Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

توسع الأوعية السفن المعزولة وعزل مصفوفة خارج الخلية من الفئران ضيق الجلد

Published: March 24, 2017 doi: 10.3791/55036

Introduction

تنظيم نمو الخلايا وموت الخلايا الاستجابات المناعية أمر أساسي لدور الأسرة عامل النسخ من العوامل التنظيمية مضاد للفيروسات. يتم تمييز IRF5 بأنها حاسمة لتنظيم الاستجابات المناعية بين النوع 1، وتعزيز الاستجابة الالتهابية والنوع 2، وإصلاح الأنسجة الاستجابة المناعية الاستهداف. IRF5 أساسية في سرطان والمناعة الذاتية 5.

الماوس ضيق الجلد (تصك / +) هو نموذج لتليف الأنسجة وتصلب الجلد بسبب طفرة الازدواجية في الجينات fibrillin-1. هذه الطفرة النتائج في الجلد محكم وزيادة في النسيج الضام. هذه الفئران تطوير التهاب عضلة القلب، والتليف وأخيرا فشل القلب > 9. تصلب الجلد هو اضطراب المناعة الذاتية التي تؤثر متليفة ما يقرب من 150،000 مريض في الولايات المتحدة (6). السمات المميزة لهذا المرض هي تليف الأعضاء الداخلية بما في ذلك القلب 10، 11.

طبيعة الدراسة طالبت تصميم الببتيد المثبطة. وقد تم اختيار نهج البرامج على النهج التقليدي باستخدام عرض فج. النهج البرنامج هو أسهل وأقل استهلاكا للوقت. يستخدم البنك بيانات RCSB لتحديد مواقع الربط المناسبة 12. لدراسة التفاعل بين الببتيد المصممة حديثا مع البروتين المؤتلف والتركيز على معايير ملزمة، تم استخدام تقنية تسمى biolayer التداخل. Biolayer التداخل هو techniq جهاز الاستشعار البيولوجي تستندرق الذي يحدد ملزمة تقارب وتكوين الجمعيات وتبرؤ باستخدام جهاز الاستشعار البيولوجي وعينة ملزمة. وجهاز الاستشعار البيولوجي يمكن أن يكون fluorescently، luminescently، وصفت radiometrically وcolorimetrically. ويستند هذا القياس على إضافة جماعية أو نضوب تشبه الجمعيات وتبرؤ 13 و 14. وكان الهدف من هذه الدراسة إلى فهم دور IRF5 في التهاب عضلة القلب وتليف. وكان الهدف هو التبصر في دور IRF5 في تطوير تليف الأنسجة وتصلب الجلد.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

وقد أجريت هذه الدراسة بما يتفق بدقة مع التوصيات الواردة في دليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية من المعاهد الوطنية للصحة. وتمت الموافقة على البروتوكول من قبل رعاية الحيوان واللجنة المؤسسية الاستخدام (البروتوكول: AUA # 1517). وقد أجريت جميع البحوث التي تنطوي على الفئران بما يتفق مع سياسة خدمات الصحة العمومية.

1. تصميم شرك الببتيد

  1. البحث عن هيكل 3D من IRF5 وقاعدة التصميم على ذلك. تصميم 17 مير، ووصف IRF5D (ELDWDADDIRLQIDNPD)، حيث يتم استبدال اسبارتاتي (D) ل(S) سيرين لتقليد الفسفرة في IRF5 في 421-438 (ELSWSADSIRLQISNPD). اقترح تحليل مجموعة 3D سلفهيدريل ومعرفة آلية IRF5 للتفعيل، أي سيرين الفسفرة، أن استراتيجية واحدة لاستهداف IRF5 كانت لتوليد الببتيد شرك. انظر الشكل 1. لتحديد أفضل منطقة في هيكل 3D، استخدام برنامج النمذجة الجزيئية لتصميم molecul صغيروفاق و الببتيدات 15.
    ملاحظة: خطوة حاسمة في هذه العملية هو توافر هيكل 3D من البروتين المستهدفة والمواقع المحتملة ملزمة. هيكل 3D من IRF5 يمثل بدقة dimerizes كيف IRF5 بعد الفسفرة. والاستعانة بمصادر خارجية استبدال اسبارتاتي لسيرين أو ثريونين. ويتم تصنيع الببتيد على حدة دون ربطها IRF5.
  2. تكرار الفوسفات المجال ببساطة عن طريق استبدال D لS. استنادا إلى تسلسل الأصلي (ELSWSADSIRLQISNPD، وجعل IRF5S الببتيد جديدة مع تسلسل الأحماض الأمينية من 2 ايه سي ELDWDADDIRLQIDNPD-نيو هامبشاير (IRF5D).

2. Biolayer التداخل (BLI)

ملاحظة: تم الاستعانة بمصادر خارجية وتنقية IRF5 المؤتلف. 16

  1. التسمية البيوتين IRF5 في نسبة المولي 1: 1 من البيوتين ليجند مع كاشف biotinylation دمج رابط سلسلة طويلة. سوف رابط سلسلة طويلة ضمان الدوري الاسباني أكثر نشاطا ومتجانسةسطح الثانية.
    1. إضافة 1 مل من 2 ملغ / مل IRF5 إلى 13 ميكرولتر من 20 ملي البيوتين كاشف أو زيادة الكميات إذا لزم الأمر. احتضان على الجليد لمدة 2 ساعة. بعد وضع العلامات، واستخدام عمود تحلية تدور لإزالة خليط التفاعل من البروتين المسمى.
  2. احتضان يجند المسمى البيوتين مع أجهزة الاستشعار لمدة 15 دقيقة. تجنب الإفراط في وضع العلامات وضبط نسبة 1: 1 الرحى. بعد وضع العلامات، واستخدام عمود تحلية تدور لإزالة خليط التفاعل من البروتين المسمى.
  3. احتضان البيوتين وصفت أجهزة الاستشعار IRF5 لمدة 10 دقيقة في تركيزات مختلفة من الببتيد IRF5 شرك. تم تحديد معدلات تكوين الجمعيات والتفكك كما هو موضح 10، 17، 18.

