Introduction
Koroner arter hastalıkları ve bunların komplikasyonları dünyada önde gelen ölüm nedenleri arasındadır. Güncel tedavi stratejileri yeniden kurulması kan akımı üzerine ya daralmış damar genişletici veya bir bypass oluşturarak odaklanmak. damar otogrefti kullanarak koroner arter bypass cerrahisi (CABG) ilk kez 1968 yılında tanımlanmıştır ve yılda rafine edilmiştir. Dışında sol ön revaskülarizasyon inen koroner arter gelen, safen ven kanallar en sık 1 kullanılmaktadır. Ancak, greft açıklık safen ven grefti (SVG) Aşil topuğu kalır. Cerrahiden bir yıl sonra, greft açıklık on yıl 2,3 sonra% 61 düşüyor,% 85'dir. SVG açıklık kaybı patofizyolojik mekanizmaları ve nedenlerini açıklanması dolayısıyla önemli bir görevdir.
Bu video ven greft kaybı araştırmak için bir sıçan ven interpozisyonu modelini göstermektedir. Bu yöntemin genel amaçları altında yatan biyopatolojik keşfetmek için vardırve ve hastalığın ilerlemesi sırasında -physiological süreçler ilaç veya tedavi seçeneği testi için uygun bir model geliştirmektir. arteriyel sisteme yüzeysel epigastrik ven nakli, bu model yakından koroner bypass klinik ayarını taklit eder. Cerrahi travma, iskemi ve duvar basıncı patolojik damar değişikliklerinin önemli tetikler ve tarif edilen modelinde taklit edilir.
Farklı modeller ve türlerin ven greft açıklığı kaybı araştırmak için kullanılabilir. Bu domuzlar 4, koyun 5, köpeklerde 6 ve maymun 7 gibi büyük hayvan modelleri, insan damar ve anatomik yapıları benzer ve bu nedenle 8 test edilecek Bypass stent veya yeni cerrahi teknikler gibi kompleks terapötik stratejiler, sağlar. Ancak özel konut, ekipman ve personel gereklidir. Buna ek olarak, yüksek maliyetler ve ameliyat sırasında ek bir anestezist ihtiyacı onların geniş bir uygulama engel. Smsıçanlarda da dahil olmak üzere tüm hayvanlar, özel konut gerekmez, kullanımı kolay, ve yönetilebilir maliyetleri. Fare modellerinde 9,10 ile karşılaştırıldığında, sıçan modelleri sonuca daha iyi çalışabilirlik avantajı ve bu nedenle daha az değişkenliğe sahip. Sıçanlar fizyolojik ve genetik fareler 11,12 den insanlara daha benzer. Buna ek olarak, çoğu vahşi tip fareler sadece II hataları tip eğilimli fare modelleri yapmak sınırlı myointima 13, gelişir. Böyle inferior vena kava olarak ana fare damarlar, histolojisi, sadece birkaç hücre tabakalarından oluşur ve erken değerlendirme zor 13 vermektedir. Bir başka dezavantaj, greft kurtarma sonra bir sonraki analiz için uygun bir doku küçük bir miktardır.
Bu video açıklanan model, gerçekleştirmek için, yeniden üretilebilir, ucuz ve kolay ve hızlı ve güvenilir bir tespit edilebilir. Bu viral vektörler gibi pahalı deneysel terapötik maddeleri değerlendirmek için uygundurekonomik bir şekilde gen terapisi için.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Hayvanlar Laboratuvar Hayvanları İlkeleri, Laboratuar Hayvan Kaynakları Enstitüsü tarafından hazırlanan ve Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından yayınlanan Kılavuzu'nda uygun insancıl bakıma aldı. Tüm hayvan protokolleri sorumlu yerel otorite ( "Amt für Gesundheit und Verbraucherschutz, Hansestadt (Sağlık ve Tüketiciyi Koruma Dairesi) Hamburg") tarafından onaylanmıştır.
1. Hayvan Bakımı
- Laboratuvar Hayvanları Enstitüsü 300-350 g ağırlığında Lewis sıçanları (LEW / Crl) sıçan ve ROSA / lusiferaz LEW transgenik fareler elde edin.
- havalandırmalı dolaplar geleneksel koşullar altında sıçan tutmak ve onlara standart sıçan yemi ve otoklava su ad libitum beslenirler.
- donör ve alıcı olarak sinjenik LEW / Crl sıçanlar olarak ROSA / lusiferaz LEW transgenik fareler kullanarak bir greft nakli gerçekleştirmek.
Donör Sıçan 2. Hazırlık
- Bir askere kullanıniyon odası izofluran (2.5-3%) ile bir sıçan uyuşturan için.
- Sırtında sıçan yerleştirin ve ağız ve burun kapsayan bir yüz maskesi ile anestezi korumak. arka ayakları sıkışmasını ve reflekslerin yokluğu doğrulayarak anestezi yeterli derinliğe kontrol edin. anestezi altında iken kuruluğunu önlemek için gözlere bazı veteriner merhem sürün.
- arka bacakları yaymak ve bant kullanarak kendi konumunu düzeltmek.
- saç düzeltici ile inguinal saçlarını tıraş ve% 80 etanol ile takip povidon-iyot kullanarak tüm alanı dezenfekte edin. İki kez dezenfeksiyon işlemi tekrarlayın.
NOT: Cerrahi alan, gazlı bez ve cerrahi aletler sterilize edilmelidir. süreç boyunca steril bir alan korumak ve tek kullanımlık, steril cerrahi eldiven, maske ve kep giymek. - Mikroskop altında, linea Inguinalis boyunca dikey bir kesi yapmak. nazikçe cilt altı dokuları ayırmak için iki forseps kullanın ve ori yüzeysel epigastrik ven maruzFemoral ven cin. Dikkatle çevre dokulardan yüzeyel epigastrik ven izole.
- İki mikro kelepçeler kullanarak yüzeyel epigastrik ven kan akışını durdurun.
- dikkatlice forseps ile izole ven kaldırma ve microscissors damar yoluyla keserek damar yaklaşık 0.5 ila 1 cm segmenti hasat. kan kaybını önlemek için damar güdük mikro kelepçeler bırakın. steril gazlı bez üzerine ven kaldırıldı parça yerleştirin. Dikkatle toplandı damarın bir ucunda içinde 30 G iğne yerleştirin ve heparin ile kap (50 birim / ml) yıkayın.
NOT: Dikkatli damar tutun ve kaldırma, kesme ve yıkama sırasında zarar görmemesi. heparin uygun miktarda greft temizlemek için emin olun. - Alıcı sıçan içine nakli, bir gemi spazmı önlemek için kadar buz üzerinde% 1 lidokain damar segmentini tutun.
- % 5 izofluran anestezi artırarak donör sıçan Euthanize. 2-3 dk, op sonralinea alba boyunca karın tr, diyafram üzerinden kesilmiş ve kan dolaşımını durdurmak için kalbi kaldırın.
Alıcı Sıçan 3. hazırlanması
- Uyutmak ve donör sıçan aynı şekilde alıcı sıçan düzeltin.
- saç düzeltici ile bacakların medial tarafını Tıraş ve povidon-iyot ve% 80 etanol kullanılarak üç kez dezenfekte edin.
- anestezi derinliği izlemek ve arka ayakları kısma zaman refleksleri bulunmadığını teyit ederek yeterli olduğundan emin olun.
- kasık kat diz medyan femur kesi gerçekleştirin. Mikroskop altında, çevresinden femoral arter ayırmak için 2 forseps kullanabilir.
- kan akışını durdurmak için mikro kelepçeleri kullanın. Distal kelepçe ile takip ilk proksimal kelepçe, yerleştirin.
- microscissors kenetlenmiş femoral arter kısa bir kesimi kesip atın. bir boşluk yaratarak microscissors kalan arter güdük kısaltılmasıven grefti daha büyük 1-2 mm. 30 G iğne kullanılarak heparin ile arteriyel güdük yıkayın.
NOT: adventisya hafifçe damar güdük ötesinde çıkıntı halinde, geminin ucuna hafifçe çekin ve bir parça çıkarmak için forseps kullanabilir. - arteriyel kütükleri arasındaki adım 2.8 hasat ven yerleştirin ve boşluğa uygun sığacak şekilde uzunluğunu ayarlayın. ven yönüne dikkat edin.
- ilk 10-0 prolen sütür kullanılarak proksimal anastomoz gerçekleştirin. (Şekil 1D) gösterilen sırayla tek dikiş yürütün. ventral tarafta üç sütür eklemeden önce her yan tarafında bir dikiş ile başlayın. Daha sonra, anastomoz tamamlamak için teknenin sırt tarafında üç dikiş yerleştirin.
- Adım 3.8 açıklanan proksimal anastomoz için aynı tekniği kullanarak greft distal damarları bağlayın. Yine, her yan tarafında bir sütür ile başlamak ve daha sonra ventral sid üç sütür koyunE ve dorsal tarafı.
- fibrin yapıştırıcı bileşen 1 ve 2 ile yük iki adet 1 mL'lik şırınga dikkatlice forseps ile greft kaldırın ve bileşen 2, ardından greft altında fibrin yapıştırıcı bileşeninin 1 yaklaşık 100 ul bırakın.
NOT:: 1 oranında parçalar 1 ve 2, bir 1 uygulanır emin olun. - geri pozisyonda greft yerleştirin ve greft üzerine bileşenleri 1 ve 2'nin ek bir 100 ul bırakın. tutkal greft ve anastomoz yetmezliği ve damar grefti aşırı distansiyonu önlemek amacıyla anastomoz kapsar emin olun.
- Dikkatle proksimal ardından uzak kelepçe açmak.
- Nakledilen damar ve greft distal arter gözle görülür bir darbe kontrol ederek başarılı bir ameliyat onaylayın.
- cilt kapatma engellemektedir aşırı tutkal, çıkarın. tedavi tutkal kaldırın ve microscissors aşırı çıkarmak için forseps kullanın. 5-0 prolen sütür ile cilt katmanları kapatın.
- 4-5 m enjekteg / kg Carprofen subkutan sıçan uyanmak izin vermeden önce. sternal yatma korumak için yeterli bilinci yerine kadar sahipsiz hayvan bırakmayın. tamamen iyileşti kadar tek bir kafeste hayvan tutun.
- Aşağıdaki 3 gün boyunca ağrı kesici ilaç olarak içme suyu (100 ml başına 50 mg metamizol) Metamizol ekleyin ve günlük hayvan izleyin.
4. Dubleks Sonografi
NOT: duxplex sonografi sıçanlarda 14 non-invaziv kan akışını görselleştirmek için.
- indüksiyon odasında (izofluran% 2) bir sıçan Anesteziyoloji. Sırtında sıçan yerleştirin ve burnu kaplayan bir yüz maskesi ile anestezi korumak.
- uyluk çevresi saç kaldırmak için saç makasları ve epilasyon kremi kullanın.
- uyluk ultrason jeli uygulayın. hiçbir hava kabarcığı olmadığından emin olun. MS 400 transdüser kullanılarak dubleks sonografi görüntü elde (merkez frekansı: 30 M/ Sn 230-400 kare hızı ile Hz).
5. histopatolojisi
NOT: Hasat morfometrik analiz 15 Masson trikrom boyama ile gemi leke ve.
- gece boyunca% 4 paraformaldehid içinde hasat kap saptamak etanol artan konsantrasyonlarda kurutmak. parafin örnek embed ve bir mikrotom kullanılarak 5 mikron kalınlığında dilimler halinde kesin.
NOT: Paraformaldehyde toksik ve özel dikkatle ele alınmalıdır. - trikrom boyama solüsyonu ile onları boyamadan önce slaytlar Deparaffinize. Lekeli slaytlar dehydrate ksilen ile bunları temizleyin ve orta montaj takar. slaytlar kurutulduktan sonra, bir mikroskop ile örnekleri görmek.
6. Biyoparlaklık Görüntüleme (BLI)
NOT: Ameliyat sonrası greft biyolüminesens sinyali 1 ölçerek in vivo zamanla takip edildi6.
- PBS 22 ml D-luciferase potasyum tuzu, 1 g çözülür ve intraperitoneal olarak sıçan (375 mg / kg vücut ağırlığı) enjekte. luciferin hayvan dönmesi için 15 dakika bekleyin.
- gerçek zamanlı biyolüminesens miktar sistemi içine sıçan yerleştirin ve biyoparlaklık sinyali erişin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
sıçan ven interpozisyonu modeli myointima hiperplazi ve ven greft yetmezliği gelişimini incelemek için uygundur. Hayvanlar ameliyat sonrası iyi kurtarmak ve mükemmel fiziksel durumu sonrası operasyon göstermektedir. Şekil 1 anahtar cerrahi adımları gösterir. Linea Inguinalis boyunca cilt kesisi sonra, epigastrik yüzeysel ven ve femoral arter (Şekil 1A) tespit edilir. Bu erken greft yetmezliği ve açıklık kaybına yol açabilir olarak greft Hasat, greft (Şekil 1B) zarar vermeden, dikkatli bir şekilde yapılmalıdır. Alıcı hayvan (Şekil 1C) greft yerleştirdikten sonra, anastomoz dikiş Şekil 1D gösterilen sırayla yapılır. Tamamlanan venöz interpozisyon grefti soluk (Şekil 1E) belirir ve kırmızı olmak ve reperfüzyon (Şekil 1F) sonra titreşim göstermelidir.
başarılı integrati femoral arter ve greft açıklığının içine damar üzerine nakli non-invaziv dubleks sonografi kullanılarak (Şekil 2A) teyit edilebilir sonra. Genden Luc-negatif sıçan içine Luc-pozitif sıçan damarını nakli, biyolüminesans görüntüleme süresi (Şekil 2B) üzerine greft varlığını izlemek için kullanılabilir.
Myointima hiperplazi zamanla greft giderek gelişir. Masson trikrom histolojik boyama internal elastik laminanın (Şekil 2C) içindeki myointima oluşumunu göstermektedir. (Internal elastik laminanın olan bölgelere göre lümen enine kesit alanına bölünmesi) luminal tıkanıklığa hesaplanması ve böylece myointima hiperplazi tekrarlanabilir dinamikleri teyit günde 28 ameliyat sonrası gün 7 arasında greft açıklığının aşamalı bir kayıp ortaya Bu fare modelinde (Şekil 2D).
1 re "src =" / files / ftp_upload / 54839 / 54839fig1.jpg "/>
Şekil 1: Cerrahi Prosedür Programı Ayrıntılı. inguinal bölge (A) Anatomi. (B) Hasat epigastrik yüzeysel ven greft. Alıcı hayvanın arter kütükleri arasındaki ven grefti yerleştirilmesi (C). (D) anastomoz dikiş sırası. venöz greft inşaat sonrası (E) Sitesi. venöz greft interpozisyonu reperfüzyon sonrası (F) Sitesi. Siyah oklar epigastrik yüzeysel ven işaretleyin. Ölçek çubuğu = 5 mm. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 2: Hayvan Modeli Karakterizasyonu. Venöz interpozisyonu (A) Dubleks sonografi immed greft geçirmeden transplantasyon (0d) ve 28 gün sonrası operasyon (28d) sonra. 0 gün ve ameliyat sonrası 28 günde Luc-negatif farelere nakledilen Luc-pozitif greftler (B) BLI. (C), Örnek greft kesitleri gün 7, 14, 21 sonra hasat ve 28 ve Masson trikrom ile lekelenmiştir. (Üst panel: Ölçek çubuğu = 400 mikron; Alt panel: Ölçek çubuğu = 100 mikron) (D) yüzde Luminal obliterasyon eski lümeninden yeni iç lümen bölünmesiyle hesaplanır. Gruplar arası farklılıkların Bonferroni post-hoc testi ile varyans analizi (ANOVA) Tek yönlü analiziyle değerlendirildi. p <0.01. Hata çubukları, standart sapma (SD) 'dir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.
_upload / 54839 / 54839Sup1.jpg "/>
Yan Dosya 1: Cerrahi Prosedür şematik İllüstrasyon. linea Inguinalis boyunca dikey bir kesik aşağı epigastrik ven açığa verici bir sıçandan gerçekleştirilir. Kan akışı iki mikro kelepçeler ile durdurulur ve 0.5-1.0 cm uzunluğunda bir damar segmenti hasat edilir. Alıcı sıçanlarda olarak, ortalama femoral insizyon femoral ven, arter ve sinir açığa gerçekleştirilir. femoral arter sıkma sonra, damar segment çıkarılır ve hasat ven grefti ile değiştirilir. Company Dosya 1 görüntülemek için lütfen buraya tıklayınız (veya indirmek için sağ tıklayın).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Bu video ven greft kaybı araştırmak ve altta yatan patolojik süreçlerin araştırılması ve yeni ilaçlar ya da tedavi seçeneklerinin test etmek için izin veren bir fare ven interpozisyonu modelini göstermektedir.
Anestezi cerrahi prosedürler çok önemli bir yönüdür. Bu özellikle uzun süreli operasyonlar sırasında, güvenli ve kolay bir yöntem olduğu için sürekli inhalasyon anestezi sistemi tavsiye edilir. Bu işlem en fazla 1 saat sürer eğitim safhasında büyük önem olabilir.
Cerrahi işlem ile ilgili olarak, hasatı ve implantasyon 17 boyunca damar grefti zarar vermemek için çok önemlidir. Geminin adventisya Kavrama ven grefti zarar görmesini önlemek ve sonraki trombüs oluşumunu ve greft başarısızlık önleyebilirsiniz. Greft açıklığı ven grefti veya Dista kan akışının gözlem yoluyla ve nabız aşı yapımını ven hemen sonra tespit edilebilirl arter yanı sıra dubleks sonografi ile.
prosedürün bir diğer kritik yönü ven grefti aşırı distansiyonu önlemek içindir. tansiyon sistemine ven grefti ani maruz kalma müteakip aşırı şişkinlik artmış duvar gerilimi, yol açar ve akış paterni değişiklikleri. Bu tromboz, anastomoz yetmezliği ve erken greft yetmezliği kaynaklarıdır. fibrin yapıştırıcı ile ven grefti destekleyen kontrolsüz balon önlemek ve mekanik imha intima ve medya koruyabilirsiniz. Emilebilir kollajen kapakları fibrin yapıştırıcı bir alternatiftir ve perivenöz 18 kapakları olarak kullanılabilir.
Bu protokol kapsamında en kritik adım kuşkusuz ven grefti ile arter arasında anastomoz olduğunu. Bu greft erken başarısızlıkla sonuçlanabilir anastomoz daralmasına yol açacaktır olarak bakım, geminin iki duvarı delmek için değil alınmalıdır. Buna ek olarak, özel bir attention sütür lokalizasyonu ödenmelidir. arter ve ven sütür pozisyonların congruency greft açıklığını sağlayan ve yetersizliği önler. Bunu kolaylaştırmak için, dikiş Şekil 1D'de gösterilen sırada gerçekleştirilebilir.
Bir acemi ilk mikrocerrahi ekipman ve anatomik yapıların küçük boyutlarda aşina gerekir, çünkü teknik zorluk derecesi, tekniğin bir sınırlama olarak görülebilir. Bununla birlikte, kullanılan diğer modelleri aynı zorlukları sergiler ve biz bu videoyu kısa bir süre içinde bu tekniği ana acemi cerrahlar yardımcı olacağına inanıyoruz.
Venöz graft yetmezliği için çok sayıda küçük hayvan modelleri, literatürde tarif edilmiştir. Ancak, çoğu modeller sadece analiz 13 doku çok küçük miktarlarda sunmak. Bu yöntemin bir avantajı, elde edilebilir doku nispeten büyük bir miktardır. Bir greft birden fazla bölüme ayrılabilir birND, böylece, gerekli deney hayvan sayısını azaltmak, farklı deney için de kullanılır.
Çinko parmak nükleaz teknolojisindeki son gelişmeler nakavt sıçan 19 nesil sağladı. Uygun knock-out fareler seçerek, greft açıklığı kaybı farklı hastalık koşullarında ele alınabilir. Örneğin renin nakavt fareleri hipertansiyon 20 çalışma için kullanılabilir. Bu genetik kökenden, farklı ortamlarda veya myointima hiperplazi gelişiminde bazı genlerin etkisi üzerine ven greft yetmezliği mekanizmaları hakkında bilgi toplamak için bu hayvan modeli ile kombine edilebilir.
Sonuç olarak, bu videoda açıklanan model gerçekleştirmek için, tekrarlanabilir, ucuz ve kolay olduğunu ve hızlı ve güvenilir kurulabilir. ven greft yetmezliğinin ana nedeni Myointima hiperplazi, ilerici lümen obliterasyon sonuçlanan dört hafta boyunca hızla gelişti. Başarıyla test edilen tedaviBu modelde seçenekler, büyük hayvan modellerinde onaylanabilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Acknowledgments
Yazarlar onun teknik yardım için Christiane Pahrmann teşekkür ederiz. Bu çalışma, Deutsche Stiftung für Herzforschung tarafından finanse edildi (F / 28/14). DW Kalp ve Akciğer Transplantasyonu Uluslararası Derneği ödülü ile desteklenmiştir. TD Else-Kröner-Fresenius-Stiftung (2012_EKES.04) den Else Kröner Mükemmellik maaş aldı. SS Deutsche Forschungsgemeinschaft araştırma hibe almıştır (DFG; DE2133 / 2-1, TD ve SCHR992 / 3- 1, SCHR992 / 4-1, SS).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Rat LEW/Crl | Charles River | Stock number 004 | |
| Rat LEW-Tg(Gt(ROSA)26Sor- 1 luc)11Jmsk |
Institute of laboratory animals, Kyoto University, Japan | NBPR rat number 0299 | http://www.anim.med.kyoto-u.ac.jp/NBR/ |
| PFA 4% | Electron Microscopy Sciences | #157135S | 20% |
| hair clipper | WAHL | 8786-451A ARCO SE | |
| Forene | AbbVie | PZN 10182054 Art.Nr.: B506 | Isoflurane |
| microsurgical clamp | Fine Science Tools | 18055-04 | Micro-Serrefine - 4 mm |
| clamp applicator | Fine Science Tools | 18056-14 | |
| hair removal creme | Rufin cosmetic | 27618 | |
| Povidone-Iodine | Betadine Purdue Pharma | NDC:67618-152 | |
| 10-0 Ethilon suture | Ethicon | 2814G | |
| 5-0 prolene suture | Ethicon | EH7229H | |
| Rimadyl | Pfizer | 400684.00.00 | Carprofen |
| Novaminsulfon | Ratiopharm | PZN 03530402 | Metamizole |
| Heparin | Rotexmedica | PZN: 3862340 | 25.000 I.E./ ml |
| Xylocain 1% | AstraZeneca | PZN: 1137907 | Lidocain |
| EVICEL | J&J Med.Ethicon Biosur | PZN 7349697 Art. Nr.:EVK01DE | fibrin glue |
| NaCl 0.9% | B.Braun | PZN 06063042 Art. Nr.: 3570160 | |
| Vevo 770 high-resolution in vivo micro-imaging system | VisualSonics | duplex sonography | |
| Ecogel 100 ultrasound gel | Eco-med | 30GB | |
| D-Luciferin Firefly, potassium salt | Biosynth | L-8220 | |
| PBS pH 7.4 | Gibco | 10010023 | |
| Xenogen Ivis 200 | Perkin Elmer | bioluminescence imaging | |
| Weigerts iron hematoxylin Kit | Merck | 1.15973.0002 | Trichrome staining |
| Resorcine-Fuchsine Weigert | Waldeck | 2.00E-30 | Trichrome staining |
| Acid Fuchsin | Sigma-Aldrich | F8129-25G | Trichrome staining |
| Ponceau S solution | Serva Electrophoresis | 33427 | Trichrome staining |
| Azophloxin | Waldeck | 1B-103 | Trichrome staining |
| Molybdatophosphoric acid hydrate | Merck | 1.00532.0100 | Trichrome staining |
| Orange G | Waldeck | 1B-221 | Trichrome staining |
| Light Green SF | Waldeck | 1B-211 | Trichrome staining |
| Vitro-Clud | Langenbrinck | 04-0001 | |
| Glacial Acetic Acid | Sigma-Aldrich | 537020 | |
| 37% HCl | Sigma-Aldrich | H1758 | |
| Xylene | Th. Geyer | 3410 | |
| Paraffin | Leica biosystems | REF 39602004 | |
| Ethanol absolute | Th. Geyer | 2246 | |
| Ethanol 96% | Th. Geyer | 2295 | |
| Ethanol 70% | Th. Geyer | 2270 | |
| Slide Rack | Ted Pella | 21057 | |
| Staining dish | Ted Pella | 21075 | |
| Bepanthen Eye and Nose ointment | Bayer | 1578675 | Eye ointment |
References
- Sabik, J. F., 3rd, Understanding saphenous vein graft patency. Circulation. 124, 273-275 (2011).
- Goldman, S., et al. Long-term patency of saphenous vein and left internal mammary artery grafts after coronary artery bypass surgery: results from a Department of Veterans Affairs Cooperative Study. J Am Coll Cardiol. 44, 2149-2156 (2004).
- Fitzgibbon, G. M., et al. Coronary bypass graft fate and patient outcome: angiographic follow-up of 5,065 grafts related to survival and reoperation in 1,388 patients during 25 years. J Am Coll Cardiol. 28, 616-626 (1996).
- O'Brien, J. E., et al. Wound healing around and within saphenous vein bypass grafts. J Thorac Cardiovasc Surg. 114, 38-45 (1997).
- El-Kurdi, M. S., et al. Ovine femoral artery bypass grafting using saphenous vein: a new model. J Surg Res. 193, 458-469 (2015).
- Yuda, A., et al. Angiotensin II receptor antagonist, L-158,809, prevents intimal hyperplasia in dog grafted veins. Life Sci. 68, 41-48 (2000).
- McCann, R. L., Hagen, P. O., Fuchs, J. C. Aspirin and dipyridamole decrease intimal hyperplasia in experimental vein grafts. Ann Surg. 191, 238-243 (1980).
- Thomas, A. C. Animal models for studying vein graft failure and therapeutic interventions. Curr Opin Pharmacol. 12, 121-126 (2012).
- Hu, Y., Xu, Q. New mouse model of vein bypass graft atherosclerosis. Heart Lung Circ. 11, 182-188 (2002).
- Salzberg, S. P., et al. Increased neointimal formation after surgical vein grafting in a murine model of type 2 diabetes. Circulation. 114, I302-I307 (2006).
- Abbott, A. Laboratory animals: the Renaissance rat. Nature. 428, 464-466 (2004).
- Lindblad-Toh, K. Genome sequencing: three's company. Nature. 428, 475-476 (2004).
- Yu, P., Nguyen, B. T., Tao, M., Campagna, C., Ozaki, C. K. Rationale and practical techniques for mouse models of early vein graft adaptations. Journal of vascular surgery. 52, 444-452 (2010).
- Olver, D. T., Lacefield, J. C., Shoemaker, K. J. Evidence of bidirectional flow in the sciatic vasa nervorum. Microvascular research. 94, 103-105 (2014).
- Stubbendorff, M., et al. Inducing myointimal hyperplasia versus atherosclerosis in mice: an introduction of two valid models. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2014).
- Conradi, L., et al. Immunobiology of fibrin-based engineered heart tissue. Stem cells translational medicine. 4, 625-631 (2015).
- Dashwood, M. R., Tsui, J. C. 'No-touch' saphenous vein harvesting improves graft performance in patients undergoing coronary artery bypass surgery: A journey from bedside to bench. Vascular Pharmacology. 58, 240-250 (2013).
- Bekler, H. I., Rosenwasser, M. P., Akilina, Y., Bulut, G. The use of an absorbable collagen cover (NeuraWrap) improves patency of interpositional vein grafts. Acta orthopaedica et traumatologica turcica. 44, 157-161 (2010).
- Geurts, A. M., et al. Knockout rats via embryo microinjection of zinc-finger nucleases. Science. 325, 433 (2009).
- Moreno, C., et al. Creation and characterization of a renin knockout rat. Hypertension. 57, 614-619 (2011).
