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Biochemistry

S100A12的表达,纯化和抗菌活性

doi: 10.3791/55557 Published: May 13, 2017

Summary

在这里,我们提出了一种表达和纯化S100A12(钙粒蛋白C)的方法。我们描述了一种测定其对人类幽门螺杆菌的抗微生物活性的方案

Abstract

钙粒蛋白蛋白是先天免疫的重要介质,是钙结合蛋白的EF手家族的S100类的成员。一些S100蛋白质具有以高亲和力结合过渡金属的能力,并且在称为“营养免疫”的过程中有效地将其远离入侵的微生物病原体。 S100A12(EN-RAGE)结合锌和铜,并且在先天免疫细胞如巨噬细胞和嗜中性粒细胞中是高度丰富的。我们报告了一种用于表达,富集和纯化其活性金属结合构型的S100A12的精制方法。这种蛋白质在细菌生长和活力分析中的应用揭示了S100A12对细菌病原体幽门螺杆菌具有抗菌活性。抗菌活性取决于S100A12的锌结合活性,S100A12螯合营养锌,从而使需要锌生长的幽门螺杆菌饥饿roliferation。

Introduction

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S100蛋白是一类具有多种功能的钙结合蛋白的EF手系家族1 。它们以组织和细胞特异性方式表达,并调节广泛的细胞功能2,3 。钙结合蛋白独特,S100蛋白表现出细胞内和细胞外功能4,5 。在细胞内,Ca 2+结合诱导构象变化,其暴露出特异性靶向蛋白质结合配偶体的疏水性表面。这种细胞内机制调节重要的过程,如细胞增殖,分化和能量代谢。在细胞外环境中,S100蛋白表现出两个功能7 。一方面,它们作为损伤相关分子模式(DAMP)蛋白质,并引发促炎症通过与模式识别受体8,9的相互作用产生免疫反应。此外,S100蛋白质类螯合物的几个成员过渡金属,这是一种功能,用于在称为营养免疫的过程中将微生物病原体饥饿10,11

S100A12(也称为钙粒蛋白C和EN-RAGE)在巨噬细胞和嗜中性粒细胞中高度表达,并且已被鉴定为炎性疾病的潜在生物标志物12,13 。除了在其EF手部位点处结合钙之外,S100A12还具有位于二聚体界面14,15相对端的两个高亲和力的过渡金属结合位点。每个结合位点由三个组氨酸残基和一个天冬氨酸残基组成,可螯合锌或铜sup class =“xref”> 16,17。最近,我们报道S100A12依赖性锌饥饿在调节幽门螺杆菌生长和促炎毒力因子的活性中是重要的18

幽门螺杆菌感染世界人口约一半的胃;使其成为最成功的细菌病原体之一19幽门螺杆菌感染可导致胃炎,胃肠炎,十二指肠溃疡,粘膜相关淋巴组织(MALT)淋巴瘤,侵袭性胃腺癌(胃癌)等胃肠疾病。胃癌是世界上非贲门癌相关死亡的主要原因,胃癌的单一最大相关危险因素是幽门螺杆菌感染

幽门螺杆菌仍然存在于胃的利基,尽管如此对病原体的免疫应答,强调需要更好地了解控制这种细菌感染的免疫机制20,21,22,23。 幽门螺杆菌相关炎症的特征在于多形核细胞或嗜中性粒细胞的深度浸润,其在感染部位18,24,25上沉积抗微生物蛋白质(包括S100A12)的所有组成成分。为了了解宿主和病原体之间的复杂对话,我们力求改进纯化S100A12的技术,并用它来研究其对该医学相关病原体的抗菌作用。下面的方案概述了其生物活性状态下S100A12纯化的改进技术;能够与高亲和力结合营养金属并将它们从侵入的微生物中螯合。此外,以下方法突出了该蛋白质作为关键试剂的用途,以研究天然抗微生物分子限制细菌病原体生长的机制。

S100A家族蛋白作为参与免疫信号传导和宿主防御的重要的先天免疫系统分子群已经获得了欣赏27 。其中最为深入的研究是钙卫蛋白(MRP-8/14,钙粒蛋白A / B,S100A8 / A9) 28,29,30 。钙卫蛋白是中性粒细胞相关蛋白,其形成S100A8和S100A9亚基的异二聚体,其在二聚体界面31处结合过渡金属。钙卫蛋白已显示具有两个金属结合位点:位点1可以结合Zn 2+ ,Mn 2+或Fe 2+ ,而Site 2可以结合Zn 2+ 31,32 。许多报告已经证明,钙卫蛋白具有抗多种病原体的抗菌活性包括金黄色葡萄球菌白色念珠菌鲍曼不 动杆菌肺炎克雷伯杆菌大肠杆菌幽门螺杆菌 ,并且抑制作用是由于钙卫蛋白25,28的金属螯合活性 29

以前的工作证明钙卫蛋白在幽门螺杆菌上发挥了许多活性,包括改变外膜中的脂质A结构,抑制cag- IV型分泌系统(其是幽门螺杆菌中的主要促炎毒力因子),诱导生物膜形成和抑制幽门螺杆菌生长和活力以剂量依赖的方式class =“xref”> 25,33。此外,遗传和生物化学测定显示钙卫蛋白对幽门螺杆菌的抗菌活性主要来源于其与营养锌25的结合能力。 幽门螺杆菌需要锌,如先前的研究所确定的,其利用化学成分确定的培养基来确定该病原体生长和增殖的微量营养素需求34 。此外,钙卫蛋白在幽门螺杆菌感染的组织中高度丰富,并与嗜中性粒细胞浸润相关,表明宿主可能在感染和随后的炎症中使用钙卫蛋白作为抗微生物策略。

来自无偏蛋白质组学筛选技术的最新证据表明,在活性氧丰富的条件下,calprotec锡经历改变六组氨酸结合位点的翻译后修饰,从而抑制蛋白36的金属结合活性。因此,我们假设在这些分子的广泛谱系中的其他S100A家族蛋白可能潜在地作为辅助金属螯合剂。我们选择S100A12进行进一步研究,因为在上述翻译后修饰屏幕中没有鉴定,它具有结合锌的能力,并且在来自幽门螺旋杆菌感染个体的人体组织中高度丰富。

我们的工作表明,S100A12可以在幽门螺杆菌 G27菌株中以剂量依赖的方式抑制幽门螺杆菌生长和活力,并且通过添加过量的营养锌可以逆转该蛋白的抗微生物活性。这项工作补充了我们以前的工作,表明S100A12对PMSS1和7.1产生抗菌活性3株幽门螺杆菌 ,证明其对许多临床分离株和实验室适应的幽门螺杆菌菌株18的广谱抗菌活性。一起,这些结果证实了S100A12作为通过营养免疫来控制细菌生长和增殖的机制的重要性。未来对这种重要的宿主 - 细菌相互作用的研究可能包括利用S100A12的活性来减少宿主组织内的细菌负担,或者确定这种蛋白质在幽门螺旋杆菌感染背景下对免疫信号传导的贡献。

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Protocol

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S100A12的表达

  1. 使用标准热休克方案,用pGEMEX-S100a12质粒转化感受态BL21 DE3细胞。在微量离心管中在冰上向50μL细菌中加入1至5μL质粒。孵育20分钟
  2. 在42℃下将细胞热冲击30秒。
  3. 将细胞在冰上孵育2分钟。
  4. 向细胞中加入500μLSOC介质。在37℃下,在轨道振荡器上以250rpm振荡孵育1小时。
  5. 在LB-琼脂培养基(补充100μg/ mL氨苄青霉素)上150μL的转化反应。在37°C孵育12-16 h。
  6. 挑一个殖民地接种2 mL LB(补充100μg/ mL氨苄青霉素)。
  7. 在37℃下在轨道振荡器(300rpm)上孵育4-6小时。 OD 600应读数在1-3个吸光度单位之间。
  8. 加入500μL起始培养物至50 mL ZYM-5052 autoindu补充有100μg/ mL氨苄青霉素的补充培养基26 。为了获得最佳曝气和最大表达,请使用250 mL带挡板的锥形瓶。在37℃下摇动(300rpm)24小时。
  9. 将细菌悬浮液转移到离心管中。在4℃下通过离心(4,000 xg,10分钟)将细胞造粒。
  10. 将介质倾倒,记录样品,并将细胞粘贴存储在-80°C。样品多年稳定。

2.使用低压色谱法纯化S100A12

  1. 将细胞重悬于30 mL 20 mM Tris,pH 8.0中。
  2. 在冰上超声处理悬浮液以溶解细胞。使用〜20 W输出,5 s on和5 s off循环5 min。
  3. 将溶液转移到高速离心管中。通过离心澄清细胞裂解物,在4℃下20,000×g 30分钟。
  4. 倾析上清液并转移到干净的100mL聚丙烯烧杯中。通过将烧杯放在冰上来冷却溶液。添加一个搅拌缸并慢慢加入11.20g硫酸铵。让溶液在冰上再搅拌1小时。这将产生60%的硫酸铵溶液并沉淀大部分大肠杆菌内源性蛋白质。 S100A12将保持溶解。
  5. 在4℃,20,000×g离心20分钟以沉淀沉淀的蛋白质。
  6. 倾倒上清液并转移到透析管(MWCO 3,500 kDa)。在4℃下对1μL的20mM Tris,pH 8.0进行透析。更换透析缓冲液两次。允许4小时之间的变化。
  7. 阴离子交换层析
    1. 在低压系统上进行色谱。典型流速为1 mL / min。
    2. 用10mL 20mM Tris,pH 8.0平衡5mL Sepharose柱。
    3. 使用样品泵装载〜40 mL的S100A12溶液(收集流量)。
    4. 用10mL 20mM Tris,pH8洗涤柱。
    5. 用0-30%梯度(Bub B为20mM Tris,pH 8.0,1M NaCl),经19柱体积(CV,95mL)。收集5 mL级分。
    6. 取每个级分的10μL等分试样,并用考马斯染色的MES SDS PAGE进行分析。使用恒定电压(20 V / cm)运行凝胶30分钟。
    7. 含有S100A12的游泳池部分。 S100A12在变性凝胶上以约10kDa的蛋白质运行。
    8. 使用超滤装置(MWCO 10kDa)浓缩至5mL。离心机在3,000 xg〜8分钟。取最高分数。
  8. 大小排阻层析
    1. 用1 CV(120 mL)的20mM Tris pH8,100mM NaCl平衡S75柱。
    2. 注入<5 mL浓缩的S100A12级分(来自离子交换层析)。
    3. 以120mL的流速以1mL / m的流速开发柱。收集5 mL级分。
    4. 取每个级分的10μL等分试样,并用考马斯染色的SDS PAGE进行分析。使用蛋白质鉴定蛋白质印迹或质谱(计算的单体亚基的分子量为10,575.0Da,测量值为10575.4Da)。
  9. 池分数
    1. 使用分光光度计测量蛋白A 280的吸光度。使用SEC缓冲区作为空白。计算出的S100A12同型二聚体的消光系数为5960M - 1cm -1
      注意:每50 mL培养物的典型产量为35-45 mg的S100A12。
    2. 将等分试样S100A12放入1.5 mL微量离心管(1 mg /管)中,在液氮中快速冷冻,储存于-80°C。

3.抗菌活性测定

  1. 将条纹幽门螺杆菌菌株G27置于补充有5%绵羊血液(血琼脂平板)的胰蛋白酶大豆琼脂平板上。在37℃下在补充有5%二氧化碳的室内空气中生长2-3天。
  2. 幽门螺杆菌接种到补充有1x胆固醇的布鲁杆菌肉汤中。文化过夜间在37℃下,在补充有5%二氧化碳的室内空气中摇动(250rpm)。
  3. 幽门螺杆菌 1:10稀释成50%布鲁氏菌肉汤,50%钙卫蛋白缓冲液加1x胆固醇,培养液中单独培养,或补充100μM氯化锌加0,100或1000μg/ mL纯化的S100A12。培养过夜振荡(250rpm),37℃,室温下补充5%二氧化碳。
  4. 第二天,连续稀释并平板至血琼脂平板上。允许细菌菌落在37℃下在补充有5%二氧化碳的室内空气中生长2-3天。在存在或不存在S100A12和/或外源性锌的情况下,列举菌落形成单位以计算细菌生长。

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Representative Results

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S100A12表达纯化

三步纯化从50mL细菌培养物中产生约40mg的重组S100A12。第一步是内源性大肠杆菌蛋白质的硫酸铵沉淀。该步骤之后是阴离子交换层析( 1A )。通过用考马斯亮蓝染色的SDS-PAGE追踪蛋白质( 图1B )。纯化方法的最后一步是将含有S100A12的合并级分用于大小排阻色谱法,用分子量和形状分离蛋白质( 图2A )。 S100A12是同二聚体(每个亚基92个氨基酸),总分子量约21kDa。通过SDS-PAGE分析从尺寸排阻色谱法收集的级分,并通过考马斯染色显色( 图2B

S100A12通过锌螯合活性抑制细菌生长

为了研究S100A12的抗菌活性,通过定量微生物培养技术进行细菌活力分析( 图3 )。细菌细胞的计数显示,与没有添加S100A12的对照相比,在存在或不存在营养锌的情况下,暴露于100μg/ mL的S100A12不显着抑制细菌活力(P> 0.05,单因素方差分析)。然而,与单独培养基相比,在单独培养基中暴露于1000μg/ mL的S100A12导致细菌活力降低69倍(P = 0.0193,Student's t Test,P> 0.05单因素方差分析);通过添加外源性营养锌(P = 0.023,Student's t Test)逆转了结果。这些结果观察S100A12的抗菌活性取决于其锌螯合活性。

图1
图1: 细胞裂解和S100A12通过阴离子交换色谱法纯化 a )离子交换纯化色谱图。在280nm处的紫外吸收的痕迹以蓝色显示,盐度梯度以粉红色描绘,收集的部分标记为红色。 ( b )纯化步骤的SDS PAGE凝胶。泳道:1)分子量标准2)可溶性裂解物级分3)硫酸铵颗粒4)硫酸铵上清5-14)Q色谱级分6-15。 请点击此处查看此图的较大版本。

图2 图2:S100A12纯化的尺寸排阻色谱结果。a )尺寸排除结果的色谱图。在280nm处的紫外吸收的痕迹以蓝色显示,收集的部分标记为红色。 ( b )尺寸排阻层析的SDS PAGE凝胶。泳道:1)分子量标记2)样品负荷3-15)级分10-21。 请点击此处查看此图的较大版本。

图3
图3:响应于暴露于S100A12依赖性锌螯合的细菌活力的定量培养分析。在单独的培养基(灰色条)中将细菌暴露于0,100或100μg/ mL的S100A12,或补充有100μM氯化锌的培养基(黑条)。在没有外源性营养锌的情况下暴露于1,000μg/ mL会导致细菌活力的显着抑制(* P <0.05,Student + t检验与中等+锌条件相比)。 请点击此处查看此图的较大版本。

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Discussion

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提出了一种用于人S100A12的表达和纯化的有效方案。 大肠杆菌表达系统是用于生产重组蛋白的最常用工具,特别是生物化学和生物物理学研究需要mg量时。这里描述的程序的重要增强是使用自动诱导培养基26 ,其与标准的Luria-broth培养基18的表达相比将纯化蛋白的产量提高了近三十倍。另外,自动感应介质大大简化了蛋白质表达工作流程。使用常规生长培养基,必须连续监测培养物,以便在指数生长阶段可以加入诱导剂。使用自动感应介质时,无需监视倍增时间。允许培养物生长至饱和。在自动感应的初期阶段在培养基上, 大肠杆菌使用葡萄糖作为碳源。一旦葡萄糖耗尽,细菌将转化为乳糖,作为诱导蛋白质表达的碳源26 。自动诱导培养基的组成被精细调节以允许高密度培养物的生长,从而增加重组蛋白的表达。在我们对S100A12的经验中,自动诱导培养基大大增加了表达蛋白质的量,但是我们警告这可能是蛋白依赖性的,应该通过实验验证。

S100A12在大肠杆菌的细胞质部分中表达 ,表明它是可溶性的并且很好地折叠。纯化的第一步涉及添加高百分比的硫酸铵,其沉淀许多内源性大肠杆菌蛋白质。该步骤利用了S100家族蛋白质的高稳定性和溶解度。 S100A12中等酸性(pI 5.81)。因此,用强阴离子交换树脂进一步纯化S100A12。纯化过程的最后一步是尺寸排阻层析柱,其确保S100A12是单分散和二聚体。方案的这一步骤至关重要,因为已经显示S100A12形成可溶性低聚物15 ,并且不清楚低聚可能对其抗微生物活性有什么影响。由于S100类成员具有较高的序列和结构同源性,其物理性质相似。因此,S100A12的纯化方法可广泛适用于在大肠杆菌的可溶性部分中表达的所有S100蛋白质

以前的研究已经证明,S100蛋白,如钙卫蛋白,具有抗细菌病原体如幽门螺杆菌的抗微生物活性并且该活性依赖于锌的结合活性。抗微生物S100A12的活性也是锌依赖性的,但是在细菌生长测定中证实的生长抑制显示,与其他S100-家族蛋白如钙卫蛋白相比,S100A12显着需要抑制生长。因此,使用较高浓度的S100A12比钙卫蛋白来实现相似的表型(生长抑制或毒力变化)至关重要。该方案的未来应用可以用于确定响应于S100A12施加的金属螯合的细菌基因表达,代谢组蛋白或蛋白质组学变化的全局变化。

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Disclosures

作者宣称他们没有竞争的经济利益。

Acknowledgments

这项研究得到了退伍军人事务部职业发展奖1IK2BX001701,国家推进转化科学中心的CTSA奖UL1TR000445,国家科学基金会奖1547757和1400969以及NIH授予GM05551的支持。其内容完全是作者的责任,不一定代表国家推进转化科学中心或国家卫生研究院的官方观点。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
S100A12 Expression
Expression cells
BL 21 (DE3) competent cells New England Biolabs C25271
Autoinduction medium components
Yeast Extract Research Products International Y20020-250.0
NaCl Research Products International S23020-500.0
Tryptone Research Products International T60060-250.0
FeCl3 Sigma-Aldrich F2877
MgSO4 Research Products International M65240-100.0
Na2HPO4 Research Products International S23100-500.0
KH2PO4 Research Products International P41200-500.0
NH4Cl Research Products International A20424-500.0
Na2SO4 Research Products International S25150-500.0
Glycerol Research Products International G22020-1.0
D-glucose Research Products International G32040-500.0
lactose Sigma-Aldrich L2643
Selection agent
ampicillin Research Products International A40040-5.0
S100A12 Purification
AKTA Start Chromatography System GE 29-220-94
HiTrap Q Sepharaose Fast Flow GE 17-5156-01
HiPrep 16/60 S-200 HR GE 17-1166-01
Nanodrop lite spectrophotometer Thermo Fisher Scientific ND-LITE
Tris Base Research Products International T60040-1000.0
H. pylori Culture
Blood agar plates Lab Supply Company BBL221261
Brucella broth Sigma-Aldrich B3051
Cholesterol (250x) Thermo Fisher Scientific 12531018
NaCl Sigma-Aldrich 793566
CaCl2 Sigma-Aldrich C4901
β-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M6250
Tris Base Sigma-Aldrich T1503
Zinc Chloride Sigma-Aldrich 229997

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References

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S100A12的表达,纯化和抗菌活性
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Jackson, E., Little, S., Franklin, D. S., Gaddy, J. A., Damo, S. M. Expression, Purification, and Antimicrobial Activity of S100A12. J. Vis. Exp. (123), e55557, doi:10.3791/55557 (2017).More

Jackson, E., Little, S., Franklin, D. S., Gaddy, J. A., Damo, S. M. Expression, Purification, and Antimicrobial Activity of S100A12. J. Vis. Exp. (123), e55557, doi:10.3791/55557 (2017).

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