Summary
우리는 망막 표면에 평행하게 절편의 평면과 성인 포유류 망막의 수평 슬라이스 준비를 개발했다. nonradially 중심 망막 신경 세포의 수지상 필드 패치 클램프 및 이미징 기술과 신호 처리의 연구를 허용, 절단되지 않았다.
Abstract
세로 슬라이스 제제 아니라 성인 포유류 망막 회로 및 신호 전달을 연구하기 위해 설립된다. 이 제제에서 절편의 비행기는 광 수용체 및 양극성 세포와 같은 방사상 중심의 신경 세포의 연구에 이상적, 망막 표면에 수직이다. 그러나, 수평 세포, 넓은 필드 무 축삭 세포 및 신경절 세포의 큰 수지상 아버 이들 세포에서 현저하게 감소 시냅스 활성을두고 주로 절단된다. 신경절 세포 변위 무 축삭 세포는 망막의 전체 실장 준비 연구 될 수있는 반면, 수평 세포 및 내부 핵 층에있는 무 축삭 세포는 잘못 전체 망막 조직에 전극 용 접근 가능하다.
최대 접근성 시냅스 무결성을 달성하기 위해 마우스 망막의 수평 조각 제제를 개발 및 감광체 및 수평의 시냅스에서 신호 전송 공부세포. 수평 절편 수평 세포의 수상 돌기에 손상 및 기능 콘 시냅스 입력을위한 전제 조건으로, 전극 타겟팅 수평 세포 기관 (1) 간단하고 명확한 시각적 식별 및 확장 된 수평 세포 수지상 필드 (2) 보존 할 수 있습니다.
수평 조각에서 수평 세포는 어둠 속에서 토닉 시냅스 활성을 나타내, 그들은 안쪽으로 전류 감소 시냅스 활동의 감소와 빛의 섬광을 브리핑하는 반응. 면역 세포 화학 증거는 수평 세포의 수지상 분야 내에서 거의 모든 콘이 그 주변 수상 돌기과 시냅스를 설정을 나타냅니다. 수평 슬라이스 준비 따라서 잘 선택 시냅스에 걸쳐 수평으로 확장 망막 신경 세포의 생리 학적 특성뿐만 아니라 감각 신호 전송 및 통합을 연구하기에 적합합니다.
Introduction
시각 정보는 시각 활성화 동적 시공간 패턴으로 부호화되고, 감광체와 2 차 뉴런 사이의 시냅스 리본 시각 정보의 다운 스트림 전송을 결정한다. 포유류 망막의 수직 슬라이스 제조 즉 감광체 바이폴라 셀 사이, 및 바이폴라 전지 및 무 축삭 세포 1, 2, 3, 4의 일부 유형 사이에서 수직 통로에 신호 처리를 연구하는 매우 유용한 도구이다.
그러나, 수직 절편은 항상 시냅스 접촉의 상당한 손실로 이어지는, 많은 망막 신경 세포의 수지상 필드의 심각한 절단됩니다. 특히 외부 망막에, 수평 세포는 그들의 옆으로 퍼져 확장 된 수지상 필드와 축삭 터미널 시스템 (5)에 영향을 받는다. 수직에서슬라이스 제조 수평 셀의 돌기에 콘 감광체 단자 수백 시냅스 입력 따라서 약간 부족한 접촉 감소된다. 이것은 개별 시냅스의 특성을 연구하기에 충분할 수 있지만, 어떠한 수단은 감광체 리본 시냅스 동기 작동의 기초가되는 신호 처리 기능을 나타내는 않음으로써는 않는다.
따라서 우리는 그대로하고 기능적인 수평 세포의 수상 돌기에 거의 모든 콘 광 수용체의 시냅스 입력 잎 수평 슬라이스 준비를 개발했다. 절편 런 평면은 수평 적으로 무 축삭 세포와 세포 사이의 내부 핵 층을 절단하는 망막의 표면에 평행. 따라서, 외부 망막의 수평 슬라이스가 포함 생성, 시냅스 사이트, 시냅스 사이트의 내부 및 외부 세그먼트뿐만 아니라 시냅스 터미널, 수평 세포와 쌍극 세포 광 수용체. 이 준비는 잘 t을 적합오의 수지상 필드 내의 모든 콘 광 수용체에 의해 수평 세포의 수상 돌기에 통합 된 시냅스 입력을 조사합니다. 따라서 그것은 더 시냅스 반응에 감광체 활성화 매트릭스로부터 시각 정보 전송을위한 중요 감광체 리본 시냅스의 동작을 이해하는 데 유용 할 수있다.
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Protocol
모든 절차는 독일 연방 공화국에 의해 발행 동물 실험에 대한 지침에 따라 수행 하였다.
참고 : 망막 조직이 절차의 연장 부분 중에 산소가없는 것입니다 때문에, 모든 단계가 가능한 한 빨리 수행되어야한다. 마우스는 어두운 적응 해부하기 전에 적어도 3 시간을해야합니다. 망막, 준비의 빛 적응을 방지하려면 및 슬라이싱은 희미한 붉은 빛 아래에서 수행되어야한다.
미디어 및 기타 화학 물질 1. 준비
- 에임스 '중간 (6)를 준비합니다. 절개 한 후, 항상 에임스 '중간에 망막 조직 몰입.
- 에임스 '중간의 2.2 g과 증류수 250 ml의에서 298 mg을 HEPES를 녹여. HEPES의 농도는 5 밀리미터 될 것입니다. 모든 입자가 용해 될 때까지 부드럽게 저어.
- carbogen와 실온에서 거품 에임스 '중간 (95 % 산소, 5 % 차적어도 5 분 봉 이산화탄소). 솔루션에 유리 파스퇴르 피펫으로 공급 carbogen. 가스 레귤레이터의 콘센트에 적합한 튜브를 통해 파스퇴르 피펫을 연결합니다.
- 이 용액에 475 mg의 나트륨 - 중탄산염을 추가합니다. 발포 후 탄산 수소 첨가는 탄산 칼슘의 침전을 방지한다.
- 낮은 겔화 온도 아가로 오스를 준비합니다. 아가로 오스는 vibratome의 절편 동안 망막 조직의 삽입이 필요합니다.
- 9 ml의 에임스 '보통 180 mg의 아가로 오스와 증류수 1 ml에 용해. 모든 고체가 용해 될 때까지 천천히 아가로 오스 용액을 가열하는 전자 레인지를 사용한다. 5 열 - 10 초 단위는 오버 플로우를 방지 할 수 있습니다. 해결 방법은 명확하고 투명해야한다.
- 저장소는 절차의 지속 기간 동안 37 ℃에서 수조에 용해 아가.
2. Vibratome 설정
참고 : 모든 절편이 함께 수행하고있다vibratome 재료 표에 나열된. 주어진 설정은 vibratome의이 유형을 참조하십시오. 신경 조직의 vibratome 절편에 대한 자세한 내용은 7 참조 참조하시기 바랍니다가.
- 블레이드 홀더에 vibratome 인젝터 블레이드를 놓습니다.
- 은 "vibrocheck"장치와 블레이드의 수직 편향을 측정합니다. 이 절삭면에 평행 할 때까지 블레이드를 기울 블레이드 홀더 상에 상기 조정 나사를 사용한다. 블레이드의 실제 위치는 부 표면 블라인드 효과를 방지하고 표면에 살아있는 세포를 포함하는 평면 부를 제조 할 필요가있다.
- 다음 설정에 vibratome을 설정 진폭, 1.00; 속도, 0.20; 두께, 180-200 μm의.
마우스 망막의 3 해부
- 밀폐 용기에 약 1 ml의 이소 플루 란의 증발에 의해 성인 C57BL / 6 마우스를 마취. 마취가 완료되면, 경부 탈구에 의해 동물을 안락사. 그만큼마우스 그렇지 않으면 조각의 품질이 저하되며, 이전 3 개월 이상이어야한다.
- 눈 아래 곡선 집게를 배치하여 안구를 제거합니다. 조심스럽게 시신경을 노출 할 눈에 볼을 올려. 스프링 가위로 시신경을 잘라 2 ml의 에임스 '매체를 포함하는 35mm 페트리 접시에 안구를 전송합니다.
- 스테레오 현미경의 무대에 이후의 모든 단계를 수행합니다. 다음 절차 (- 3.9 3.4 단계)의 최적의 시각 제어를 할 수있는 값으로 배율을 조정합니다.
- 뾰족한 집게로 공막 또는 20 G 바늘로의 전환에 각막에 구멍. 이 단계에서, 다른 집게로 눈 공을 안정. 천공 장치와 망막이 손상되지 않도록주의하십시오.
- 단계 3.3에서 만든 작은 구멍에 스프링 가위를 삽입하고 각막 주위에 원을 잘라. 절단하는 동안 다시 집게로 눈 공을 안정. 다하기 위해 표면에 매우 근접하지 절개 유지망막에 유타.
- 조심스럽게 집게와 각막, 렌즈 및 유리체를 제거합니다. 유리체는 눈 뒤쪽 만 얇은 투명층을 포함한다. 그러나, 유리체가 완전히 제거되었는지 절편 vibratome 필수적이다.
- 페트리 접시에, 하나는 아래로 망막 위에 구멍을 통해 보이는하는 방식으로 아이 컵을 놓습니다. 개구부의 가장자리는 공막 조직으로 만 구성되어야합니다. 원형 컷 (단계 3.4)이 아이 컵의 적도에 너무 가까이 수행 한 경우, 망막 조직은 절개에 존재 가까이 될 것입니다. 단계 3.8에서 망막이 손상되지 않도록 다음주의하십시오.
- 집게로 공막을 잡고 조심스럽게 따로 조직을 찢어. 이 단계에서 망막 파열되지 필수적이다. 필요한 경우 집게로 조직의 공막 부분을 흔들리지 조심스럽게 다른 집게와 망막 박리하여 오라 세라의 망막을 분리합니다. 포셉를 닫아 두십시오; 재 처리하지조직 이후 집게와 티나는 매우 부드럽고 방법 즉시 제공 할 것입니다.
주 :이 단계에서는, 망막과 세안 컵의 나머지 부분은 시신경 헤드에 연결된다. - 스프링 가위로 시신경 유두에 부착 사이트를 잘라. 망막은 이제 자유롭게 에임스 '중간에 조직의 한 조각으로 떠되어야한다.
- 위치로 조작하려면 집게로 가장자리를 따라 망막을 잡고 곡선 메스 블레이드를 사용하여 약 23mm의 6 작은 사각형 - 4로 망막을 잘라. 사각형 내에서 망막 조직을 곤란하게하지 마십시오. 망막이 아닌 지금까지 주변의 중앙 부분에서 조각을 가라.
- 35mm의 플라스틱 페트리 접시에 대경 플라스틱 파스퇴르 피펫 망막 부분을 이동시켜 하부있는이 1mm 미만인 격자 크기의 메쉬로 대체되었다. 비커 나 삼각 플라스크의 상부 셋째 내에서 페트리 접시를 수정하고 에임스 '중간 버퍼에 망막 조각 잠수함carbogen와 bbled.
아가로 오스의 망막 조각 4. 퍼가기
- 에임스 '매체의 일부와 함께 35mm 플라스틱 페트리 접시에 3 망막 조각 - 조심스럽게 2를 전송합니다. 전송 대경 플라스틱 파스퇴르 피펫을 사용하는 것이 가장 편리하다. 이 단계에서 망막 부분의 정확한 방향은 중요하지 않다.
- 유리 파스퇴르 피펫으로 나머지 에임스 '매체의 가능한 한 많이 제거합니다. 즉시 유체가 제거 된 바와 같이 단계 4.3를 진행합니다. 망막 조직 건조하게하지 마십시오.
- 바로 아가로 오스 용해 2 ㎖ (37 ° C)와 망막 조각을 커버한다. 단계 3.10에서 언급 한 크기 감안할 때, 조각은 아가로 오스 내에 컬하지 않을 것이다.
- 액체 아가로 오스 내에서 조심스럽게 페트리 접시의 바닥에 망막 조각을 밀어 넣습니다. 신경절 세포 층이 아래로 향하게해야합니다. 정확한 위치의 판단에 대한 스테레오 현미경을 사용합니다. 측위 망막 PI 처리작은 주걱 eces. 아가로 오스 빠르게 응고하기 때문에 가능한 한 빠르고 정확한 망막을 배치합니다.
- 망막 조각이 유리 접시의 바닥에 평행하게 배열; 그렇지 않으면 섹션 접선 또는 경사 될 것입니다. 각각의 조각은 서로 접촉하지 말아야하지만, 또한 너무 멀리 떨어져이어야한다. 동일한 수평 수준에서 망막 조각이 더 많거나 적은 곳에 위치 시키십시오.
- 최소 2 분 - (6 °의 C 4) 냉장고에 내장 된 망막 조각과 유리 페트리 접시를 넣어. 이 신속하게 추가 처리를 위해 아가로 오스를 강화합니다. 즉시 아가로 오스는 중합 것처럼 다음 단계로 진행합니다.
망막 조각의 5 장착
- 조심스럽게 페트리 접시에서 망막 조각을 포함하는 아가로 오스 블록을 제거합니다. 유리에서 아가로 오스 블록을 들어 올려 주걱 또는 유사한 장치를 사용하십시오. 때문에 접착 힘이 매우 어려운 것으로 판명 할 수 있습니다. 그러나, 파괴 방지아가로 오스 블록. 실온에서이 이후의 모든 단계를 수행합니다.
- 유리 커버 슬립에 아가로 오스 블록을 놓고 메스 블레이드와 크기를 조정합니다. 망막 조각의 각 측면에 아가로 오스의 2mm - 1 둡니다. 블록의 최종 크기는 약 1,066mm이어야 (10mm 블록, 에지 길이 6mm의 높이를 말한다).
- 순간 접착제를 사용하여 vibratome의 시험편 홀더에 아가 블록을 붙인다. 하부가 상기 홀더에 부착 된 상태에서 망막 부분은, 그 표면에 상기 10mm 높은 블록의 위쪽 및 배향과 평행에 위치한다.
- vibratome의 버퍼 트레이에 이전에 버블 에임스 '매체를 부어 바로 블록을 커버.
수평 Vibratome 섹션 6. 준비
- 절편 시작합니다. 망막 조직의 조각이 조각에 나타날 때까지 처음에 수동으로 슬라이스의 두께를 설정합니다. 다음 단계 2.3의 설정을 변경할 수 있습니다. 이후아가로 오스 블록 당 3 조각 - 마우스 망막은 더 이상 2보다가있을 것입니다, 약 200 μm의 두께이다.
- 유리 막대와 버퍼 트레이에서 섹션을 제거하고 35mm 페트리 접시에 2 ml의 에임스 '매체로 전송.
- 바로 37 °의 C (5 % CO 55분의 2 %의 O 2)에서 인큐베이터에 보관 섹션. 섹션을 둘러싸는 아가 인큐베이터 고체 유지되고 망막을 손상시키지 않고 부분을 처리하기 위해 사용될 수있다. RT에서 산소 에임스 중형에 비해 각각의 분위기 내에서 37 ℃에서 보관시 더 슬라이스 품질이 얻어진다. 섹션 바로 사용하거나 우수한 생리 결과 인큐베이터에서 4 시간까지 저장 될 수있다.
- 6 - 아가 로스를 반복 섹션 4에서 다음 망막 조각을 포함.
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Representative Results
마우스 망막의 수평 슬라이스에서, 수평 세포 기관을 쉽게 다각형 세포체 (그림 1A)에서 나오는 여러 주요 수상 돌기과의 독특한 형태에 따라 식별 할 수 있습니다. 슬라이스의 표면 근처에있는 수평 세포 기관은 패치 클램프 전극 용 일상적으로 접근 할 수 있었다. 녹음하는 동안 세포는 밀접 그대로 마우스 망막 8 (그림 1B)의 축삭 베어링 수평 세포의 형태를 닮은 자신의 복잡한 수지상 arborization을 공개, 형광 염료로 가득 차 있었다. 형광 결합 땅콩 응집소와 콘 척추 경의 레이블은 콘 척추 경 및 수평 세포 수상 돌기 (그림 1C) 사이에 밀접한 공간 관계를 보여 주었다. 몇 가지 예외를 제외하고, 수평 세포의 수지상 필드 내의 모든 콘 척추 경는 수지상 프로세스 연락을했다.
천만에 "FO : 유지-together.within 페이지 ="1 "> 콘 및 수평 세포 사이의 접촉, 패치 클램프 녹음 수평 세포 기관에서 수행 하였다 어두운 적응 조건에서 기능 하였다는 것을 증명하기 위해, 현재의 응답이 있었다. 큰 고주파 시냅스 활동에 적당한 함께 내부 전류 (그림 2A)에 의해 특징.베이스 라인으로부터의 편차와 흥분성 시냅스 후 전류는 시냅스 AMPA-와 발생한 kainate 형 글루타메이트를 활성화, 어둠 속에서 글루타메이트의 지속적인 출시로 인한했다 9 수용체. 개별 시냅스 이벤트가 단상 파형 또는 더 복잡한 현재의 궤적 (그림 2B). 토닉 시냅스 활동의 존재는 글루타메이트가도 1c에 도시 콘 광 수용체 및 수평 세포의 수상 돌기 사이의 시냅스 접촉에서 발표 된 제안에 의해 특징했다.Horizo기록 ntal 세포 콘 광 수용체의 신호 전달 캐스 캐 이드는 또한 수평 슬라이스 준비 그대로 기능적임을 나타내는 광 강도의 변화에 대응했다. 때문에 송신기 방출의 감소, 어두운 적응 수평 세포의 현재 안쪽 토닉을 억제하고, 시냅스 활동은 명확하게 전체 필드 광 자극 (1,300 W / cm 2, 470 40 ㎚)의 존재 (그림 동안 감소 등장 3A). 마찬가지로, 빛 적응 상태에서 어둠으로의 전환은 안쪽으로 전류를 발생 및 시냅스 활동 (그림 3B)를 증가했다. 또한, 짧은 전기 펄스 (1-15 V, 1 밀리 초)이 수평 전지 본체의 근방에 모든 콘 감광체를 탈분극하는 백금 - 이리듐 바이폴라 자극 전극을 통해인가 하였다. 글루타메이트의 자극에 의한 릴리스는 기록 수평 세포 (그림 3C)에서 큰 진폭 흥분성 시냅스 후 전류를 유발. 의에서요 약이 연구 결과는 콘 광 수용체와 수평 세포 사이의 시냅스가 어느 내생 자극 빛에 의해 또는 연접 요소의 제어 탈분극에 의해 실험적으로 조작 할 수 있다는 것을 설득력있게 보여줍니다.
그림 1 : 형태론과 수평 슬라이스 준비에 수평 세포의 시냅스 연락처. 슬라이스의 표면 근처에있는 수평 세포 (화살표)을 Dodt 대비 광학 가시화되었다. 스케일 바 = 10 μm의 (A). 촬상 실험 수평 셀 여전히 세포에 부착 된 패치 전극 통해 오레곤 그린 488 BAPTA-1 (100 μM)으로 채워졌다. 스케일 바 = 10 μm의 (B). 염료 주입 수평 세포와 형광 결합 땅콩 응집소으로 표시 콘 척추 경의 배열의 오버레이 추정 시냅스의 연락처를 알 수있다. 스케일 바 = 10 μm의 (C). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2 : 수평 셀 바디에서 기록 된 시냅스 활동. -60 MV의 유지 전위에서 전체 셀 전압 클램프 녹음 고주파 토닉 시냅스 활동 (A)를 보여줍니다. 높은 시간 해상도 (B)에서 시냅스 이벤트는 단상 파형 (화살표) 또는 더 복잡한 현재의 궤도 (화살촉)를 표시합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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그림 3 : 빛과 전기 자극에 의해 유발 수평 세포 기관의 현재 응답. 잠재적 들고 -60 MV 기록 어두운 적응 수평 세포체의 빛 응답. 전체 필드 조명은 현재의 안쪽 토닉을 억제하고 시냅스 활동 (A)를 감소시킨다. 동일한 조건에서 촬영 한 빛 적응 수평 세포의 몸은 어둠 (B) 동안 증가 시냅스 활동과 함께 어두운 플래시 다음 내향 전류를 표시합니다. A와 B의 수평 라인은 자극의 타이밍을 나타냅니다. 간단한 전기 펄스에 의해 세포 외 자극으로 인해 콘 광 수용체에서 글루타메이트의 동기화 된 릴리스 (C)에-큰 진폭 흥분성 시냅스 후 전류를 유도한다. 개최 가능성 : -60 MV. 화살표는 자극 펄스의 타이밍을 나타낸다. 추적의 시작 부분에서 잘린 전류 자극 유물을 나타냅니다..COM / 파일 / ftp_upload / 55173 / 55173fig3large.jpg "대상 ="_ 빈 ">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
세로 슬라이스와 달리 수평 무 축삭 세포 및 세포 등을 방사상 배향 뉴런의 수지상 형태가 잘 유지된다. 전체 망막 제제에 비해, 이들 세포 유형은 마이크로 전극에 대한 접근이 용이하고 전기 생리 두 이미징 기술에 의해 조사 할 수있다. 여기서는 외부 망막 집중; 그러나, 유사한 접근 방식은 특히 내부 망막 (10)의 무 축삭 세포가보고되고있다.
수평 슬라이스 준비의 특성은 기능 연구를위한 몇 가지 의미를 내포하고있다. 콘 감광체와 시냅스 사이의 수평 세포 시냅스 접촉의 수는 그대로 망막 거의 구별 할 수 있었다. 시냅스 접촉은 어둠 속에서 신경 전달 물질의 토닉 방출을 보여주는 기능이었다. 시냅스는 빛 / 어둠 전환 등 중 내인성 자극에 의해 또는 외부 바이폴라 자극에 의해 활성화 될 수있다.
여기에 제시된 기술은 거의 수평으로 배향 뉴런에 한정된다. 따라서, 쌍극 세포의 축색 돌기가 절단되기 때문에, 수평 슬라이스 감광체 그대로 바이폴라 셀에서 기록 할 수 없다. 또한, 도심 절편의 레벨을 제어하는 것은 불가능하다. 하나의 망막 조각 m따라서, 광 수용체의 외부 및 내부 부분 사이의 예를 들면, 원하지 않는 레벨로 절단 될 ight. 한 장 이상의 절편의 정확한 평면 아가 증가 가능성의 하나의 블록 내에서 망막 부분의 개수를 증가시킨다.
수평 슬라이스 준비는 막대와 원뿔 광 수용체의 리본 시냅스의 고유 한 특성을 공부에 적합하다. 지금까지 우리는 3 complexin 및 콘 광 수용체와 수평 세포 (11) 사이의 시냅스 전달의 4 complexin 시냅스 단백질의 역할을 조사하기 위해 동물 노크 아웃 시스템을 사용하고 있습니다. 이는 앞에서도 9와 같이, 신경 전달 물질의 시냅스 후 수용체의 특성을 연구하는 것도 가능하다.
미래의 응용 프로그램은 전기 생리 및 이미징 기술과 유전자 변형 마우스 라인에 따라 시냅스 단백질의 연구를 포함한다. 또한, 생물 리 학적 프로을 조사 할 수있을 것이다수평 세포 사이의 간극 연접의 perties. 광 반응이 측정 될 수 있기 때문에,이 기술은 시각 시스템의 제 시냅스에서 내인성 자극의 인코딩을 조사하는 데 사용된다. 그렇지 않으면, 광 반응은 주로 원추형 구동 할 것이며, 조직의 빛 적응 방지 어둠 제조를 행할 수있다.
요약하면, 수평 슬라이스 준비는 포유류의 망막 (12)에 자신의 기능적 특성을 연구하기위한 전제 조건으로 개별 시냅스의 접근성을 높이기 위해 새로운 접근 방식을 나타냅니다.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Ames' Medium | Sigma | A1420 | |
| Sodium Bicarbonate | Sigma | S5761 | |
| Hepes | Sigma | H3375 | |
| Carbogen | Air Liquide | ||
| Agarose | Sigma | A9045 | |
| 35 mm Petri dish (plastic) | Nunc Thermofisher | 150318 | |
| Glass Petri dish | Chemoline | 50-1470-40 | |
| Isoflurane | Dispensary university hospital | ||
| Vibratome injector blade | Biosystems | 39053250 | |
| Vibratome | Leica Microsystems | VT1200 | |
| Vibrocheck | Leica Microsystems | ||
| Microwave | |||
| Water bath | |||
| Forceps | |||
| 20 G needles | |||
| Spring scissors | |||
| Curved scalpel blades | |||
| Stereo microscope | |||
| Plastic Pasteur pipette | |||
| Glass Pasteur pipette |
References
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