3. موت الخلايا المبرمج وانتشار فحوصات

  1. انتشار الفحص عبر bioreduction من نتروبلو
    1. إدارة IRF5D مخففة في برنامج تلفزيوني (1 ملغ /كغ / د، حقن حجم 20 ميكرولتر في 20 غ الماوس) تحت الجلد بإبرة 27 عيار بواسطة تقنية scruffing القياسية أو برنامج تلفزيوني وحدها لتصك / + وC57BL / 6J الفئران لمدة 21 يوما.
    2. تخدير الفئران مع isoflurane (5٪) وإجراء خلع عنق الرحم. استئصال قلوب بقطع مفتوح الصدر على طول عظمة القص. وترفع من القلب مع ملقط وإزالة القلب.
    3. ليز قلوب مع العازلة البروتين تحلل تحتوي على 50 ملي تريس، حمض الهيدروكلوريك 7.4 درجة الحموضة، و 0.5٪ NP-40، 250 مم كلوريد الصوديوم، و 5 ملي EDTA، 50 ملي ناف 10 وتحديد تركيز البروتين برادفورد فحص 19.
    4. معطف لوحات 96-جيدا مع C57BL / 6J مصفوفة القلب معزولة كما هو موضح في قسم 7. تمييع برنامج تلفزيوني علقت C57BL / 6J مصفوفة القلب إلى تركيز 20 ميكروغرام / مل وإضافة 30 ميكرولتر من C57BL / 6J القلب إلى كل بئر. السماح لها تسوية بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية في الحاضنة.
    5. ثقافة خلايا الوريد السري الإنسان باستخدام 500 مل من البطانية القاعدية مالقانونين مع 0.4٪ مستخلص البقري الدماغ، 0.1٪ حمض الاسكوربيك، 0.1٪ الهيدروكورتيزون، 0.1٪ عامل نمو البشرة البشري، 2٪ مصل بقري جنيني و 0.1٪ أضاف جنتاميسين / الأمفوتريسين B إليها. ثقافة الخلايا على 96 لوحات جيدة في 5٪ CO 2 و 95٪ هواء الغرفة مع كثافة من 25000 خلية لكل جيدا. حفز مع زيادة تركيزات IRF5D بين 0-100 ميكروغرام / مل في وسائل الإعلام (وبلغ حجم التداول بين 0 و 50 ميكرولتر / مل).
    6. تحديد تكاثر الخلايا بعد ثلاثة أيام وتقييم الاختلافات في الامتصاصية على قارئ صفيحة. رد الفعل هو bioreduction من MTS نتروبلو المجمع. ويتم إنتاج NADPH أو NADH من الانزيمات نازعة في خلايا نشطة عملية الأيض.
    7. كما يتم تخزين نتروبلو مجمع MTS المجمدة في -20 درجة مئوية، وذوبان الجليد المجمع ببطء على مدى ما يقرب من 90 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. ماصة 20 ميكرولتر في كل بئر من 96 لوحة جيدا، وإضافة 100 ميكرولتر من وسائل الإعلام ثقافة لذلك. احتضان لوحة عند 37 درجة مئوية لمدة 1-4 ساعات في humidified، 5٪ CO 2 غرفة.
    8. قراءة الامتصاصية عند طول موجي 490 نانومتر.
  2. موت الخلايا المبرمج فحص عن طريق النشاط كاسباس
    ملاحظة: انشاء التجريبية هو نفسه على النحو الوارد أعلاه 3.1.1 إلى 3.1.5.
    1. تحفيز الخلايا مع زيادة تركيزات IRF5D بين 0-100 ميكروغرام / مل في وسائل الإعلام.
    2. إضافة كشف الأخضر لالركيزة كاسباس 3/7 إلى ECS واحتضان لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية. تقييم مضان على قارئ صفيحة ميكروسكوبية في وقت واحد مع الطول الموجي امتصاص / انبعاث 502/530 نانومتر. تشغيل تجارب في ثلاث نسخ.
      ملاحظة: عامل الفلورية الخضراء هو الببتيد حمض أميني أربعة بد أن صبغة ملزمة الحمض النووي. هذا كاشف يصبح الفلورسنت عندما المشقوق بعد كاسباس 3 و 7 التنشيط. يتم قياس هذه مضان. ميزة هي انخفاض في خطوات غسل.

4. تقييم IRF5 وICAM-1 التعبير في اسمعواتي

  1. إدارة IRF5D مخففة في برنامج تلفزيوني (1 ملغ / كغ / يوم، حقن حجم 20 ميكرولتر في 20 غ الماوس) تحت الجلد بإبرة 27 عيار بواسطة تقنية scruffing القياسية أو برنامج تلفزيوني وحدها لتصك / + وC57BL / 6J الفئران مرة واحدة في اليوم لمدة 21 يوما.
  2. تخدير الفئران مع isoflurane (5٪) وإجراء خلع عنق الرحم. استئصال قلوب بقطع مفتوح الصدر على طول عظمة القص. وترفع من القلب مع ملقط وإزالة القلب.
  3. ليز قلوب مع العازلة البروتين تحلل تحتوي على 50 ملي تريس، حمض الهيدروكلوريك 7.4 درجة الحموضة، و 0.5٪ NP-40، 250 مم كلوريد الصوديوم، و 5 ملي EDTA، 50 ملي ناف 10 وتحديد تركيز البروتين برادفورد فحص 19.
    1. إجراء طخة غربية على لست] من القلوب. تمييع عينات إلى 25 ميكروغرام البروتين الكلي وبلغ حجم التداول 40 ميكرولتر مع العازلة عينة Laemmli تحتوي على 5٪ المركابتويثانول. تشغيل العينات على 4-15٪ TGX هلام في 50 فولت لمدة 5 دقائق. زيادة الجهد إلى 100 فولت لمدة 1 ساعة حتى تدير الجبهة صبغ بها.
    2. وضع الجل في 1X العازلة نقل (25 ملي تريس، 190 ملي الجلايسين، 20٪ الميثانول، وضبط درجة الحموضة إلى 8.3 إذا لزم الأمر)، واحتضان ل10-15 دقيقة.
    3. تجميع ساندويتش نقل (الإسفنج، والتصفية، هلام، غشاء السليلوز، مرشح، الإسفنج). تأكد من عدم وجود فقاعات المحاصرين في بين. يجب أن يكون وصمة عار على الكاثود والجل على الأنود. نقل لمدة 1 ساعة في غرفة باردة في 100 مللي أمبير.
    4. في اليوم التالي، شطف وصمة عار ثم منع الخلفية في 5٪ الحليب الجاف الخالي لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. شطف وصمة عار مع تريس مخزنة المالحة التي تحتوي على 5٪ توين ثلاث مرات لمدة 5 دقائق لكل منهما.
    5. احتضان بين عشية وضحاها مع الأجسام المضادة الأولية باستخدام الأجسام المضادة الأولية لIRF5 أو ICAM-1. تمييع الأجسام المضادة في تريس مخزنة المالحة في التخفيف 1: 1000.
    6. تمييع الأجسام المضادة الثانوية في تريس مخزنة المالحة واحتضان وصمة عار لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة. عن الأجسام المضادة الثانوية، واستخدام الفجل البيروكسيداز مترافق حمار لمكافحة فأر الإيجG (1: 10000) والفجل البيروكسيديز حمار المضادة للماعز مفتش (1: 10000)، على التوالي.
    7. تطبيق التوهج إلى وصمة عار بعد مكونات الخلط وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة واحتضان لمدة 3 دقائق لluminesce عصابات الفائدة. فضح وصمة عار إلى فيلم الأشعة السينية. استخدام يماغيج لقياس كثافة. تطبيع قيم الكثافة إلى عصابات تحكم 10.

