Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Модель свободной ткани Transfer: The Rat эпигастрии Free закрылков

doi: 10.3791/55281 Published: January 15, 2017

Introduction

Свободная передача ткани все шире используется в клинической практике для восстановления недостающих тканей с 1970 года 1-5. Это позволило реконструкции сложных и в противном случае неизлечимых дефекты , вызванные опухолью экстирпации, травмы, инфекции, пороки развития или ожоги 1-7. Свободные клапаны такого типа особенно полезны для восстановления очень сложных анатомических областей, как у головы и шеи, руки, ноги и промежность 1,4.

Тем не менее, даже сегодня хирургические обучаемые часто пугали сложностью нескольких этапов в повышении, переводе и insetting свободный лоскут с использованием микрохирургической техники и инструментов 8,9. Кроме того, широко признано , что , чтобы стать опытным микрохирург, обширная экспериментальная практика в животной модели является обязательным 4,8-13.

Кроме того, основной и трансляционные исследованияв области передачи свободной ткани представляет большой клинический потенциал 8,14-16. Тем не менее, исследователи часто отпугивает от использования микрохирургические модели переноса ткани из - за отсутствия информации , касающейся технических аспектов , связанных с оперативным процедурам 4,8-14. Крыса является хорошей моделью животных для микрохирургических исследований и подготовки кадров, так как это относительно недорогой, легко держать, и поддаются частой манипуляции 8,11,13,14,17,18.

Хотя несколько свободных костей, мышц и кожи закрылки были описаны у крыс 18-24, свободный эпигастрии fasciocutaneous лоскут является наиболее широко используется в учебных целях 9,12,13,18,25. Этот свободный лоскут был впервые описан в 1967 году Штраухом и Мюррей и приобрел большую популярность с тех пор, из-за нескольких факторов, а именно постоянной сосудистой анатомии, относительной легкости рассечения, значительных питательных сосудов и избыточности кожи в донорской зоне, ВГIch позволяет первичное закрытие дефекта в результате подъема лоскута в 4,9-11,13,17,18,25-28.

Закрылков анатомии и гистологии
Эпигастрии лоскут питается от поверхностной эпигастральной артерии и вены (рисунок 1). Эти сосуды происходят из и стекать в бедренную артерию и вену, соответственно. В среднем калибр поверхностной эпигастральной вены от 0,6 до 0,8 мм, контрастирующий с 0,3 до 0,5 мм поверхностной эпигастральной артерии (рисунок 2) 17,18. Поверхностный эпигастрии артерии выделяет две основные ветви: боковой и медиальной ветвь, которая, в свою очередь разделить несколько раз, происходящих капиллярных сетей, которые поставляют большую часть покрове эпигастральной области. Эти капилляры стекать в притоках поверхностных эпигастральной вены , которые имеют параллельный курс на артериальном дереве (Рисунок 2) 13,17,18. Диаграмма на рисунке 3 репредставляет область вентролатеральной брюшной стенки, поставляемой поверхностных эпигастральной судов, которые могут быть мобилизованы в эпигастральной лоскута. Этот лоскут может быть до 5 см в длину и 3 см в ширину 13,17,18.

Гистологически, створка состоит из покровы , которая охватывает вентролатеральной мышцы брюшной стенки (рисунок 4) 13,17,18. Она содержит поверхностный слой кожи, образованный дермы и эпидермиса. Под кожей находится слой жировой ткани под названием panniculus adiposus. Ниже этого слоя есть еще один слой полосатых мышц известный как panniculus carnosus 18,28,29. Под panniculus carnosus есть свободные рыхлой соединительной ткани , которая является поверхностным к глубокой фасции , которая покрывает большие мышцы живота. Следовательно, клапан представляет собой составной блок тканей, содержащий все эти слои, для глубокой мышечной фасции , за исключением (рис 5) 13,17,18,27-31.

Protocol

Все процедуры, связанные предметы животных были одобрены по уходу и использованию комитета Institutional животных и этическим комитетом в Новой медицинской школы университета, Лиссабон, Португалия (08/2012 / CEFCM) путем.

1. Хирургическая процедура установки Примечания

  1. Использование взрослых крыс линии Вистар весом от 250 до 350 г.
  2. Держите крыс с пищей и водой вволю с 12 ч светло-темные циклов 7 дней до операции.
  3. Взвесить крысу для того, чтобы определить количество анестезирующего средства, необходимое.
  4. Автоклав все хирургические инструменты, перед хирургическим вмешательством.
  5. Layout все хирургические материалы и инструменты, необходимые для процедуры (смотри таблицу материалов).
  6. Выполните операцию под операционным микроскопом с использованием традиционных и микрохирургических инструментов.
  7. Поместите теплокровного одеяло, ректальный зонд, и тепла лампы.
  8. Поместите один 20 мл стерилизованной флакон, содержащий 0,9% -ный солевой раствор в водяной бане нагревают до37 ºC.
  9. Надевайте перчатки стерилизованные для дезинфекции всех поверхностей рабочей обстановке спиртовым раствором. Снять перчатки.
  10. Поместите скраб крышку и маску.
  11. Продезинфицировать руки водой с мылом и надеть другую пару стерилизованных перчаток.
  12. Носите стерильный хирургический халат.

2. Обезболивание и кожи Приготовление

Примечание: Попросите помощника помощь следующие четыре шага, как стерильный халат и перчатки изношены.

  1. Обезболить крысу со смесью кетамина и диазепама внутрибрюшинно. Доза 5 мг / кг кетамина и 0,25 мг / кг диазепама. Судите глубину анестезии пальца щепоткой и соблюдением частоты дыхания на протяжении всей процедуры 8,14,15,32.
  2. Применение офтальмологической геля на передней поверхности глаза, чтобы избежать истирания роговицы.
  3. Удалите волосы на вентральной поверхности живота с депиляции кремом. После того, как волосы удалением ВиАль, удалить депиляции крем с теплым физиологическим раствором.
  4. Спрей значительное количество спиртового раствора через операционное поле. Оставьте продукт на место операции и не стереть ее. Подождите, по крайней мере, на 15 сек. Повторите приложению 3 раза. Оставьте время контакта не менее 2 мин перед тем как приступить к операции. Другие исследовательские подразделения используют другие протоколы, чтобы предотвратить хирургической инфекции сайта.
  5. Ношение простерилизованные перчатки, 2 место хирургических простыней с обеих сторон крысы.

3. Донор сайта Хирургические процедуры

  1. Установить границы эпигастральный лоскута в пределах примерно 5 см в длину и ширину 3 см.
    1. С помощью хирургического маркера кожи, проведите линию от мечевидного отростка грудины до лобкового симфиза, чтобы отметить среднюю линию по вентральной поверхности живота крысы.
    2. На левой стороне крысы, с использованием хирургической маркер кожи, проведите две перпендикулярные линии к первой линии: нае пересечение сразу каудальнее грудной клетки, а другой, параллельно последним и просто черепных к паховой складки (рис 3 и 6).
    3. Отметьте боковой надрез с хирургическим маркером кожи с линией, параллельной средней линии и около 3 см друг от друга от нее.
  2. уборочное закрылков
    1. Не Надрезать кожу скальпелем номер 15 до достижения panniculus carnosus слоя.
    2. Глубже к panniculus carnosus плоскости, не делают разрез с электрическим прижиганием до достижения мышечной фасции.
    3. Поднимите крышку от медиальной к латеральной и от головы к хвосту, обнажая ножку Лоскут в.
    4. Тщательно лигировать и разделить перфорационные сосуды, поднимающийся из глубоких слоев мышц и вдаваясь в глубокую поверхность Лоскут в.
    5. Поместите втягивающим в каудальной лоскут и препарировать ножку Лоскут в осторожно, осторожно дразняпрочь рыхлой окружающие ткани (рисунок 7).
    6. Перевязывать и разделить боковую бедренную огибающая артерия и вены, используя 9/0 Нейлон для лигатур.
    7. Изолировать бедренной артерии и вены. Если они присутствуют, перевязывать (используя 9/0 нейлон) и разделить ветви этих сосудов соседних мышц.
    8. Во-первых, следует использовать двойной сосудистый зажим, чтобы зажать проксимальных аспект бедренной вены. Впоследствии зажать его дистального аспект. Затем зажим дистальной стороны бедренной артерии и, наконец, его проксимального аспект.
    9. Хомут дистальной стороны бедренной артерии и, наконец, его проксимального аспект.
    10. Поместите одну сосудистый зажим в поверхностной эпигастральной вены и еще один в поверхностной эпигастральной артерии. Используйте пару прямых микрохирургических ножницы, чтобы вырезать поверхностную эпигастральной артерии и вены в их возникновения и прекращения, соответственно.
    11. Обильно орошают просвет этих сосудов с гепарином нормального физиологического раствора 10 МЕ / мл, Пока не кровь или мусор не видно внутри просвета сосудов "33.
    12. Тяговое и подрезать манжету адвентиции близко к местам сосудистых раздела.
    13. Передача эпигастрии лоскут на шее с помощью щипцов Аддисона (рисунок 8).
    14. Закройте сайт донора с субкутикулярных прервала 5/0 рассасывающиеся швы.
    15. Закройте кожу с прерывистыми 5/0 нейлоновых стежков.

4. Получатель сайта Хирургические процедуры

  1. Воздействие судов получателей сайта
    1. С помощью хирургического маркера кожи, проведите линию по медиальной границе левой кивательной (SCM) мышцы.
    2. С помощью хирургического маркера кожи, нарисуйте еще одну линию сразу черепных и параллельно левой ключицы. Эти две линии должны сходиться в левом Sternoclavicular суставе.
    3. Надрезать кожу, используя лезвие скальпеля номер 15.
    4. Используйте электрический прижигание, чтобы прорваться через subcutaneous ткани.
    5. Используйте пару рассечение ножницами скелетируют наружной яремной вены боковой на мышцы SCM.
    6. Изолировать и перевязывать притоки наружной яремной в этом (рисунок 9).
    7. Перевязывать наружную яремную вену чуть ниже нижней челюсти с 9/0 нейлоновым швом.
    8. Поместите единственный венозный зажим под последней перевязки и разрезают внешнюю яремную вену с использованием пары прямых микрохирургических ножницами.
    9. Промыть просвет вены с гепарином физиологического раствора в концентрации 10 МЕ / мл.
    10. Изолировать медиального края мышцы SCM и убрать эту мышцу в боковом направлении , тем самым подвергая сонной артерии и блуждающий нерв (рисунок 10).
    11. Сделайте поперечный разрез в средней трети мышцы SCM с помощью электрического прижигание.
    12. Поместите втягивающим между глубокой поверхности мышцы SCM и мышц ремень.
    13. Дразнить прочь блуждающий нерв из сонной артерииартерия, следя за тем, чтобы не повредить эти структуры.
  2. Сосудистые анастомозы
    1. Установите двойной зажим артериальную в сонной артерии.
    2. Поместите 9/0 Нейлон стежок в латеральной сонной артерии, и использовать этот стежок, чтобы вытащить эту часть стенки сосуда.
    3. Используйте пару прямых микрохирургических ножницами, чтобы произвести отверстие в этой области стенки сосуда.
    4. Используя прерванное 10/0 нейлоновые швы выполнить termino-боковой анастомоз между поверхностной эпигастральной артерии заслонкой и сонной артерии на уровне недавно созданного открытия сонной.
    5. Подойдите к проксимальной культи наружной яремной вены и поверхностные вены в эпигастрии и проверить калибр этих двух вен.
      1. Если расхождение в размерах от слабого до умеренного, расширяют просвет обрезанный конец поверхностной эпигастральной вены с использованием дилатации щипцов.
      2. Если разница калибра очень Пронounced, в дополнение к щипцов дилатации, коническим конец поверхностной эпигастральной вены под углом от 30 до 45 °.
      3. Выполните венозный анастомоз, используя прервала 11/0 нейлоновые швы.
    6. Удалить отдельные зажимы, помещенные на суда Лоскут в.
    7. Снимите двойной зажим, расположенный в бедренную вену.
    8. Удалите двойной зажим помещенный в бедренную артерию.
  3. Оценка проходимость и компетентность анастомозов
    1. Проверьте , если артерии Лоскут и вены полностью расширены , и никакого существенного кровотечения не наблюдается через 3 мин удаления сосудистых зажимов (рисунок 11).
      1. Если есть кровотечение в течение этого периода поместите влажную марлю солевое над анастомоза и применять мягкое давление.
      2. Если кровотечение из анастомоза не останавливается через 3 мин, добавить дополнительный 11/0 Нейлон швами, после сосудистого размещения зажима, по мере необходимости.
    2. Подождите 10 минут с клапаном, подключенного к сосудов шеи и обернутый марлей, смоченной в теплом растворе.
    3. Оценка перфузии и шеи раневой гемостаз лоскут в. Проверьте анастомозов на наличие признаков кровотечения, тромбоза или чрезмерной тяги.
    4. Закрепите клапан на месте получателя, начиная с 5/0 субкутикулярных узловыми швами.
    5. Закройте кожу с 5/0 Нейлон швами (рисунок 12).

5. Послеоперационный уход

  1. Оставьте крысу, чтобы восстановиться в своей индивидуальной клетке в правом боковом положении пролежни. Держите клетку в тепле, помещая электрический тепла колодки на низком ниже. Поместите легкую ткань между клеткой и электрической тепловой подушки, чтобы избежать гипертермии.
  2. Смотрите животное непрерывно поворачивая его к противоположной боковой пролежней каждые 5 мин, пока она не возобновляется грудины лежачее и она способна передвигаться.
  3. Дом крысы индивидуально до удаления тон хирургические стежки через две недели после хирургической процедуры.
  4. Дайте противовоспалительный препарат 1 мг / кг подкожно один раз в день в течение 3-х дней после операции, в послеоперационном обезболивании.

6. Оценка закрылков

  1. Представить еды лакомство над головой крысы и оценить жизнеспособность лоскута путем визуального осмотра.
  2. Если недостаточной экспозиции с использованием предыдущего шага, есть помощник применяя нежное прикосновение над межлопаточной области крыс, при рассмотрении заслонку.
  3. Используйте цифровую фотографию и программное обеспечение ImageJ количественно оценить области раны зияние, закрылков эпидермолизом, гиперемия, заторы и / или некроз, как объяснено подробно Трухильо и др. 15.

Representative Results

По опыту авторов более десяти лет, используя эпигастральной свободный лоскут в качестве модели переноса свободной ткани как в контексте микрохирургических курсов и для исследовательских целей, скорость закрылка выживания несколько зависит от сноровки и опыта хирурга , Вообще говоря, если технические аспекты, описанные выше, будут приняты во внимание, почти полное коэффициент выживаемости (<10% от закрылка некроза) от около 70% лоскутов следует ожидать. Около 10% лоскутов представляют частичный некроз (от 10 до 50%). Около 20% закрылков страдают полный некроз. 80% почти полная выживаемость была получена в течение последних 20 процедур , выполняемых первого автора (DC) (рисунок 13).

В течение первых двух дней после операции, свободный эпигастрии лоскут часто отечной и представляет некоторую степень венозного застоя. Они, как правило, ботч утихнут постепенно от 3 до 5 дней после операции. Как правило, в течение первой недели, крыса удаляет большинство внешних швов и часть субкутикулярных наложения швов, что часто приводит к рассеянных областях небольшой раной зияние (рисунок 14). После того, как 10-й день, волосы медленно начинает расти на поверхности закрылка в. В конце первого месяца после операции, лоскут обычно покрыта немного короче, чем волосы прилегающей кожи. Через два месяца после операции, наличие лоскута предвестником небольшим комок, и при относительно незаметный шрам вокруг краев откидную створку (рисунок 14). Auto каннибализм лоскута является нечастым вывод, что в опыте авторов, встречается почти исключительно в случаях полного некроза лоскута.

Рисунок 1
Рисунок 1: Сосудистая анатомия эпигастральной свободного FLAп.
На этой фотографии показана левая эпигастральной области крысы предварительно впрыскиваемого с красным раствор латекса в артериальной системе и с синим раствором латекса в венозной системе. Можно заметить, что эпигастральной области получает осевую кровоснабжение от поверхностного эпигастральной артерии и вены. Эти сосуды происходят из и стекать в бедренную артерию и вену, соответственно. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

фигура 2
Рисунок 2: Сканирующая электронная микроскопия изображение коррозии литых поверхностных эпигастральной сосудов , показывая микроскопическую кровоснабжение крови к подложечной свободного лоскута.
Эта микроскопия с помощью сканирующего электронного изображение коррозии брикете из SuperFiCIAL эпигастральные сосуды крысы показывает, что вены имеет больший калибр, что артерии. В среднем калибр поверхностной эпигастральной вены от 0,6 до 0,8 мм, по сравнению с 0,3 до 0,5 мм поверхностной эпигастральной артерии. Это изображение также показывает, что поверхностная эпигастральная артерия берет свое начало две основные ветви: боковой и медиальной ветвь, которая, в свою очередь разделить несколько раз, происходящих капиллярных сетей, которые поставляют большую часть эпигастральной области. Эти капилляры стекать в притоках поверхностной эпигастральной вены, которые имеют параллельный курс на артериальном дереве. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 3
Рисунок 3: Потенциал область левого эпигастральной свободного лоскута у крыс.
Эта диаграмма представисентах область брюшной стенки, поставляемой поверхностных эпигастральной судов и которые могут быть мобилизованы в эпигастральной лоскута. Этот лоскут может быть до 5 см в длину и 3 см в ширину. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 4
Рисунок 4: Фотография из гематоксилином-эозином окрашенном участке эпигастральной лоскута.
Это гематоксилином-эозином окрашиваются часть эпигастральной области показывает, что эпигастрии лоскут состоит из покровы этого региона, который охватывает мышц брюшной стенки. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.


Рисунок 5: Гистологический состав эпигастральной лоскута.
На фотографии на левой стороне представляет собой гематоксилин-эозином окрашенную сечение эпигастральной заслонкой, в то время как фотографии на правой стороне была получена из трихромом секции была образована Массона этого лоскута. Эти две фотографии показывают, что эпигастрии лоскут крысы является составной блок тканей. Она содержит поверхностный слой кожи, образованный дермы и эпидермиса. Под кожей находится слой жировой ткани под названием panniculus adiposus. Под этим слоем находится слой полосатых мышц известный как panniculus carnosus. Под panniculus carnosus есть глубокая фасции , которая охватывает все большие и глубокие мышцы живота. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть большую версию этой фигуры,

Рисунок 6
Рисунок 6. Дооперационные кожи маркировки на вентральной поверхности крысы до операции.
На этой фотографии показаны маркировки кожи для надрезов, используемых, чтобы поднять левую эпигастрии лоскут, а затем вставка эту заслонку в вентральной левой шейной области.

Рисунок 7
Рисунок 7. Хирургическая анатомия питательных сосудов эпигастральной лоскут под операционным микроскопом (10 - кратное увеличение).
Эта фотография показывает поверхностный эпигастрии артерии и вены, происходящих из и сливать в бедренной артерии и вены, соответственно. Боковой бедренной артерии, как правило, огибающая возникает из каудальной поверхностного эпижелудочной артерии. Боковой бедренной вены огибающая имеет подобный путь и обычно заканчивается в поверхностный эпигастральной вены. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 8
Рисунок 8. эпигастрии лоскут ех естественных условиях pedicled на своих питательных сосудов (поверхностная эпигастральная артерии и вены - А, В, соответственно). Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 9
Рисунок 9. Операционный вид израссечение вены реципиента, т.е. внешнюю яремную вену, на левой стороне шеи (6-кратным увеличением).
Можно наблюдать подкожный ход внешней яремной вены латеральнее кивательной мышцы. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 10
Рисунок 10. Операционный вид рассечения донорской артерии, то есть общей сонной артерии, на левой стороне шеи (10x).
Артерии и сопровождающих блуждающий нерв подвергаются после втягивания кивательной и подъязычный мышцы, как показано на рисунке. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть большую версию тего фигура.

Рисунок 11
Рисунок 11. Фотография сосудистых анастомозов между сосудами Лоскут и в сосудах получателей помощи в области шеи, как видно под операционным микроскопом (10x).
Эта фотография показывает termino-боковой анастомоз между общей сонной и поверхностных эпигастральной артерий. Кроме того, можно наблюдать termino-терминальный анастомоз между поверхностным эпигастрии и наружной яремной вены. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 12
Рисунок 12. Фотография вентральной части immedi крысы ленно после операции.
Обратите внимание на то, что зона донора легко закрыть в первую очередь. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 13
Рисунок 13. эпигастрии выживания свободный лоскут в 20 последовательных крыс оперировали первым автором (DC).
Пять крыс (20%) представлен полный закрылков некроз (случаи 1, 4, 8, 13 и 15, представленные красными точками). Области некроза лоскута были определены с использованием свободного программного обеспечения ImageJ, как объяснено подробно Трухильо и др. 15. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

14 "SRC =" / файлы / ftp_upload / 55281 / 55281fig14.jpg "/>
Рисунок 14. Фотографии подложечной заслонкой , размещенной на вентральной шейки 4, 14 и 60 дней после операции.
Через четыре дня после операции, как правило, существует некоторая рана раскрывание, как крыса удаляет стежки. Тем не менее, клапан, как правило, остается на месте. Можно исследовать откидную створку ежедневно путем простого визуального осмотра. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Acknowledgments

Один из авторов (Диогу Casal) получил грант из программы усовершенствования медицинского образования, авторами которого являются Fundação Гюльбенкяна, Fundação Champalimaud, Ministério да Saúde е Fundação пара в Ciencia е Tecnologia, Португалия.

Авторы хотели бы поблагодарить техническую помощь г-н Альберто Северино в съемках и редактирования видео. Авторы также признательны г-ну Octávio Chaveiro, г-н Марко Коста и г-н Карлос Лопес за их помощь в подготовке образцов животных, представленных в этой статье.

И, наконец, авторы хотели бы поблагодарить г-жу Gracinda Menezes за ее помощь во всех организационных аспектах, связанных с приобретением и обслуживания животных.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Skin Skribe Surgical Skin Marker Moore Medical 31456 https://www.mooremedical.com/index.cfm?/Skin-Skribe-Surgical-Skin-Marker/
&PG=CTL&CS=
HOM&FN=ProductDetail&
PID=1740&spx=1
Micro retractor Fine Science Tools RS-6540 http://www.finescience.de
Graeffe forceps 0.8 mm tips curved Fine Science Tools 11052-10 http://www.finescience.de
Acland clamps Fine Science Tools 00398 V http://www.merciansurgical.com/aclandclamps.pdf
Clamp applicator Fine Science Tools CAF-4 http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
High-Temperature Cautery Fine Science Tools AA03 http://www.boviemedical.com/products_aaroncauteries_high.asp
Micro-vessel dilators 11 cm 0.3 mm tips 00124 Fine Science Tools D-5a.2 http://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers Forceps 11cm angulated 00109 Fine Science Tools JFA-5b http://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers Forceps 11 cm straight 00108 Fine Science Tools JF-5 http://www.merciansurgical.com
Acland Single Clamps B-1V (Pair) Fine Science Tools 396  http://www.merciansurgical.com
Micro Scissors Round Handles 15 cm Straight Fine Science Tools 67  http://www.merciansurgical.com
Iris Scissors 11.5 cm Curves EASY-CUT Fine Science Tools EA7613-11  http://www.merciansurgical.com
Mayo Scissors 14 cm Straight Chamfered Blades EASY-CUT Fine Science Tools EA7652-14  http://www.merciansurgical.com
Derf Needle Holders 12 cm TC Fine Science Tools 703DE12  http://www.merciansurgical.com
Monosyn 5-0 B.Braun 15423BR http://www.mcfarlanemedical.com.au/
15423BR/
SUTURE-MONOSYN-5_or_0-16MM-70CM-(C0023423)-BOX_or_36/pd.php
Ethilon 5-0 Ethicon W1618 http://www.farlamedical.co.uk/category_Ethilon-Suture-1917/Ethilon-Sutures/
Dafilon 10-0 B.Braun G1118099 http://www.bbraun.com/cps/rde/xchg/bbraun-com/hs.xsl/products.html?prid=PRID00000816
Veet Sensitive Skin Hair Removal Cream Aloe Vera and Vitamin E 100 ml Veet http://www.veet.co.uk/products/creams/creams/veet-hair-removal-cream-sensitive-skin/
Instrapac - Adson Toothed Forceps (Extra Fine) Fine Science Tools 7973 http://www.millermedicalsupplies.com
Castroviejo needle holders Fine Science Tools 12565-14 http://s-and-t.ne
Straight mosquito forcep Fine Science Tools 91308-12 http://www.finescience.de
Cutasept F skin disinfectant Bode Chemie http://www.productcatalogue.bode-chemie.com/products/skin/cutasept_f.php
Lacri-lube Eye Ointment 5g Express Chemist LAC101F http://www.expresschemist.co.uk/lacri-lube-eye-ointment-5g.html
Normal saline for irrigation Hospira, Inc. 0409-6138-22 http://www.hospira.com/en/search?q=sodium+chloride+irrigation%2C+usp&fq=contentType%3AProducts
Heparin Sodium Solution (5,000 IU/ml) B.Braun http://www.bbraunusa.com/products.html?prid=PRID00006982
Meloxicam Metacam Boehringer Ingelheim http://www.bi-vetmedica.com/species/pet/products.html
Heat Lamp HL-1 Harvard Apparatus 727562 https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/
haisku3_10001_11051_39108_-1_
HAI_ProductDetail_N_
37610_37611_37613
Homeothermic Blanket System with Flexible Probe Harvard Apparatus 507220F https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/
haisku3_10001_11051_39108_-1_
HAI_ProductDetail_N_
37610_37611_37613
Dry heat sterilizer Quirumed 2432 http://www.quirumed.com/pt/material-de-esterilizac-o/esterilizadores
Surgical drapes Barrier 800430 http://www.molnlycke.com/surgical-drapes/
Biogel Surgical Gloves Medex Supply 30465 https://www.medexsupply.com
Operating microscope Leica Surgical Microsystems 10445319 http://www.leica-microsystems.com/products/surgical-microscopes/

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Morain, W. D. Plastic Surgery. Mathes, S. J. 1, Saunders. 27-34 (2006).
  2. Christoforou, D., Alaia, M., Craig-Scott, S. Microsurgical management of acute traumatic injuries of the hand and fingers. Bull Hosp Jt Dis. 71, (1), 6-16 (2013).
  3. Santoni-Rugiu, P., Sykes, P. J. A History of Plastic Surgery. Santoni-Rugiu, P., Sykes, P. J. Springer. 3 79-119 (2007).
  4. Tamai, S. Experimental and Clinical Reconstructive Microsurgery. Tamai, S., Usui, M., Yoshizu, T. Springer-Verlag. Ch. 1 3-24 (2003).
  5. Bettencourt-Pires, M. A., et al. Anatomy and grafts - From Ancient Myths, to Modern Reality. Arch Anat. 2, (1), 88-107 (2014).
  6. Casal, D., Gomez, M. M., Antunes, P., Candeias, H., Almeida, M. A. Defying standard criteria for digital replantation: A case series. Int J Surg Case Rep. 4, (7), 597-602 (2013).
  7. Gomez, M. M., Casal, D. Reconstruction of large defect of foot with extensive bone loss exclusively using a latissimus dorsi muscle free flap: a potential new indication for this flap. J Foot Ankle Surg. 51, (2), 215-217 (2012).
  8. Plenter, R. J., Grazia, T. J. Murine heterotopic heart transplant technique. J Vis Exp. (89), (2014).
  9. Pichierri, A., et al. How to set up a microsurgical laboratory on small animal models: organization, techniques, and impact on residency training. Neurosurg Rev. 32, (1), 101-110 (2009).
  10. Klein, I., Steger, U., Timmermann, W., Thiede, A., Gassel, H. J. Microsurgical training course for clinicians and scientists at a German University hospital: a 10-year experience. Microsurgery. 23, (5), 461-465 (2003).
  11. Fukui, A. Experimental and Clinical Reconstructive Microsurgery. Tamai, S., Usui, M., Yoshizu, T. Springer-Verlag. Ch. 1 35-43 (2004).
  12. Ad-El, D. D., Harper, A., Hoffman, L. A. Digital replantation teaching model in rats. Microsurgery. 20, (1), 42-44 (2000).
  13. Ruby, L. K., Greene, M., Risitano, G., Torrejon, R., Belsky, M. R. Experience with epigastric free flap transfer in the rat: technique and results. Microsurgery. 5, (2), 102-104 (1984).
  14. Edmunds, M. C., Wigmore, S., Kluth, D. In situ transverse rectus abdominis myocutaneous flap: a rat model of myocutaneous ischemia reperfusion injury. J Vis Exp. (76), (2013).
  15. Trujillo, A. N., Kesl, S. L., Sherwood, J., Wu, M., Gould, L. J. Demonstration of the rat ischemic skin wound model. J Vis Exp. (98), (2015).
  16. Siemionow, M. Z. Plastic and Reconstructive Surgery: Experimental models and research designs. Siemionow, M. Z. Springer - Verlag. Ch. 1-7 3-67 (2015).
  17. Petry, J. J., Wortham, K. A. The anatomy of the epigastric flap in the experimental rat. Plast Reconstr Surg. 74, (3), 410-413 (1984).
  18. Tamai, S., Usui, M., Yoshizu, T. Experimental and Clinical Reconstructive Microsurgery. 6, Springer-Verlag. Ch. 6 111-114 (2004).
  19. Zhang, F., et al. Microvascular transfer of the rectus abdominis muscle and myocutaneous flap in rats. Microsurgery. 14, (6), 420-423 (1993).
  20. Tonken, H. P., et al. Microvascular transplant of the gastrocnemius muscle in rats. Microsurgery. 14, (2), 120-124 (1993).
  21. Miyamoto, S., et al. Free pectoral skin flap in the rat based on the long thoracic vessels: a new flap model for experimental study and microsurgical training. Ann Plast Surg. 61, (2), 209-214 (2008).
  22. Nasir, S., Aydin, A., Kayikcioglu, A., Sokmensuer, C., Cobaner, A. New experimental composite flap model in rats: gluteus maximus-tensor fascia lata osteomuscle flap. Microsurgery. 23, (6), 582-588 (2003).
  23. Coskunfirat, O. K., Islamoglu, K., Ozgentas, H. E. Posterior thigh perforator-based flap: a new experimental model in rats. Ann Plast Surg. 48, (3), 286-291 (2002).
  24. Ozkan, O., et al. A new flap model in rats: iliac osteomusculocutaneous flap. Ann Plast Surg. 47, (2), 161-167 (2001).
  25. Padubidri, A. N., Browne, E. Modification in flap design of the epigastric artery flap in rats--a new experimental flap model. Ann Plast Surg. 39, (5), 500-504 (1997).
  26. Strauch, B., Murray, D. E. Transfer of composite graft with immediate suture anastomosis of its vascular pedicle measuring less than 1 mm. in external diameter using microsurgical techniques. Plast Reconstr Surg. 40, (4), 325-329 (1967).
  27. Green, C. E. Anatomy of the Rat. First edn. Hafner Publishing Company. 124-153 (1968).
  28. Greene, E. C. Anatomy of the rat. Hafner. New York. (1959).
  29. Langworthy, O. R. A morphological study of the panniculus carnosus and its genetical relationship to the pectoral musculature in rodents. Am J Anat. 35, (2), 283-302 (1925).
  30. Popesko, P., Ratjová, V., Horák, J. A Colour Atlas of the Anatomy of Small Laboratory Animals. 2, Saunders. 13-104 (1992).
  31. Brown, S. H., Banuelos, K., Ward, S. R., Lieber, R. L. Architectural and morphological assessment of rat abdominal wall muscles: comparison for use as a human model. J Anat. 217, (3), 196-202 (2010).
  32. Harder, Y., et al. Ischemic tissue injury in the dorsal skinfold chamber of the mouse: a skin flap model to investigate acute persistent ischemia. J Vis Exp. (93), e51900 (2014).
  33. Cox, G. W., Runnels, S., Hsu, H. S., Das, S. K. A comparison of heparinised saline irrigation solutions in a model of microvascular thrombosis. Br J Plast Surg. 45, (5), 345-348 (1992).
  34. Gurunluoglu, R., Siemionow, M. Z. Plastic and Reconstructive Surgery: Experimental models and research designs. Siemionow, M. Z. Spronger. Ch. 6 53-62 (2015).
  35. Nasir, S. Plast Reconstr Surg. Springer. 227-236 (2015).
  36. Parsa, F. D., Spira, M. Evaluation of anastomotic techniques in the experimental transfer of free skin flaps. Plast Reconstr Surg. 63, (5), 696-699 (1979).
  37. Dunn, R. M., Huff, W., Mancoll, J. The Rat Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A True Myocutaneous Flap Model. Ann Plast Surg. 31, (4), 352-357 (1993).
  38. Özkan, Ö, et al. A new flap model in rats: iliac osteomusculocutaneous flap. Ann Plast Surg. 47, (2), 161-167 (2001).
  39. Ozkan, O., Koshima, I., Gonda, K. A supermicrosurgical flap model in the rat: a free true abdominal perforator flap with a short pedicle. Plast Reconstr Surg. 117, (2), 479-485 (2006).
  40. Dorsett-Martin, W. A. Rat models of skin wound healing: a review. Wound Repair Regen. 12, (6), 591-599 (2004).
  41. Ghali, S., et al. Treating chronic wound infections with genetically modified free flaps. Plast Reconstr Surg. 123, (4), 1157-1168 (2009).
Модель свободной ткани Transfer: The Rat эпигастрии Free закрылков
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Casal, D., Pais, D., Iria, I., Mota-Silva, E., Almeida, M. A., Alves, S., Pen, C., Farinho, A., Mascarenhas-Lemos, L., Ferreira-Silva, J., Ferraz-Oliveira, M., Vassilenko, V., Videira, P. A., Gory O'Neill, J. A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap. J. Vis. Exp. (119), e55281, doi:10.3791/55281 (2017).More

Casal, D., Pais, D., Iria, I., Mota-Silva, E., Almeida, M. A., Alves, S., Pen, C., Farinho, A., Mascarenhas-Lemos, L., Ferreira-Silva, J., Ferraz-Oliveira, M., Vassilenko, V., Videira, P. A., Gory O'Neill, J. A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap. J. Vis. Exp. (119), e55281, doi:10.3791/55281 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter