Introduction
핵 인자 90 (NF90)은 인터루킨 -2 후 전사 및 miRNA의 생합성 1-3의 규제의 바이러스 감염에 대한 반응 조절 등 다양한 기능을 가진 멀티 이소 단백질이다. RBM3는 RNA 결합 단백질 번역 및 miRNA의 생합성에 관여 저체온증 저산소증 4-6을 포함하는 다양한 스트레스에 의해 유도 될 수있다. 최근에, 우리는 단백질 복합체 7 NF90 및 RBM3를 발견했다. NF90 RBM3과의 상호 작용은 단백질 펼친 응답 7 단백질 키나제 RNA 같은 소포체 키나제 (PERK) 활성을 조절하는 것이 필수적이다. NF90 및 RBM3 모두 핵하지만 세포질에 작은 NF90의 비율과 RBM3 셔틀에 주로 위치하며, PERK 활동을 조절하는 특정 기능을 위해 서로가 예를 결합한다. 따라서, 어느 것을 나타낼 수 있고, 세포 내 구획에서-NF90 RBM3 상호 작용의 분포를 시각화하는 것이 중요각각의 구획에서의 다양한 역할.
수십 년 전에, 효모 두 하이브리드 (Y2H)는 두 단백질 (8) 사이의 상호 작용을 검출하기 위해 개발되었다. 그러나, 융합 단백질의 인공 건설, 거짓 양성 결과는이 방법의 적용을 제한하고있다. 오랫동안, 공동 면역 침전 특히 내인성 조건 9, 단백질 - 단백질 상호 작용을 분석하는 주요 기술이다. 최고 감도 및 정밀도가 요구되는 경우, 질량 스펙트럼에서 사용되는 동안에 공동 면역 침전 된 단백질 복합체를 분석, 웨스턴 블롯, 가장 편리한 기술이다. 최근, 근접 결찰 분석은 동일계 10,11 모두에서 세포 및 조직에서의 단백질 - 단백질 상호 작용을 검출하는 신규 한 방법으로 개발되었다.
여기서는 NF9 캡처에서 가장 인기있는 공동 면역 침전 법 및 비교적 신규 근접 결찰 분석 방법에 비해세포 내 분수에 0 RBM3 상호 작용. 우리는 또한 장점과 두 가지 기술의 한계를 논의했다.
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Protocol
1. 공동 면역 침전
- 씨앗 하나 6 웰 플레이트에 웰 당 2 × 10 5 세포에서 HEK293 세포 2 ㎖의 10 % 소 태아 혈청 (FBS)와 함께 둘 베코의 수정 이글의 중간 (DMEM) 보충 100 U / mL의 페니실린 - 스트렙토 마이신 (펜 연쇄상 구균) .
- 5 % CO 2, 37 ℃에서 48 시간 동안 세포를 성장.
- 차가운 인산 완충 식염수 (PBS)로 3 회 세포를 씻으십시오. 4 ° C에서 5 분 500 XG에 원심 분리하여 수확 세포.
- 상업 핵 및 세포질 추출 시약을 사용하여 핵 및 세포질 분수를 준비합니다. 일부 수정과 제조업체의 지시 사항을 따르십시오.
- 하나의 공동 면역 실험 (한 6 웰 플레이트의 3 우물에서 약 90 %의 컨 플루)에 대한 3 × 10 6 세포를 사용합니다. 최고 속도로 15 초 동안 300 μl의 차가운 세포질 추출 용액 (CER의 I)와 소용돌이를 추가합니다.
- 얼음에 30 분 동안 품어. 배양, vorte 중5 초마다 10 분 동안 X.
- 5 초 동안 16.5 μl의 차가운 세포질 추출 용액 II (CER II), 소용돌이를 추가하고 얼음에 5 분 동안 품어.
- 4 ° C에서 5 분 동안 16,000 XG에 5 초 원심 분리기를위한 소용돌이.
- 새로운 사전 냉각 튜브에 뜨는 (세포질 추출물)를 전송하고, 사용까지 얼음에 보관하십시오.
- 때마다 최대 피펫 팅에 의해 5 배 아래로 1 ml의 차가운 PBS와 불용성 펠렛 (포함하는 핵)을 세 번 씻으십시오. 세척 후 PBS를 제거합니다.
- 15 초 동안 150 μl의 차가운 핵 추출 용액 (NER), 소용돌이를 추가하고 얼음에 1 시간을 품어. 배양하는 동안, 15 초 및 피펫 200 μl의 팁 10 시간마다 10 분 동안 소용돌이.
- 4 ℃에서 10 분 동안 16,000 XG에 15 초 동안 소용돌이와 원심 분리기.
- 새로운 사전 냉각 튜브에 뜨는 (핵 추출물)로 이동시켜 사용할 때까지 얼음에 보관하십시오.
- 각각의 입력으로 핵 및 세포질 추출물의 볼륨의 10 %를 가져 가라.
- 에이1 ml의 최종 용적에 남아있는 추출물을 차가운 PBS를 위해 dd. 얼음에 사용할 때까지 보관하십시오.
주 : 단백질 G 공역 자성 비드를 사용하는 경우 사전 클리어링이 필수적인 것은 아니다. 백그라운드가 높은 경우에는, 40 ㎕의 단백질 G 공역 자성 비드 (50 % 슬러리)와 회 전자에서 30 분 동안 4 ℃에서이 단계에서 해물 희석 한 용액을 배양하여 전 소거를 수행한다. 자기 랙 구슬에서 분리 된 상층 액 (사전 허가 해물). 구슬을 폐기하십시오. - 단백질 G-복합 자석 구슬 몇 차 항체로, 4 μg의 토끼 다 클론 항 RBM3 항체 또는 토끼의 IgG (음성 대조군) 200 ㎕의 PBS에 플러스 트윈 20 버퍼와 단백질 G - 복합 자석 구슬 (50 % 슬러리) μL (40)을 품어 (PBST, 0.02 % 트윈 20)가 회 40 분 동안 실온 (RT)에서.
- 별도의 자기 랙 구슬과 뜨는 항체를 결합하고, 상층 액을 버린다. 200 μL PBST (0.02 %) 한 번 구슬을 씻으십시오.
- 1 추가용액은 비드 해물을 (또는 필요한 사전 허가 해물 경우)로 희석하고, 밤새 4 ℃에서 회전에 배양한다.
- 다음 날, 자기 랙에 의해 구슬과 상층 액을 분리하고, 상층 액을 버린다. 20 rpm의 고정 된 속도로 회 전자에 4 ° C에서 각각의 튜브 0.5 ml의 PBST (0.02 %)와 3 × 10 분을 씻으십시오.
- 40 ㎕의 시료 완충액 (1X 상업용 샘플 버퍼의 50 mM 1,4- 디티 오 트레이 톨 (DTT))를 첨가하여 비드로부터 단백질을 용출. 10 분 동안 70 ℃에서 가열한다. 새로운 1.5 ML 튜브에 스핀 다운 및 전송 액체.
- 10 분 동안 70 ℃에서 가열 (1X 상업용 샘플 완충액 50 mM의 DTT, 최종 농도)을 샘플 버퍼에 입력 해물을 희석. 프리 캐스트 4-12% 비스 - 트리스 젤 마지막 단계에서로드 입력과 면역 단백질. 각 웰의 적재 부피는 20 μl를 초과 할 수 없습니다. 35 분 동안 얼음에 1 배 상업 운전 버퍼에 전기 영동을 수행합니다.
참고 :로드 핵 및 세포질 추출물셀의 동일한 초기 량을 반영 (2) (V / V를) : 1의 비율로 S. - 4 ° C에서 2 시간 동안 30 V에서 1 배 상업 전송 버퍼에서 PVDF 막에 전달 단백질.
- 5 % 차단 막을 진탕 기에서 40 분 동안 RT에서 우유 PBST (0.1 % 트윈 20)를 미끄러 져.
- 밤새 4 ° C에서 PBST (0.1 %)에서 : 일차 항체와 멤브레인 (1,000 두 1에 희석) 품어.
- 쉐이커에 RT에서 PBST (0.1 %)와 3 × 10 분을 씻으십시오.
- 1 시간 동안 RT에서 PBST (0.1 %)에서, (5000 모두 1로 희석) 양 고추 냉이 퍼 옥시 다제 (HRP)와 함께 막을 인큐베이션 항 - 마우스 또는 항 - 토끼 이차 항체를 π 공역.
- 쉐이커에 RT에서 PBST (0.1 %)와 3 × 10 분을 씻으십시오.
- cm 2 막 당 0.2 ml의 강화 된 화학 발광 (ECL) 기판 혼합물을 사용하여, 5 분 동안 실온에서 품어. 빨간 불빛을 제외하고 이후이 단계에서 모든 빛을 피하십시오.
- 액체 버리고 필름 카세트에 X 선 필름에 노출. 자동 필름 홍보를 사용하여 필름 개발ocessing 기계.
2. 면역 세포 화학 및 근접 내고 분석
- 시드 0.4 ㎖의 DMEM 한 8 실, 폴리 D 라이신 코팅 된 슬라이드 챔버 당 1.5 × 104 세포의 HEK293 세포는 10 % FBS, 100 U / ㎖ 펜 연쇄상 보충.
- 5 % CO 2, 37 ℃에서 48 시간 동안 세포를 성장.
- 대기음 매체 및 RT에서 10 분 동안 4 % 파라 포름 알데히드 (PFA)로 세포를 고정한다.
- 대기음 PFA, 챔버 당 0.5 ml의 PBS로 세척 3 × 10 분.
- Permeabilize 하시려면 1 시간 동안 실온에서 PBS에서 0.5 % 트리톤 X-100, 5 % 정상 염소 혈청 (NGS)와 블록 셀.
- 밤새 4 ° C에서 통에 PBS에서 0.1 % 트리톤 X-100 및 5 % NGS의 일차 항체와 함께 품어. 마우스 단일 클론 항 NF90 항체 토끼 다 클론 항 RBM3 항체 1을 희석 : PBS 100을 두 번 염색을 위해. 음성 대조군의 경우, 독립적으로 두 일차 항체 중 어느 하나를 생략하고, 제 3 제어 모두 항체 생략.
참고 : 광고 차단 및 희석 시약을 사용하지 마십시오. - 챔버 당 0.5 ml의 PBS로 3 × 10 분을 씻으십시오.
- 면역 세포 또는 근접 내고 분석 프로토콜에 따라
- 면역 세포 화학
- 부화 1 : 500 희석 된 녹색 형광 염료가 결합 된 항 - 마우스 및 적색 형광성 염료 결합 항 - 토끼 이차 항체를 실온에서 1 시간 동안. 이후이 단계에서 빛을 피하십시오.
- 10 분 동안 실온에서 PBS로 5,000 : 4 ', 6-diamidin -2- phenylindol (DAPI)로 Counterstain과 핵 (1) 희석 하였다.
- 챔버 당 0.5 ml의 PBS로 3 × 10 분을 씻으십시오.
- 유리 슬라이드 건조에서 챔버를 제거합니다. 슬라이드 당 매체를 장착, 250 μ으로 마운트합니다.
- 근접 내고 분석
- 근접 내고 분석 프로브를 준비합니다. 믹스와 일을 결찰 수있는 다른 올리고 뉴클레오티드로 연결된 두 개의 근접 내고 분석 프로브 (항 - 마우스 및 안티 - 토끼 보조 항체를 희석하나 8 챔버 슬라이드 (cm 2 당 약 40 ㎕를 320 ㎕의 총 부피로 PBS에서 0.1 % 트리톤 X-100 5 5 % NGS) 다른 두 연결 용액의 올리고 뉴클레오티드)을 모두 한 거친 첨가 . 실온에서 20 분 동안 인큐베이션.
- 유리 슬라이드에서 챔버를 제거하고 희석 프로브를 추가 할 수 있습니다. 1 시간 동안 37 ℃에서 습도 인큐베이터에서 인큐베이션.
- 연결 용액을 준비합니다. 8 리가 ㎕를 혼합 64 μl를 5 × 결찰 재고 및 248 μL의 H 2 O
- 슬라이드에서 액체를 누른 1X 세척 버퍼 (A)에 2 × 5 분을 씻어 (키트와 함께 제공).
- 라이 게이션 용액을 첨가하고 30 분 동안 37 ℃에서 습도 인큐베이터에서 배양한다.
- 증폭 솔루션을 준비합니다. 이후이 단계에서 빛을 피 4 μL 중합 효소, 64 ㎕의 5 배 증폭 재고 및 252 μL의 H 2 O를 섞는다.
- 슬라이드에서 액체를 누른 1X 세척 버퍼 A에 2 × 2 분을 씻어
- 앰프 추가lification 용액을 100 분 동안 37 ℃에서 어두운 습도 인큐베이터에서 배양한다.
- 슬라이드에서 액체를 누른 1X 세척 버퍼 B에 2 × 10 분을 씻어 (키트와 함께 제공). 0.01x 세척 버퍼 B.에서 1 분 동안 세척
- 슬라이드를 건조 및 슬라이드 당 (DAPI)와 상업 장착 매체의 250 μl를 마운트.
- 면역 세포 화학
- 10 배의 접안 렌즈와 20 배 대물 렌즈를 사용하여 현미경 형광 신호를 검사합니다. CCD 카메라에 의해 화상을 취득.
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Representative Results
도 1 및 NF90 RBM3 모두 핵 단백질과 작은 부분이 세포질에 존재하는 것을 보여준다. 특히, RBM3에 대한 긍정적 인 스테인드 세 가지 밴드가 있습니다. 20 kDa의 아래 작은이 RBM3의 정확한 크기를 반영 (RBM3의 예측 분자량이 17 kDa의)입니다. 다른 두 밴드의 기원은 조사가 남아있다. 미끼 단백질로 RBM3와 공동 면역 침전 실험 NF90-RBM3 상호 작용은 핵 및 세포질에서 소수 민족에 주로 존재하는 것으로 나타났습니다. 공동 면역 침전 데이터는 각각의 단일 단백질의 현지화를 지원합니다.
도 2a에 도시 된 바와 같이, NF90 및 RBM3 주로 핵하지만 시튜 세포질에 위치한다. 두 단백질 모두 구획에 완벽한 공동 현지화을 보여줍니다. 근접 내고 분석은 패턴을 밝혀세포의 대부분의 핵에있는 대부분의 상호 작용으로, 기존의 면역 세포와 매우 유사하다 NF90-RBM3 상호 작용의. 만 세포의 작은 비율은 NF90-RBM3 상호 작용의 주로 세포질 분포를 보여 주었다.
종합적으로, 공동 면역 침전 법 및 근접 내고 분석 기술은 기본적 핵과 세포질 구획에 단백질 - 단백질 상호 작용의 동일한 배광 패턴을 반영한다.
그림 1 : NF90 및 RBM3 및 HEK293 세포의 핵 및 세포질 분수에서 그들의 상호 작용의 웨스턴 블롯 분석. 핵과 세포질 추출물의 비율로 SDS-PAGE 겔에 로딩하고 1 : 2 (V / V), 추출 프로토콜에서 명시된 바와 같이 셀의 동일한 양을 반영. 라민 및 GAPDH 핵으로 사용했다각각과 세포질 마커. 공동 면역 침전은 음성 대조군으로서 항 - RBM3 항체 또는 토끼 IgG를 사용하여 수행 하였다. 핵과 세포질 추출물도 1의 비율로 안티 RBM3 항체로 인큐베이션 하였다 : 2 (V / V)를 각각. NF90 오의 상위 대역은 110 kDa의 긴 이성체 NF110를 나타냅니다. N : 핵 추출물; C : 세포질 추출물, IP : 면역. 단백질 마커는 RBM3 긍정적 밴드 표지 하였다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2 : 면역 세포 화학 및 HEK293 세포의 근접 내고 분석. (A) 항 NF90 (녹색) 및 항 RBM3 (적색) 항체 HEK293 세포의 이중 염색. NF9의 명확한 세포질 공동 현지화와 쇼 세포 화살표0 RBM3. 핵은 DAPI (파란색)으로 대조 하였다. 안티 NF90 및 HEK293 세포에서 항 RBM3 항체와 (B)의 근접 결찰 분석법. 적색 형광 반점은 NF90-RBM3 상호 작용을 나타냅니다. 화살표는 세포질에서 NF90-RBM3 상호 작용을 보여줍니다. 핵은 DAPI (파란색)으로 대조 하였다. 음성 대조군 1 (NC 1) : 두 일차 항체를 생략 하였다. 음성 대조군 2 (NC 2) : RBM3 단일 차 항체 만. 음성 대조군 3 (NC 3) : NF90 단일 차 항체 만. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
두 방법에 대한 몇 가지 장점뿐만 아니라 단점이있다. 비교적 새로운 기술로서, 인접 결찰 분석법의 명백한 이점은 단일 세포 수준 대신 이기종 셀 배치의 단백질 - 단백질 상호 작용을 규명 할 수있는 가능성이다. 높은 크기 및 (공 초점 현미경으로 예) 해상도의 이미지는 하나의 형광 반점을 계산하여 정량화에 대한 가능성을 제공합니다. 대조적으로, 웨스턴 블랏과 공동 면역 침전 기술의 통상적 인 조합은 단지 적절한 로딩 컨트롤 IP 샘플에 대해 결정하기 곤란하기 때문에, 주로 단백질 밴드를 반 정량 할 수있다. 또한, 단백질 - 단백질 상호 작용은 공 면역 침전 또는 융합 태그 인공 과발현 시스템에 필요한 생체 물질, 예를 들어, 세포 또는 조직, 다량의 상호 작용을 검출 할 수있는 기회를 향상시키기 위해 적용되며, 약하거나 과도 때 . 또한, 검출 t이러한 질량 분석법 등의 고감도 echniques 실험의 품질을 향상시킬 수있다. 그러나, 원료의 양에 대하여 근접 결찰 정량법 명확한 이점을 갖는다. 단지 몇 개의 세포가 필요한 항체의 높은 품질이 제공 제공된다. 또한, 조직 샘플에서, 조직 구조 및 세포 유형에서 다른 단백질 - 단백질 상호 작용의 동일계 시각화 정상적인 면역과 동일한 패턴에 근접 결찰 분석법에 의해 달성 될 수있다. 대조적으로, 공동 면역 침전은 단백질 - 단백질 상호 작용의 공간 분포를 표시 부적당 그 성질이다.
대형 핵 작지만 세포질 구획 셀, 인접 결찰 분석 방법은 핵 세포질 분포 전통적인 공동 면역 침전 분석 자체 우월성을 갖는다 제한된다. 예를 들어 T 림프구 세포주의 예는 Jurkat 세포의 핵 - 세포질 DISTRI핵이 세포 내부의 거의 전체 공간을 차지하기 때문에 인접 결찰 분석 기술에 의해-NF90 RBM3 상호 작용 butions은 제한되고, 세포질 구획의 경계를 확인하기 어렵다. 핵과 세포질의 비율이 매우 불균형 때, 일반적으로 면역 세포에 대한 일반적인 문제가 될 수있다. 그러나,이 상황에서 공동 면역 이러한 제한을받지 않는다.
근접 결찰 분석법에 관한 하나의 특별한 관심은 근접 결찰 분석법에서 신호가 직접 또는 간접적으로 단백질 - 단백질 상호 작용을 나타내는 것인지이다. NF90 및 RBM3 모두 RNA 결합 특성을 가지고 우리의 이전 연구 (7)에보고 된 상호 작용은 RNA에 따라 달라집니다. 따라서,의 RNase와 세포 용 해물의 전처리 NF90 및 RBM3 아무것도 사이의 상호 작용이 공동 면역 침전 법 (7)에 의해 검출 될 수 녹는다. 그러나, 근접 내고 분석 신호는 영향을받지 않습니다RNA 의존성 단백질 - 단백질 상호 작용은 두 단백질 사이의 거리가 일반적으로 직접적인 상호 작용으로 간주 이하가 40nm 인 경우는 생성되는 바와 같이, RNA 종을 잃을지라도. 근접 내고 분석의이 속성은 RNA 중재를 필요로하는 상호 작용을 폐지 할 수있다 세포 용 해물에서의 RNase 자료 등의 공동 면역에서 기술적 인 문제를 극복 할 수 있습니다. RNA의 의존성 단백질 - 단백질 상호 작용이 실제로 생리적 조건에서 특정 RNA의 부족으로 인해 존재하지 않는 경우, 다른 한편으로는, 근접 결찰 분석 방법은 또한 위양성 신호를 생성 할 수있다.
특별한주의가 가치가있는 또 다른 문제는 일차 항체의 특이성 단백질 이성체, 전구체 단백질 응집체의 가능성이다. 우리 NF90에 비해 긴 NF90 이성체, NF110은 (FI 훨씬 덜 풍부 HEK293 세포에서 모두 핵과 세포질하다 웨스턴 블롯에 의해 관찰gure 1). 그러나, 공동 면역 침전은 NF110 높은 결합력 특히 핵 RBM3 위해 풀린다. 세 가지 주요 밴드는 핵에 RBM3의 말에 발견 된, 만 20 kDa의 정상 RBM3 밴드는 주로 세포질에서 관찰되었다. 다른 두 50 kDa의 100 kDa의 밴드가 결합 된 RBM3와 RBM3 이성체, 전구 물질, 단백질 응집체를 반영하거나 인해 불특정 배경에되었는지 밝혀지지 남아있다. 근접 결찰 분석법이 면역에 기초하고 있기 때문에 동시 면역은보다 항체 특이성 또는 단백질 이성체 및 전구체에 대한 추가 정보를 제공 할 수 있지만, 대신, 근접 결찰 분석법, 단백질 이성체, 전구체 응집체 또는 비특이적 염색 상이한 간의 차이를 구별 할 수있다 단백질 - 단백질 상호 작용을 조사하는 근접 결찰 분석법. 핵에서 관찰 세 RBM3 대역을 고려할 때 RBM3에 관해서는, 웨스턴 블롯 결과는 지배적 인 핵와 일치 localizatiRBM3의에 면역 염색으로 관찰.
결론적으로, 모두 공동 면역과 근접 내고 분석 기술은 고유의 장점과 제한이 있습니다. 많은 경우에, 그들은 일관성있는 결과를 생성하지만, 체계적 특정한 단백질 - 단백질 상호 작용을 조사 할 때 두 가지 기술을 사용하는 것이 유리하다. 그러나 특별한 경우 또는 특정 목적으로, 하나는 다른 것보다 우월를 표시 할 수 있습니다. 최근 근접 결찰 분석법 신규 예후 마커 (12)을 개발하는 화면의 단백질 - 단백질 상호 작용에 사용되어왔다. 단백질 - 단백질 상호 작용은 하나의 단백질보다 더 신뢰할 수있는 바이오 마커로 간주됩니다. 이러한 바이오 마커의 동정 및 특성은 여전히 저 종래 공동 immuoprecipication 필요하지만 향후에는 근접 결찰 분석은 잠재적으로, 병원에서의 진단 및 예후 바이오 마커로서 단백질 - 단백질 상호 작용 분석을 위해 신속하고 신뢰할 수있는 방법이 될 수있다THOD.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dulbecco's Modified Eagle’s Medium (DMEM) | Sigma | D6429 | High glucose 4,500 mg/L |
| Fetal bovine serum (FBS) | Gibco, Thermo Fisher Scientific | 10270106 | |
| Penicillin-Streptomycin (PenStrep) | BioConcept | 4-01F00-H | |
| NE-PER Nuclear and Cytoplasmic Extraction Reagents | Thermo Fisher Scientific | 78833 | |
| 1,4-Dithiothreitol (DTT) | Carl Roth | 6908.3 | |
| Dynabeads Protein G | Novex, Thermo Fisher Scientific | 10003D | |
| DRBP76 (NF90/NF110) antibody | BD Transduction Laboratories | 612154 | use 1:1,000 for WB and 1:100 for ICC/PLA |
| RBM3 antibody | ProteinTech | 14363-1-AP | use 1:1,000 for WB and 1:100 for ICC/PLA |
| Lamin A/C antibody | Cell Signaling Technology | #2032 | use 1:1,000 for WB |
| anti-GAPDH antibody | Abcam | ab8245 | use 1:1,000 for WB |
| normal rabbit IgG | Santa Cruz | sc-2027 | |
| anti-rabbit IgG, HRP-linked secondary antibody | Cell Signaling Technology | #7074 | use 1:5,000 for WB |
| anti-mouse HRP secondary antibody | Carl Roth | 4759.1 | use 1:5,000 for WB |
| Clarity Western ECL Blotting Substrate | Bio-Rad | #1705060 | |
| NuPAGE Novex 4-12% Bis-Tris Gel | Novex, Thermo Fisher Scientific | NP0321BOX | |
| NuPAGE LDS Sample Buffer (4x) | Novex, Thermo Fisher Scientific | NP0007 | |
| NuPAGE MES SDS Running Buffer (20x) | Novex, Thermo Fisher Scientific | NP0002 | |
| NuPAGE Transfer Buffer (20x) | Novex, Thermo Fisher Scientific | NP00061 | |
| Amersham Hypond P 0.2 PVDF membrane | GE Healthcare Life Sciences | 10600021 | |
| Poly-D-Lysine 8 Well Culture Slide | Corning BioCoat | 354632 | |
| Paraformaldehyde (PFA) | Sigma | P6148 | |
| Normal goat serum (NGS) | Gibco, Thermo Fisher Scientific | PCN5000 | |
| Goat anti-mouse IgG (H+L Antibody), Alexa Fluor 488 conjugate | Thermo Fisher Scientific | A-11001 | |
| Goat anti-rabbit IgG (H+L Antibody), Alexa Fluor 568 conjugate | Thermo Fisher Scientific | A-11011 | |
| 4′, 6-Diamidin-2-phenylindol (DAPI) | Sigma | D9542 | |
| Duolink PLA probe Anti-mouse PLUS | Sigma | DUO92001 | |
| Duolink PLA probe Anti-rabbit MINUS | Sigma | DUO92005 | |
| Duolink Detection Reagents Red | Sigma | DUO92008 | |
| Duolink Wash Buffers Fluorescence | Sigma | DUO82049 | |
| Duolink Mounting Medium with DAPI | Sigma | DUO82040 | |
| Mowiol 4-88 | Sigma | 81381 | |
| Microscope | Olympus | AX-70 | |
| CCD camera | SPOT | Insight 2MP Firewire | |
| X-ray film | Fujifilm | Super RX | |
| Film processing machine | Fujifilm | FPM-100A |
References
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