Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

En modell av Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Gratis Flap

doi: 10.3791/55281 Published: January 15, 2017

Introduction

Gratis vev overføring har blitt stadig mer brukt i klinisk praksis for å rekonstruere manglende vev siden 1970-tallet 1-5. Dette har gjort det mulig rekonstruksjon av komplekse og ellers botemiddel defekter som skyldes svulst extirpation, traumer, infeksjoner, misdannelser eller forbrenninger 1-7. Frie fliker av denne type er spesielt nyttige for å rekonstruere svært komplekse anatomiske regioner, som de av hode og nakke, hånden, foten, og perineum 1,4.

Men selv i dag kirurgiske traineer er ofte daunted av kompleksiteten i flere trinn for å heve, overføring og insetting en gratis klaff med bruk av mikrokirurgiske teknikker og instrumenter 8,9. I tillegg er det allment akseptert at for å bli en dyktig microsurgeon, er obligatorisk 4,8-13 omfattende eksperimentell praksis i en dyremodell.

Videre grunnleggende og translasjonsforskningi området av fri vev overføring er av stor klinisk potensiale 8,14-16. Tross, er forskerne ofte avskrekket fra å bruke mikro modeller av vev overføring på grunn av manglende informasjon om de tekniske aspektene som er involvert i de operative prosedyrer 4,8-14. Rotte er en god dyremodell for mikrokirurgisk forskning og trening, da det er relativt billig, lett å holde, og mottakelig for hyppig manipulasjon 8,11,13,14,17,18.

Selv om flere gratis bein, muskel og hud flaps er beskrevet i rotte 18-24, er det gratis magesekkens fasciocutaneous klaff den mest brukte til undervisningsformål 9,12,13,18,25. Denne gratis klaff ble først beskrevet i 1967 av Strauch og Murray og har fått økende popularitet siden den gang, på grunn av flere faktorer, nemlig konstant vaskulær anatomi, relativ enkel disseksjon, betydelige næringsfartøy, og redundans av huden i donor-sonen, which tillater primær lukking av feilen skyldes klaff heving 4,9-11,13,17,18,25-28.

Klaff anatomi og histologi
Magesekkens klaff er levert av overfladiske magesekkens arterie og vene (figur 1). Disse fartøyene kommer fra og renne ned i den femorale arterie og vene, respektivt. I gjennomsnitt kaliber av overfladisk magesekkens blodåre er 0,6 til 0,8 mm, kontrastfarge med 0,3 til 0,5 mm av den overfladiske magesekkens arterien (figur 2) 17,18. Den overfladiske magesekkens arterien avgir to hovedgrener: en lateral og medial gren som i sin tur deles flere ganger, med opprinnelse kapillær nettverk som leverer det meste av integument av magesekkens region. Disse kapillærer renne ned i sideelvene de overfladiske epigastrica årer som har en parallell kurs til arteriell treet (figur 2) 13,17,18. Diagrammet i Figur 3 reviser det område av ventrolateral bukveggen som leveres av den overfladiske epigastriske fartøy som kan mobiliseres i magesekkens klaff. Dette klaff kan være opp til 5 cm i lengde og 3 cm i bredden 13,17,18.

Histologisk er klaffen sammensatt av integument som dekker ventrolateral abdominal veggen muskler (figur 4) 13,17,18. Den inneholder et overfladisk lag av huden, dannet av dermis og epidermis. Under huden er det et lag av fettvev heter panniculus adiposus. Under dette laget er det et annet lag av tverrstripet muskulatur kjent som panniculus carnosus 18,28,29. Under panniculus carnosus det er løst areolar vev som er overfladisk til dyp konseptet som dekker større magemusklene. Derfor er det en klaff sammensatte blokk av vev, som inneholder alle disse lag, med unntak av dyp muskel fascia (figur 5) 13,17,18,27-31.

Protocol

Alle prosedyrer som involverer dyr fag ble godkjent av Institutional Animal Care og bruk komité og livssynsutvalget ved Nova University Medical School, Lisboa, Portugal (08/2012 / CEFCM).

1. kirurgisk prosedyre Etablerings Merknader

  1. Bruk voksne Wistar rotter som veier 250-350 g.
  2. Hold rottene med mat og vann ad libitum med 12 timers lys-mørk sykluser 7 dager før inngrepet.
  3. Veie rotte for å bestemme mengden av bedøvelse nødvendig.
  4. Autoklav alle kirurgiske instrumenter før operasjonen.
  5. Layout alle de kirurgiske forsyninger og instrumenter som trengs for prosedyren (se tabell for material).
  6. Utføre operasjonen under en operasjonsmikroskop med konvensjonelle og mikroinstrumenter.
  7. Plasser homeothermic teppe, rektal probe, og varmelampe.
  8. Plasser en 20 ml sterilisert ampulle inneholdende 0,9% saltvann i et vannbad oppvarmet til37 ºC.
  9. Bruk steriliserte hansker for å desinfisere alle flater av drifts innstilling med en alkoholisert løsning. Fjern hanskene.
  10. Plasser en skrubb lue og maske.
  11. Desinfiser hendene med vann og såpe og bære et annet par av steriliserte hansker.
  12. Bruk en steril kirurgisk kappe.

2. Anestesi og Skin Forberedelse

MERK: Ha en assistent hjelp med følgende fire trinn, som en steril kappe og hansker er slitt.

  1. Bedøve rotte med en blanding av ketamin og Diazepam gitt intraperitonealt. Dosen er 5 mg / kg ketamin og 0,25 mg / kg diazepam. Dommer anestesidybden ved tå klype og ved overholdelse av respirasjonsfrekvens gjennom hele prosedyren 8,14,15,32.
  2. Påfør en oftalmisk gel over fremre overflate av øynene for å unngå hornhinnen slitasje.
  3. Fjern hår over ventral overflaten av buken med en Hårfjerningskrem. Etter hår removal, fjern Hårfjerningskrem med varmt saltvann.
  4. Spray en betydelig mengde alkoholisk oppløsning over operasjonsstedet. La produktet på operasjonsstedet, og ikke tørk den av. Vent minst 15 sekunder. Gjenta påføringen 3 ganger. La en kontakttid på minst 2 minutter før fortsetter med kirurgi. Andre forskningsenheter bruke andre protokoller for å forebygge postoperativ sårinfeksjon.
  5. Iført steriliserte hansker, plasserer 2 operasjonsduker på begge sider av rotte.

3. Donor nettstedet Kirurgisk prosedyre

  1. Angi grensene for en epigastrisk klaff som strekker seg omtrent 5 cm i lengde og 3 cm bredde.
    1. Ved hjelp av en kirurgisk hud markør, tegne en linje fra xifoid fremgangs sternum til symfyseprovokasjonstester, for å markere midtlinjen i løpet av den ventrale overflaten av rottens buk.
    2. På venstre side av rotte, ved hjelp av et kirurgisk hud markør, tegne to loddrette linjer til den første linjen: påe krysser umiddelbart kaudalt for thorax bur, og en annen, parallell med sistnevnte, og bare kranie til lysken folden (figur 3 og 6).
    3. Marker den laterale snitt med en kirurgisk hud markør med en linje parallelt med midtlinjen og rundt 3 cm bortsett fra det.
  2. Flap høsting
    1. Innsnittet i huden med et antall 15 skalpellblad til n panniculus carnosus lag.
    2. Dypere til panniculus carnosus flyet, gjør snittet med en elektrisk kirurgi inntil nå muskelen fascia.
    3. Løft klaffen fra mediale til laterale og fra kranie til hale, utsette klaffen er stilken.
    4. Nøye ligate og dele perforering skipene som kommer opp fra den dype muskellaget og går inn klaffen dype overflaten.
    5. Plasser en retractor i hale aspekt av klaff og dissekere klaffen er stilken forsiktig ved forsiktig ertingbort løs omliggende vev (figur 7).
    6. Ligate og dele lateral femoral cirkumfleks arterie og vene bruker 9/0 nylon for ligaturer.
    7. Isoler femoral arterie og vene. Når stede, ligate (med 9/0 Nylon) og dele grener av disse fartøyene til tilstøtende muskler.
    8. For det første, å bruke en dobbel vaskulær klemme for å klemme den proksimale aspekt av lårvenen. Deretter klemme sin distal aspekt. Deretter klemme den distale del av lårarterien og endelig dens proksimale aspektet.
    9. Klem den distale del av lårarterien og endelig dens proksimale aspektet.
    10. Plasser en enkelt vaskulær klemme i den overfladiske epigastric vein og en annen i den overfladiske magesekkens arterien. Bruk et par rette mikrokirurgi saks for å klippe den overfladiske magesekkens arterie og vene på deres opprinnelse og avslutning, henholdsvis.
    11. Værs vanne lumen av disse fartøyene med heparinisert fysiologisk saltvann 10 IU / ml, Til det ikke blod eller rusk blir sett inne skipenes lumen 33.
    12. Trekk og trimme en mansjett av adventitia nær de vaskulære seksjonssider.
    13. Overfør magesekkens klaff til halsen ved hjelp av Addisons tang (figur 8).
    14. Lukk donor området med subkutikulær avbrutt 5/0 absorberbare sting.
    15. Lukk huden med avbrutte 5/0 Nylon masker.

4. Mottaker nettstedet Kirurgisk prosedyre

  1. Eksponering av Mottakers Side Vessels
    1. Ved hjelp av en kirurgisk hud markør, tegne en linje over den mediale kant av venstre sternocleidomastoideus (SCM) muskler.
    2. Ved hjelp av en kirurgisk hud markør, tegne en annen linje umiddelbart kranie og parallelt til venstre krageben. Disse to linjene må møtes på venstre sternoclavicular felles.
    3. Incise huden ved hjelp av en rekke 15 skalpell blad.
    4. Bruk en elektrisk kirurgi å skjære gjennom subcutaneous vev.
    5. Bruk et par dissekere saks til skeletonize den ytre halsvenen lateralt for SCM muskel.
    6. Isoler og ligate sideelver til ytre hals i dette (figur 9).
    7. Ligate den ytre halsvenen like under kjeven med en 9/0 nylon sutur.
    8. Plasser en enkelt venøs klemme under den sistnevnte ligering og kutte den ytre halsvenen ved hjelp av et par rette mikrokirurgi saks.
    9. Vask lumen av venen med heparinisert normal saltløsning i en konsentrasjon på 10 IU / ml.
    10. Isolere den mediale margin av SCM muskel og trekke denne muskelen i sideretningen, og dermed utsette halspulsåren og vagusnerven (figur 10).
    11. Lag en tverrgående snitt i midtre tredjedel av SCM muskelen ved hjelp av elektrisk kirurgi.
    12. Plasser en retractor mellom den dype overflaten av SCM muskel og stroppen muskler.
    13. Erte bort vagus nerve fra carotisarterie, tar seg ikke å skade disse strukturene.
  2. vaskulære anastomoser
    1. Plasser en dobbel arteriell klemme i halspulsåren.
    2. Plasser en 9/0 nylon sting i lateral aspekt av halspulsåren, og bruke denne masken til å trekke denne delen av karveggen.
    3. Bruke et par av rette mikrokirurgi saks for å frembringe en åpning i denne regionen i karveggen.
    4. Ved hjelp av avbrutt 10/0 nylon suturer utføre en Termino-lateral anastomose mellom den overflatiske epigastriske arterie av klaffen og halsarterien på nivå med den nylig skapte halsåpning.
    5. Tilnærming proksimale stump av den ytre halsvenen og overfladisk magesekkens blodåre og inspisere kaliber av disse to årene.
      1. Dersom avviket i størrelse er liten til moderat, strekke lumen av kuttet enden av overfladisk magesekkens blodåre hjelp dilatasjon tang.
      2. Hvis kaliber forskjellen er veldig pronounced, i tillegg til tang dilatasjon, avfasing av enden av den overflate-epigastriske blodåre i en 30 til 45 ° vinkel.
      3. Utfør vene anastomosen, ved hjelp avbrutt 11/0 Nylon sting.
    6. Fjern de enkle klemmer plasseres på klaff skip.
    7. Fjerne dobbeltklemmen plassert i den femorale vene.
    8. Fjerne dobbeltklemmen plassert i lårarterien.
  3. Vurdere åpenhet og kompetanse i anastomoser
    1. Verifisere om klaffen arterie og vene er fullstendig utvidet, og ingen signifikant blødning observeres etter 3 min for fjerning av de vaskulære klemmer (figur 11).
      1. Hvis det er blødning i løpet av denne perioden plassere en fuktig saltholdig gasbind over anastomose og trykk forsiktig.
      2. Hvis blødningen fra anastomoser ikke stopper etter 3 min, legge til ekstra 11/0 Nylon avbrutt sting, etter vaskulær klemme plassering, etter behov.
    2. Vent i 10 min med klaff koblet til nakke fartøy og pakket med et gasbind fuktet i varmt saltvann.
    3. Vurdere klaff perfusjon og halsen sår hemostase. Inspiser anastomoser for tegn på blødning, blodpropp eller overdreven trekkraft.
    4. Fest klaff i mottakerstedet fra 5/0 subkutikulær avbrutte suturer.
    5. Lukke huden med 5/0 nylon avbrutt suturer (figur 12).

5. Postoperativ Care

  1. La rotte å gjenopprette inne sin individuelle bur i riktig lateral decubitus posisjon. Hold buret varm ved å plassere en elektrisk varmepute satt på lav under. Plasser en lys klut mellom buret og elektrisk varme pute for å unngå hypertermi.
  2. Se dyret kontinuerlig snu det til det motsatte lateral decubitus hvert 5 min, før den fortsetter sternal recumbency og det er i stand til å ambulate.
  3. Hus rottene enkeltvis inntil fjerne than kirurgiske masker to uker etter det kirurgiske inngrepet.
  4. Gi en anti-inflammatorisk narkotika 1 mg / kg subkutant en gang daglig i 3 dager etter operasjonen, for postoperativ smertelindring.

6. Flap Assessment

  1. Presentere en mat godbit over hodet på rotta og vurdere klaff levedyktighet ved visuell inspeksjon.
  2. Hvis eksponeringen er utilstrekkelig hjelp forrige trinn, har en assistent søker svak berøring over interscapular regionen av rotte, mens undersøke klaffen.
  3. Bruk digital fotografering og ImageJ programvare for å kvantitativt vurdere områdene sårruptur, klaff Epidermolysis, hyperemia, lunger og / eller nekrose, som forklart i detalj av Trujillo et al. 15.

Representative Results

Ifølge forfatterne opplevelse av mer enn ti år med magesekkens gratis klaff som en modell for gratis vev transfer både i sammenheng med mikrokirurgi kurs og for forskningsformål, frekvensen av klaff overlevelse avhenger litt av fingerferdighet og erfaring kirurgen . Generelt sett, hvis de tekniske aspektene beskrevet ovenfor, blir tatt hensyn til, en nesten fullstendig overlevelse (<10% av klaff nekrose) på rundt 70% av klaffer er å forvente. Rundt 10% av flaps presentere delvis nekrose (10-50%). Omtrent 20% av flaps lider komplett nekrose. En 80% nesten komplett overlevelse ble oppnådd i løpet av de siste 20 prosedyrer utført av førsteforfatter (DC) (figur 13).

I løpet av de to første dagene etter operasjonen, er det gratis magesekkens klaff ofte edematous og presenterer en viss grad av venøs lunger. Disse vanligvis both avta gradvis mellom 3 og 5 dager etter operasjonen. Vanligvis i løpet av den første uken, fjerner rotte fleste eksterne masker og en del av de subkutikulær sting, som ofte resulterer i spredte områder med svak sårruptur (figur 14). Etter dag 10, den hår langsomt begynner å vokse på klaffen overflate. Ved slutten av den første måned etter operasjonen, er klaffen vanligvis dekket med litt kortere hår enn den tilstøtende hud. To måneder etter operasjonen, er tilstedeværelsen av klaffen innledet ved en liten klump, og ved et forholdsvis lite synlige arr rundt klaffen marginer (figur 14). Auto kannibalisme av klaffen er et sjeldent funn at i forfatternes erfaring, forekommer nesten utelukkende i tilfelle av total klaff nekrose.

Figur 1
Figur 1: Vaskulær anatomi av magesekkens gratis flas.
Dette fotografiet viser den venstre midten av magesekken til en rotte som tidligere injisert med en rød lateks-løsning i det arterielle system, og med en blå lateks-løsning i venesystemet. Det er mulig å observere at magesekkens regionen får en aksial blodtilførsel fra det overflatiske epigastriske arterie og vene. Disse fartøyene kommer fra og renne ned i den femorale arterie og vene, respektivt. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figur 2
Figur 2: Scanning elektronmikroskopi bilde av et korrosjons felles de overflate-epigastriske fartøy som viser den mikroskopiske vaskulære blodtilførselen til magesekkens fri klaff.
Dette scanning elektronmikroskopi bilde av et korrosjons cast av SuperFisielle epigastrica fartøy av rotte viser at venen har et større kaliber som arterien. I gjennomsnitt kaliber av den overflate-epigastriske blodåre er 0,6 til 0,8 mm, sammenlignet med 0,3 til 0,5 mm av den overflate-epigastriske arterie. Dette bildet viser også at den overflatiske epigastriske arterie stammer to hovedgrener: en lateral og medial en gren som i sin tur deles flere ganger, med opprinnelse kapillært nettverk som leverer mesteparten av midten av magesekken. Disse kapillærer renne ned i sideelvene til overfladisk magesekkens blodåre som har en parallell kurs til arterielle treet. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figur 3
Figur 3: Potential område i en venstre magesekkens fri klaff i rotte.
Dette diagrammet representerer regionen av bukveggen levert av overfladiske epigastric fartøy og som kan mobiliseres i magesekkens klaff. Dette klaff kan være opp til 5 cm i lengde og 3 cm i bredden. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figur 4
Figur 4: Fotografi av en hematoksylin-eosin farget delen av magesekkens klaff.
Dette hematoksylin-eosin farget delen av midten av magesekken viser at magesekkens klaffen er sammensatt av de integument i denne regionen som dekker abdominal veggen muskler. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.


Figur 5: Histologisk sammensetning av magesekkens klaff.
Bildet til venstre representerer en hematoksylin-eosin farget del av en magesekkens klaff, mens bildet til høyre er hentet fra en Masson er Trichrome i denne klaff. Disse to bildene illustrerer at magesekkens klaffen på rotte er en sammensatt blokk av vev. Den inneholder et overfladisk lag av huden, dannet av dermis og epidermis. Under huden er det et lag av fettvev heter panniculus adiposus. Under dette laget er laget av tverrstripet muskulatur kjent som panniculus carnosus. Under panniculus carnosus er det en dyp fascia som dekker større og dypere magemusklene. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figur 6
Figur 6. Pre-operative hud markeringene på den ventrale overflaten av rotte før operasjonen.
Dette bildet illustrerer huden markeringer for snittene som brukes til å heve venstre magesekkens klaff og senere til innfelt dette klaff i ventral aspektet av venstre nakken.

Figur 7
Figur 7. Kirurgisk anatomi av magesekkens klaff er nærings skip under drifts mikroskop (10x forstørrelse).
Dette fotografiet viser den overfladiske epigastriske arterie og vene som stammer fra og drenering i den femorale arterie og vene, respektivt. Den laterale femorale arterie circumflexa oppstår vanligvis fra hale aspektet av den overfladiske epigastric arterie. Den laterale femoral cirkumfleks vene har en lignende bane og vanligvis ender opp i overfladiske magesekkens blodåre. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figur 8
Figur 8. epigastrisk klaff ex vivo pedicled på sin nærings fartøy (den overflate-epigastriske arterie og vene - A, V, henholdsvis). Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figur 9
Figur 9. Drifts utsikt overDisseksjon av mottakeren vene, dvs. den ytre halsvenen, på den venstre side av halsen (6 x forstørrelse).
Det er mulig å observere den subkutane løpet av den ytre halsvene lateralt for sternokleidomastoideus. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figur 10
Figur 10. Driftsriss av disseksjon av donor arterie, dvs. den felles carotid, på den venstre side av halsen (10x forstørrelse).
Arterien og medfølgende vagus nerve er utsatt etter trekke sternocleidomastoideus og infrahyoid muskler, som vist. Klikk her for å se en større versjon av thans skikkelse.

Figur 11
Figur 11. Fotografi av de vaskulære anastomoser mellom klaffen fartøy og mottakerfartøy i nakken, som sett under operasjonsmikroskop (10 x forstørrelse).
Dette fotografiet viser Termino-lateral anastomose mellom arteria carotis og overfladiske epigastrica arteriene. Det er også mulig å observere Termino-terminale anastomose mellom den overflatiske epigastriske og de utvendige halsvenene. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figur 12
Figur 12. Fotografi av ventral aspekt av rotte umiddel bart etter operasjonen.
Legg merke til at den giver sonen er lett lukkes i første rekke. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figur 13
Figur 13. Epigastric gratis klaff overlevelse i 20 sammenhengende rotter drives videre av den første forfatteren (DC).
Fem rotter (20%) viste fullstendig klaff nekrose (saker 1, 4, 8, 13 og 15, representert ved de røde prikker). Områder i klaff nekrose ble bestemt ved bruk av fri programvare ImageJ, som forklart i detalj av Trujillo et al. 15. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

14 "src =" / files / ftp_upload / 55281 / 55281fig14.jpg "/>
Figur 14. Fotografier av magesekkens klaffen er plassert på den ventrale del av halsen 4, 14 og 60 dager postoperativt.
Fire dager etter operasjonen, er det vanligvis noen sårruptur, som rotte fjerner stingene. Imidlertid gjenstår det klaff vanligvis på plass. Det er mulig å undersøke klaffen daglig ved enkel visuell inspeksjon. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Acknowledgments

En av forfatterne (Diogo Casal) mottatt tilskudd fra programmet for Advanced Medical Education, som er sponset av Fundação Calouste Gulbenkian, Fundação Champalimaud, Ministerio da Saúde e Fundação para en Ciencia e Tecnologia, Portugal.

Forfatterne ønsker å takke teknisk hjelp av Mr. Alberto Severino i filming og redigering av video. Forfatterne er også takknemlig til Mr. Octávio Chaveiro, Mr. Marco Costa og Mr. Carlos Lopes for deres hjelp i utarbeidelsen av dyr eksemplarer som er presentert i denne artikkelen.

Til slutt vil forfatterne takke Ms. Gracinda Menezes for hennes hjelp i alle de logistiske aspekter knyttet til dyr anskaffelse og vedlikehold.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Skin Skribe Surgical Skin Marker Moore Medical 31456 https://www.mooremedical.com/index.cfm?/Skin-Skribe-Surgical-Skin-Marker/
&PG=CTL&CS=
HOM&FN=ProductDetail&
PID=1740&spx=1
Micro retractor Fine Science Tools RS-6540 http://www.finescience.de
Graeffe forceps 0.8 mm tips curved Fine Science Tools 11052-10 http://www.finescience.de
Acland clamps Fine Science Tools 00398 V http://www.merciansurgical.com/aclandclamps.pdf
Clamp applicator Fine Science Tools CAF-4 http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
High-Temperature Cautery Fine Science Tools AA03 http://www.boviemedical.com/products_aaroncauteries_high.asp
Micro-vessel dilators 11 cm 0.3 mm tips 00124 Fine Science Tools D-5a.2 http://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers Forceps 11cm angulated 00109 Fine Science Tools JFA-5b http://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers Forceps 11 cm straight 00108 Fine Science Tools JF-5 http://www.merciansurgical.com
Acland Single Clamps B-1V (Pair) Fine Science Tools 396  http://www.merciansurgical.com
Micro Scissors Round Handles 15 cm Straight Fine Science Tools 67  http://www.merciansurgical.com
Iris Scissors 11.5 cm Curves EASY-CUT Fine Science Tools EA7613-11  http://www.merciansurgical.com
Mayo Scissors 14 cm Straight Chamfered Blades EASY-CUT Fine Science Tools EA7652-14  http://www.merciansurgical.com
Derf Needle Holders 12 cm TC Fine Science Tools 703DE12  http://www.merciansurgical.com
Monosyn 5-0 B.Braun 15423BR http://www.mcfarlanemedical.com.au/
15423BR/
SUTURE-MONOSYN-5_or_0-16MM-70CM-(C0023423)-BOX_or_36/pd.php
Ethilon 5-0 Ethicon W1618 http://www.farlamedical.co.uk/category_Ethilon-Suture-1917/Ethilon-Sutures/
Dafilon 10-0 B.Braun G1118099 http://www.bbraun.com/cps/rde/xchg/bbraun-com/hs.xsl/products.html?prid=PRID00000816
Veet Sensitive Skin Hair Removal Cream Aloe Vera and Vitamin E 100 ml Veet http://www.veet.co.uk/products/creams/creams/veet-hair-removal-cream-sensitive-skin/
Instrapac - Adson Toothed Forceps (Extra Fine) Fine Science Tools 7973 http://www.millermedicalsupplies.com
Castroviejo needle holders Fine Science Tools 12565-14 http://s-and-t.ne
Straight mosquito forcep Fine Science Tools 91308-12 http://www.finescience.de
Cutasept F skin disinfectant Bode Chemie http://www.productcatalogue.bode-chemie.com/products/skin/cutasept_f.php
Lacri-lube Eye Ointment 5g Express Chemist LAC101F http://www.expresschemist.co.uk/lacri-lube-eye-ointment-5g.html
Normal saline for irrigation Hospira, Inc. 0409-6138-22 http://www.hospira.com/en/search?q=sodium+chloride+irrigation%2C+usp&fq=contentType%3AProducts
Heparin Sodium Solution (5,000 IU/ml) B.Braun http://www.bbraunusa.com/products.html?prid=PRID00006982
Meloxicam Metacam Boehringer Ingelheim http://www.bi-vetmedica.com/species/pet/products.html
Heat Lamp HL-1 Harvard Apparatus 727562 https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/
haisku3_10001_11051_39108_-1_
HAI_ProductDetail_N_
37610_37611_37613
Homeothermic Blanket System with Flexible Probe Harvard Apparatus 507220F https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/
haisku3_10001_11051_39108_-1_
HAI_ProductDetail_N_
37610_37611_37613
Dry heat sterilizer Quirumed 2432 http://www.quirumed.com/pt/material-de-esterilizac-o/esterilizadores
Surgical drapes Barrier 800430 http://www.molnlycke.com/surgical-drapes/
Biogel Surgical Gloves Medex Supply 30465 https://www.medexsupply.com
Operating microscope Leica Surgical Microsystems 10445319 http://www.leica-microsystems.com/products/surgical-microscopes/

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Morain, W. D. Plastic Surgery. Mathes, S. J. 1, Saunders. 27-34 (2006).
  2. Christoforou, D., Alaia, M., Craig-Scott, S. Microsurgical management of acute traumatic injuries of the hand and fingers. Bull Hosp Jt Dis. 71, (1), 6-16 (2013).
  3. Santoni-Rugiu, P., Sykes, P. J. A History of Plastic Surgery. Santoni-Rugiu, P., Sykes, P. J. Springer. 3 79-119 (2007).
  4. Tamai, S. Experimental and Clinical Reconstructive Microsurgery. Tamai, S., Usui, M., Yoshizu, T. Springer-Verlag. Ch. 1 3-24 (2003).
  5. Bettencourt-Pires, M. A., et al. Anatomy and grafts - From Ancient Myths, to Modern Reality. Arch Anat. 2, (1), 88-107 (2014).
  6. Casal, D., Gomez, M. M., Antunes, P., Candeias, H., Almeida, M. A. Defying standard criteria for digital replantation: A case series. Int J Surg Case Rep. 4, (7), 597-602 (2013).
  7. Gomez, M. M., Casal, D. Reconstruction of large defect of foot with extensive bone loss exclusively using a latissimus dorsi muscle free flap: a potential new indication for this flap. J Foot Ankle Surg. 51, (2), 215-217 (2012).
  8. Plenter, R. J., Grazia, T. J. Murine heterotopic heart transplant technique. J Vis Exp. (89), (2014).
  9. Pichierri, A., et al. How to set up a microsurgical laboratory on small animal models: organization, techniques, and impact on residency training. Neurosurg Rev. 32, (1), 101-110 (2009).
  10. Klein, I., Steger, U., Timmermann, W., Thiede, A., Gassel, H. J. Microsurgical training course for clinicians and scientists at a German University hospital: a 10-year experience. Microsurgery. 23, (5), 461-465 (2003).
  11. Fukui, A. Experimental and Clinical Reconstructive Microsurgery. Tamai, S., Usui, M., Yoshizu, T. Springer-Verlag. Ch. 1 35-43 (2004).
  12. Ad-El, D. D., Harper, A., Hoffman, L. A. Digital replantation teaching model in rats. Microsurgery. 20, (1), 42-44 (2000).
  13. Ruby, L. K., Greene, M., Risitano, G., Torrejon, R., Belsky, M. R. Experience with epigastric free flap transfer in the rat: technique and results. Microsurgery. 5, (2), 102-104 (1984).
  14. Edmunds, M. C., Wigmore, S., Kluth, D. In situ transverse rectus abdominis myocutaneous flap: a rat model of myocutaneous ischemia reperfusion injury. J Vis Exp. (76), (2013).
  15. Trujillo, A. N., Kesl, S. L., Sherwood, J., Wu, M., Gould, L. J. Demonstration of the rat ischemic skin wound model. J Vis Exp. (98), (2015).
  16. Siemionow, M. Z. Plastic and Reconstructive Surgery: Experimental models and research designs. Siemionow, M. Z. Springer - Verlag. Ch. 1-7 3-67 (2015).
  17. Petry, J. J., Wortham, K. A. The anatomy of the epigastric flap in the experimental rat. Plast Reconstr Surg. 74, (3), 410-413 (1984).
  18. Tamai, S., Usui, M., Yoshizu, T. Experimental and Clinical Reconstructive Microsurgery. 6, Springer-Verlag. Ch. 6 111-114 (2004).
  19. Zhang, F., et al. Microvascular transfer of the rectus abdominis muscle and myocutaneous flap in rats. Microsurgery. 14, (6), 420-423 (1993).
  20. Tonken, H. P., et al. Microvascular transplant of the gastrocnemius muscle in rats. Microsurgery. 14, (2), 120-124 (1993).
  21. Miyamoto, S., et al. Free pectoral skin flap in the rat based on the long thoracic vessels: a new flap model for experimental study and microsurgical training. Ann Plast Surg. 61, (2), 209-214 (2008).
  22. Nasir, S., Aydin, A., Kayikcioglu, A., Sokmensuer, C., Cobaner, A. New experimental composite flap model in rats: gluteus maximus-tensor fascia lata osteomuscle flap. Microsurgery. 23, (6), 582-588 (2003).
  23. Coskunfirat, O. K., Islamoglu, K., Ozgentas, H. E. Posterior thigh perforator-based flap: a new experimental model in rats. Ann Plast Surg. 48, (3), 286-291 (2002).
  24. Ozkan, O., et al. A new flap model in rats: iliac osteomusculocutaneous flap. Ann Plast Surg. 47, (2), 161-167 (2001).
  25. Padubidri, A. N., Browne, E. Modification in flap design of the epigastric artery flap in rats--a new experimental flap model. Ann Plast Surg. 39, (5), 500-504 (1997).
  26. Strauch, B., Murray, D. E. Transfer of composite graft with immediate suture anastomosis of its vascular pedicle measuring less than 1 mm. in external diameter using microsurgical techniques. Plast Reconstr Surg. 40, (4), 325-329 (1967).
  27. Green, C. E. Anatomy of the Rat. First edn. Hafner Publishing Company. 124-153 (1968).
  28. Greene, E. C. Anatomy of the rat. Hafner. New York. (1959).
  29. Langworthy, O. R. A morphological study of the panniculus carnosus and its genetical relationship to the pectoral musculature in rodents. Am J Anat. 35, (2), 283-302 (1925).
  30. Popesko, P., Ratjová, V., Horák, J. A Colour Atlas of the Anatomy of Small Laboratory Animals. 2, Saunders. 13-104 (1992).
  31. Brown, S. H., Banuelos, K., Ward, S. R., Lieber, R. L. Architectural and morphological assessment of rat abdominal wall muscles: comparison for use as a human model. J Anat. 217, (3), 196-202 (2010).
  32. Harder, Y., et al. Ischemic tissue injury in the dorsal skinfold chamber of the mouse: a skin flap model to investigate acute persistent ischemia. J Vis Exp. (93), e51900 (2014).
  33. Cox, G. W., Runnels, S., Hsu, H. S., Das, S. K. A comparison of heparinised saline irrigation solutions in a model of microvascular thrombosis. Br J Plast Surg. 45, (5), 345-348 (1992).
  34. Gurunluoglu, R., Siemionow, M. Z. Plastic and Reconstructive Surgery: Experimental models and research designs. Siemionow, M. Z. Spronger. Ch. 6 53-62 (2015).
  35. Nasir, S. Plast Reconstr Surg. Springer. 227-236 (2015).
  36. Parsa, F. D., Spira, M. Evaluation of anastomotic techniques in the experimental transfer of free skin flaps. Plast Reconstr Surg. 63, (5), 696-699 (1979).
  37. Dunn, R. M., Huff, W., Mancoll, J. The Rat Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A True Myocutaneous Flap Model. Ann Plast Surg. 31, (4), 352-357 (1993).
  38. Özkan, Ö, et al. A new flap model in rats: iliac osteomusculocutaneous flap. Ann Plast Surg. 47, (2), 161-167 (2001).
  39. Ozkan, O., Koshima, I., Gonda, K. A supermicrosurgical flap model in the rat: a free true abdominal perforator flap with a short pedicle. Plast Reconstr Surg. 117, (2), 479-485 (2006).
  40. Dorsett-Martin, W. A. Rat models of skin wound healing: a review. Wound Repair Regen. 12, (6), 591-599 (2004).
  41. Ghali, S., et al. Treating chronic wound infections with genetically modified free flaps. Plast Reconstr Surg. 123, (4), 1157-1168 (2009).
En modell av Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Gratis Flap
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Casal, D., Pais, D., Iria, I., Mota-Silva, E., Almeida, M. A., Alves, S., Pen, C., Farinho, A., Mascarenhas-Lemos, L., Ferreira-Silva, J., Ferraz-Oliveira, M., Vassilenko, V., Videira, P. A., Gory O'Neill, J. A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap. J. Vis. Exp. (119), e55281, doi:10.3791/55281 (2017).More

Casal, D., Pais, D., Iria, I., Mota-Silva, E., Almeida, M. A., Alves, S., Pen, C., Farinho, A., Mascarenhas-Lemos, L., Ferreira-Silva, J., Ferraz-Oliveira, M., Vassilenko, V., Videira, P. A., Gory O'Neill, J. A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap. J. Vis. Exp. (119), e55281, doi:10.3791/55281 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter