Summary
PCR介导的基因修饰可用于产生在念珠菌属种类，这有利于可视化和酵母细胞和蛋白质的定量荧光蛋白融合体。在此，我们提出了在近平滑念珠菌构建荧光蛋白融合（左心室Eno1-FP）的战略。
Abstract
念珠菌属种类，肠道和泌尿生殖道的常见殖民者，是多数人类侵袭性真菌感染的原因。因此，需要分子和遗传工具，以促进它们的发病机理的研究。 PCR介导的基因修饰是产生表位标记的蛋白质以促进其检测一个简单，快捷的方式。特别是，荧光蛋白（FP）融合体是功能强大的工具，使酵母细胞和蛋白质的可视化和定量分别由荧光显微镜和免疫印迹。含FP编码序列，有利于念珠菌的改造营养标记基因的质粒一起，已经为FP建设和表达念珠菌的目的产生的。在此，我们提出了在念珠菌构建FP融合的战略。包含诺尔丝菌素resista质粒NCE变换标记基因（NAT1）与绿色，黄色，或樱桃的FP（GFP，YFP，mCherry）与引物包括在聚合酶链反应（PCR）的基因特异性序列一起使用，以产生一个FP盒序列沿。这个特定基因盒具有集成到通过同源重组的相应基因座的3'端的能力。成功的框内融合将FP序列插入的感兴趣的基因位点的是基因验证，然后通过显微镜和/或免疫检测方法的融合蛋白表达的分析。此外，对于高表达的蛋白质的情况下，成功的融合可以通过荧光成像技术筛选为主。
Introduction
念珠菌是殖民所有人类的肠道和泌尿生殖道共生真菌。下免疫缺陷的情况下，如发生与早产或从癌症治疗的免疫抑制作用， 念珠菌物种可以成为机会致病菌。 念珠菌物种的， 白色念珠菌是最普遍的真菌殖民者并且使得大多数侵袭性真菌感染。其它念珠菌属种类，如光滑念珠菌 ， 近平滑念珠菌 ， 热带念珠菌和C. kruseii也造成免疫功能低下患者的严重感染，有些显示出固有电阻对常用抗真菌抗生素如氟康唑和两性霉素B因此，与这些物种的感染正在观察更频繁，特别是在被用抗真菌剂预防性治疗的患者。即使有适当和及时的一NTI真菌治疗，侵袭性念珠菌感染继续与显著的发病率和死亡率的1个相关。因为在人体健康念珠菌属种类的意义，有必要为现成的分子工具，允许它们的发病机理的研究和澄清。
其中一个重要的工具，它使研究人员能够可视化和量化微生物细胞，他们表达的蛋白质是FP融合技术。聚合酶链反应（PCR）介导的基因修饰，如在本文中所描述，使融合的构建，FP序列和念珠菌蛋白在其基因组基因座编码的感兴趣序列之间。构建体的稳定整合促进蛋白表达的分析以及蛋白质定位动力学。含有FP序列的质粒，在白色念珠菌中表达优化的，所用的PCR介导的用于g烯改性的策略，已经预先构造2，3，4，5。质粒含有FP转换“盒”：链接到有利于白色念珠菌和近平滑念珠菌 2，3，4，5，6，7的转化的营养标记基因的FP序列。目前可获得的质粒含有多种对营养缺陷型菌株的转化选择性营养标记基因（URA3，HIS1，ARG4）以及显性药物抗性标记（NAT1），这有利于缺乏营养缺陷型临床株的转化。此外，质粒含有多达四个不同的FP序列（绿色[GFP]选项黄釉W [YFP]，青色[CFP]和樱桃[mCherry]）和任一用于施工羧基末端蛋白融合物，或用于建筑氨基末端蛋白质融合的启动子序列的ADH1终止序列。引物设计有同源性的周围在FP带盒的质粒DNA。此外，引物还包含轴承的同源性的感兴趣的酵母基因进行标记，这有利于带盒的整合到通过同源重组（ 图1）的基因组基因座5'延伸序列。基因特异性FP盒通过PCR生成，然后转化到通过用乙酸锂处理而处于感受态用于DNA的摄取念珠菌细胞。
图1：FP序列融合如何在念珠菌属种类产生的图。 （A）质粒DNA大型的源码ES一个FP序列和编码序列诺尔丝菌素抗性（NAT1）。正向（FWD）和反向（REV）的引物的相对位置示出，以指示同源的区域与质粒序列的引物和表示特定基因同源区或引物延伸的紫色部分的黑色部分。 （B）中的FP盒被变换成念珠菌和通过同源重组（虚线）的ENO1基因座内集成。 （C）在ENO1的3'末端所得的FP融合序列。 请点击此处查看该图的放大版本。
在此，我们提出在念珠菌蛋白融合物（左心室Eno1-FP）的结构的一个例子。我们使用含标记与编码GFP，YFP序列沿着NAT1转化标记基因的质粒，或mCherry（ 图2）。将这些质粒与在PCR引物一起使用，以产生特定基因盒便于FP的融合ENO1的3'末端，从而导致在其羧基末端融合到的FP左心室Eno1的表达。
图2：FP含盒式质粒的图谱。向前（F）和用于产生从所述质粒卡匣倒车档（R）的引物与它们的同源性的质粒的相对位置沿指示。引物序列如表1所列。 F1和R1也被用来生成所述pYFP- NAT1盒。含有YFP- NAT1盒（pMG2263）质粒是与YFP的代替GFP序列的异常相同pMG2120。盒尺寸：GFP-NAT1，3.7 KBP; mCherry- NAT1，3.2 KBP; YFP- NAT1，3。7 KBP。这个数字已经从Gerami -内贾德， 等修改。 4 请点击此处查看该图的放大版本。
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Protocol
1.切断模板质粒从大肠杆菌
- 生长含模板质粒过夜在10ml LB培养基（LB）+ 200毫克/升氨苄青霉素（AMP），在37℃振荡的大肠杆菌 。
- 收获细胞通过在6000 xg离心离心2分钟。
- 倾析液体，分离和纯化的DNA从大肠杆菌如Ausubel 等人以前描述通过标准方法的大肠杆菌细胞。 8。
- 在50-100 ng / ml的工作浓度;重悬的DNA在Tris-EDTA（10毫摩尔Tris，pH值8.0，1mM EDTA中，pH值8.0，TE）。
2.设计引物
| 底漆 | 引物序列 |
| F1 | 5' |
| R1 | 5'GAGCGTTTGCACCAACAGGCCATCATTTGTGACGAGAGAAGACCTGACGTCATTAGATTGGCACCTTTGC GTAAAACGACGGCCAGTGAATTC 3' |
| F2 | 5'GAGAATTGAAGAAGAGTTGGGAGACAATGCTATCTATGCTGGTAAGGACTTCCACAATGCTCAAACTTTG GGTGGTGTTTCAAAAGGTGAAGAAGATAAT 3' |
| R2 | 5'GAGCGTTTGCACCAACAGGCCATCATTTGTGACGAGAGAAGACCTGACGTCATTAGATTGGCACCTTTGC ACTGGATGGCGGCGTTAGTATC 3' |
表1：在本研究中使用的引物序列。粗体斜体文字表示同源性的ENO1基因组基因座，通常字体区是同源的质粒DNA。
- <利>设计的引物是同源质粒接壤的带盒的序列被扩增以及所关注的靶基因（ 例如 ，ENO1）的3'端，以促进重组到基因的基因组基因座（ 图2和表1） 。
- 保证正向引物的序列相匹配的最后70个碱基对的目的基因的（BP），5'-3'，减去终止密码子，以保持编码帧，以及所述第一约30碱基的质粒序列的要放大。作为一个说明，在各引物的GGTGGTGGTT是聚 - 甘氨酸接头没有FP同源性。值得注意的是，在不存在连接体的，可以有功能结构域，其可以理论上导致蛋白质错误折叠，低收率在蛋白质生产，或者受损的生物活性的直接融合。
- 确保反向引物的序列是70碱基只是基因的下游，3'- 5'，不包括任何基因序列，加上最后的Approximately在质粒中使用的营养或药物抗性标记的30碱基对。
- 使用F1和R1产生GFP- NAT1和YFP- NAT1盒，带pMG2120和pMG2263，分别F2和R2产生mCherry- NAT1与pMG2343。
3.通过PCR生成FP盒（1日）
- 准备试剂PCR。使预混液（500微升最终体积）加入下面的体积和浓度为1.5 ml管：50微升PCR缓冲液（500毫米氯化钾，100毫米的Tris pH值8.0，在水中），20微升脱氧核苷酸（的dNTP;股票混合在每10毫摩尔），40微升的25mM氯化镁核苷酸，20微升纯化的质粒（从〜50-100纳克/微升原液）中，每个前向和反向引物（从10mM储备溶液10微升），30微升的Taq聚合酶（通用，5000单位/ ml），和320微升水。
- 分装50μl反应混合液到每10 PCR-compatib的乐0.5毫升管。
- 将PCR管在热循环仪和执行下列步骤：周期分5 1 94℃变性双链DNA;顺序地45秒的40个循环的94℃，在55℃30秒，以允许引物退火到质粒模板DNA，并在68℃的DNA产物延伸4分钟;并在72℃下的15分钟1最终延伸循环。
注：PCR主混合物和循环参数可能需要根据所使用的特定的Taq聚合酶进行修改。 - 池从1.5毫升管的10个PCR反应的所有产品。
- 主体5微升汇集的PCR产物的琼脂糖凝胶电泳来验证扩增片段的大小，将获得产物浓度的估计值，基于比较的DNA梯。一般情况下，使用〜250微克盒式DNA在以后的每个转化混合物。
- 通过加入乙酸将50μl的3M钠后跟750微升95％乙醇的产物沉淀DNA并孵育至少30分钟在-20℃。
- 由16,000 XG离心管10分钟收获PCR产物。小心取出并弃去上清液和隔夜干燥沉淀。重悬在40微升TE pH为8.0的干燥的DNA盒沉淀并在室温下储存，直到使用。
4. 念珠菌转化细胞的DNA FP磁带
- 在第1天，回收酵母菌株以从15％甘油冷冻（-80℃）的库存划线几刮取结晶到酵母蛋白胨葡萄糖腺嘌呤（YPAD）琼脂并于30℃培养被转化。菌落生长的恢复后，接种单个菌落于2ml液体YPAD培养基在具有透气盖的玻璃培养管中并在30℃搅拌孵育过夜。
- 在第2天，在125毫升锥形瓶中用透气帽稀释300微升过夜酵母培养物于50ml新鲜YPAD（至最终OD 600〜0.2）。摇在30℃对于〜3小时（到最终OD 600〜0.6-0.8）。
- 倾过夜培养到50毫升锥形管，并通过在台式离心机在1 500 xg离心纺丝5分钟沉淀细胞。
- 倒出并正确丢弃上清液。重悬在5ml水中的细胞沉淀。通过在1,500 XG在台式离心机再次离心5分钟重新沉淀细胞。
- 倒出并正确丢弃上清液。悬浮于500μlTELiAc（TE乙酸锂：10毫摩尔Tris，pH值8.0，1mM EDTA中，pH值8.0，0.1M乙酸锂）的细胞，而转移到1.5ml管中。离心管2分钟在一个离心3000 XG。
- 悬浮细胞在250微升TELiAc。总体积包括颗粒应为〜300微升。
- 到一个干净的（不同的离心管比4.2.4），加5微升载体DNA（10毫克/毫升），并准备念珠菌细胞的150微升（从4.2.4）。这是在t阴性对照ransformation。
- 到第二清洁离心管中，添加5微升变性载体DNA（已在90℃煮沸10分钟，并冷却至4℃），将制备的PCR产物的所有40微升（从3.3.1）和150准备念珠菌细胞微升（从4.2.4）。
- 孵育在室温下30分钟两变换混合。
- 给每个转化混合物管中，加入700μl板混合物（10毫摩尔Tris，pH值8.0，1mM EDTA中，pH值8.0，0.1M乙酸锂在50％聚乙二醇3350）。颠倒管混匀，在室温孵育过夜他们。
- 在第3天，孵育转化在42℃1小时（热休克）混合。
- 离心机改造30秒在微量16000 XG混合。取出并妥善弃去上清液。轻轻吹打向上悬浮每150微升水中的细胞沉淀的上下，从而不会损坏电池。
- 对于UT变换ilizing营养缺陷型标记基因（ 例如 URA3），吹打解决方案到适当的选择性培养基琼脂（ 如缺乏尿苷）板每整个混合物均匀涂抹，用无菌玻璃珠混合物。
- 用于利用诺尔丝菌素抗性标记基因（NAT1）转换，如这里描述的，板转换第一混合到非选择性YPAD琼脂并于30℃下孵育6-12小时。这一步骤有助于在细胞恢复，后期热休克，应激诺尔丝菌素之前被应用。
- 后部分恢复性增长，副本板念珠菌细胞上含有YPAD 400微克/毫升诺尔丝菌素。对于利用的营养标记基因（ 例如 URA3）变换，则不需要此中间镀敷工序和细胞可以直接镀到如在4.4.2中描述的选择性酵母媒介（ 例如 YPAD缺乏尿苷）。
注：如果改造是成功的，山坳onies应在一到三天出现（可能高达生长的五天选择含诺尔丝菌素琼脂）。没有殖民地应该出现在含载体DNA本身（阴性对照）改造混合传播板。
- 为营养缺陷型和诺尔丝菌素标记选择，条纹推定的转化单菌落至新鲜选择培养基琼脂平板上，孵育在30℃下传播，可筛选的FP融合的成功构建酵母细胞。
- 屏幕为转化整合正确标注该盒（见一个详细的例子代表性的成果 ）。如果感兴趣的基因在足够量的表达时，可能会发生这样的整个群体的荧光，这是可能的，以检测使用荧光检测能力的印版成像系统的潜在候选整合体。
- 通过使用PCR引物同源序列outsid检查假定的整合一体化的区域e确认融合到靶基因。
- 此外，考虑Western印迹分析，以确定融合蛋白的表达和大小，以及由单细胞蛋白质定位的视觉确认，如果已知的荧光显微镜。
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Representative Results
作为一个例子，我们使用上述的协议来构建GFP和mCherry融合在一个近平滑念珠菌实验室菌株ENO1。每个推定转化最初是重新划线增长。在本实施例中，由于所得到的融合蛋白中高度表达（烯醇）和FP的明亮，我们能够进行诊断性PCR之前筛选用荧光显微镜转化体（ 图3）6。
图3：菌落荧光念珠菌转化展出。使用配备有Cy3的过滤器，以图像的mCherry表达株和的Cy2滤波器图像YFP-和表达GFP的菌株的激光扫描系统获得的酵母板生长的代表性图像。每一对左侧面板中，FP-expressi纳克株;在每一对右侧面板，具有相同的过滤器作为相应的FP表达株成像非转化亲本菌株（4175）。继可视化，图像倒置，亮度和对比度进行了相同的调整FP-表达和控制株。这个数字转载来自Gonia 等权限。 6 请点击此处查看该图的放大版本。
基因组DNA从这些推定的转化体中分离9并与互补的侧翼盒整合的位点的序列的引物用作DNA模板，沿（ 即序列的，其中F和R引物的预期基因座内退火来进行标记以外）在诊断的PCR验证正确的整合FP盒只是公关IOR到感兴趣的基因的终止密码子。附注，供C醋酸锂转化。 近平滑念珠菌 ，我们观察到低效率（〜筛选菌落1-2％包含在一个正确的集成）相比，我们与白色念珠菌的转换经验。
分析烯醇定位，我们观察到酵母细胞中表达左心室Eno1-FP通过荧光显微镜用装有100瓦水银灯和萤光照明用GFP，YFP和德克萨斯红滤波器集合的光学显微镜构造。的电荷耦合器件（CCD）照相机被用来收集用图像分析软件（ 图4A）6处理的图像。此外，我们还发现，不同的FP颜色是有用的混合物（ 图4B）6内视觉上区分不同的酵母菌株。由于烯醇化酶高表达，位于酵母细胞的大部分，FP融合到它可以被用来产生荧光酵母菌株可以很容易地可视化，例如，在念珠菌 -host相互作用的分析。
图4：表达和荧光显微镜左心室Eno1-FP融合的本土化。 （A）的荧光（顶部）和微分干涉对比（DIC，底部）图像念珠菌菌株表达左心室Eno1-的FP。 ENO1-FP的白色念珠菌和近平滑念珠菌趋向于细胞核以及在细胞质中集中，而是要低得多的程度。 （B）的念珠菌菌株表达左心室Eno1-mCherry和左心室Eno1-GFP的混合培养物的显微镜图像。右侧面板中，得克萨斯州红色滤光片;中央面板，GFP滤波器;右侧面板中，融合与DIC图像既荧光板。比例尺= 10微米。这个数字转载来自Gonia 等权限。 6 请点击此处查看该图的放大版本。
FP融合也便于Western印迹蛋白表达水平的分析。利用由上述的协议生成的酵母细胞，蛋白从细胞裂解物，通过十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）分离分离，并转移到聚偏二氟乙烯（PVDF）膜10。使用如前所述6市售抗体对印迹进行检测ENO1-FP融合。简言之，将小鼠抗GFP（1：2,000稀释度），接着由辣根过氧化物酶缀合的山羊抗小鼠IgG（1：10,000稀释）抗体用于探测GFP-和YFP-TAgged烯醇。兔抗mCherry（1：2,000稀释度），接着加入辣根过氧化物酶缀合的山羊抗兔IgG（1：10,000稀释）抗体用于探测mCherry标记的烯醇。所有融合蛋白很容易地从成功的转化（ 图5，泳道2，5和7）6的裂解物检测并分别预期大小（〜75 kDa的）的相比，蛋白质梯标准和白色念珠菌烯醇-FP标准（ 图5中 ，泳道1和6）6。没有观察到信号的未标记的亲本酵母菌株（ 图5，泳道3和4）6。
图5：从念珠菌菌株细胞裂解物的免疫印迹。第1泳道，含ENO1 -mCherry融合白色念珠菌 （J.伯尔曼，明尼苏达大学）（阳性对照）;第2泳道，含ENO1 -mCherry融合近平滑念珠菌 ;泳道3和4中，未转化的近平滑念珠菌亲株4175 11（阴性对照）;第5泳道，含ENO1 -YFP融合近平滑念珠菌 ; 6车道，含ENO1-GFP融合（J.伯尔曼，明尼苏达大学）（阳性对照） 白色念珠菌 ;第7道，含ENO1-GFP融合近平滑念珠菌 ;车道L，蛋白质梯98和64所示kDa蛋白标准。泳道1-3用抗mCherry抗体孵育并且泳道4-7用抗GFP抗体温育。这个数字转载来自Gonia 等权限。 6 请点击此处查看该图的放大版本。
| 协议步骤/项目 | 修改 | 潜在的改进（注意事项） |
| 引物设计 | 通过包括同源的较长区域的兴趣基因组基因座的引物延长 | 提高结合效率和同源重组（修改引物长度可能会改变最优的退火温度） |
| PCR（扩增子质量） | 使用更高的保真度的Taq 凝胶纯化PCR产物 | 减少错误的引入到卡带序列，以改善底漆的靶向基因组序列和转化效率（凝胶纯化可能会降低扩增量，因此，转化效率） |
| PCR（扩增量） | 增加PCR反应和游泳池的产品数量 | 人口增加转化细胞电子数（太多扩增子也可以导致转化效率降低 ） |
| 盒式沉淀 | 在4℃离心执行，保持在冰上所有试剂和管 | 增加DNA产量，因此，变换效率 |
| 热休克 | 缩短时间 | 提高强调酵母细胞的存活力（较短热休克倍也可能导致由细胞DNA盒的摄取减少） |
| 恢复性增长1 | 电镀含琼脂诺尔丝菌素之前，允许在YPAD琼脂更长的恢复 | 当暴露于诺尔丝菌素强调的酵母细胞，可能需要更长的恢复时间（延长孵育时间也可能增加污染物和假阳性转化体生长） |
| 菌落长出1,2 | 孵育板更长的时间（5〜D） | 圣ressed酵母细胞可能需要对菌落生长更长的温育时间（延长孵育时间也可能增加污染物和假阳性转化体生长） |
| 含有基因突变的酵母菌株1具体使用NAT1选择标记转换或2改造影响增长 | ||
表2：指南故障诊断和优化。
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Discussion
表位的结构标记在使用上述的PCR介导的基因修饰策略念珠菌物种的序列可以归纳为一个三步过程。首先，盒通过PCR编码既期望集成和区域同源的插入轨迹入酵母基因组中的序列进行。第二，要转化的酵母细胞制成用乙酸锂和共同培养与盒化学感受。第三，将细胞铺于选择性培养基以回收转化体和所得菌落为正确整合盒成所需基因组基因座的测试。
有此协议内的几个关键步骤，以提高获得在白色念珠菌和近平滑念珠菌的荧光融合蛋白的成功率。首先，利用引物已用聚丙烯酰胺凝胶电泳纯化（PAGE;由制造商）是高度RECommended。不经纯化，有获得在最终产品中不正确的长度，这可能会降低与该盒集成到通过同源重组有意基因组基因座的效率的引物的增加的可能性。第二，我们建议在验证PCR产生的标记盒是质量高，通过琼脂糖凝胶电泳分析〜5μl的盒式DNA的，以确保在PCR产物的正确尺寸。第三，为了获得被用于转化优化酵母细胞，细胞应在生长的对数相，用酵母芽之前通过其使用显微镜明显。第四，必须热休克后转化的酵母细胞的悬浮期间和铺板到选择培养基之前，使用温和移液技术。第五，对诺尔丝菌素转化的选择，这是有毒的酵母细胞，允许对YPAD琼脂生长更多的时间复制到包含诺尔丝菌素，介质可以是benef前icial促进转化的恢复。最后，完整的质粒和PCR盒整合预期的基因组位置的外确实发生在念珠菌低频和也将导致集落生长。因此，有必要分析通过PCR，使用用于集成序列的外引物的所有转化的菌落。对于通过PCR验证，但不通过显微镜显示出荧光转化体，细胞裂解物和测序的蛋白质印迹分析应考虑以进一步调查施工或可视化失败的原因。除了这些关键步骤，有在该协议的多个步骤可以被修改，如果需要的话，为了提高转化效率，增加正确盒整合的频率。故障排除指南列于表2。
有此技术，可以为未来的应用进行优化的潜在的局限性。该lithiu用于在低效率的DNA转化的结果（〜筛选菌落1-2％含有正确整合）对于C M乙酸的方法。 近平滑念珠菌 12相比， 白色念珠菌 。电穿孔是锂可提高转化效率13乙酸转化的另一种方法。使用ADH1终止的，必需的通用标签方法而，可以改变从这将与天然终止子序列发生稳定性和/或所产生的mRNA的调节。需要考虑这个潜在的问题，当一个蛋白质的天然功能是将具体的研究问题重要。对于那些以低水平表达的荧光融合蛋白，整个菌落显微镜识别或屏幕为成功的转化可能不是一种选择。在这种情况下，PCR和Western印迹分析将提供成功融合蛋白色曲的证据值/蛋白质结构。一个限制，共同所有的融合蛋白的结构，是表位标签可以与蛋白质的天然功能干扰，造成意外的突变表型，包括融合蛋白的异常定位。审议这些问题是重要的，适当的控制应包括所示。
由该PCR介导的方法产生在念珠菌表位标签有用的质粒，除了这里提到的那些，先前已经由我们的研究组所产生，并且可通过真菌遗传学保藏中心（HTTP研究者：//www.fgsc。净）。约几这些质粒的详细信息也可以在（http://www6.tau.ac.il/berman/）找到。可用质粒含有的营养和药物抗性标记的组合无数，FP序列产生不同颜色的酵母，其他表位标记选项（HA，MYC，V5，HIS9）来生成蛋白质ARË标记在任的蛋白质组成和调节表达羧基或氨基末端和启动子序列。含有药物抗性标记质粒是真菌病领域特别有好处，因为这个工具允许临床酵母菌株是原养，使传统的营养指标无用的改造和学习。发荧光在不同波长临床念珠菌菌株的构建将用于各种需要来可视化，并在共培养分化多种酵母菌株的能力的细胞的生物测定法是有用的。
侵袭性真菌病由于念珠菌继续是一个显著人体健康挑战是难以治疗，并与高发病率和死亡率相关，特别是在免疫功能低下患者14,15。因此，分子工具，使研究ERS能够更快，更轻松地学习念珠菌 -宿主相互作用是进一步扩大我们的念珠菌生物学和发病机制的认识至关重要。
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Disclosures
作者什么都没有透露。
Acknowledgments
我们感谢N.院长提供原mCherry FP序列，M Gerami - 内贾德建设质粒，拉尔森B.技术援助和T.海泽尔这个项目的开发过程中有益的建议。 JB是由欧洲研究委员会高级奖340087（RAPLODAPT）的支持。显微及成像系统是由明尼苏达州儿科基金会大学和明尼苏达影像中心的大学提供。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 100 W mercury lamp | CHIU Technical Corporation | M-100T | |
| 95% Ethanol | Any | NA | |
| Adenine | Any | NA | |
| Ampicillin | Any | NA | |
| Carrier DNA | Ambion | AM9680 | Sheared Salmon Sperm DNA 10 mg/ml |
| CCD Camera | Photometrics | CoolSNAP HQ | |
| Conical Tube | Corning | 430828 | 50 ml |
| Culture Tube Rotator | New Brunswick | 2013923 | TC-8, or Any Culture Tube Rotator |
| Deoxynucleotides (dNTP) PCR Grade | Any | NA | |
| Eppendorf Tubes | Eppendorf | 022363719, 022363212 | 0.5 ml, 1.5 ml |
| Erlenmeyer Flask | Fisher Scientific | 7250089 | 125 ml |
| Ethylenediaminetetraacetic Acid (EDTA) | Any | NA | |
| Freezer (-80 °C) | Thermo Electron Corporation | ULT-1386-9-V | Revco Ultima II |
| GFP, YFP and Texas Red Filter Sets | Chroma Technology Corporation | 49002, 86004v2, 49008 | |
| Glass culture tubes | Fisher Scientific | 1496126 | 75 mm |
| HRP goat anti-mouse antibody | Santa Cruz Biotechnology | SC-2005 | |
| HRP goat anti-rabbit antibody | Santa Cruz Biotechnology | SC-2301 | |
| Incubator (30 °C) | Any | NA | |
| Lithium Acetate | Any | NA | |
| Lysogeny Broth (LB) Media | Any | NA | |
| Magnesium Chloride | Any | NA | |
| Microcentrifuge | Eppendorf | 5415 D | |
| Microscope | Nikon | E600 | Nikon Eclipse E600 |
| Microscope Image Analysis Software | Universal Imaging Corporation | 6.3r7 | MetaMorph Software Series 6.3r7 |
| Mouse anti-GFP antibody | Roche | 11814460001 | |
| Nourseothricin | Fisher Scientific | 50997939 | |
| PCR Thermocycler | Applied Biosystems | 9700 | GeneAmp PCR System |
| PCR tubes | BioExpress, GeneMate | T-3035-1 | 0.2 ml |
| Polyethylene Glycol 3350 | Any | NA | |
| Potassium Chloride | Any | NA | |
| Rabbit anti-mCherry antibody | BioVision | 5993-100 | |
| Refrigerator (4 °C) | Any | NA | |
| Sodium Acetate | Any | NA | |
| Stereomicroscope | Nikon | SMZ1500 | |
| Table Top Centrifuge | Labnet | Z 400 | Hermle Z 400 |
| Taq DNA Polymerase | Any | NA | |
| Tris(hydroxymethyl)aminomethane (Tris) | Any | NA | |
| Vortex Mixer | Scientific Industries | SI-0236 | Vortex Genie 2 |
| Yeast Extract Peptone Dextrose (YPD) Media | Any | NA |
References
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