5. تقييم أرقام الخليوي التهابات بعد IRF5 تثبيط

  1. إدارة IRF5D مخففة في برنامج تلفزيوني (1 ملغ / كغ / د) تحت الجلد بإبرة 27 عيار بواسطة تقنية scruffing القياسية أو برنامج تلفزيوني وحدها لتصك / + وC57BL / 6J الفئران لمدة 21 يوما.
  2. تخدير الفئران مع isoflurane (5٪) وإجراء خلع عنق الرحم. استئصال قلوب بقطع مفتوح الصدر على طول عظمة القص. وترفع من القلب مع ملقط وإزالة القلب. المفاجئة تجميد وتخزين قلوب رفعه حتى التحليل.
  3. جبل قلوب المجمدة على TISSأصحاب رق المناسبة لناظم البرد في الاستخدام. قطع 10 ميكرون أقسام المجمدة سميكة على ناظم البرد لالمناعية.
  4. إصلاح الأجزاء المجمدة مع 1٪ امتصاص العرق في الفوسفات مخزنة المالحة لمدة 20 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. Permeabilize الأقسام مع 0.5٪ تريتون X-100 في برنامج تلفزيوني لمدة 5 دقائق.
    تحذير: لامتصاص العرق هو مادة مسرطنة للتنظيم ويجب التعامل معها بحذر.
  5. تخفيف المضادة للأرنب CD64، وهو الوحيدات / بلعم علامة 1: 200 في برنامج تلفزيوني. تنطبق على الأبواب الثابتة واحتضان لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية.
  6. غسل الشرائح في برنامج تلفزيوني لمدة 5 دقائق ثلاث مرات في درجة حرارة الغرفة.
  7. تمييع لمكافحة الفئران NIMP، العدلات علامة الابتدائية 1: 200 في برنامج تلفزيوني. تنطبق على الأبواب الثابتة واحتضان لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية.
  8. تغسل الشرائح لمدة 5 دقائق ثلاث مرات مع برنامج تلفزيوني في درجة حرارة الغرفة.
  9. تمييع الأجسام المضادة الثانوية المضادة للأرنب اليكسا 488 مترافق ومكافحة فأر اليكسا 488 مترافق 1: 200 في برنامج تلفزيوني.
  10. تطبيق المضادة للأرنب اليكسا 488 مترافق ومكافحة فأر اليكسا 488 الأجسام المضادة الثانوية مترافق إلى أقسام لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية وفقا لذلك. حجم الأجسام المضادة تختلف وفقا لحجم القسم. وينبغي أن يشمل المبلغ الذي قسم بسخاء. في معظم الحالات حجم ما بين 100 و 200 ميكرولتر.
  11. استخدام 4، 6 diamidino-2-phenylindole (دابي) باعتباره وصمة عار النووية في التخفيف 1: 1000 في برنامج تلفزيوني. إضافة 1 ميكرولتر إلى 1 مل برنامج تلفزيوني واستخدام دابي في خطوة غسل الماضية. إضافة وسائط تصاعد مائي لزلة غطاء ووضعه على الشريحة.
  12. تحليل الأقسام fluorescently المسمى بواسطة المجهر متحد البؤر باستخدام الهدف النفط 40X. استخدام الإثارة الأطوال الموجية 488 وانبعاث موجات أكبر من 530 نانومتر لCD64 وNIMP. كان متحمس دابي مع 360 نانومتر، وتنبعث عند 460 نانومتر في اللون الأزرق. التمييز حيدات / الضامة والعدلات (ن = 10 صور في الضد من 3 الفئران مختلفة في كل مجموعة) عن طريق وضع العلامات على مختلف وعدها. التعبير عن البيانات وعدد الخلايا فرزها.

    6. خلية توسع الأوعية تابع بعد IRF5 تثبيط

    1. تخدير C57BL / 6J السيطرة على الفئران وتصك / + الفئران مع وبدون علاج الببتيد مع الكيتامين (80-100 ملغ / كلغ) / زيلازين (10-12،5 ملغ / كلغ) الخليط. حقن خليط الكيتامين / زيلازين البريتونى. كبح الماوس يدويا.
      1. استخدام مقياس 25 أو إبرة أصغر. ادخال الإبرة في الربع السفلي الأيمن من البطن. سحب الغواص قبل الحقن لضمان أن الإبرة لا يدخل أحد الأوعية الدموية أو الأمعاء.
    2. مرة واحدة وقد وصلت إلى مستوى كاف من التخدير، وتأمين الماوس في موقف ضعيف، يمسح الفراء مع الكحول غارقة الشاش، واستخدام زوج من مقص فتح التجويف الصدري وإزالة القلب.
      ملاحظة: سوف استنزاف الموت ببطء الماوس وجعل تشريح أسهل عن طريق تخفيف الضغط في الأوعية الدموية مما يقلل النزيف عندما قطع الأوعية الدموية.
      1. فتح النقيب الجلدجا زوج من مقص، وقطع حتى من جانبي الصدر إلى عظم الفك مع الرعاية حتى لا تعكر صفو الأنسجة الكامنة نحو الجزء الأمامي من الفك.
      2. تشريح الشريان الوجهي عن طريق إزالة الأنسجة الناعمة المحيطة بها.
      3. تحذير: لا تجرح السفينة أو الساحبة على الشريان الوجهي مع الحفاظ على النسيج يتعرض استحم في المخزن اجتماعات الأطراف (2.0 ملي CaCl 2 · 2H 2 O، 0.02 ملي EDTA، 5.0 ملي الجلوكوز، 4.7 ملي بوكل، 1.17 ملي MgSO 4 · 7H 2 O، 3.0 اجتماعات الأطراف مم، 145 مم كلوريد الصوديوم، 1.2 ملي ناه 2 ص 4 · H 2 O، 2.0 ملي حمض البيروفيك) لمنع جفاف. أداء تحت التكبير تشريح ستيريو المجهر مجهر (التكبير من 3.5X إلى 45X) ومصدر ضوء الألياف البصرية.
    3. عزل الشريان الوجهي.
      1. فهم الأقرب الوجهية إلى التشعب الأول والبعيدة إلى حيث سيتم قطع الشريان. قطع الشريان من الشريان الأم، الشريان السباتي الخارجي. إزالة arterie الوجهيةالصورة من السيطرة على الفئران، تصك / + الفئران مع وبدون علاج IRF5D.
      2. في حين لا يزال يمسك الشريان في ملقط، وقطع فرعين نزوله الوجهية، والسماح للسفينة أن رفع بلطف بينما يمكن تحديد أي نوع من الأنسجة المحيطة المصقول، وقطعت.
      3. الاستمرار بهذه الطريقة حتى يتم الوصول إلى التشعب قطع كلا الشرايين ابنة لتحرير السفينة. ليست هناك حاجة لكبح السفن قبل قطع بسبب خففت الضغط في الأوعية الدموية من إزالة القلب. وضع السفينة في المخزن اجتماعات الأطراف في حين يتم تشريح الشريان الوجهي الآخرين ومعزولة.
      4. يقني؛ يدخل القنية السفن عن طريق ربط لهم على الماصات الزجاجية التي يبلغ قطرها محطة من 125-175 ميكرون. تهيئة تحميلها على الماصات الزجاجية وخزانات عازلة العازلة مع اجتماعات الأطراف.
        تنبيه: منع فقاعات الهواء من تشكيل في ماصات.
      5. ربط السفن على ماصات باستخدام الخيوط الجراحية في طب العيون.
    4. جبل غرف السفينة بناء على ميكر triocular مقلوبoscope مع مرفق كاميرا الفيديو. تشغيل الفيديو من خلال نظام قياس الفيديو الفرجار لفي قياسات الشاشة من السفن. 20
      1. تضغط عليهم في عملية من خطوتين. أولا، مع خزانات مملوءة اجتماعات الأطراف، على ارتفاع فوق سفينة تساوي الضغط 20 مم زئبق، يدويا فتح الصمامات والديوك في خطوط الخزان إلى السفينة. تفتيش السفينة بحثا عن علامات على تسرب حول العلاقات ونزولا على طول السفينة. ثانيا، رفع الخزانات إلى 60 مم زئبق وreinspect السفينة.
      2. مرة واحدة الضغط على 60 مم زئبقي، والسماح للسفن لتتوازن لمدة 30 دقيقة.
    5. من أجل تقييم توسع الأوعية ردا على أستيل كولين (10 -7 إلى 10 -4 م)، preconstrict السفينة إلى قطر 50-75٪ من الحد الأقصى قطرها باستخدام 1-3،0 × 10 -8 إلى 10 -7 M U46619. بعد السماح للسفينة لتحقيق الاستقرار لمدة 6 دقائق، إضافة أستيل إلى الحمام في خطوات مدة 2 دقيقة مثل أنتركيزات النهائي في الحمام هي 10 -7 و 10 -6، 10 -5 و 10 -4. قياس توسع الأوعية في المجموعات الثلاث.

    7. عزل القلب خارج الخلية مصفوفة

    1. تخدير C57BL / 6J السيطرة على الفئران وتصك / + الفئران مع وبدون علاج الببتيد مع isoflurane (5٪) وإجراء خلع عنق الرحم. استئصال قلوب بقطع مفتوح الصدر على طول عظمة القص. وترفع من القلب مع ملقط وإزالة القلب.
    2. وضع قلوب إزالتها في كوب وإضافة 15 مل مفرط التوتر 1٪ دوديسيل كبريتات الصوديوم (SDS). تستنهض الهمم قلوب في حل SDS 1٪ لمدة 18 ساعة في درجة حرارة الغرفة لتفريق الخلايا عن طريق إضافة شريط ضجة في حل SDS 1٪ ووضع الكأس على طبق من ضجة.
      تحذير: كن على علم بأن المصفوفة خارج الخلية سوف تتفكك إذا تركت فترة طويلة جدا في حل مفرط التوتر. على العكس من ذلك، إذا لم يتم تحريكها قلوب طويلة بما فيه الكفاية في حل مفرط التوتر، ثم سوف الخلايا غير صحيححل، وسوف يكون هناك حطام الخلايا المتبقية في الكأس.
    3. يغسل لمدة 30 دقيقة في 15 مل 0.5٪ تريتون X-100. ثم يغسل لمدة 15 دقيقة مع 15 مل من برنامج تلفزيوني. Decellularize كل قلب على حدة.
    4. الأداة الإضافية تجميد المصفوفة خارج الخلية في النيتروجين السائل وpowderize المصفوفة خارج الخلية القلب المجمدة مع هاون تبرد قبل ومدقة.
    5. جعل التعليق من المصفوفة المسحوق في برنامج تلفزيوني يحتوي على 1٪ المضادات الحيوية. حجم المضافة في معظم الحالات هو 300 ميكرولتر. يصوتن تعليق ل30 - 60 ق على الجليد على الإعداد عالية.
      ملاحظة: من المهم جدا أن العينة تبقي الباردة. كن على علم بأن تعليق غير لزجة جدا ويرجع ذلك إلى ارتفاع محتوى البروتين غليكان.
    6. تحديد تركيز البروتين باستخدام مقايسة برادفورد.
      ملاحظة: تأكد من وجود مضادات حيوية ومضادات للفطريات في التعليق. البنسلين / الستربتوميسين هي الأكثر شيوعا والموصى بها.

    8. تقييم إزفاء النووية من قبل Immunohistochemistراي

    1. لأطباق معطف والشرائح استخدام تركيز النهائي من 20 ميكروغرام / مل من المصفوفة خارج الخلية القلبية في برنامج تلفزيوني. الماصة 500 ميكرولتر من محلول القلب خارج الخلية مصفوفة في صحن 100 مم للطلاء و 150 ميكرولتر من حل المصفوفة خارج الخلية النهائي على شريحة.
    2. تمنع IRF5 بإضافة IRF5D في تركيز 50 ميكروغرام / مل لمدة 24 ساعة على الفئران myocytes القلب حديثي الولادة في الثقافة. ترك السيطرة الثقافات العضلية دون علاج.
    3. تقييم الاتجار IRF5 من العصارة الخلوية إلى النواة باستخدام المناعي وتحليل المجهري متحد البؤر. التعرف على العلامات الأخضر لIRF5، وتحديد دابي وصمة عار الأزرق للنواة
    4. تطبيق الأجسام المضادة الأولية مكافحة IRF5. تم استخدام الأجسام المضادة الأولية في التخفيف 1: 200 في برنامج تلفزيوني. احتضان الشرائح لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية، واتبع مع ثلاث خطوات غسل 5-مين. والأجسام المضادة الثانوية الماعز اليكسا 488 المسمى مكافحة فأر مفتش الأضداد.
    5. تمييع الأجسام المضادة الثانوية 1: 1000 دي lution في برنامج تلفزيوني. احتضان الضد الثانوية لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية. تحقيق وصمة عار النووية مع دابي. تمييع دابي 1: 1000 في برنامج تلفزيوني. تغسل الشرائح ما مجموعه 3 مرات لمدة 5 دقائق وإضافة دابي إلى الخطوة غسل الثالثة والأخيرة.
    6. الاتجار التقاط باستخدام المجهر متحد البؤر وحدة قياس مضان في نوى والعصارة الخلوية كما سبق وصفها 10. التعرف على العلامات الأخضر لIRF5، وتحديد دابي وصمة عار الأزرق للنواة. الخلايا التي تظهر نوى الزرقاء مع وضع العلامات الأخضر في نفوسهم تحتوي على تنشيط IRF5، التي يتم الاتجار بهم من العصارة الخلوية إلى النواة. وجدت لصق البطاقات الخضراء عندما لم يتم تنشيط IRF5 في العصارة الخلوية.
    7. تحليل الخلايا fluorescently المسمى بواسطة المجهر متحد البؤر باستخدام الهدف النفط 40X. استخدام الطول الموجي الإثارة من 488 نانومتر، وانبعاث موجات أكبر من 530 نانومتر لIRF5. استخدام الطول الموجي الإثارة من 360 نانومتر، والطول الموجي الانبعاثات من 460 نانومتر لرؤية دابي.

    الحمار = "jove_title"> 9. الإحصاء

    1. إجراء تحليل التباين (ANOVA) لاتخاذ تدابير المتكررة داخل وبين المجموعات. اتبع أنوفا مع تعديل بونفيروني للطلاب اختبار (ت). التعبير عن البيانات والخطأ المعياري للمتوسط.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

أظهرت النتائج أظهرت في الشكل 1 كيفية تصميم الببتيد. الرقم 1، أعلى اليسار، يظهر المنطقة (بين الأسهم الصفراء 2، والأحماض الأمينية (أأ) 425-436) في IRF5 الذي فسفرته من قبل عدد من تحركات. الرقم 1، الجزء العلوي الأيمن، يظهر البيضاوي الأصفر حيث يرتبط نطاق فسفرته IRF5 ل. وقد تناوب على هيكل مثنوي من 3DSH لمراقبة شق أو الوادي إلى اليسار من اللولب 2 (aa303-312). هذا هو المكان الذي يفترض مجال الفوسفات الذيل من IRF5 لربط عندما يتم تفعيلها بالكامل (أي سيرين فسفرته)، وتشكيل homodimer ويفترض حالته النشطة بيولوجيا.

في الشكل 2، وصفت النشاط ملزم تقاس التداخل biolayer. لتحديد أن IRF5D شرك الببتيد ليس سامة، تم تقييم انتشار وموت الخلايا المبرمج بعد معالجة جملتعلمي اللغة اإلنكليزية مع زيادة تركيزات IRF5D (الشكل 3). تم تخفيض ICAM-1، علامة التهابات، وIRF5 تعابير بعد علاج تصك / + الفئران مع IRF5D على النحو الذي يحدده تحليل لطخة غربية (الشكل 4). وقد انخفض عدد العدلات (NIMP) وCD64 على النحو الذي يحدده المناعية بعد العلاج مع IRF5D (الشكل 5). وتحسنت وظيفة بطانة الأوعية الدموية في الشرايين الوجهية من تصك / + الفئران بعد IRF5D مقارنة تصك / + الفئران من دون علاج IRF5D (الشكل 6). وتصور أعداد أكبر من IRF5 النوى إيجابية في myocytes مثقف على تصك / + مصفوفة القلب مقارنة مع C57BL / 6J مصفوفة القلب. أسفرت علاج الثقافات مع IRF5D في انخفاض عدد IRF5 النوى إيجابية (الشكل 7).

شكل 1
الشكل 1: 3D البروتين متطوره(ه) من IRF5. أ) يوضح الشكل العلوي الأيسر المنطقة وقد تم تصميم الببتيد ل. ب) المنطقة التي يتم فسفرته سلط الضوء من قبل اثنين من الأسهم الصفراء هي الأحماض الأمينية (أأ) 425-436 في IRF5. C) لوحة أقل يصور مجمع الوظيفي homodimeric. ويرد هذا الرقم homodimeric للعرض أسهل من المنطقة حيث يرتبط المجال ذيل فسفرته من IRF5 لتشكيل homodimer. وقد تم هذا الرقم تنطبق 21. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 2
الشكل 2: Biolayer التداخل من IRF5D. ويظهر هذا الرقم الربط من IRF5 إلى IRF5D المقررة من قبل biolaye ص التداخل. وأظهر تحليل البرامج التي IRF5 بربط IRF5D مع ك د 3.72 ± 0.75 × 10 -6 م (يعني ± SD، ن = 3). وقد تم هذا الرقم تنطبق 21. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل (3)
الشكل (3): انتشار الخلايا والخلايا. وتظهر هذه الرسوم البيانية أن زيادة تركيزات IRF5D ليس لها أي تأثير على تكاثر الخلايا (يسار) أو الخلايا (يمين)، ولم تغييرها عن طريق زيادة مستويات IRF5D. وقد تم هذا الرقم تنطبق 21 (يعني ± SD، ف <0.05، ن = 4).ك "> الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل (4)
الشكل 4: ICAM-1 وIRF5 التعبير في القلب. وقد انخفضت IRF5 (ب) التعبيرات ICAM-1 (A) وفي عضلة القلب من تصك + الفئران بعد العلاج IRF5D كما يتبين من لطخة غربية. تم تطبيع البيانات إلى السيطرة الأكتين تحميل (يعني ± SD، ف <0.05، ن = 3). وقد تم هذا الرقم تنطبق 21. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الرقم 5
الشكل (5):CD64 (A) وNIMP (ب) التعبير في القلب. وقد انخفض عدد حيدات / الضامة والعدلات بعد العلاج IRF5D كما يتبين من المناعية (يعني ± SD، * = ف <0.05، C57BL / 6J مقابل تصك / +، # = ع <0.025، تصك / + مقابل تصك / + + IRF5D، ن = 3، 10 صور في الضد). الأسهم تبرز حيدات / الضامة (A) والعدلات (B). القضبان على نطاق وهي 10 ميكرون. وقد تم هذا الرقم تنطبق 21. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل (6)
الشكل (6): وظيفة الخلية وتوسع الأوعية. تحسن إدارة IRF5D أستيل الناجم عن توسع الأوعية الشرايين الوجهية من تصك / + الفئران (يعني &# 177؛ SD، ف <0.05، ن = 6). وقد تم هذا الرقم تنطبق 21. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الرقم 7
الرقم 7: IRF5 إزفاء النووية من IRF5 في مثقف Myocytes مع تثبيط IRF5. IRF5 عن طريق تثبيط IRF5D (50 ميكروغرام / مل، 24 ساعة) يؤدي إلى عدد أقل من IRF5 النوى إيجابية في myocytes مثقف على تصك / + مصفوفة القلب وC57BL / 6J مصفوفة القلب. الأسهم تصور النوى إيجابية IRF5 (يعني ± SD، ف <0.05، ن = 3). شريط المقياس هو 5 ميكرون. وقد تم هذا الرقم تنطبق 21. الرجاء أنقرك هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

وكان الهدف هو تصميم المانع IRF5 لتوضيح دور IRF5 على الالتهاب والتليف، وظيفة الأوعية الدموية في قلوب تصك / + الفئران. النتائج هي التي IRF5D لم لحث على الانتشار أو موت الخلايا المبرمج. وعلاوة على ذلك، تم تخفيض الالتهاب وظيفة الأوعية الدموية تحسنت. وتشير هذه البيانات إلى أن IRF5 تلعب دورا الآلية هاما في تطوير التهاب وتليف في قلب تصك / + الفئران، وأنه لديه القدرة ليكون بمثابة الهدف العلاجي.

وكانت الخطوة الأولى لتصميم المانع. عندما تم تصميم الببتيد، يجب أن تؤخذ بعين الاعتبار عدة نقاط: طول تسلسل، هيكل الثانوي، وبقايا عرضة للأكسدة، وتكوين الأحماض الأمينية، amidation والسد، والأحماض الأمينية في N-محطة والأحماض الأمينية في محطة سي، ومرفق يجند. طول سلسلة المثالي هو بين 10-15 المخلفات لضمان أفضل عائد الكلي، وعدد أقل من الشوائب، وخفض التكلفة. ومن المجمدةتانت ليكون على بينة من الهياكل الثانوية مثل تشكيل ورقة بيتا. تشكيل ورقة بيتا يمكن أن يؤدي إلى درجة عالية من تسلسل حذفها. تجنب بقايا عرضة للأكسدة التي يمكن أن تؤدي إلى جنب ردود الفعل التي يمكن أن تؤثر على فعالية الببتيد. للسيطرة على الذوبان، والتوليف، وتنقية، والحفاظ على تكوين اللبنات الأساسية من الأحماض الأمينية لالببتيد أقل من 50٪ من الأحماض الأمينية مسعور وضمان عدم وجود ما يكفي من بقايا المشحونة. N- وج ترميني تحتاج إلى اختيار في حالة غير مشحونة. تجنب الغلوتامات في N-محطة وتجنب السيستين، البرولين، والجلايسين في محطة سي. إضافة فاصل بين الببتيد ويجند للحد قابلة للطي. ولذلك، فإنها قد تحتاج إلى أن ملثمين باعتبارها أميد دون تهمة.

واستند تصميم IRF5D على هيكل 3D. 17 ألف مير، وصف IRF5D (ELDWDADDIRLQIDNPD) صمم، حيث تم استبداله باللاعب اسبارتاتي (D) ل(S) سيرين لتقليد الفسفرة في IRF5 في 421-438 (ELSWSADSIRLQISNPD). هذهنهج مستقيم إلى الأمام بسبب تكنولوجيا الكمبيوتر الجديدة. عيب هذا الأسلوب هو الاستثمار الأولي في البرنامج. ومع ذلك، هناك وفورات إجمالية كبيرة بالمقارنة مع التكاليف المرتبطة العمل والمواد المستخدمة في تصميم طرق المانع أخرى، مثل عرض فج 22. في خطوة حاسمة في هذه العملية هو توافر هيكل 3D من البروتين المستهدفة والمواقع المحتملة ملزمة. الحد من تصميم المانع هو إمكانية أن يتم اختيار منطقة خاطئة والمانع لا يسد البروتين المطلوب. والاحتمال الاخر هو حجب جزئي من البروتين المطلوب.

