Introduction
细胞生长和细胞死亡的免疫应答的调节是至关重要的转录因子家族的干扰素调节因子的作用。 IRF5被高亮显示为用于免疫反应类型1之间的调控,炎症促进反应和2型,免疫应答靶向组织修复的关键。 IRF5是在癌症1,和自身免疫2,3,4,5键。
紧皮肤小鼠(TSK / +)为组织纤维化和硬皮病一个模型由于在原纤蛋白-1基因的复制突变。此突变导致一个紧皮肤和增加结缔组织。这些小鼠发展心肌炎症,纤维化和最后心脏衰竭5,6,7,> 8,9。硬皮病是影响美国6约有15万名患者的自身免疫性疾病纤维化。这种疾病的特点是内部器官包括心脏7,8,9,10,11的纤维化。
该研究的天性,需要抑制肽的设计。被选择了该软件的方法利用噬菌体展示传统的方法。的软件的方法是更容易和耗时更少。该RCSB数据库是用来确定适当的结合位点12。研究新设计的肽与重组蛋白的相互作用和集中的结合参数,使用一种技术,称为生物层干涉测量法。生物层干涉测量是基于生物传感器techniqUE决定使用生物传感器和具有约束力的样本结合亲和力,关联和解除关联。该传感器可以是荧光,luminescently,辐射测量和比色标记。测量是基于质量增加或耗竭类似关联和解除关联13,14。本研究的目的是要了解IRF5的心肌炎症和纤维化中的作用。目标是洞察IRF5的在组织纤维化和硬皮病的发展中的作用。
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Protocol
本研究是在严格按照指南中的建议,美国国立卫生研究院的实验动物的护理和使用进行。该协议被批准的机构动物护理和使用委员会(协议:AUA#1517)。所有涉及小鼠的研究是与小灵通的政策相一致进行。
1.诱饵肽的设计
- 找到IRF5的3D结构,立足于它的设计。设计一个17聚体,称为IRF5D(ELDWDADDIRLQIDNPD),其中,天门冬氨酸(D)取代为丝氨酸(S)在421模仿磷酸化IRF5 - 438(ELSWSADSIRLQISNPD)。 3D巯基和激活IRF5的机制的认识, 即 ,丝氨酸磷酸化,分析表明,一种策略靶向IRF5是创造一个诱饵肽。 见图 1。以确定在三维结构的最佳区域,可使用分子建模软件设计小moleculES和肽15。
注意:在此过程中的关键步骤是目标蛋白质的三维结构和其可能的结合位点的可用性。 IRF5的三维结构,准确地反映后,磷酸化如何IRF5二聚化。门冬氨酸丝氨酸或苏氨酸的替代是外包。该肽不被链接到IRF5单独合成。 - 简单地通过用基于原序列S.D。复制磷酸域(ELSWSADSIRLQISNPD,使与AC-ELDWDADDIRLQIDNPD-NH 2(IRF5D)的氨基酸序列的新的肽IRF5S。
2.生物层干涉(BLI)
注:重组IRF5纯化是外包的。 16
- 生物素标记IRF5以1:1的摩尔比:1的生物素与掺入长链连接基生物素化试剂配体。长链连接器将确保一个更加积极和同质西甲ND面。
- 加入1毫升2毫克/毫升IRF5至20mM生物素试剂的13微升或如果需要增加体积。在冰上孵育2小时。标记后,可使用脱盐离心柱以从标记蛋白去除反应混合物。
- 孵育与生物传感器15分钟的生物素标记的配体。避免过度标记和调整为1:1的摩尔比。标记后,可使用脱盐离心柱以从标记蛋白去除反应混合物。
- 孵育生物素标记IRF5生物传感器在不同浓度的IRF5诱饵肽10分钟。结合和解离速率来确定如所述10,17,18。
3.细胞凋亡与增殖检测
- 通过四氮唑的生物还原增殖试验
- 辖IRF5D稀释在PBS中(1毫克/公斤/天,在20 G鼠标通过一个标准的洁肤技术或通过单独的PBS注入量20μL)皮下注射27号针头啧/ +和C57BL / 6J小鼠21天。
- 麻醉用异氟烷(5%)的小鼠,并执行一个颈脱位。通过切除切开胸部沿着胸骨的心。提起用钳子心脏,取出心脏。
- 裂解用含有50mM的Tris-HCl pH 7.4的,通过Bradford测定法19 0.5%的NP-40,250 mM氯化钠,5mM的EDTA,50mM的氟化钠10和确定蛋白质浓度的蛋白质裂解缓冲液的心。
- 以如在第7节中所述分离之C57B1 / 6J心脏矩阵涂层96孔板稀释的PBS悬浮之C57B1 / 6J心脏基质至20微克/ mL的浓度,并添加之C57B1 / 6J心脏到每个30微升良好。让它在孵化器在37℃沉降过夜。
- 使用500毫升的内皮细胞基础米培养人脐静脉细胞EDIA用0.4%牛脑提取物,0.1%抗坏血酸,0.1%氢化可的松,0.1%的人表皮生长因子,2%胎牛血清和0.1%庆大霉素/两性霉素B添加到它。培养上在5%的CO 2和95%的室内空气,每孔25,000个细胞的密度96孔板的细胞。与0之间增加IRF5D的浓度刺激 - 100微克/毫升到介质(体积为0和50微升/毫升之间)。
- 确定细胞增殖三天后和评估酶标仪吸光度差异。该反应的MTS四唑鎓化合物的生物还原。 NADPH或NADH被在代谢活性细胞的脱氢酶产生的。
- 作为在MTS四唑鎓化合物被储存在-20℃下冷冻,解冻化合物在室温下慢慢地在约90分钟。吸取20微升到96孔板的各孔中,培养基中添加100微升到它。在37℃下孵育板用于在腐殖1至4小时dified,5%的CO 2室中。
- 在490纳米的波长读取吸光度。
- 通过 caspase活性细胞凋亡检测
注:实验装置是与上述相同的3.1.1至3.1.5。- 刺激细胞用0之间增加IRF5D浓度 - 100微克/毫升到介质。
- 添加绿检测到胱天蛋白酶3/7衬底的内皮细胞,并在37°C孵育它为30分钟。同的五百三十零分之五百〇二纳米的吸收/发射波长同时评估对酶标仪的荧光。一式三份运行实验。
注:绿色荧光剂是结合到核酸结合染料的4个氨基酸的肽。当胱天蛋白酶3和7的激活后裂解该试剂变成荧光。该荧光被测量。它的优点是在洗涤步骤的减少。
4.在听到IRF5和ICAM-1表达的评估ŧ
- 通过一个标准的洁肤技术或PBS单独啧/ +和C57BL / 6J小鼠一次是用27号针头管理IRF5D在PBS稀释(1毫克/公斤/天,在20 G鼠标注入量20μL)皮下注射每天,持续21天。
- 麻醉用异氟烷(5%)的小鼠,并执行一个颈脱位。通过切除切开胸部沿着胸骨的心。提起用钳子心脏,取出心脏。
- 裂解用含有50mM的Tris-HCl pH 7.4的,通过Bradford测定法19 0.5%的NP-40,250 mM氯化钠,5mM的EDTA,50mM的氟化钠10和确定蛋白质浓度的蛋白质裂解缓冲液的心。
- 在心中的裂解液进行免疫印迹。稀释样品至25微克总蛋白和40微升用含有5%巯基乙醇的Laemmli样品缓冲液的体积。在50毫伏15%TGX凝胶5分钟 - 运行在一个4样本。加大电压为100 mV的1小时,直到染料前沿耗尽。
- 放置在1×转移缓冲液的凝胶(25毫摩尔Tris,190毫甘氨酸,20%甲醇,如果需要的话调节pH至8.3),并孵育10 - 15分钟。
- 装配转移三明治(海绵,过滤器,胶,纤维素膜,过滤器,海绵)。确保无气泡被困在中间。印迹应当是在阴极和阳极上的凝胶。在寒冷的房间在100的mA 1小时。
- 第二天,漂洗印迹,然后方框在5%脱脂奶粉的背景,在室温下30分钟。冲洗用Tris印迹缓冲含有5%吐温三次盐水,每次5分钟。
- 用初级多克隆抗体IRF5或ICAM-1的第一抗体孵育过夜。稀释在Tris抗体以1缓冲盐水:1000稀释。
- 稀释在Tris二次抗体缓冲盐水孵育印迹在室温下1小时。对于二级抗体,使用辣根过氧化物酶偶联的驴抗小鼠IgG(1:10,000)和辣根过氧化物酶的驴抗山羊IgG(1:10,000)分别。
- 应用化学发光的印迹根据制造商的协议混合组分后,孵育3分钟以发光的感兴趣的频带。揭露印迹X射线胶片。使用ImageJ的测量密度。正常化的密度值向控制带10。
5. IRF5后抑制炎症细胞数的评估
- 通过标准洁肤技术或通过PBS施用IRF5D在PBS(1毫克/公斤/天)皮下用27号针头稀释独自啧/ +和C57BL / 6J小鼠,持续21天。
- 麻醉用异氟烷(5%)的小鼠,并执行一个颈脱位。通过切除切开胸部沿着胸骨的心。提起用钳子心脏,取出心脏。卡扣冻结并存储切除心,直到分析。
- 安装在做卷烟冰冻的心UE持有适合于所用的低温恒温器。削减免疫组化低温恒温器10微米厚的冰冻切片。
- 固定用1%多聚甲醛的磷酸盐缓冲盐水的冷冻切片在室温下20分钟。透用0.5%Triton-X 100的PBS切片5分钟。
注意:多聚甲醛是一种致癌物质监管,需要小心处理。 - 在PBS 200:稀释的抗兔CD64,单核细胞/巨噬细胞标记1。适用于固定部分,并在37℃孵育30分钟。
- 在室温下洗载玻片在PBS中5分钟三次。
- 在PBS 200:稀释的抗大鼠NIMP,伯嗜中性粒细胞标记物1。适用于固定部分,并在37℃孵育30分钟。
- 在室温下洗载玻片5分钟,用PBS三次。
- 稀释二级抗体抗兔Alexa的488缀合和抗大鼠的Alexa 488缀合的1:在PBS 200。
- 应用抗兔Alexa的488缀合和抗大鼠的Alexa在37℃下488偶联的二抗于30分钟的部分相应。抗体的量根据该部分的大小而变化。量应慷慨覆盖部分。在大多数情况下,体积为μL100和200之间。
- 用4',6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI),为在一个1核染色剂:1,000稀释在PBS中。加入1微升到1毫升的PBS,并在最后一次洗涤步骤使用DAPI。水性安装介质添加到盖玻片,并把它拖到幻灯片。
- 分析通过使用40X油浸物镜聚焦显微镜的荧光标记部分。使用激发波长大于530纳米的488和发射波长为CD64和NIMP。 DAPI与360纳米的激发,在蓝色460纳米发射。通过各自不同的标签区分单核/巨噬细胞和中性粒细胞(N =每抗体10幅图像,各组在3个不同的小鼠)和计数。表达数据作为计数的细胞数。
- 麻醉C57BL / 6J对照小鼠和TSK / +小鼠具有和不具有氯胺酮肽治疗(80 - 100毫克/千克)/赛拉嗪(10 - 12.5毫克/千克)的混合物。注射氯胺酮/甲苯噻嗪混合腹腔。手动抑制鼠标。
- 使用25号或更小针头。针插入腹部的右下象限。注射前撤出柱塞,以确保针不进入血管或肠。
- 一旦麻醉足够水平已经达到,确保鼠标在仰卧位,用酒精擦拭浸湿纱布垫皮毛,并用剪刀打开胸腔,取出心脏。
注:放血将安乐死鼠标和通过在脉管释放压力从而减少血管时减少出血使清扫容易。- 打开皮肤全光照ガ剪刀,从胸部横向切割到颌骨小心以不干扰下面的组织朝向下颚的前部。
- 通过消除周围的软组织解剖动脉面神经。
- 注意:同时保持在MOPS缓冲液沐浴露组织不要伤害的面神经动脉血管或拖船(2.0毫米氯化钙2·2H 2 O,0.02毫摩尔EDTA,5.0毫米的葡萄糖,4.7毫米氯化钾,1.17毫米硫酸镁4·7H 2 0,3.0毫米MOPS,145毫米氯化钠,1.2毫米和 NaH 2 PO 4·H 2 O,2.0毫米丙酮酸),以防止干燥。一个双目立体变焦解剖显微镜(3.5X的倍率45X)和光纤光源下进行。
- 隔离动脉面神经。
- 掌握面神经近端第一分叉和远端到动脉将被削减。切断从父动脉,颈外动脉的动脉。取出arterie面神经期从对照小鼠,与无IRF5D治疗啧/ +小鼠。
- 同时仍保持在镊子的动脉,切断两个分支脱落面神经,使容器内的被轻轻地把而任何未切割的周围组织可以识别并切断。
- 直到切割女儿都动脉释放血管分叉处继续这种方式。没有必要对之前从取出心脏在脉管切削由于安心压力夹紧血管。把容器在MOPS缓冲液,而另一面神经动脉被解剖并分离。
- 175微米 - 用125终端直径把它们绑到玻璃吸管导管插入血管。预紧的玻璃吸管和缓冲病险水库MOPS缓冲。
注意:从移液器防止形成气泡。 - 扎到血管用眼科缝线缝合的移液器。
- 安装在一个倒triocular MICR容器室用摄像机附着的Oscope。运行通过视频卡尺测量系统的视频在血管屏幕测量。 20
- 加压它们在两个步骤的过程。首先,在容器等于20毫米汞柱压力之上的高度的MOPS的填充水库,手动打开在储线到容器中的活塞阀。检查周围的关系上下船的长度泄漏的迹象容器中。第二,提高水库60毫米汞柱和复验的容器。
- 一旦在60毫米汞柱压力,使容器中平衡30分钟。
- 为了响应于评估血管舒张对乙酰胆碱(10 -7至10 -4 M),preconstrict容器到一个直径50 - 3.0×10 -8至10 -7 M U46619 -使用1其最大直径的75%。允许后该容器,以稳定为6分钟,在2分钟的持续时间的步骤中添加乙酰胆碱浴,使得最终浓度在浴是10 -7,10 -6,10 -5,10 -4。测量在所有三个组中的血管舒张。
- 麻醉C57BL / 6J对照小鼠和TSK / +小鼠有和没有用异氟烷(5%)的肽治疗,并执行一个颈脱位。通过切除切开胸部沿着胸骨的心。提起用钳子心脏,取出心脏。
- 把除去心中到烧杯中,并添加15毫升高渗1%十二烷基硫酸钠(SDS)。搅动18小时的1%SDS溶液的心在室温下加入搅拌棒的1%SDS溶液,并把烧杯上的轰动板,打破了细胞。
注意:请注意,如果离开太久的高渗溶液胞外基质会瓦解。相反,如果心中没有搅动足够长的时间在高渗溶液,然后将细胞将不能正确溶解并且会有残留在烧杯细胞碎片。 - 洗在15毫升0.5%的Triton X-100的30分钟。然后洗用15毫升的PBS 15分钟。单独Decellularize每个心脏。
- 卡扣冷冻在液氮中的细胞外基质和powderize用预冷却的研钵和杵将冷冻的心脏细胞外基质。
- 使悬浮液在含有1%抗生素的PBS粉碎基质。在大多数情况下,加入的量是300微升。超声处理30暂停 - 在高设置上冰60秒。
注意:这是非常重要的是,样品保持冷。注意,该悬浮液是非常粘稠由于高蛋白质聚糖含量。 - 确定使用Bradford测定蛋白质浓度。
注:确保有在悬浮抗生物和抗真菌。青霉素/链霉素是最常用的,并建议。 - 涂覆菜肴和滑动用20微克/毫升在PBS中的心脏细胞外基质的终浓度。吸取500μL心脏细胞外基质的解决方案为100毫米的菜涂层和最终的细胞外基质的解决方案到幻灯片的150微升。
- 通过在50微克/毫升浓度添加IRF5D 24小时培养中,以大鼠新生心肌细胞抑制IRF5。离开控制心肌细胞培养治疗。
- 从细胞质到细胞核用免疫荧光评估IRF5的贩运和共聚焦显微镜分析。识别环保标签的IRF5,确定蓝色DAPI染色的核
- 应用的主要抗IRF5抗体。 1:200稀释在PBS中:初级抗体进行1使用。温育30分钟的幻灯片在37℃,并按照与3个5分钟的洗涤步骤。二级抗体是Alexa的488标记的山羊抗小鼠IgG抗体。
- 稀释二级抗体1:1000二lution于PBS中。孵育二级抗体进行30分钟,在37℃。实现与DAPI核染色。在PBS 1000:稀释DAPI 1。洗载玻片共3次,每次5分钟,并添加DAPI到第三和最后的洗涤步骤。
- 通过使用共聚焦显微镜并在细胞核测量荧光强度和细胞溶质如先前捕获贩卖描述10。识别环保标签的IRF5,确定蓝色DAPI染色的细胞核。表现出与它们绿色标记蓝色细胞核细胞含有活化IRF5,它从细胞质至细胞核投放。当IRF5未激活绿色标记在胞质溶胶中找到。
- 分析荧光标记的细胞通过使用40X油浸物镜聚焦显微镜。使用的用于IRF5大于530纳米488纳米波长和发射波长的激发波长。使用360nm的激发波长和460nm的为DAPI的可视化的发光波长。
- 内部和群体之间的重复测量进行方差分析的分析。按照ANOVA与学生t检验邦弗朗尼的修改。表达数据以平均值的标准误差。
IRF5后抑制细胞6.依赖性舒张
7.隔离心脏细胞外基质的
8.评估核移位通过ImmunohistochemistRY
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Representative Results
在图1中展示了结果表明如何设计的肽。 图1,左上,示出了由多个激酶磷酸化在IRF5的区域(2黄色箭头之间,氨基酸(AA)425-436)。 图1,右上,显示了一个黄色椭圆形,其中IRF5的磷酸化结构域结合。 3DSH的二聚结构被旋转以观察一个裂口或谷到螺旋2(aa303-312)的左侧。这是IRF5的磷酸尾域假定当它被完全激活( 即 ,丝氨酸磷酸化),形成了同型二聚体和其假定生物活性状态结合。
在图2中,通过生物层干涉测量的结合活性被描述。要确定诱饵肽IRF5D是没有毒性,细胞增殖和凋亡治疗的C后评估厄尔随着IRF5D的浓度( 图3)。 ICAM-1,炎性标记物,和IRF5表达水平通过免疫印迹分析( 图4)来确定治疗与IRF5D所述啧/ +小鼠后减少。通过免疫组化与IRF5D治疗( 图5)后确定的中性粒细胞(NIMP)和CD64的数量明显下降。 IRF5D相比啧/ +小鼠未经IRF5D处理( 图6)之后在啧/ +小鼠的面神经血管内皮功能的改善。相比C57BL / 6J心脏基质在啧/ +心肌基质培养细胞IRF5阳性核的更大的数字被可视化。与IRF5D培养物的处理导致减少IRF5阳性细胞核( 图7)的数量。
图1:3D 蛋白StructurIRF5电子。 A)的左上图显示了肽被设计用于该区域。 B)正被磷酸化由两个黄色箭头突出的地区是氨基酸(AA)425 - 436 IRF5。 C)的下部面板描绘了同二聚体功能复杂。同二聚体数字提出了哪里IRF5的磷酸化尾巴域结合,形成同源二聚体区域更容易查看。这个数字,已经出版21。 请点击此处查看该图的放大版本。
图2:IRF5D 的生物层干涉。此图显示了结合IRF5的至IRF5D由biolaye评估 - [R干涉。分析软件显示,IRF5结合与3.72±0.75×10 -6 M A K d可IRF5D(平均值±SD,N = 3)。这个数字,已经出版21。 请点击此处查看该图的放大版本。
图3: 细胞增殖和凋亡。这些条形图显示IRF5D增加浓度对细胞增殖(左)或凋亡(右)没有影响,并没有被增加IRF5D的水平改变。这个数字,已经出版21(平均值±SD,P <0.05,N = 4)。K“> 点击此处查看该图的放大版本。
图4: 在心脏ICAM-1和IRF5表达。 ICAM-1(A)和IRF5(B)的表达通过Western印迹证明了啧+小鼠IRF5D治疗后心肌明显降低。数据被归一化的肌动蛋白上样对照(平均值±标准差,P <0.05,n = 3时)。这个数字,已经出版21。 请点击此处查看该图的放大版本。
图5:CD64(A)和NIMP(B)表达的心。这表现在免疫IRF5D处理后的单核/巨噬细胞和中性粒细胞的数量减少(平均值±SD,* = P <0.05,C57BL / 6J与啧/ +;#= P <0.025,啧/ +与啧/ ++ IRF5D; n = 3时,每个抗体10个图像)。箭头突出显示单核细胞/巨噬细胞(A)和嗜中性粒细胞(B)中 。规模酒吧10微米。这个数字,已经出版21。 请点击此处查看该图的放大版本。
图6:细胞功能和舒张。 IRF5D管理改进啧/ +小鼠的血管面神经乙酰胆碱引起的血管扩张(意指#177; SD,P <0.05,N = 6)。这个数字,已经出版21。 请点击此处查看该图的放大版本。
图7:IRF5 的IRF5核转与IRF5抑制心肌细胞培养。通过IRF5D IRF5抑制(50微克/毫升,24小时)将导致更少的IRF5阳性细胞核在啧/ +心脏基质和C57BL / 6J心肌基质培养细胞。箭头描绘IRF5阳性细胞核(平均值±SD,P <0.05,N = 3)。比例尺为5μm。这个数字,已经出版21。 请CLICķ此处查看该图的放大版本。
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Discussion
的目标是设计一个IRF5抑制剂阐明IRF5的炎症,纤维化和血管功能在啧/ +小鼠的心脏的作用。调查结果是IRF5D不诱导增殖或凋亡。此外,炎症减少和血管功能的改善。这些数据表明,IRF5在炎症和纤维化的啧/ +小鼠的心脏的发展的重要机械作用,它具有作为治疗靶的潜力。
第一步是设计的抑制剂。当肽被设计,有几点必须考虑到:序列长度,二级结构的残基容易发生氧化,氨基酸组成,酰胺化和封盖,氨基酸中的N-末端和氨基酸在C末端和配附件。理想的序列长度为10的残基15之间,以保证最佳的整体收益率,杂质少,并降低成本。这是祁门功夫,功夫坦要意识到如β-片二级结构的形成。 β片的形成可导致高度的删除序列。避免残基易于氧化可导致副反应,可以影响肽的效力。为了控制溶解性,合成和纯化,保持为50%以下的疏水性氨基酸的肽的氨基酸结构单元的组合物,并确保有足够的带电残基。 N-和C-末端需要在不带电荷的状态被选择。避免谷氨酸在N-末端和避免半胱氨酸,脯氨酸和甘氨酸在C-末端。添加肽和配体之间的间隔,以减少折叠。因此,他们可能需要伪装成不收费酰胺。
IRF5D设计是基于所述三维结构。 A 17聚体,称为IRF5D(ELDWDADDIRLQIDNPD)的设计,其中,天门冬氨酸(D)的取代丝氨酸(S)在421-438(ELSWSADSIRLQISNPD)以模仿磷酸IRF5。这个方法是直截了当由于新的计算机技术。这种技术的缺点是在软件的初期投资。不过,也有当与劳动和其他抑制剂的设计方法使用,如噬菌体展示22材料有关的成本相比显著整体的节省。在此过程中的关键步骤是目标蛋白质的三维结构和其可能的结合位点的可用性。设计的抑制剂的限制是,一错误区域被选择,抑制剂不阻止所需蛋白质的可能性。另一种可能性是所希望的蛋白质的部分阻塞。
在手肽的焦点移动到通过测量细胞存活测试诱饵肽的毒性。首先,IRF5D用不同浓度的测试。 IRF5D不诱导凋亡和甚至在较高浓度下不会促进增殖。这里使用的方法是站ndard并给予可靠的数据。四唑鎓染料生物还原已使用了许多年23。该测定被选择,因为其再现性和时间效益的,相对于其他方法, 例如 ,手动计数细胞,其是非常耗时。使用的BrdU标记增殖细胞需要放射性,这是敏感的,但也可以是有害的。四唑鎓染料生物还原是时间效率,并且不需要放射性。四唑鎓染料生物还原的局限性是在涉及氧化 - 还原电位的研究盛行。无论氧化-还原电位时,误报更加频繁24。
细胞外基质的分离是由所有的心肌细胞与高渗溶液溶解获得的。该协议使用灌注设备,一个简单的扰动过程25研究中发展。该durat离子通过取不同的时间点凭经验评估:12,14,16,18,20小时。细胞外基质进行了分析为细胞碎片的不同时间点25之后。脱细胞的主要缺陷是真菌和细菌的污染。它建议使用抗真菌和抗微生物化合物。涂覆菜,细胞外基质被粉化并悬浮于PBS中。由于弹性材料的高含量,样品不完全溶解。在更高的亮度设置不超声加热样品势在必行。使用细胞外基质过度其它包衣剂的优点是,细胞外基质是蛋白质的融合生理存在的和它连接的体内和体外测定法。这种方法比与像单独胶原或纤连蛋白的单一化合物涂覆多个生理。它也给洞察的变化信令发起的重要性细胞外基质。此协议的一个限制是显然从基质基质和去除重要的信号分量的破坏。当务之急是脱细胞基质时要谨慎。
利用完整的组织中分离一样船舶开辟了研究血管扩张在原地 ,并与酶的干扰最小的可能性。这种方法是最充足的研究血管内皮功能的各种动物和疾病。杜陵是第一个描述在猪此方法。在猪的血管是在组织深;因此,本文所描述的明胶固定。血管舒张早期研究使用颈动脉26。我们提炼技术使用血管面神经27。面神经动脉的大小更相当于一个阻力动脉比颈动脉。此协议的一个限制是该容器中,它需要的脆弱性被去除完整requirin摹做法。
总之,显影IRF5D使我们能够评估IRF5的在炎症和纤维化中的心脏的参与。这导致了在本研究中所描绘的数据。 IRF5D是研究IRF5的各种疾病的机制,以及表明IRF5作为可能的药物靶标28的有用工具。
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Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Triton X 100 | Sigma Aldrich | X100- 100ml | |
Alexa 488-labeled goat anti-mouse IgG antibody | Thermo Fisher | A11001 | |
Bardford reagent | Thermo Fisher | 23200 | Pierce |
Biosensors | Forte-Bio | MR18-0009 | |
CD64 (H-250) | Santa Cruz Biotechnologies | sc-15364 | |
CellEvent Caspase-3/7 Substrate | Thermo Fisher/Life Technologies | C10427 | |
CellTiter AQueous One Solution Cell Proliferation Assay kit | Promega | G3580 | Promega |
DAPI (4′,6-diamidino-2-phenylindole) | Thermo Fisher | D-1306 | 1:1,000 dilution in PBS |
donkey anti rat Alexa 488 | Thermo Fisher | A-21208 | 1:1,000 dilution in PBS |
ECL plus | GE healthcare/Amersham | RPN2133 | After a lot of trial and error we came back to this one |
Eclipse TE 200-U microscope with EZ C1 laser scanning software | Nikon | ||
goat anti rabbit Alexa 488 | Thermo Fisher | A-11008 | 1:1,000 dilution in PBS |
HRP anti-goat | Santa Cruz Biotechnologies | sc-516086 | !:10,000 dilution in TBS |
HRP donkey anti-mouse | Santa Cruz Biotechnologies | sc-2315 | 1:10,000 dilution in TBS |
ICAM-1 antibody | Santa Cruz Biotechnologies | sc-1511 | 1:200 dilution in PBS |
IRF5 antibody (H56) | Santa Cruz Biotechnologies | sc-98651 | |
Micro plate reader Elx800 | Biotek | ||
NIMP neutrophil marker | Santa Cruz Biotechnologies | sc-133821 | 1:200 dilution in PBS |
Octet RED | Forte Bio | protein-protein binding | |
Peptide design Medit SA software | RCSB.org | ||
Recombinant IRF5 protein synthesis | TopGene Technologies | protein expression, synthesis service | |
sodium dodecyl phosphate | Sigma Aldrich | 436143 | detergent |
Ketamine | Pharmacy | Schedule III controlled substance, presciption required | |
Xylazine | MedVet | ||
3.5X-45X Trinocular Dissecting Zoom Stereo Microscope with Gooseneck LED Lights | Am Scope | SKU: SM-1TSX-L6W | |
Zeba Desalting Columns | Thermofisher | 2161515 | |
Endothelial Basal Media EBM Bullet kit | Lonza | CC-3124 | kit contains growth supplemets |
VIA-100K | Boeckeler Instruments | ||
4 - 15% TGX gel | Bio-Rad | 5671081 | |
MedSuMo software | Medit, Palaiseau, France | ||
Laemmli Buffer | BioRad |
References
- Bi, X., et al. Loss of interferon regulatory factor 5 (IRF5) expression in human ductal carcinoma correlates with disease stage and contributes to metastasis. Breast Cancer Res. 13 (6), 111 (2011).
- Dideberg, V., et al. An insertion-deletion polymorphism in the interferon regulatory Factor 5 (IRF5) gene confers risk of inflammatory bowel diseases. Hum Mol Genet. 16 (24), 3008-3016 (2007).
- Graham, R. R., et al. A common haplotype of interferon regulatory factor 5 (IRF5) regulates splicing and expression and is associated with increased risk of systemic lupus erythematosus. Nat.Genet. 38 (5), 550-555 (2006).
- Krausgruber, T., et al. IRF5 promotes inflammatory macrophage polarization and TH1-TH17 responses. Nat. Immunol. 12 (3), 231-238 (2011).
- Eames, H. L., Corbin, A. L., Udalova, I. A. Interferon regulatory factor 5 in human autoimmunity and murine models of autoimmune disease. Transl Res. 167 (1), 167-182 (2016).
- Mayes, M. D., et al. Immunochip analysis identifies multiple susceptibility Loci for systemic sclerosis. Am J Hum Genet. 94 (1), 47-61 (2014).
- Dimitroulas, T., et al. Micro-and Macrovascular Treatment Targets in Scleroderma Heart Disease. Curr Pharm Des. , (2013).
- Botstein, G. R., LeRoy, E. C. Primary heart disease in systemic sclerosis (scleroderma): advances in clinical and pathologic features, pathogenesis, and new therapeutic approaches. Am Heart J. 102 (5), 913-919 (1981).
- Oram, S., Stokes, W. The heart in scleroderma. Br Heart J. 23 (3), 243-259 (1961).
- Xu, H., et al. 4F decreases IRF5 expression and activation in hearts of tight-skin mice. PLoS One. 7 (12), 52046 (2012).
- Steen, V. The heart in systemic sclerosis. Curr.Rheumatol.Rep. 6 (2), 137-140 (2004).
- Deshpande, N., et al. The RCSB Protein Data Bank: a redesigned query system and relational database based on the mmCIF schema. Nucleic Acids Res. 33, Database issue D233-D237 (2005).
- Concepcion, J., et al. Label-free detection of biomolecular interactions using biolayer interferometry for kinetic characterization. Comb Chem High Throughput Screen. 12 (8), 791-800 (2009).
- Matthew, A. Current biosensor technologies in drug discovery. Drug Discovery. , 69 (2006).
- Doppelt-Azeroual, O., Moriaud, F., Adcock, S. A., Delfaud, F. A review of MED-SuMo applications. Infect Disord Drug Targets. 9 (3), 344-357 (2009).
- Kim, S., Jang, J., Yu, J., Chang, J. Single mucosal immunization of recombinant adenovirus-based vaccine expressing F1 protein fragment induces protective mucosal immunity against respiratory syncytial virus infection. Vaccine. 28 (22), 3801-3808 (2010).
- Frenzel, D., Willbold, D. Kinetic Titration Series with Biolayer Interferometry. PloS one. 9 (9), 106882 (2014).
- Ou, J., et al. L-4F, an apolipoprotein A-1 mimetic, dramatically improves vasodilation in hypercholesterolemia and sickle cell disease. Circulation. 107 (18), 2337-2341 (2003).
- Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal.Biochem. 72 (1-2), 248-254 (1976).
- Bauer, P. M., et al. Compensatory phosphorylation and protein-protein interactions revealed by loss of function and gain of function mutants of multiple serine phosphorylation sites in endothelial nitric-oxide synthase. J.Biol.Chem. 278 (17), 14841-14849 (2003).
- Weihrauch, D., et al. An IRF5 Decoy Peptide Reduces Myocardial Inflammation and Fibrosis and Improves Endothelial Cell Function in Tight-Skin Mice. PLoS One. 11 (4), 0151999 (2016).
- Hoogenboom, H. R., et al. Antibody phage display technology and its applications. Immunotechnology. 4 (1), 1-20 (1998).
- Roehm, N. W., Rodgers, G. H., Hatfield, S. M., Glasebrook, A. L. An improved colorimetric assay for cell proliferation and viability utilizing the tetrazolium salt XTT. J Immunol Methods. 142 (2), 257-265 (1991).
- Van Tonder, A., Joubert, A. M., Cromarty, A. D. Limitations of the 3-(4, 5-dimethylthiazol-2-yl)-2, 5-diphenyl-2H-tetrazolium bromide (MTT) assay when compared to three commonly used cell enumeration assays. BMC Res Notes. 8 (1), 1 (2015).
- Ott, H. C., et al. Perfusion-decellularized matrix: using nature's platform to engineer a bioartificial heart. Nat Med. 14 (2), 213-221 (2008).
- Ou, J., et al. L-4F, an apolipoprotein A-1 mimetic, dramatically improves vasodilation in hypercholesterolemia and sickle cell disease. Circulation. 107 (18), 2337-2341 (2003).
- Weihrauch, D., et al. Effects of D-4F on vasodilation, oxidative stress, angiostatin, myocardial inflammation, and angiogenic potential in tight-skin mice. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 293 (3), 1432-1441 (2007).
- Roy, S., P, P. IRF-5 - A New Link to Autoimmune Diseases. Autoimmune Disorders - Pathogenetic Aspects. Mavragani, C. , 35 (2011).