Summary
Баддинги дрожжей является выгодной моделью для изучения динамики микротрубочек в естественных условиях из - за свою мощную генетику и простоту его микротрубочки цитоскелета. Следующий протокол описывает, как преобразовать и культуру дрожжевых клеток, приобретают конфокальной микроскопии изображений и количественного анализа динамики микротрубочек в живых дрожжевых клеток.
Abstract
Динамические микротрубочки являются основой для многих клеточных процессов, а также точные измерения динамики микротрубочек могут дать представление о том, как клетки регулируют эти процессы и как генетические мутации регулирования воздействия. Количественные динамики микротрубочек в многоклеточных моделях имеют целый ряд связанные с этим проблемами, в том числе с высокой плотностью микротрубочек и ограничения на генетических манипуляциях. В отличие от этого, начинающая модель дрожжей обеспечивает преимущества, которые позволяют преодолеть эти трудности. Этот протокол описывает метод измерения динамики одиночных микротрубочек в живых дрожжевых клеток. Клетки, экспрессирующие флуоресцентно меченый тубулин приклеивают к собранным камерам скольжения, что позволяет для стабильного получения изображения в заданном промежутке времени. Подробное руководство для высокоскоростных, приобретение четырехмерного изображения также обеспечивается, а также в качестве протокола для количественной оценки свойств динамических микротрубочек в конфокальной стеке изображения. Этот метод, в сочетании с обычной дрожжевой генетикой, прыIDES подход, который уникально подходит для количественного оценки влияния регуляторов микротрубочек или мутаций, которые изменяют активность тубулина субъединиц.
Introduction
Микротрубочки цитоскелета полимеры, изготовленные из ар-тубулина белковых субъединиц и используются в самых разнообразных клеточных контекстах, в том числе внутриклеточного транспорта, деление клеток, морфогенез и моторики. Для построения микротрубочек сетей для этих разнообразных ролей, клетки должны тщательно регулировать, где и когда микротрубочки формы. Это регулирование осуществляется путем регулирования реакции, которые либо собрать ар-тубулин микротрубочек субъединиц в полимеры или разбирать микротрубочки в свободные субъединицы; это известно как динамики микротрубочек.
Основная цель поля микротрубочек является выяснение молекулярных механизмов, которые регулируют динамику микротрубочек, в том числе исследования в ае-тубулина подразделений и внешних регуляторов, которые связываются с тубулина и / или микротрубочек. Хорошо установленный экспериментальный подход является воссоздать эту систему в пробирке с использованием очищенного тубулина-аром белка, часто в комание с очищенными внешними регуляторами. Несмотря на то, что это полезный подход, очевидно, что динамика микротрубочек в реконструированных системах сильно отличается от наблюдаемой в живых клетках. Например, микротрубочки растут быстрее и медленнее сокращаться в естественных условиях , чем в пробирке. Эти различия могут быть отнесены к доступности известных внешних регуляторов 1, а также пока-неопределенных факторов в клетках. Поэтому крайне важно, чтобы определить деятельность регуляторов микротрубочек и мутантов, которые нарушают динамику нативную сотовой связи.
Хотя многоклеточных модели оказались преобладающими системами для исследования функции микротрубочек и организаций высшего порядка, несколько практических проблем серьезно ограничивают полезность этих моделей для точного измерения динамики микротрубочек. Во-первых, большое число микротрубочек, начиная от десятков до тысяч на клетку, затрудняет уверенноотслеживать отдельные микротрубочки в течение долгого времени. Во многих исследованиях решить эту проблему с помощью визуализации белков, которые селективно локализовать с микротрубочками концов, такие как белки в семействе конечного связывания (EB). Тем не менее, эти белки , как известно, только локализовать на концах растущих микротрубочек в многоклеточных 2. Таким образом, полезность этих белков ограничивается непосредственным измерением темпов роста, в то время как только косвенно измерения других аспектов динамики, такие как частота катастрофы. Во-вторых, несмотря на успехи в редактирования генома технологии, создание клеток, которые стабильно экспрессируют флуоресцентно меченого тубулина или введения мутации избирательно манипулировать тубулина микротрубочек или регуляторов остается серьезной проблемой. Кроме того, наличие многих тубулина изотипов в многоклеточных путает исследование того, как мутации влияют на отдельные гены тубулина.
Почкованием система дрожжей обеспечивает несколько важных преимуществ для измерения в естественных условиях microtubuДинамика ля. Дрожжи имеет упрощенные микротрубочки сеть, которая позволяет визуализировать отдельные микротрубочки. В дрожжах, микротрубочки исходят из организации центров , известные как веретена полюсных тел (SPBS), которые встроены в ядерной оболочке 3. В SPBS служит в качестве каркасов для гаммы-тубулина небольших комплексов , которые пузырьковых микротрубочкой 4, 5. SPBS зарождаются два класса микротрубочек, микротрубочки веретена и астральных микротрубочек. Шпиндельные микротрубочки проект в нуклеоплазму и имеет важное значение для крепления к хромосомам с помощью кинетохорных микротрубочек и для стабилизации шпинделя с помощью перекрывающегося межполюснома микротрубочки 6. В противоположность этому, астральные микротрубочки проект наружу в цитозоле и относительно редко по сравнению с плотной сетью микротрубочек веретена. Во время митоза, предварительно анафаза клетка имеет только 1-2 астральных микротрубочки, исходящие от любого SPB; они существуют, как яndividual микротрубочки , а не как пучки 7. Ролью астральных микротрубочек во время митоза является перемещение ядра и шпинделя в стык между матерью и бутоном отсеками, известными как бутон шея. Это движение предполагает четко определенные пути , которые генерируют силы на астральных микротрубочках, натягивая ядро и шпиндель в направлении и в конечном счете в шейку почки 8.
Еще одним преимуществом системы дрожжей является полезность его генетики, которые могут быть использованы для исследования регуляторов микротрубочек и тубулина субъединицы с беспрецедентной точностью. Дрожжи также обладают упрощенным репертуаром тубулина изотипов: один β-тубулином гена (TUB2) и два альфа-тубулином генов (TUB1 и TUB3). Мутации могут быть легко введены в эти гены , и , таким образом , исследовались в гомогенной популяции тубулина 9, 10. Есть целый ряд широкоимеющиеся конструкции для маркировки микротрубочек, и они могут быть направлены на интеграцию в хромосомных локусах для стабильной экспрессии (см Обсуждения).
Общая цель этого метода состоит в изображения одиночных микротрубочек в живых дрожжевых клеток в четырех измерениях (X, Y, Z и T) для измерений с высокой разрешающей способностью динамики микротрубочек. Способы интеграции конструкций для конститутивной, низкого уровня экспрессии флуоресцентно-меченного тубулина в клетках дрожжей описаны. До начала обработки изображений, живые клетки смонтированы в слайде-камеры, покрытых лектин Конканавалин A, чтобы стабилизировать клетки для долгосрочной визуализации. Оптимальные параметры для получения изображения, а также рабочий процесс для анализа данных, также описаны.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Подготовка Тарелки-Leu отсева
- Добавить 800 мл стерильной деионизированной воды (DIH 2 O) в 2 - литровую колбу. Добавить 26,71 г порошка основы отсев (DOB), 0,69 г CSM-Leu, и 20 г агара. Смешать с магнитной мешалкой. Довести до 1 л с DIH 2 O.
- Автоклаве при 121 ° C и 19 фунтов на квадратный дюйм в течение 30 мин.
- Удалить колбу из автоклава и дать ему остыть до ~ 65 ° С при осторожном перемешивании.
- Налейте 30 мл / планшет в пластинах диаметром 100 мм. Пусть они сидят при комнатной температуре в течение 36-48 ч перед хранением при 4 ° С.
2. Интеграция GFP-Tub1 для конститутивной экспрессии GFP-меченых тубулина
- Отварить запас концентрация 10 мг / мл одноцепочечной ДНК (оцДНК) в течение 3 мин.
- Смешайте 2 мкл вареного оцДНК с 400 нг очищенного GFP-Tub1 плазмидной ДНК 11.
Примечание: Существует различные плазмиды, которые могут быть использованы для стабильного, флуоресцентного мечениямикротрубочек у дрожжей, которые используют альтернативные флуорофоры и селективные маркеры. Некоторые из этих альтернатив описаны в разделе обсуждения. - Добавьте смесь ДНК в 50 мкл аликвоты компетентных клеток дрожжей.
Примечание: Подготовка компетентных клеток дрожжей с раствором сорбита (Сорб; 100 мМ LiOAc, 10 мМ Трис-HCl, рН 8, 1 мМ ЭДТА, рН 8, и 1 М сорбита, доводили разбавленной уксусной кислотой до рН 8). Подробное описание создания компетентных клеток дрожжей, см ссылку 12. - Vortex тщательно.
- Добавить 6x общего объема полиэтиленгликоль (ПЭГ) раствора (100 мМ LiOAc, 10 мМ Трис-HCl, рН 8, 1 мМ ЭДТА / NaOH, рН 8, и 40% PEG3350) к смеси ДНК-клеток.
- Vortex тщательно.
- Инкубировать в течение по крайней мере 1 ч при 30 ° С при легком помешивании.
- Добавить диметилсульфоксид (ДМСО) до 10% от общего объема и вихря.
- Инкубируют при 42 ° С в течение 15 мин.
- Центрифуга при 2500 мкг в течение 5 мин.
- Пластина клеток на качестве -Leu выбывания пластины.
Примечание: Конструкция GFP-Tub1 содержит лейцин ауксотрофного маркера, в то время как другие конструкции могут использовать альтернативный маркер. Отсев среда должна быть специфической для ауксотрофных маркеров конструкции. - Разрешить трансформированные клетки расти в течение 3-5 дней при 30 ° С.
- Re-полоски трансформация отдельные колонии на свежей -Leu отсева пластины путем переноса колоний с использованием автоклавной зубочистки. Инкубируйте планшет в течение ночи при 30 ° C.
- Визуально экран каждый трансформант для сигнала GFP суспендированием приблизительно 1 мкл клеток из одной колонии от пластины на этапе 2.14 в 2 мкл воды на чистую слайд. Накройте приостановленные клетки с покровным и наблюдать с помощью флуоресцентной микроскопии.
- Возбуждают трансформантов с 488 нм света и посмотреть на наличие сигнала GFP.
- Возбуждают трансформантов с 488 нм света и посмотреть на наличие сигнала GFP.
3. Выращивание Жидкое дрожжевая культура
- Инокулируйте ~ 1 мкл клеток дрожжей из одной колонии на пластине в 3 мл синтетической полной среды. Разрешить клеткам расти в течение ночи при 30 ° C при встряхивании со скоростью 250 оборотов в минуту.
- Развести насыщенную культуру на следующий день до OD 600 <0,1 в среде. Возвращение разбавленных культур в 30 ° C шейкер в течение 3-4 ч или до OD 600 составляет от 0,4 до 0,8, когда клетки готовы к загрузке в камеры для обработки изображений.
4. Подготовка потока Камерный Слайды
- Порезлист парафиновой пленки в часть 4 в ширину и 7 в длину.
- Поместите стандартный микроскоп в продольном направлении по ширине на 4 дюйма из парафиновой пленки и обернуть пленку вокруг слайда в 3-4 раза, так что ползун покрыта пленкой, которая имеет толщину 3-4 слоя. Нажмите слои вместе, чтобы обеспечить там разумное уплотнение; это будет сделать легче резать. Не нажимайте слишком сильно, в результате чего фильм морщин.
- Вырезать парафиновую пленку вдоль внешних краев слайда, используя чистую коробку резак бритву. Используйте другой слайд, чтобы обеспечить прямой край для резки.
- Пил излишки пленки от рабочего ползуна и выбросить. Остальные стопки пленки будет охватывать одну поверхность слайда и будет использоваться, чтобы сделать стены между камерами формирования изображения.
- Использование второго слайда в качестве прямого края, разрезать сложенные слои пленки вдоль длинной оси ползуна в приблизительно десять полос, каждая 2-4 мм в ширину.
- Нарезать сложенные слои парафиновой пленки перпендикулярноразрезы, сделанные в шаге 4.5, вдоль короткой оси ползуна, чтобы создать полоски 2-4 мм шириной, 23-24 мм в длину и 3-4 слоев толщиной.
- Пил нарезанные полоски с помощью бритвы под углом 45 °. Использование щипцов, равномерно распределить полоски отрезанные пленочные на чистом предметном стекле микроскопа, чтобы создать требуемые количества камер. До 3 камеры (сделанная с 4-парафиновой пленкой полосок) может быть создана на одном слайде.
- Поместите один покровный поверх полоски пленки и переместить его в нужном положение при помощи щипцов.
- Поместите подготовленный слайд, покровный вверх, на плите, установленной при ~ 95 ° C (это примерно низкая средней установка на большую часть конфорок). Нагреть слайд, пока полоска пленки не являются прозрачными (приблизительно 3 мин), а затем запечатать слайд и покровный вместе, слегка нажав на покровном с помощью пинцета.
Примечание: Важно только прессы по регионам покровных, которые непосредственно над полосками парафиновой пленки, как и царапать регионы выше сhambers может снизить качество изображения. Позаботьтесь, чтобы не перегреть слайд; испаренный пленка будет покрывать внутри камеры с гидрофобной пленкой, которая предотвращает клетки от присоединения. - Используйте пинцет, чтобы удалить слайд из конфорки (слайд будет жарко) и установить ее в стороне, чтобы охладить с боковым покровным лицевой стороны вверх; как слайд охлаждается, пленка будет возвращаться к белой непрозрачной окраске.
Примечание: На данный момент, слайды будут готовы к загрузке с культивируемыми клетками дрожжей. Дополнительные слайды могут быть сделаны в эту точку и хранить в чистом и сухом месте в течение неопределенного периода времени.
5. Загрузка дрожжевых клеток в Подготовили Flow камерных Слайды
- Оттепель замороженный, 200 мкл аликвоты конконовалина А (2 мг / мл в стерильном DIH 2 O).
- Добавьте примерно 100 мкл размороженного конконовалина А в каждой камере подготовленного слайд с помощью пипетки в один из открытых концов. Добавьте достаточно конканавалин А чтобы заполнить камеру. Для этого SТЭФ, то конканавалин А будет извлечены через камеру через капиллярное действие.
- Повесьте слайд, покровные вниз, между двумя стойками микрофужных трубок или ручками в течение 5 мин , чтобы позволить конканавалин A присоединиться к покровному (т.е. камеры).
- Верните бегунок в положение покровного вверх. Промыть камеру с 2x объем камеры (определено на этапе 5.2, выше; приблизительно 200 мкл) синтетического полной среде , чтобы удалить конканавалин A.
- Поток среды через камеру, используя либо угол бумажного полотенца или фильтровальную бумагу, сложенную пополам, чтобы привлечь жидкости из одного конца камеры, одновременно пипетки свежей жидкости в другую. В качестве альтернативы, использовать вакуумный аспиратор тщательно засасывать жидкость из одного конца в то время как жидкость пипетки свежей в другую.
- Тензодатчики пропусканием 2x объема камеры (приблизительно 200 мкл) клеточной суспензии (со стадии 3.4) с помощью направленного потока Method описано в шаге 5.4.1.
Примечание: Цель состоит в том, чтобы изображение один слой клеток на покровном. Поэтому важно, чтобы загрузить концентрацию клеток достаточно малы, что они не складывают друг на друга, но достаточно большой, что достаточные клетки присутствуют в поле, чтобы собрать максимальное количество данных на приобретение изображения. Оптимальная концентрация клеток в камере может варьироваться и должны быть определены эмпирически. Для того, чтобы повысить концентрацию клеток в проточной камере, осторожно осадить культуры клеток при 1000 х г в течение 2 мин и удалить некоторые из надосадочной жидкости. Для того, чтобы уменьшить концентрацию клеток, добавить свежую синтетическую полную среду к клеточной суспензии. Концентрация клеток может быть оценена после шага 5.7 (ниже) путем проверки камеры на фазово-контрастного микроскопа. На данный момент, дополнительные элементы могут быть добавлены к камере путем пропускания более клеточной суспензии. Однако уменьшение плотности клеток в данный момент не представляется возможным, и лучше всего достигаетсяпутем загрузки новой камеры с разбавленной клеточной суспензии. - Повесьте слайд покровные вниз, как описано на стадии 5.3, в течение 10 мин, чтобы позволить клеткам придерживаться покровного.
- Промыть любую прилипшую клетку, протекающими через 4x объем камеры (приблизительно 400 мкла) синтетическую полную среду. Это позволит устранить свободно плавающие клетки в камере, которые могут загрязнять получение изображения.
- Тщательно высушить каждый конец камеры с чистым углом бумажного полотенца, в результате чего мениска к краю покровного стекла.
- Уплотнение каждого конца камеры с теплой (75 ° С) герметикой (например, VALAP; равные части вазелина, шерсть воск и парафин).
Примечание: На данный момент, слайд готов к изображению. Камеры могут быть отображены до 9 ч, в зависимости от плотности клеток в каждой камере. Клетки будут производить углекислый газ (CO 2) в течение долгого времени, который будет постепенно создавать пузырьки , которые вытесняют клетки.
- Доведите слайд инвертированного микроскопа, оснащенного 1,45 цели Н.А. 100X CFI Plan Apo, пьезоэлектрического стадии, вращающийся диск конфокальной блок сканера, осветительной лазера и камерой EMCCD. Поддерживать температуру стадии при комнатной температуре (25 ° C) во время приобретения.
Примечание: Высокая числовая апертура позволяет получить более высокое разрешение изображения, и пьезоэлектрический этап обеспечивает высокую скорость приобретение г-стеку. Минимальные требования микроскопа цель 100X, освещение лазер, и камера EMCCD. - Принесите клетки в фокусе. Убедитесь в том, что поле приобретения имеет по крайней мере 5-6 клеток, собранных вместе, ища слайд для клеток, сгруппированных вместе.
Примечание: Несмотря на то, что нет необходимости изображения более чем одной ячейки в то время, визуализации несколько ячеек в том же поле повышает эффективность сбора данных без ухудшения качества данных. Тем не менее, это очень важно, чтобыклетки находятся на одной и той же фокальной плоскости, а не сложено на верхней части друг друга. - Программирование многомерного приобретения собрать несколько Z-серию с течением времени.
- Настройка параметров в пределах текущих параметров сбора к следующему: общая Z-глубина = 6 мкм, чтобы охватить всю дрожжевую клетку; Z-размер шага = 300 нм, чтобы максимизировать свет коллекцию без передискретизации; Общая продолжительность времени = 10 мин; интервалы времени = Z-серии каждые 4 с; и время экспозиции = 90 мс для каждой плоскости г.
Примечание: Оптимальное время экспозиции будет варьироваться в зависимости от камеры, источника света возбуждения, и других факторов. В целом, оптимальное время экспозиции будет минимальное время, необходимое для достижения соотношения 3: 1 сигнала от GFP-меченого астральных микротрубочек, чтобы сигнал от цитоплазмы на основе значений пикселов, измеренных с помощью EMCCD.
- Настройка параметров в пределах текущих параметров сбора к следующему: общая Z-глубина = 6 мкм, чтобы охватить всю дрожжевую клетку; Z-размер шага = 300 нм, чтобы максимизировать свет коллекцию без передискретизации; Общая продолжительность времени = 10 мин; интервалы времени = Z-серии каждые 4 с; и время экспозиции = 90 мс для каждой плоскости г.
- Начало приобретения, нажав кнопку «Выполнить». Позвольте ему работать в течение всего периода 10 мин. Сохраните данные в виде изображенияряд (.tiff или .nd2).
- Выберите новое поле для изображения в камере и повторите шаги 6.2-6.4.
Примечание: Одна камера должна давать между 15 и 20 полей клеток, в зависимости от плотности клеток в камере. Более высокая плотность клеток будет давать более низкие суммарные поля, как СО 2 в камере будет накапливаться быстрее.
Анализ 7. Изображение
- Открыть файл изображения в ImageJ ( https://imagej.nih.gov ) в качестве HyperStack с использованием био-форматы импортер плагин.
- Открытое ImageJ и перетащить полученные стек изображения из секции 6 непосредственно на панели управления. Био-форматы импортер будет запускаться автоматически. Выберите «Ok», чтобы загрузить стек изображения в качестве HyperStack.
Примечание: «Био-форматы Импорт Опции» подсказки будут открывать и гарантировать, что под «Stack Просмотр», раздел «Просмотр стека с:» установлен в положение «HyperStack»; и "Stack Order:" установлен в положение "XYCZT."
- Открытое ImageJ и перетащить полученные стек изображения из секции 6 непосредственно на панели управления. Био-форматы импортер будет запускаться автоматически. Выберите «Ok», чтобы загрузить стек изображения в качестве HyperStack.
- Collapse каждого Z-серию в максимальную интенсивность, 2-мерная проекция с помощью функции Z-проекта.
- Выберите меню «Изображение», подменю «Стек» и функцию «Z-проект». Выберите «Максимальную проекцию» из выпадающего списка и нажмите кнопку «Ok».
- Применяют медианный фильтр в стек изображения для уменьшения шума зернистость путем выбора меню «Process», «Фильтры» подменю, и «Median» функцию. Введите 2,0 пикселей в поле радиуса и нажмите кнопку «Ok».
- Определение предварительно анафазе клеток в этой области.
Примечание: Они характеризуются средним бутонов и короткой митотического веретена, 1-1,5 мкм в длину (фиг.1; стрелку указывает на короткий митотического веретена). Клетки на данном этапе являются идеальными для анализа динамики микротрубочек, потому что они обычно имеют только Feж астральные микротрубочки , исходящие полюса шпинделя 7. Астральные микротрубочки могут быть идентифицированы в виде линейных волокон, которые демонстрируют равномерную интенсивность сигнала GFP от минус конца, в СПБ, в конце плюс, в цитоплазме. - Начиная с первой временной точкой в серии изображений, с помощью инструмента сегментированных линий, чтобы нарисовать линию вдоль одной астральной микротрубочки, от минус конца, расположенном на стыке между астральной микротрубочкой и более интенсивно меченым шпинделем микротрубочками, к положительному концу , который находится в цитоплазме (см красные линии на рисунке 1). Дважды щелкните на конце микротрубочки, чтобы завершить сегментированную линию.
- Запишите измерения в таблице результатов, используя «меру» функцию, нажав на кнопку «M» на клавиатуре.
Примечание: Дополнительные функции, такие как серые интенсивности, может быть записано путем установки измерения в меню «Анализ» и «Set измерение» подменит. - Переход к следующей временной точке либо нажав правую стрелку в строке Z-слайдер или нажав кнопку «./>» клавишу на клавиатуре. Повторите шаги 7.5 и 7.6 для всех временных точек в последовательности изображений.
- Скопируйте данные из таблицы результатов и вставить их в таблицу. Сохраните данные, выбрав пункт «Сохранить как».
Примечание: Эти измерения будут включать несколько значений, но наиболее важных значения срез, который указует временную точку в серии, и длину, что указует на длину линии (то есть, астральные микротрубочки). Столбцы , содержащие другие измерения (например, область, среднее значение пикселя, угол, и т.д.) могут быть либо сохранить или выбросить. - Создайте новый столбец в таблицу, щелкнув правой кнопкой мыши и с помощью функции «Вставить». Ввод времени (ов) каждой временной точке.
- Создание XY график рассеяния длины микротрубочек (мкм) в зависимости от времени (ы) с помощью «Вставить линиюДиаграмма»особенность, выберите измерение длины, как„Y“и столбец время как„X“
- Определение области полимеризации, деполимеризации, и паузы, глядя на положительные и отрицательные изменения длины с течением времени на график рассеяния с шагом 7.10.
Примечание: Полимеризация события увеличивают длину микротрубочек , по меньшей мере , 0,5 мкм , через минимум 3 временных точек и соответствуют линейной регрессии с R 2 ≥ 0,9 и R-значение> 0 (фиг.1В и D, зеленые точки). Деполимеризации событие уменьшает длину микротрубочек , по меньшей мере , 0,5 мкм , через минимум 3 временных точек и соответствует линейной регрессии с R 2 ≥ 0,9 и R-значением <0 (фиг. и D, розовые точками). Пауза событие отделено от полимеризации и деполимеризации. Паузы определяются как чистые изменения в длине микротрубочек менее чем 0,5 мкм через минимум 3 моментов времени;соответствовать линейной регрессии с R-значение между -0.4 и 0.4; и имеют наклон, что статистически не отличается от нуля, как определено с помощью F-теста. - Используя график рассеяния в качестве руководства, определить участки времени, когда изменение длины положительно и выделить их в зеленом цвете. Выделите области времени, когда изменение длины отрицательно в розовом цвете.
- Расчет линейная регрессии каждого выделенная раздел и запись R- и R 2 -значения для каждого раздела в столбцах проксимальнее регионы. Классифицировать каждый цветной регион либо как событие полимеризации или событие деполимеризации.
- Определение области полимеризации, деполимеризации, и паузы, глядя на положительные и отрицательные изменения длины с течением времени на график рассеяния с шагом 7.10.
- Вычислить скорость полимеризации пути деления чистого изменения длиной изменения во время для каждого события роста. Запишите эти результаты в колонке рядом с линейными значениями регрессии с шага 7.10.3.
- Расчет ставки деполимеризации пути деления чистого изменения длиной изменение во время для каждого shrinkinг событие. Записать эти результаты в столбце, прилегающие к значениям скорости полимеризации со стадии 7.11.
- Вычислить частоту катастроф путем деления числа полимеризации-к-деполимеризации переходов на общее время всех событий роста 13. Записать эти результаты в колонке рядом значений скорости деполимеризации с шага 7.12.
- Вычислить частоту спасательного путем деления числа деполимеризации-к-полимеризации переходов на общее время всех событий усадки 13. Записать эти результаты в столбце, прилегающих к значениям частоты катастрофы с шага 7.13.
- Вычислить динамичность путем деления суммы абсолютной величины всех изменений длины по общей продолжительности получения изображения, вычисленных на этапе 7.10.1, и умножения на 27.0833 , чтобы получить тубулин субъединиц в секунду 14. Запишите эти результаты в столбец, примыкающие к спасательной частоте ВалуЕЭС от этапа 7.14 и сохранить таблицу результатов.
Примечание: Можно автоматизировать процесс анализа , описанный в шагах 7,10-7,15 с использованием заказной программы (. Estrem и др рукопись представлена). Программа предназначена для определения периодов полимеризации и деполимеризации в измерениях длины, следуя параметры, подробно описанные выше.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Измерение динамики микротрубочек в живых клетки дрожжей предоставляет убедительный инструмент для оценки, как мутации в генах, кодирующих регуляторы микротрубочек или тубулин субъединицы полимеризации удара и скорость деполимеризации, а также частоте перехода между этими состояниями. Рисунок 1 отображает временные ряды астральных динамиков микротрубочек в клетке дикого типа и мутантный клеток с мутацией в бета-тубулине (tub2- 430Δ). Микротрубочки помечены GFP-меченый альфа-тубулина, чтобы визуализировать длину микротрубочек. Красные стрелки проследить длину астральных микротрубочек в каждом изображении (Figure1A и 1 C). Длина микротрубочек были измерена в каждой временной точке в течение 8 мин, и эти скомпилированные длины изображены на участках жизни (фиг. и 1 D). Эти данные были использованы для определения скорости полимеризации, скорость деполимеризации, полимеризации duratiна, продолжительность деполимеризации, частота спасения, частоты катастроф и динамичности.
Рисунок 1. Покадровый Визуализация GFP-меченых микротрубочек и Измерения Астральных микротрубочек Dynamics. (А и С) Первые пять последовательных изображений изображений в заданный промежуток времени для дикого типа и tub2 -430Δ мутантных клеток. Микротрубочки помечены GFP-Tub1 визуализировали в пре-анафазы клеточного цикла. Каждое изображение является максимальной интенсивности проекции из конфокальной Z-серии. Шкала баров: 1 мкм. Timestamps показывает общее время на каждом приобретении кадра. Красные стрелки следуют вдоль общей длиной астральных микротрубочек, причем стрелки, обозначающих концов плюса. (В и D) микротрубочки жизни участки отображение длины отдельных астральных микротрубочек с течением времени. Зеленая точкаs обозначают полимеризации и розовые точки обозначают деполимеризации. Стрелки указывают на катастрофических событий. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 1 демонстрирует измененные динамики микротрубочек между штамма дикого типа и мутантного штамма не хватает на 27 аминокислот бета-тубулина на C-конце, мутанта , который был ранее показано, имеют более стабильные микротрубочки 15. Как показано в микротрубочек жизни участков, микротрубочек в tub2 -430Δ мутанта длиннее и проявляет меньше , чем катастрофы дикого типа микротрубочек (рис 1B и D; наконечники стрел Таблица 1). Кроме того, скорость полимеризации и деполимеризации, определяется со склонов восходящих и нисходящими микротрубочками Ленгатыс, уменьшаются в мутанте по сравнению с диким типом (фиг.1В и 1D; таблица 1). И, наконец, микротрубочки в мутантных клетках tub2 -430Δ проводит больше времени в состояниях полимеризации и деполимеризации и уменьшилась динамичность по сравнению с диким типом (таблица 1).
Напряжение | Динамичность (субъединицы / с) | Скорость полимеризации (мкм / мин) | % Время полимеризации | Скорость Depolym (мкм / мин) | % Время в деполимеризации певших | % Время паузы | Частота спасения (события / мин) | Частота катастроф (эвЭнты / мин) |
Дикого типа п = 1 | 54 | 1,8 ± 0,5 | 48 | 3,0 ± 0,3 | 29 | 3 | 1,8 | 1.4 |
tub2-430Δ п = 1 | 40 | 1,4 ± 0,1 | 41 | 1,5 ± 0,2 | 32 | 0 | 0.8 | 0.7 |
Сокращения заключаются в следующем: мкм, мкм; мин, мин; с, второй; п, одного микротрубочек проанализированы с микротрубочками жизни участка (Fig1B, D). Значения представляют собой среднее ± стандартная ошибка среднего. |
Таблица 1: Динамика микротрубочек Измерения для ячеек на рисунке 1. Значения представляют собой среднее ± стандартная ошибка среднего из измерений одиночных микротрубочек , показанных на фиг.1.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Почкование модель дрожжей предлагает значительные преимущества для сбора измерений с высоким разрешением динамики микротрубочек в обстановке в естественных условиях, в том числе способности к изображению одиночным микротрубочкам с течением времени и способностью манипулировать тубулин и регуляторы микротрубочек с помощью инструментов дрожжей генетики.
Камеры конканавалин A-покрытие обеспечивают ряд преимуществ по сравнению с ранее описанными аппаратами, в том числе расплавленного агара колодки. Слайды с камерами могут быть предварительно сделаны и сохранены на долгий срок или могут быть использованы немедленно. Кроме того, камеры конканавалин A-покрытие способны культивирования клеток дрожжей в течение> 6 ч в той же среде, в которой клетки были первоначально культивировала. Важно отметить, что число клеток в камере будет диктовать, как долго камера может быть отображена. Камеры с покрытием гарантирует, что только один слой клеток дрожжей прилипает к покровным. И, наконец, создание нескольких камер позволяетнесколько различных штаммов дрожжей, которые будут отображены на одном слайде.
Существуют серьезные проблемы с визуализацией динамики микротрубочек у почкующихся дрожжей, в том числе относительно низких уровней сигнала и весьма динамичный характер процесса. Широкопольные микроскопы являются достаточными для захвата одной временной точке изображения меченых микротрубочек. Однако широкопольная микроскопия вызывает быстрее фотообесцвечивание за счет увеличения времени экспозиции и бомбардировку образца с вне фокуса света. Кроме того, лазерный сканирующий конфокальный микроскоп неадекватны из-за быстрее фотообесцвечивание. Спиннинг диска конфокальной микроскопии уникально подходит для визуализации динамики микротрубочек у почкующихся дрожжей. Система конфокальный микроскоп вращающийся диск, используемый здесь, был разработан с учетом этих требований.
Микроскопическая система должна быть рассчитана на высокой скорости и высокой чувствительности. Хотя различные системы микроскопа могут оказаться подходящими, некоторые компоненты имеют важное значение. 100Xобъектив с высокой числовой апертурой (1.45NA) необходимо решить отдельные микротрубочки и изменения длины от порядка 100 нм. Сканер вращающийся диск конфокальной необходимо минимизировать фотообесцвечивания и токсичность, блокируя из фокуса света, и для получения максимального разрешения и чувствительности, путем сбора только в фокусе света. Камера EMCCD должна быть быстрой и чувствительной, чтобы собрать достаточное количество сигнала GFP-Tub1 в течение каждого 90-мса приобретения покадрового. В настоящее время, EMCCD камеры являются лучшим выбором для данного применения. Датчик тока камеры CMOS отсутствие чувствительности высокого класса EMCCDs; Однако, эта технология значительно улучшается, и в скором времени может быть подходящим. Наконец, пьезоэлектрический этап необходим для быстрого и точного движения в Z, который может являться лимитирующей стадией в четырехмерном получении изображения.
Конкретная система микроскопа описан в данном протоколе может представлять собой барьер, если подобное оборудование не легко доступно. Переоборудование сбыть сделано, чтобы приспособить различные системы обработки изображений, но эти модификации могут происходить за счет временного и / или пространственного разрешения. Двигатель ступени шпинделя с приводом может быть использован вместо пьезоэлектрической стадии. Тем не менее, эти двигатели работают медленнее, менее точны, и склонны к дрейфу. После захвата изображений стабилизирующего подключаемые модули могут быть использованы для минимизации дрейфа в размерах XY, связанные с этими электроприводными этапами. Кроме того, могут быть использованы альтернативные камеры с замедленной скоростью считывания. Для размещения более медленную скорость сбора, Z-серии могут быть собраны реже (то есть, чем больше времени между Z-серии). Тем не менее, увеличение времени между Z-серией риски отсутствует переходы, которые могут возникнуть между временными точками. Альтернативно, расстояние между Z-плоскостями может быть увеличено, как способ уменьшения количества изображений, собранных в Z-серии. Однако, увеличение этого расстояния риски потери информации изображения между плоскостями, которые будут ухудшать способность экспериментатора к accurately идентифицировать микротрубочки концов. Очевидно, что изменения могут быть сделаны, чтобы приспособить альтернативные системы визуализации, но эти изменения должны оцениваться с потенциальной потерей информации об изображении.
Другим ограничением этого протокола является потеря пространственной информации, когда трехмерные изображения стеки преобразуются в двумерных проекций изображения. Отдельные астральные микротрубочки в предварительно анафазе дрожжевой клетки, как правило, составляет от 0,5 до 2,0 мкм в длине и проектах на трехмерное пространстве цитоплазмы. Поэтому крайне важно, чтобы получить изображения из серии Z-позиции, чтобы собрать всю пространственную информацию индивидуальных микротрубочек в. В приобретении покадрового, это может привести к сложному набору данных, с 20-Z-ломтиками в каждом из 150 временных точек, в общей сложности 3000 изображений. Для решения этой проблемы и упростить анализ изображения, пространственная информация из Z-стеки сжимается во время анализа. Хотя этот benefего анализ, это происходит за счет пространственной информации от Z-измерения. Сколько информации теряется, когда Z-размер сжимается? Чтобы оценить эту потерю, эксперименты были проведены для измерения расстояния между SPBS в предварительно анафазе клеток, которые относительно легко измерить, так как Spc110-GFP-меченых SPBS обладают сферической фокусы с высокими значениями отношения сигнал-шум. Несмотря на то, шпиндель может проявлять различное смещение в Z, чем астральные микротрубочки, средняя длина аналогична (~ 1,5 мкм) и, следовательно, обеспечивает полезный прокси-сервер. Шпиндельные длины, в среднем, 15% больше, при измерении в полных трехмерных изображений стеки, чем когда одни и те же шпиндели измеряются в двумерных проекций (JM, неопубликованные результаты). Таким образом, преимущество упрощенного набора данных и измерений должно быть взвешено против стоимости отбрасывали Z информации.
Дрожжи клеточной биологии сообщество разработало универсальный инструментарий для визуализации микротрубочек Networкс. Это включает в себя множество флуоресцентных белков, слитых с альфа-тубулина / Tub1 и обозначен различными ауксотрофными маркерами. Эти конструкции включают в себя LEU2 :: GFP-TUB1 (pSK1050) 11, который интегрирует в хромосомной LEU2 локусе, и несколько слитых к GFP и другим флуорофорам, которые интегрируют в локусе URA3, в том числе URA3 :: GFP-TUB1 (pAFS125) 16, URA3 :: КФП-TUB1 (pAFS125-КФП), и URA3 :: pHIS3-mCherry-TUB1 (pAK011) 17. Кроме того, набор Tub1 слитых с различными флуоресцентными белками недавно был создан , что целевая интеграция либо в хромосомном URA3 локус или к локусу , примыкающему к нативному TUB1 локусу 18. Эта обширная палитра флуорофоров и маркеров является очень полезным для совместной локализации экспериментов с дифференциально меченных белков. Слияние GFP-Tub1 остается лучшим инструментом для покадровой визуализации microtuBule динамика благодаря своей яркости и светостойкости. Слитый GFP-Tub1 создатель Song & Lee (pSK1050) 11 содержит сплав GFP с амино-концом α-тубулина / Tub1 и интегрирует в LEU2 локусе , чтобы спасти лейцин ауксотрофию. Таким образом, слитый белок экспрессируется эктопически в дополнение к нативной альфа-тубулина и содержит ~ 20% от общего альфа-тубулина в клетке 9. Важно отметить, что синтез GFP-Tub1 не спасает функцию нативных α-тубулина / Tub1 (JM, неопубликованные результаты). Это также относится и к другим фьюжн TUB1 конструкции 18.
С доступными инструментами для визуализации микротрубочек и их связывающих белков, многообещающий дрожжей является идеальной системой для изучения мутаций в тубулине и других регуляторах микротрубочек. Кроме того, ограниченное число генов тубулина позволяет непосредственного изучения однородного пула мутантного тубулина. В дополнение к мутациям вгенов тубулина, многообещающий дрожжей имеет ряд ассоциированных с микротрубочками белки (MAPS), которые гомологичны многоклеточных аналоги. Эти карты могут быть изучены непосредственно, и эффекты, что мутации имеют на отдельных микротрубочек нитей также могут быть рассмотрены. Протокол подробно описаны здесь позволяет исследовать обоих внутренних и внешних процессов, которые влияют на динамику микротрубочек.
Таким образом, микротрубочки должны быть динамичными, чтобы правильно функционировать во многих клеточных процессах. Необходимо понимать факторы, присущие тубулина и примесные, связанные белки, которые регулируют динамику микротрубочек. Баддинги дрожжей является идеальной системой для изучения влияния этих факторов непосредственно количественной оценки динамики одного микротрубочек. Протокол подробно описан выше описан , как стабильно интегрировать флуоресцентный слитый белок в геном дрожжей и как получать и анализировать конфокальные изображения стеки для количественной оценки динамики микротрубочек в естественных условиях
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.
Acknowledgments
Мы благодарим Керри Блум (Университет Северной Каролины), Кайунг Ли (NCI), Стивен Маркус (Colorado State University) и Эльмар Шибел (Universität Heidelberg) для совместного использования различных FP-TUB1 плазмид. Мы благодарны Мелисса Гарднер (Университет Миннесоты) для обучения нас в способе подготовки слайд-камеры. Эта работа была поддержана Национальным институтом здоровья (NIH) грант R01GM112893-01A1 (до Jkm) и T32GM008730 (до н.э.).
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
DOB (dropout bases) | Sunrise science | 1650 | |
CSM-Leu | Sunrise science | 1005 | |
Agar | Ameresco | N833 | |
100 mm polystyrene plates | Fisher Scientific | FB0875713 | |
ssDNA (Samon Sperm) in sterile DiH2O | Sigma-Aldrich | D7656 | resuspend at 10 mg/mL in DiH2O. Store aliquots at -20 ºC |
Synthetic Complete Media | Sunrise science | 1459-100 | |
Concanavalin A | Sigma-Aldrich | L7647 | resuspend at 2 mg/mL in DiH2O. Store aliquots at -20 ºC |
Microscope slides | Fisher Scientific | 12-544-1 | |
Microscope Coverslips | Fisher Scientific | 12-541-B | |
Parafilm | Fisher Scientific | 13-374-12 | paraffin film |
VALAP (Equal parts of Vaseline, lanolin and paraffin) | melt at 75 ºC before use | ||
forceps | Fisher Scientific | 16-100-106 | |
Poyethylene glycol (PEG) 3350 | Sigma-Aldrich | 202444 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Microscope | |||
Ti E inverted Perfect Focus microscope | Nikon Instruments | MEA53100 | |
1.45 NA 100X CFI Plan Apo objective | Nikon Instruments | MRD01905 | |
Piezo electric stage | Physik Instrumente | P-736 | |
Spinning disk scanner | Yokogawa | CSU10 | |
Laser combiner module | Agilent Technologies | MCL400B | |
EMCCD camera | Andor Technology | iXon Ultra 897 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Software | |||
NIS Elements software | Nikon Instruments | MQS31100 | |
Microsoft Excel software | Microsoft | ||
MATLAB software | MathWorks, Inc | ||
ImageJ64 | NIH | Rasband, W.S., ImageJ, U. S. National Institutes of Health, Bethesda, Maryland, USA, http://imagej.nih.gov/ij/, 1997-2016. | |
Bio-Formats Importer plug-in | Open Microscopy Environment | ||
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Plasmids | |||
pUC19-LEU2::GFP-TUB1 | pSK1050 | reference: Song, S. and Lee, K. S. A novel function of Saccharomyces cerevisiae CDC5 in cytokinesis. J Cell Biol. 152 (3), 451-469 (2001) |
References
- Zanic, M., Widlund, P. O., Hyman, A. A., Howard, J. Synergy between XMAP215 and EB1 increases microtubule growth rates to physiological levels. Nat Cell Biol. 15 (6), 688-693 (2013).
- Mimori-Kiyosue, Y., Shiina, N., Tsukita, S. The dynamic behavior of the APC-binding protein EB1 on the distal ends of microtubules. Curr Biol. 10 (14), 865-868 (2000).
- Byers, B., Goetsch, L. Behavior of spindles and spindle plaques in the cell cycle and conjugation of Saccharomyces cerevisiae. J Bacteriol. 124 (1), 511-523 (1975).
- Marschall, L. G., Jeng, R. L., Mulholland, J., Stearns, T. Analysis of Tub4p, a yeast gamma-tubulin-like protein: implications for microtubule-organizing center function. J Cell Biol. 134 (2), 443-454 (1996).
- Spang, A., Geissler, S., Grein, K., Schiebel, E. gamma-Tubulin-like Tub4p of Saccharomyces cerevisiae is associated with the spindle pole body substructures that organize microtubules and is required for mitotic spindle formation. J Cell Biol. 134 (2), 429-441 (1996).
- Winey, M., Bloom, K. Mitotic spindle form and function. Genetics. 190 (4), 1197-1224 (2012).
- Gupta, M. L. J., et al. beta-Tubulin C354 mutations that severely decrease microtubule dynamics do not prevent nuclear migration in yeast. Mol Biol Cell. 13 (8), 2919-2932 (2002).
- Moore, J. K., Cooper, J. A. Coordinating mitosis with cell polarity: Molecular motors at the cell cortex. Semin Cell Dev Biol. 21 (3), 283-289 (2010).
- Gartz Hanson, M., et al. Novel alpha-tubulin mutation disrupts neural development and tubulin proteostasis. Dev Biol. 409 (2), 406-419 (2016).
- Fees, C. P., Aiken, J., O'Toole, E. T., Giddings, T. H. J., Moore, J. K. The negatively charged carboxy-terminal tail of beta-tubulin promotes proper chromosome segregation. Mol Biol Cell. 27 (11), 1786-1796 (2016).
- Song, S., Lee, K. S. A novel function of Saccharomyces cerevisiae CDC5 in cytokinesis. J Cell Biol. 152 (3), 451-469 (2001).
- Knop, M., et al. Epitope tagging of yeast genes using a PCR-based strategy: more tags and improved practical routines. Yeast. 15 (10B), 963-972 (1999).
- Kosco, K. A., et al. Control of microtubule dynamics by Stu2p is essential for spindle orientation and metaphase chromosome alignment in yeast. Mol Biol Cell. 12 (9), 2870-2880 (2001).
- Toso, R. J., Jordan, M. A., Farrell, K. W., Matsumoto, B., Wilson, L. Kinetic stabilization of microtubule dynamic instability in vitro by vinblastine. Biochemistry. 32 (5), 1285-1293 (1993).
- Aiken, J., Sept, D., Costanzo, M., Boone, C., Cooper, J. A., Moore, J. K. Genome-wide analysis reveals novel and discrete functions for tubulin carboxy-terminal tails. Curr Biol. 24 (12), 1295-1303 (2014).
- Straight, A. F., Marshall, W. F., Sedat, J. W., Murray, A. W. Mitosis in living budding yeast: anaphase A but no metaphase plate. Science. 277 (5325), 574-578 (1997).
- Khmelinskii, A., Lawrence, C., Roostalu, J., Schiebel, E. Cdc14-regulated midzone assembly controls anaphase B. J Cell Biol. 177 (6), 981-993 (2007).
- Markus, S. M., Omer, S., Baranowski, K., Lee, W. L. Improved Plasmids for Fluorescent Protein Tagging of Microtubules in Saccharomyces cerevisiae. Traffic. 16 (7), 773-786 (2015).