مع الببتيد في يد ينتقل التركيز إلى اختبار سمية الببتيد شرك عن طريق قياس بقاء الخلية. أولا، تم اختبار IRF5D باستخدام تركيزات مختلفة. IRF5D لا يسبب موت الخلايا المبرمج ولا يشجع انتشار حتى بتركيزات أعلى. الأساليب المستخدمة هنا هي ستاndard وإعطاء بيانات موثوق بها. وقد استخدم bioreduction نتروبلو صبغ لسنوات عديدة 23. وقد تم اختيار هذا الاختبار لما له من استنساخ والوقت فعالية بالمقارنة مع الطرق الأخرى، على سبيل المثال، عد الخلايا يدويا التي تستغرق وقتا طويلا جدا. باستخدام BrdU لتسمية الخلايا المتكاثرة يتطلب النشاط الإشعاعي، وهي حساسة، ولكن يمكن أن تكون خطرة. وbioreduction نتروبلو صبغ كفاءة في استهلاك الوقت ولا يتطلب النشاط الإشعاعي. القيود المفروضة على bioreduction نتروبلو صبغ سائدة في الدراسات التي تنطوي على إمكانات oxido التخفيض. أينما يحدث إمكانات oxido الاختزالية، ايجابيات كاذبة هي أكثر تواترا 24.

وقد اكتسب عزل المصفوفة خارج الخلية عن طريق إذابة كل خلايا عضلة القلب مع محلول عالي التوتر. وقد تطورت البروتوكول من الدراسات باستخدام جهاز نضح إلى عملية التحريض بسيطة 25. ودرةوجرى تقييم أيون تجريبيا من خلال اتخاذ نقاط زمنية مختلفة: 12، 14، 16، 18، 20 ساعة. تم تحليل المصفوفة خارج الخلية لالحطام الخلية بعد يشير زمنية مختلفة 25. المزالق الرئيسية decellularization هي تلوث الفطرية والبكتيرية. ينصح لاستخدام المركبات المضادة للفطريات ومضادة للميكروبات. لأطباق معطف، وpowderized المصفوفة خارج الخلية، وعلقت في برنامج تلفزيوني. ويرجع ذلك إلى نسبة عالية من المواد المرنة، العينة لا تذوب تماما. صوتنة على إعدادات أعلى كثافة من دون تسخين العينة أمر حتمي. وميزة استخدام المصفوفة خارج الخلية على وكلاء الطلاء الأخرى هي أن المصفوفة خارج الخلية هي خليط من البروتينات التي تحدث من الناحية الفسيولوجية وأنه يربط بين المجراة في المقايسات المختبر. هذا النهج هو أكثر الفسيولوجية من طلاء مع مركب واحد مثل الكولاجين أو فبرونيكتين وحدها. كما انه يعطي نظرة ثاقبة على أهمية اشارة بدأها التغييرات فيالمصفوفة خارج الخلية. وجود قيود على هذا البروتوكول هو بوضوح تدمير المصفوفة وإزالة مكونات إشارات مهمة من المصفوفة. لا بد من توخي الحذر عند decellularizing المصفوفة.

استخدام أنسجة سليمة سفن معزولة مثل يفتح إمكانية لدراسة توسع الأوعية في الموقع ومع الحد الأدنى من التدخل من الانزيمات. هذا الأسلوب هو الأنسب لدراسة وظيفة بطانة الأوعية الدموية في مجموعة متنوعة من الحيوانات والأمراض. كان Duling أول من وصف هذا الأسلوب في الخنازير. السفن في خنزير عميقة في النسيج. ومن هنا وصفت الصحيفة عن تثبيت الجيلاتين. استخدمت الدراسات المبكرة في توسع الأوعية الشرايين السباتية 26. نحن صقل تقنية لاستخدام الشرايين الوجهية 27. الشرايين الوجهية هي أكثر ما يعادل في الحجم إلى الشريان المقاومة من الشريان السباتي. وجود قيود على هذا البروتوكول هو هشاشة السفينة، التي تحتاج إلى إزالة requirin سليمةز الممارسة.

وباختصار، IRF5D تطوير مكنتنا من تقييم مشاركة IRF5 في التهاب وتليف في القلب. وأدى ذلك إلى بيانات واردة في هذه الدراسة. IRF5D هو أداة مفيدة لدراسة آليات IRF5 في مختلف الأمراض وكذلك يشير IRF5 كهدف يمكن عقار 28.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
 Triton X 100 Sigma Aldrich X100- 100ml
Alexa 488-labeled goat anti-mouse IgG antibody  Thermo Fisher A11001
Bardford reagent Thermo Fisher 23200 Pierce 
Biosensors Forte-Bio MR18-0009
CD64 (H-250) Santa Cruz Biotechnologies sc-15364
CellEvent Caspase-3/7 Substrate Thermo Fisher/Life Technologies C10427
CellTiter AQueous One Solution Cell Proliferation Assay kit Promega G3580 Promega
DAPI (4′,6-diamidino-2-phenylindole) Thermo Fisher D-1306 1:1,000 dilution in PBS
donkey anti rat Alexa 488 Thermo Fisher A-21208 1:1,000 dilution in PBS
ECL plus GE healthcare/Amersham RPN2133 After a lot of trial and error we came back to this one
Eclipse TE 200-U microscope with EZ C1 laser scanning software Nikon
goat anti rabbit Alexa 488 Thermo Fisher A-11008 1:1,000 dilution in PBS
HRP  anti-goat Santa Cruz Biotechnologies sc-516086 !:10,000 dilution in TBS
HRP donkey anti-mouse Santa Cruz Biotechnologies sc-2315 1:10,000 dilution in TBS
ICAM-1 antibody Santa Cruz Biotechnologies sc-1511 1:200 dilution in PBS
IRF5 antibody (H56) Santa Cruz Biotechnologies sc-98651
Micro plate reader Elx800 Biotek
NIMP neutrophil marker Santa Cruz Biotechnologies sc-133821 1:200 dilution in PBS
Octet RED Forte Bio protein-protein binding
Peptide design  Medit SA software RCSB.org
Recombinant IRF5 protein synthesis TopGene Technologies protein expression, synthesis service
sodium dodecyl phosphate Sigma Aldrich 436143 detergent
Ketamine Pharmacy Schedule III controlled substance, presciption required 
Xylazine MedVet
3.5X-45X Trinocular Dissecting Zoom Stereo Microscope with Gooseneck LED Lights Am Scope SKU: SM-1TSX-L6W
Zeba Desalting Columns Thermofisher 2161515
Endothelial Basal Media EBM Bullet kit Lonza CC-3124 kit contains growth supplemets
VIA-100K  Boeckeler Instruments
4 - 15% TGX gel Bio-Rad 5671081
MedSuMo software Medit, Palaiseau, France
Laemmli Buffer BioRad

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Bi, X., et al. Loss of interferon regulatory factor 5 (IRF5) expression in human ductal carcinoma correlates with disease stage and contributes to metastasis. Breast Cancer Res. 13 (6), 111 (2011).
  2. Dideberg, V., et al. An insertion-deletion polymorphism in the interferon regulatory Factor 5 (IRF5) gene confers risk of inflammatory bowel diseases. Hum Mol Genet. 16 (24), 3008-3016 (2007).
  3. Graham, R. R., et al. A common haplotype of interferon regulatory factor 5 (IRF5) regulates splicing and expression and is associated with increased risk of systemic lupus erythematosus. Nat.Genet. 38 (5), 550-555 (2006).
  4. Krausgruber, T., et al. IRF5 promotes inflammatory macrophage polarization and TH1-TH17 responses. Nat. Immunol. 12 (3), 231-238 (2011).
  5. Eames, H. L., Corbin, A. L., Udalova, I. A. Interferon regulatory factor 5 in human autoimmunity and murine models of autoimmune disease. Transl Res. 167 (1), 167-182 (2016).
  6. Mayes, M. D., et al. Immunochip analysis identifies multiple susceptibility Loci for systemic sclerosis. Am J Hum Genet. 94 (1), 47-61 (2014).
  7. Dimitroulas, T., et al. Micro-and Macrovascular Treatment Targets in Scleroderma Heart Disease. Curr Pharm Des. , (2013).
  8. Botstein, G. R., LeRoy, E. C. Primary heart disease in systemic sclerosis (scleroderma): advances in clinical and pathologic features, pathogenesis, and new therapeutic approaches. Am Heart J. 102 (5), 913-919 (1981).
  9. Oram, S., Stokes, W. The heart in scleroderma. Br Heart J. 23 (3), 243-259 (1961).
  10. Xu, H., et al. 4F decreases IRF5 expression and activation in hearts of tight-skin mice. PLoS One. 7 (12), 52046 (2012).
  11. Steen, V. The heart in systemic sclerosis. Curr.Rheumatol.Rep. 6 (2), 137-140 (2004).
  12. Deshpande, N., et al. The RCSB Protein Data Bank: a redesigned query system and relational database based on the mmCIF schema. Nucleic Acids Res. 33, Database issue D233-D237 (2005).
  13. Concepcion, J., et al. Label-free detection of biomolecular interactions using biolayer interferometry for kinetic characterization. Comb Chem High Throughput Screen. 12 (8), 791-800 (2009).
  14. Matthew, A. Current biosensor technologies in drug discovery. Drug Discovery. , 69 (2006).
  15. Doppelt-Azeroual, O., Moriaud, F., Adcock, S. A., Delfaud, F. A review of MED-SuMo applications. Infect Disord Drug Targets. 9 (3), 344-357 (2009).
  16. Kim, S., Jang, J., Yu, J., Chang, J. Single mucosal immunization of recombinant adenovirus-based vaccine expressing F1 protein fragment induces protective mucosal immunity against respiratory syncytial virus infection. Vaccine. 28 (22), 3801-3808 (2010).
  17. Frenzel, D., Willbold, D. Kinetic Titration Series with Biolayer Interferometry. PloS one. 9 (9), 106882 (2014).
  18. Ou, J., et al. L-4F, an apolipoprotein A-1 mimetic, dramatically improves vasodilation in hypercholesterolemia and sickle cell disease. Circulation. 107 (18), 2337-2341 (2003).
  19. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal.Biochem. 72 (1-2), 248-254 (1976).
  20. Bauer, P. M., et al. Compensatory phosphorylation and protein-protein interactions revealed by loss of function and gain of function mutants of multiple serine phosphorylation sites in endothelial nitric-oxide synthase. J.Biol.Chem. 278 (17), 14841-14849 (2003).
  21. Weihrauch, D., et al. An IRF5 Decoy Peptide Reduces Myocardial Inflammation and Fibrosis and Improves Endothelial Cell Function in Tight-Skin Mice. PLoS One. 11 (4), 0151999 (2016).
  22. Hoogenboom, H. R., et al. Antibody phage display technology and its applications. Immunotechnology. 4 (1), 1-20 (1998).
  23. Roehm, N. W., Rodgers, G. H., Hatfield, S. M., Glasebrook, A. L. An improved colorimetric assay for cell proliferation and viability utilizing the tetrazolium salt XTT. J Immunol Methods. 142 (2), 257-265 (1991).
  24. Van Tonder, A., Joubert, A. M., Cromarty, A. D. Limitations of the 3-(4, 5-dimethylthiazol-2-yl)-2, 5-diphenyl-2H-tetrazolium bromide (MTT) assay when compared to three commonly used cell enumeration assays. BMC Res Notes. 8 (1), 1 (2015).
  25. Ott, H. C., et al. Perfusion-decellularized matrix: using nature's platform to engineer a bioartificial heart. Nat Med. 14 (2), 213-221 (2008).
  26. Ou, J., et al. L-4F, an apolipoprotein A-1 mimetic, dramatically improves vasodilation in hypercholesterolemia and sickle cell disease. Circulation. 107 (18), 2337-2341 (2003).
  27. Weihrauch, D., et al. Effects of D-4F on vasodilation, oxidative stress, angiostatin, myocardial inflammation, and angiogenic potential in tight-skin mice. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 293 (3), 1432-1441 (2007).
  28. Roy, S., P, P. IRF-5 - A New Link to Autoimmune Diseases. Autoimmune Disorders - Pathogenetic Aspects. Mavragani, C. , 35 (2011).

Tags

علم المناعة، العدد 121، التهاب، والتليف، عضلة القلب، وظيفة بطانة الأوعية الدموية، IRF5، تصلب الجلد
توسع الأوعية السفن المعزولة وعزل مصفوفة خارج الخلية من الفئران ضيق الجلد
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Weihrauch, D., Krolikowski, J. G.,More

Weihrauch, D., Krolikowski, J. G., Jones, D. W., Zaman, T., Bamkole, O., Struve, J., Pagel, P. S., Lohr, N. L., Pritchard, Jr., K. A. Vasodilation of Isolated Vessels and the Isolation of the Extracellular Matrix of Tight-skin Mice. J. Vis. Exp. (121), e55036, doi:10.3791/55036 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter