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Chemistry

Integração da Extração de Fase Sólida Miniaturizada e Detecção de LC-MS / MS de 3-Nitrotirosina em Urina Humana para Aplicações Clínicas

doi: 10.3791/55778 Published: July 14, 2017

Summary

Foi desenvolvido um método de espectrometria de massa em tandem de cromatografia líquida seletiva e sensível (LC-MS / MS) acoplado com uma extração de fase sólida eficiente em uma microplaca de 96 poços de troca de catiões (MCX) de modo misto para a medição de 3-nitrotirosina livre ( 3-NT) em urina humana com alto débito, que é adequado para aplicações clínicas.

Abstract

A 3-nitrotirosina livre (3-NT) foi amplamente utilizada como um possível biomarcador para o estresse oxidativo. Aumento dos níveis de 3-NT foram relatados em uma ampla variedade de condições patológicas. No entanto, os métodos existentes não possuem a sensibilidade e / ou a especificidade necessárias para medir o nível endógeno baixo de 3-NT de forma confiável e são demasiado pesados ​​para aplicações clínicas. Por isso, a melhoria analítica é urgentemente necessária para quantificar com precisão os níveis de 3-NT e verificar o papel do 3-NT em condições patológicas. Este protocolo apresenta o desenvolvimento de uma nova cromatografia líquida de espectrometria de massa em tandem (LC-MS / MS), combinada com uma extração em fase sólida miniaturizada (SPE) para a medição rápida e precisa de 3-NT na urina humana como biomarcador não-invasivo Para o estresse oxidativo. A SPE usando uma placa de 96 poços marcadamente simplificou o processo combinando a limpeza de amostras e o enriquecimento de analitos sem etapas de derivação e evaporação tediosas, Reduzindo o consumo de solventes, eliminação de resíduos, risco de contaminação e tempo total de processamento. O emprego de acetato de amónio 25 mM (NH 4 OAc) a pH 9 como a solução de eluição SPE aumentou substancialmente a selectividade. A resposta do sinal de espectrometria de massa foi melhorada através do ajuste das transições de monitoramento de reação múltipla (MRM). O uso de 0,02% de HCOOH como aditivo em uma coluna de pentafluorofenilo (PFP) (150 mm x 2,1 mm, 3 μm) melhorou a resposta do sinal outro 2,5 vezes e reduziu o tempo total de execução para 7 min. Foi alcançado um limite inferior de quantificação (LLOQ) de 10 pg / mL (0,044 nM), representando uma significativa melhora da sensibilidade em relação aos ensaios relatados. Este método simplificado, rápido, seletivo e sensível permite que duas placas de amostras de urina (n = 192) sejam processadas em um período de 24 h. Considerando o desempenho analítico marcadamente melhorado e a amostragem de urina não invasiva e econômica, o ensaio proposto é benéfico para clínicas pré-clínicas e clínicasEstudos.

Introduction

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Os efeitos do estresse oxidativo na apresentação clínica foram empurrados para a vanguarda nos últimos anos 1 . Um dos biomarcadores que estão sendo explorados é o 3-nitrotirosina (3-NT), um produto final estável formado quando as espécies reativas de nitrogênio (RNS) interagem com a tirosina, um precursor de neurotransmissor de catecolaminas. Enquanto 3-NT pode ter valor clínico como biomarcador para RNS in vivo, as mudanças substanciais das propriedades e funções da tirosina podem afetar negativamente as proteínas correspondentes e as funções celulares 1 , 2 . Pesquisas emergentes sugeriram que 3-NT pode desempenhar um papel importante em condições inflamatórias 3 , distúrbios neurodegenerativos 4 , 5 , doença cardiovascular 6 e diabetes 7 , bem como condições relacionadas ao estresse oxidativo. No entanto, estes obseAs explorações são baseadas em resultados de metodologias que não possuem sensibilidade e / ou seletividade 8 , 9 , 10 , 11 . Os enormes intervalos de concentração de 3-NT para as amostras biológicas previamente relatadas na literatura revelam que sérios problemas analíticos estão associados a esses ensaios e a melhoria técnica é necessária para quantificar com precisão os níveis de 3-NT e verificar seu papel na patologia dessas condições .

A quantificação de 3-NT livre em matrizes biológicas apresenta um desafio especial para o homem e instrumento 8 , 9 , 10 , 11 . Primeiro, o nível de traço do 3-NT endógeno exige uma detecção ultra-sensível; Em segundo lugar, a existência de numerosos análogos estruturalmente semelhantes, especialmente a tirosina, que está presente emGrande excesso, requer um alto grau de seletividade; Em terceiro lugar, a formação artefactual de 3-NT por nitratação de tirosina com nitrito e nitrito onipresente requer uma consideração especial durante a preparação da amostra para evitar a superestimação falsa de 3-NT.

Entre uma grande variedade de metodologias empregadas para medir 3-NT, MS / MS foi considerado o método padrão-ouro devido à sua sensibilidade e seletividade superiores 11 , 12 , 13 , 14 . O MS / MS acoplado com cromatografia gasosa (GC) oferece a melhor sensibilidade, no entanto, as etapas de derivação de amostra indispensáveis ​​são muito tediosas e demoradas para serem eficientes para a utilidade clínica 15 , 16 . O LC-MS / MS não requer uma derivação de amostra complexa, tornando-se a opção mais promissora. No entanto, há vários obstáculos a serem superados, como o seA nitidez dos métodos de LC-MS / MS relatados na literatura precisa melhorar para a medição de 3-NT 7 , 17 , 18 e o tempo de resposta relativamente longo deve ser encurtado para aplicações de alto débito 12 , 13 , 17 , 19 .

Além disso, ao considerar aplicações clínicas, a matriz biológica utilizada desempenha um papel significativo. Deve ser fácil e barato obter e não invasivo, se possível 20 , 21 , 22 . O plasma, a amostra tradicionalmente utilizada na literatura, não é uma matriz clinicamente desejável, pelo que foi buscada uma metodologia que utilize urina que não seja invasiva e custo-efetiva.

Várias tentativas de desenvolver relAs metodologias de LC-MS / MS específicas e específicas foram feitas usando a urina 9 , 10 , 11 . No entanto, eles ficaram completamente menos seletivos, confiáveis ​​ou eficientes para uso clínico. A eficácia da SPE predominante utilizando o cartucho de fase reversa tradicional (tipo C18) como limpeza de amostra para a análise de 3-NT foi questionada e uma SPE seqüencial de troca de catiões forte (SCX) e fase inversa C18-OH foi proposta 6 , 7 , 19 . Um método recentemente desenvolvido de LC-MS / MS utilizou um processo de purificação em múltiplos passos de C18 SPE manual, cromatografia líquida preparativa de alta pressão (HPLC) e SPE online para análise de 3-NT 23 . Embora este método tenha sido suficientemente sensível para fins clínicos, com um LLOQ de 0,041 nM, o processo de limpeza foi intensivo e tedioso e requiVermelho 3 mL de urina, limitando sua viabilidade para alto débito. Um polímero de impressão molecular foi empregado como soro de SPE para melhorar a eficiência do processo de limpeza 14 , mas o LLOQ resultante (0,7 μg / mL) não foi suficientemente baixo para espécimes clínicos. Outro método requeru LC-MS / MS bidimensional (2D) e cromatografia de imunoafinidade para limpeza de amostras para atingir um limite de detecção (LOD) de 0,022 nM 24 . Embora todos esses métodos tenham feito avanços na avaliação do 3-NT, nenhum deles alcançou a sensibilidade, confiabilidade e eficiência necessárias para aplicações clínicas.

Para investigar a patologia do 3-NT livre e seu papel como biomarcador do estresse oxidativo em contextos clínicos, desenvolvemos uma metodologia simples, eficiente, precisa e precisa, possibilitando aplicações clínicas de alto rendimento 25 . Um extrato de catião em modo misto miniaturizadoHange (MCX) foi implementada uma microplaca de extração de 96 poços para obter uma limpeza simples e eficaz da amostra e o enriquecimento de 3-NT em uma única extração, ignorando as desvantagens observadas nos métodos existentes que requerem derivação, evaporação e 2D-LC. A cromatografia líquida com 0,02% de HCOOH como aditivo em fase móvel ofereceu uma resposta de sinal melhorada com um tempo de ciclo rápido. A selectividade foi ainda melhorado através da aplicação de uma solução de eluição leve NH4OAc por eluição selectiva do 3-NT, e utilização de transição MRM para ambos um grupo 3-NT e do padrão interno (IS). O efeito de matriz foi compensada pela utilização de uma quantidade reduzida de um isotópica preferido 13 marcado com C é para quantificação. Com o advento desta metodologia, pesquisadores e clínicos poderão verificar o papel do 3-NT em condições clínicas e explorar ainda mais o impacto do estresse oxidativo.

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Protocol

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Todos os estudos envolvendo amostras de urina humana foram realizados aderência ao procedimento aprovado pelo Pharmasan / Neuroscience Institutional Review Board (IRB).

1. Coleta de amostras de urina e determinação de creatinina (Cr)

  1. Coletar 5 mL das amostras de urina da manhã seguinte após ca. 10 h durante o jejum durante a noite em um tubo de transporte de 5 mL A contendo 250 μL de HCl 3 N como conservante e armazene a -20 ° C até o uso.
  2. Descongelamento e vórtice 5 mL de urina de transporte Um tubo e centrífuga em uma centrífuga ( eg Sorvall) (2297 xg, 10 min).
  3. Alíquota 1 mL de urina duas vezes a partir do tubo de transporte de 5 mL A.
  4. Determine Cr por um método de creatinina urinária 26 .

2. Preparação de Amostras de Padrão, IS e Controle de Qualidade (QC)

  1. Preparar uma solução de reserva de 3-NT a 100 μg / mL em água com 0,01% de fase móvel de HCOOH A (MA) e armazenar a -20 ° C.
  2. FaçoUma solução padrão de trabalho 3-NT a uma concentração de 100 ng / mL, diluindo a solução de reserva de 3 μg de 100 μg / mL com MA.
  3. Gerar padrões que variam de 5 a 2500 pg / mL por diluição do padrão de trabalho de 100 ng / mL com urina em branco acidificada 0,15 M HCl livre de 3-NT, juntamente com amostras vazias em branco e em branco duplo.
  4. Prepare uma solução-mãe de IS 13 C 9 -3-NT a 100 μg / mL em água com MA e guarde a -20 ° C.
  5. Faça uma solução de trabalho de IS a 500 pg / mL por diluição da solução de reserva de 100 μg / mL de 13 C 9 -3-NT IS com MA.
  6. Estabelecer cinco níveis de amostras de QC que cobrem os níveis LLOQ, baixo, médio e alto ( isto é , 10, 25, 100, 500 e 1.250 pg / mL), por diluição do padrão de trabalho 3-NT na urina vazada acidificada.

3. Procedimento de extração de fase sólida

  1. Amostras de amostras de amostras de amostras de amostras de amostras de amostras de amostras de amostras de amostras de amostras de amostras de amostras
  2. Adicione amostras de urina, padrões e QC sampLes (250 μL cada) para 32 poços de uma placa de coleta de 96 mL de 2 ml.
  3. Introduza a solução de trabalho de 500 pg / mL IS (50 μL) em cada poço, exceto o exemplo de amostra dupla em branco. Adicione 0,01% de HCOOH (50 μL) ao poço de amostra em branco dupla.
  4. Adicionar água LC-MS / MS com 0,1% de HCOOH (250 μL).
  5. Misture a mistura acima com uma pipeta de 8 canais três vezes.
  6. Cubra a placa até carregar SPE.
  7. Coloque uma placa de extração de MCX de 96 poços e um reservatório de coleta em um processador de pressão positiva.
  8. Condicione a placa de extração com MeOH (200 μL) fluindo através do sorvente.
  9. Equilibre-se fluindo água com 2% de HCOOH (200 μL) através do sorvente.
  10. Carregue cuidadosamente o volume de cada uma das amostras pré-misturadas na placa de extração pré-condicionada com uma pipeta de 8 canais.
  11. Ajuste a pressão positiva baixa ( por exemplo , 3 psi) no processador de pressão positiva para permitir que a mistura flua.Abra o sorvente lentamente, ajuste a pressão, se necessário.
  12. Lave os poços fluindo água com 2% de HCOOH (200 μL) através do sorvente.
  13. Lave os poços através do fluxo de metanol (200 μL) através do sorvente.
  14. Lave os poços através da água corrente (200 μL) através do sorvente.
  15. Secar os poços completamente com ajuste de pressão positiva alta ( por exemplo , 40 psi) no processador de pressão positiva.
  16. Substitua o reservatório por uma placa de coleta limpa de 2 ml de 96 poços.
  17. Aplique 25 mM de NH4OAc a pH 9 (50 μL) para eluir o analito retido e IS da placa de extração.
  18. Pipetar água LC-MS com 5% de HCOOH (50 μL) para neutralizar o eluído.
  19. Misture com a pipeta de 8 canais três vezes e envie para a estação LC-MS / MS para análise.

4. Análise LC-MS / MS

  1. Medir com precisão 2.000 mL de água LC-MS com um cilindro graduado e transferi-lo para uma garrafa de 2 L.
  2. PIpette 200 μL de HCOOH puro no frasco acima contendo água LC-MS.
  3. Misture bem e rotule como fase móvel A (MA). Incluir iniciais, data de preparação e data de validade.
  4. Pegue uma garrafa de 2 litros de metanol LC-MS e rotular como fase móvel B (MB) com data de início e data de validade.
  5. Ajuste a temperatura do auto-amostragem para 4 ° C.
  6. Coloque a placa de recolha com amostras preparadas no auto-amostrador.
  7. Coloque uma coluna PFP (150 mm x 2.1 mm id, 3 μm) e coluna de guarda no forno.
  8. Ajuste a temperatura do forno para 30 ° C.
  9. Equilibre 10 min usando o método de aquisição com a eluição com gradiente LC como mostrado na Tabela 1 .
Tempo (min) Módulo Eventos Parâmetro
0 Bombas Pump B Conc. 5
0,5 Bombas Pump B Conc. 20
1 Bombas Pump B Conc. 50
3 Bombas Pump B Conc. 80
4 Bombas Pump B Conc. 90
4.01 Bombas Pump B Conc. 95
5.5 Bombas Pump B Conc. 95
5.6 Bombas Pump B Conc. 5
7 Controlador Pare

Tabela 1: condições de eluição do gradiente de cromatografia líquida

  1. Crie uma lista de lote incluindoPadrões, QC e amostras de urina.
  2. Comece o lote por injeção das amostras preparadas (12 μL).

5. Processo de identificação, integração e dados de picos

  1. Controle a aquisição e processamento de dados usando o software.
  2. Identifique e integre os picos de 3-NT e IS para todas as amostras.
  3. Estabeleça uma curva padrão com a faixa de 10-2,500 pg / mL para a quantificação 3-NT por regressão linear da relação da área de pico de 3-NT e IS versus a concentração nominal de 3-NT com um fator de ponderação de 1 / x.
  4. Quantifique todas as amostras usando a curva padrão.
  5. Determine se as amostras de QC caem no intervalo estabelecido.
  6. Converta as concentrações detectadas de amostras de urina em resultados finais na unidade de nM ou nmol / mmol Cr.

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Representative Results

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A Figura 1 ilustra que o 3-NT está completamente separado por cromatografia de outros análogos de tirosina estruturalmente semelhantes sob a condição de LC otimizada, o que elimina as interferências de co-eluição devido a estes compostos vastamente excessivos e conseqüentemente aumenta o grau de seletividade do ensaio. Além disso, a eluição com gradiente com 0,02% de HCOOH como aditivo em MA e metanol a um caudal de 0,45 mL / min permite a eluição rápida de 3-NT ( isto é , 3 minutos com um tempo de resposta de 7 minutos).

figura 1
Figura 1: Separação cromatográfica de LC de linha base de 3-NT de outros análogos de tirosina em uma solução padrão. ( A ) p- Tirosina; ( B ) m- Tirosina; ( C ) o -Tirosina; ( D ) Cl-Tirosina; ( E ) 3-NT. Clique aqui para ver uma versão maior dessa figura.

A Figura 2 mostra que nenhum sinal 3-NT é observado na amostra em branco dupla, indicando nenhuma formação de 3-NT artefactual durante todo o processo. A Figura 3 ilustra cromatogramas de MRM representativos de 3-NT e IS para um indivíduo saudável. Como pode ser visto, nenhum sinal de interferência é observado nos tempos de retenção de 3-NT e IS. Além disso, observou-se menos de ± 6% de diferença em 3-NT entre as amostras de urina acumulada sem pico e com ponta com nitrito (50 μM), nitrato (50 μM) e tirosina (50 mg / L) 25 , o que ainda oferece suporte Para a especificidade do ensaio.


Figura 2: cromatogramas MRM de 3-NT e IS em uma amostra dupla duplicada representativa. ( A ) quantificador MRM 3-NT 227,0> 90,0; ( B ) IS MRM quantificador 236.0> 189.0. Clique aqui para ver uma versão maior dessa figura.

Figura 3
Figura 3: Cromatogramas MRM de 3-NT e IS em uma amostra de urina representativa de pessoas saudáveis. ( A ) quantificador MRM 3-NT 227,0> 90,0; ( B ) IS MRM quantificador 236.0> 189.0. Por favor, clique em elePara ver uma versão maior dessa figura.

A curva padrão foi estabelecida pela extração de urina vazada acidificada com 3-NT na faixa de 10-2,500 pg / mL, traçando a relação de área de pico de 3-NT e IS versus a concentração nominal de 3-NT com um encaixe linear De 1 / x ponderação. Uma curva padrão representativa é demonstrada na Figura 4 . O LOD, definido como a concentração mais baixa com uma relação sinal-ruído maior que três, foi determinado como sendo de 2 pg / mL (0,0088 nM). O LLOQ estava determinado a ser 10 pg / mL (0,044 nM) por definição como a menor concentração a ser medida dentro de ± 20% de imprecisão e precisão com a relação sinal-ruído maior que dez.

Figura 4
Figura 4: Uma Curva Padrão Representativa 3-NT noFaixa de 10-2,500 pg / mL. Clique aqui para ver uma versão maior dessa figura.

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Discussion

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As variações substanciais nas concentrações previamente relatadas na literatura para o 3-NT isento endógeno em amostras de urina humana revelam problemas metodológicos associados aos ensaios disponíveis 8 , 9 , 10 , 11 . A determinação precisa do baixo nível basal de 3-NT na urina humana continua a ser uma tarefa desafiadora que requer precauções especiais para a preparação da amostra e a análise LC-MS / MS. Este protocolo descreve um novo procedimento SPE combinado com uma detecção seletiva de LC-MS / MS que permite a determinação específica e sensível do urinário 3-NT com alto débito.

A seleção cuidadosa dos parâmetros MRM melhorou a seletividade para a detecção de 3-NT. A transição MRM m / z 236,0> 96,0 de IS para 3-NT no plasma 27 causou contaminação severa para amostras de urina. Um sinal mais limpo, 9 vezes maiorA resposta foi alcançada com a transição MRM m / z 236.0> 189.0. Transição MRM m / z 227.0> 90,0 foi selecionada para quantificação 3-NT devido a interferência severa usando a transição mais intensiva m / z 227,0> 181,0. As transições MRM detalhadas e os parâmetros compostos estão resumidos na Tabela 2 .

Analito Transição MRM (m / z) DP (V) EP (V) CE (eV) CXP (V)
3-NT (quantificador) 227,0> 90,0 50 10 38 13
3-NT (qualificador) 227,0> 103,9 50 10 45 16
13 C 9 -NT (IS) 236,0> 189,0 50 10 21 14
Uma tensão de pulverização Ion: 2200 V; Temperatura: 600 ° C; Gás de cortina: 35; Gás CAD: 9; Gás nebulizador (GS1): 50; Gás aquecedor (GS2): 55.

Tabela 2: Condições de MRM otimizadas.

A coluna tradicional do tipo C18 comumente usada para a separação cromatográfica LC de 3-NT na literatura 12 , 13 , 17 , 19 normalmente requeria um longo tempo de resposta para reduzir a interferência, tornando-a não favorável ao alto rendimento. Neste protocolo, foi utilizada uma coluna PFP para otimização da separação cromatográfica LC de 3-NT com base em sua retenção aprimorada de compostos polares 22 ,> 27 , 28 . A concentração de aditivos de fase móvel tem uma influência importante na intensidade do sinal 25 , 28 . HCOOH a 0,01% foi o aditivo ideal em MA, resultando em um ganho de sinal de 2,5 vezes superior a 0,1% de concentração e diminui ainda mais a resposta de sinal de redução de concentração. Um perfil de eluição em gradiente usando 0,02% de HCOOH em água (MA) e metanol (MB) foi estabelecido com um caudal de 0,45 mL / min, conseguindo uma separação ótima e eluição rápida de 3-NT em 3 min com um tempo de execução total de Apenas 7 minutos, permitindo uma análise significativamente mais rápida de 3-NT em matrizes biológicas complicadas do que as descritas na literatura 12 , 13 , 17 , 19 .

Para resolver a ineficácia do cartucho tradicional de fase reversa (tipo C18) predominantly utilizado para SPE de amostras biológicas 6, 7, que recentemente desenvolveu um método de LC-MS / MS para determinar 3-NT em plasma humano por SPE em uma única dupla-funcional placa de 96 poços MCX 27, o que resultou em melhorias na SPE Eficiência e seletividade. No entanto, uma desvantagem distinta de todas as abordagens de SPE na literatura são trabalhosos e as etapas de evaporação e reconstituição associadas ao risco. Além disso, o método do plasma exigiu uma pré-lavagem extra da placa de extração para eliminar a contaminação do sorvente. Neste protocolo, essas desvantagens foram eliminadas por uma SPE adaptada com o uso de uma microplaca miniaturizada de 96 poços. A seleção da solução de eluição foi considerada crucial para a eficiência de extração. Interferências substanciais foram observadas em amostras de urina por aplicação da solução de eluição NH4OH comum com composição variada de MeOH. Foi formulado a hipótese de que o interferAs substâncias ing foram co-eluídas com o analito devido ao forte poder de eluição da solução metanólica de eluição de NH 4 OH, resultando consequentemente na baixa seletividade. Para melhorar a seletividade, foi necessário identificar uma solução que seria forte o suficiente para eluir 3-NT e fraca o suficiente para não causar a eluição de compostos interferentes. Após investigação detalhada de menos de base NH4OAc a um pH e concentrações diferentes, uma solução 25 mM de NH4OAc com pH 9, verificou-se ser óptima como solução de eluição. Com a solução de eluição optimizado, a emissão de compostos interferentes foi resolvido e um ganho de 40% na sensibilidade foi obtida em comparação com a solução de eluição normal metanólica de NH 4 OH.

A Tabela 3 fornece um resumo detalhado do desempenho analítico deste protocolo 25 em comparação com outros métodos disponíveis para a determinação do 3-NT livre em matrizes biológicas. Este protocolo de Possui várias vantagens distintas em relação aos ensaios relatados anteriormente. Primeiro, ao empregar a microplaca de extração de 96 poços, um único passo para a limpeza da amostra e o enriquecimento de analitos foi alcançado, evitando os 1 a 5 ciclos de evaporação e reconstituição normalmente exigidos nos métodos 3-NT envolvendo SPE. Em segundo lugar, o uso de solventes por amostra para SPE foi drasticamente reduzido, de 5,5 a 118 mL para apenas 1,1 mL, representando uma redução de 5-107 vezes no descarte de solventes e resíduos. Em terceiro lugar, o tempo de resposta LC por amostra diminuiu 2-7 vezes em comparação com outros ensaios e foi 30% mais rápido que o nosso método de plasma anterior. Em quarto lugar, foi necessária uma quantidade de 10-3,000 vezes menor do IS isotérmico preferencial de 13 C para compensar o efeito da matriz. Por fim, este ensaio representa uma melhoria de sensibilidade significativa em relação a outros métodos convencionais de LC-MS / MS com base em SPE para a quantificação de 3-NT urinário.

Maneiras "> Preparação de amostra Analítico
método
Matriz LOD (nM) LOQ (nM) LC run (min) Evap c Sol D (mL) IS (ng) Ref. SPE (C18)
+ Filtração LC-MS / MS Plasma 0,034 0.112 20 1 13 Analógico f 2 [6] SPE
(Placa MCX) LC-MS / MS Plasma 0,0088 0,022 10 1 5.6 13 C 9 -NT 0,25 [27] PPT + SPE (MCX) + der a HPLC-UV Sérum NA b 100 40 1 7.3 NA b NA b [12] HPLC + der a GC-MS / MS Urina 0,004 0,125 NA b 5 NA b D 3 -NT 4.6 [16] PPT + SPE (amino) + der a LC-MS / MS Urina de gato NA b 14,5 40 3 23 D 3 -NT 75 [17] PPT + hidrólise + SPE (SCX-C18) LC-MS / MS Urina (proteína) 400 N / D 50 2 118 D 3 -NT 2 [19] IA-2D LC e LC-MS / MS Urina 0,022 N / D 14 NA b NA b 13 C 9 -NT 0,85 [24] SPE (C18) + hidrólise HPLC-ECD Urina (total) NA b 4 40 2 5.5 NA b NA b [13] SPE (C18) + Preparação LC g
+ SPE online LC-MS / MS Urina 0,0088 0,041 30 2 38 D 3 -NT 5 [23] SPE (MIP) HPLC-UV Urina Spiked 700 N / D 20 18 NA b NA b [14] SPE (MCX μElution) LC-MS / MS Urina 0,0088 0,044 7 NÃO 1.1 13 C 9 -NT 0,03 Este trabalho A der: derivatization; B NA: não disponível; C Evap: Evaporação; D Sol: solvente por amostra; E IA-2D LC: cromatografia de imunoafinidade e LC bidimensional; F Analógico: o-metil-tirosina; G Preparação LC: purificação preparatória de HPLC.

Tabela 3: CompariFilho do Desempenho Analítico deste Protocolo com Ensaios Existentes para a Detecção de 3-NT em Matrizes Biológicas

A validade analítica e clínica do ensaio proposto foi ainda avaliada através da determinação do intervalo de referência para o 3-NT urinário estabelecido a partir de amostras de urina autênticas de 82 pessoas saudáveis 25 . O método de simplicidade e throughput melhorado permite que duas placas de amostras de urina (n = 192) sejam processadas e analisadas em um período de tempo de 24 horas. O método desenvolvido que utiliza a amostragem de urina não invasiva, sendo simples, rápido, sensível e seletivo, deve ser uma ferramenta poderosa para verificar o papel do 3-NT em condições clínicas e explorar ainda mais o impacto do estresse oxidativo. As etapas críticas do protocolo incluem SPE em uma microplaca MCX usando um NH4OAc suave como tampão de eluição, separação de LC em uma coluna PFP com 0,02% de HCOOH como aditivo e seleção de MRM para quantifica 3-NTÇão. A aplicação futura do método é para quantificar as concentrações de 3-NT em pacientes com condições patológicas tais como distúrbios inflamatórios e neurodegenerativos, etc. As dificuldades potenciais do protocolo proposto para aplicações clínicas ainda não são abordadas.

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Disclosures

Os autores declaram que não têm conflito de interesses.

Acknowledgments

Os autores reconheceriam Scott Howard e Abigail Marinack para apoio geral e coordenação deste trabalho.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
3-Nitro-L-tyrosine Sigma N7389-5g
3-Nitro-L-tyrosine-13C9 Sigma 652296-5.0mg
Mass Spec Gold Urine Golden West Biologicals MSG 5000-1L
Oasis MCX 96-well µElution plate Waters 186001830BA
2 mL 96 well collection plate Phenomenex   AH0-7194
96 positive processor Waters  186005521
LC-MS Ultra CHROMASOLV methanol   Sigma 14262-2L
LC-MS Ultra CHROMASOLV water Sigma 14263-2L
Formic acid for mass spectrometry Sigma 94318-50ML-F
Ammonium hydroxide solution Sigma 338818-1L
Ultra PFP propyl columns Restek 9179362
5500 Triple quad AB Sciex  / Contact manufacture for more detail
UFLC-XR Shimadzu  / Contact manufacture for more detail
Integra 400 Plus  Roche / Urinary Creatinine Jaffé Gen 2 method
LCMS certified 12 x 32 mm screw neck vial Waters 600000751CV
LCGC certified 12 x 32 mm screw neck total recovery vial Waters 186000384C
5 mL transport tube Phenix TT-3205
50 mL Centrifuge tube Crystalgen  23-2263
15 mL Centrifuge tube Crystalgen  23-2266
eLine electronic pipette Sartorius 730391
Microfuge centrifuge  Beckman Coulter A46474
OHAUS balance   Kennedy Scales, inc. 735
Vortex mixer  Bernstead Thermolyne M16715

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References

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Integração da Extração de Fase Sólida Miniaturizada e Detecção de LC-MS / MS de 3-Nitrotirosina em Urina Humana para Aplicações Clínicas
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Li, X. S., Li, S., Ahrens, M., Kellermann, G. Integration of Miniaturized Solid Phase Extraction and LC-MS/MS Detection of 3-Nitrotyrosine in Human Urine for Clinical Applications. J. Vis. Exp. (125), e55778, doi:10.3791/55778 (2017).More

Li, X. S., Li, S., Ahrens, M., Kellermann, G. Integration of Miniaturized Solid Phase Extraction and LC-MS/MS Detection of 3-Nitrotyrosine in Human Urine for Clinical Applications. J. Vis. Exp. (125), e55778, doi:10.3791/55778 (2017).

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