar alterações na frequência cardíaca com a estimulação vagal. Em quarto lugar, porque a retracção da ICA é necessário para controlar a hemorragia durante a arteriotomia, deve ser dada atenção ao grau de tensão durante a retracção para evitar danificar a artéria. Se a artéria se rasgue de retracção, ou se existe um mau incisão arteriotomia, o animal deve ser excluída da análise devido ao riscode hemorragia e pobre reperfusão.

Modificações e solução de problemas

Usando MRI como um guia, o comprimento do fio de sutura pode ser optimizada para garantir que a ponta de silicone oclui adequadamente a MCA para criar a isquemia focal. Se MRI não está disponível, os filhotes podem ser sacrificados antes da reperfusão para dissecação para visualizar a colocação da sutura. Ajustar o comprimento de fio de sutura, conforme necessário. O peso das crias altamente correlacionado com os requisitos de comprimento de sutura de oclus. O tempo de oclusão pode ser modificado para ajustar o grau de severidade da lesão.

Além disso, a forma e comprimento da sutura são críticos. Para P10 ratos Sprague-Dawley e Long Evans pesando 19-21 g, 10 mm é o comprimento óptimo da inserção na nossa experiência. Além disso inserção da sutura de oclus pode resultar na perfuração da MCA. Além disso, a consistência da forma do filamento de oclus em cada cirurgia irá resultar num aumento da consistência da lesão pattern 19, 20. Por este motivo, recomendamos utilizando suturas profissionalmente-fabricados para esse fim específico. Também é importante notar que o padrão de lesão podem diferir entre os profissionais, devido às diferenças aparentemente hora em técnica.

Limitações da técnica

Realizar esta técnica em uma pequena, desenvolvendo roedor requer experiência significativa. Se realizada corretamente, o cirurgião é capaz de causar um padrão de lesão muito consistente entre animais de diferentes tamanhos e atingir uma taxa de sobrevivência superior a 95%. Além disso, ferramentas cirúrgicas adequadas são essenciais. Os instrumentos cirúrgicos devem ser bem conservado para garantir que todas as dicas de instrumentos aproximar corretamente.

Significado desta técnica no que diz respeito aos métodos existentes ou alternativos

Enquanto a hipóxia-isquémia, ou o arroz-Vannucci modelo dois

As aplicações futuras Depois de dominar esta técnica

Este modelo é semelhante ao a causa mais comum de acidente vascular cerebral em recém-nascidos humanos, um trombo oclusiva transitória que ocorre durante o período perinatal 11, 21. A etiologia não é totalmente clara e é mais provável multifatorial, mas presume-se, na maioria dos casos tO resultado de êmbolos que passam a partir da placenta 11. Além disso, muitos recém-nascidos com AVC perinatal presume frequentemente presentes com actividade convulsiva ou posterior exame neurológico focal subtil anormalidades 22. Isso faz com que o uso de um modelo de lesão consistente, translacional para identificar mecanismos de progressão de lesões e possíveis estratégias terapêuticas cruciais.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Isoflourane Henry Schein 50033 anesthetic, at 3% 
Trinocular Surgioscope World Precision Instruments PSMT5N
Heating pad Sunbeam 000731-500-000 low to medium setting
IR Thermometer Extech Instruments 72-5270
Retraction kit for small animals  Fine Science Tools 18200-20
CermaCut Scissors Fine Science Tools 14958-09
Dumont #5SF Forceps Fine Science Tools 112522-00 2x
Dumont #5/45 Forceps Fine Science Tools 11251-35 2x
B-2 Micro Clamp Fine Science Tools 00398-02
Forcepts for Clamp Application Fine Science Tools 00072-14
Micro Vannas Scissors Fine Science Tools 15000-03 2mm cutting edge
Occlusion Sutures Doccol 602123PK10 701712PK5Re
Ruler Fine Science Tools
Hemostatic Agent  Avitene DVL1010590
6-0 Perma-Hand Silk Reverse CuttingSuture Ethicon 769G
Euthasol Virbac 710101 0.22 mL/kg
Cotton Tipped Applicators Henry Schein 100-9249
Laboratory Tape VWR 89097-990

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References

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Transiente Artéria Cerebral Média Oclusão Modelo de AVC neonatal em ratos P10
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Cite this Article

Larpthaveesarp, A., Gonzalez, F. F. Transient Middle Cerebral Artery Occlusion Model of Neonatal Stroke in P10 Rats. J. Vis. Exp. (122), e54830, doi:10.3791/54830 (2017).More

Larpthaveesarp, A., Gonzalez, F. F. Transient Middle Cerebral Artery Occlusion Model of Neonatal Stroke in P10 Rats. J. Vis. Exp. (122), e54830, doi:10.3791/54830 (2017).

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