Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Подход к выборке с четырьмя сосудами для интегративных исследований физиологии плаценты человека Published: August 2, 2017 doi: 10.3791/55847

Summary

Мы представляем подробный метод изучения физиологии плаценты человека in vivo в терминах. Метод объединяет отбор проб крови с входящих и исходящих сосудов на материнской и плодовой сторонах плаценты с помощью ультразвуковых измерений объемного кровотока и отбора проб плацентарной ткани.

Abstract

Плацента человека крайне недоступна для исследований, но все еще в матке . В настоящее время понимание физиологии плаценты человека in vivo в значительной степени основано на исследованиях на животных, несмотря на большое разнообразие среди видов в плацентарной анатомии, гемодинамике и продолжительности беременности. Подавляющее большинство исследований плаценты человека - это исследования перфузии ex vivo или исследования трофобластов in vitro . Хотя исследования in vitro и модели животных являются существенными, экстраполяция результатов таких исследований на плаценту человека in vivo является неопределенной. Мы стремились изучать физиологию плаценты человека in vivo в терминах и представить подробный протокол метода. Эксплуатация внутрибрюшного доступа к маточной вене непосредственно перед разрезом матки во время запланированного кесарева сечения, мы собираем образцы крови из входящих и исходящих сосудов на материнской и эмбриональной сторонах плаценты. При объединении conЦентровые измерения из образцов крови с объемными измерениями кровотока, мы можем количественно оценить потребление плаценты и эмбриона и высвобождение любого соединения. Кроме того, образцы плацентарной ткани из тех же пар матерей-плод могут обеспечивать измерения плотности и активности транспортера и других аспектов функций плаценты in vivo . Благодаря этому интегральному использованию метода выборки с четырьмя сосудами мы можем протестировать некоторые из современных концепций переноса и метаболизма плацентарного питательного вещества in vivo как при нормальной, так и при патологической беременности. Кроме того, этот метод позволяет идентифицировать вещества, секретируемые плацентой, к материнскому кровообращению, что может быть важным вкладом в поиск биомаркеров дисфункции плаценты.

Introduction

По данным Национального института здоровья США, плацента является наименее понятным органом в организме человека 1 , 2 , 3 . Трудно получить доступ и изучить плаценту человека in vivo без наложения неэтичных рисков на текущую беременность. Поэтому исследования плацентарной функции у человека в значительной степени основаны на моделях in vitro и ex vivo . Большинство предыдущих исследований in vivo плацентарного транспорта и метаболизма были выполнены у животных 4 , 5 , 6 . Однако, поскольку структура и функции плаценты значительно различаются между видами, экстраполяция результатов от животных к людям должна осуществляться с осторожностью. Только несколько небольших человеческих исследований in vivo исследовали поглощение плаценты и эмбриона и перенос при нормальных физиологическихА ни один из них не исследовал интегральную передачу нескольких соединений 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 . Эти фундаментальные исследования показывают, что in vivo исследования плаценты человека являются выполнимыми и что они могут служить нескольким целям. Во-первых, современные концепции плацентарных функций, в основном полученные из исследований in vitro , ex vivo и животных, могут быть протестированы в условиях человека и, таким образом, обеспечить новое и более конкретное понимание плаценты человека. Во-вторых, свойства дисфункциональной плаценты, связанные с аберрантным ростом плода, преэклампсией, диабетом матери, метаболическим синдромом и другими нарушениями метаболизма у матери, могут быть лучше охарактеризованы. В-третьих, исследования человека in vivo дают возможность разрабатывать диагнозыТические и прогностические инструменты плацентарной функции.

На этом фоне мы стремились создать всеобъемлющий сбор физиологических данных для исследования плацентарной функции человека in vivo. Во время запланированного кесарева сечения мы используем внутриабдоминальный доступ к маточной вене, чтобы собирать образцы крови из входящих и исходящих сосудов на материнской и эмбриональной сторонах плаценты (метод отбора проб на 4 сосуда). Эти образцы используются для расчета парных артериовенозных различий концентрации питательных веществ и других веществ 14 . Кроме того, мы измеряем объемный кровоток по обе стороны плаценты ультразвуком. Следовательно, плацентарное и эмбриональное поглощение любого соединения может быть количественно определено. Кроме того, можно определить вещества, высвобождаемые плацентой, в циркуляции матери и эмбриона 15 , 16 , 17 . При объединенииD с клиническими параметрами матери и ребенка и анализом плацентарных и других соответствующих тканей, этот метод обладает захватывающим потенциалом для интеграции многих аспектов плацентарных функций in vivo в те же пары матерей-плод.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Исследование было одобрено должностными лицами по защите данных в университетской больнице Осло и Региональным комитетом по этике исследований в области медицины и здравоохранения, Южная Норвегия, 2419/2011. Все участники подписали письменное информированное согласие при включении.

1. Препараты

ПРИМЕЧАНИЕ. Временная шкала процедур описана на рисунке 1 .

Рисунок 1
Рисунок 1 : Блок-схема, описывающая синхронизацию и персонал, задействованный в процедуре отбора проб на 4 сосуда.
Один цвет - один человек. Подробное описание метода приведено в протоколе. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

  1. Сотрудники
      ПРИМЕЧАНИЕ. В случае более продвинутого сбора плацентарной ткани требуется дополнительный человек.
  2. Оборудование
    1. Подготовьте оборудование, 50 мл ледяного 1 М фосфатно-буферного солевого раствора (PBS), 25 мл раствора для стабилизации холодной РНК и 5 х 0,5 мл оптимального состава для резки (OCT). Обозначьте вакуутеры и трубки. См. Предварительный список оборудования.

2. Материнские характеристики

  1. Запишите материнские клинические и неклинические характеристики при включении и повторите соответствующие вопросы и меняАксессуаров, включая вес, на момент доставки. Запишите продолжительность периода поста до кесарева сечения и любые гипотензивные эпизоды, возникающие во время операции.
    Примечание. Включите минимальный набор данных о материнской клинической практике, о котором сообщалось в недавней публикации от Global Patricancy CoLaboratory (COLAB). Эта статья также включает некоторые очень важные аспекты в выборе исследуемых групп населения и должна решаться при планировании исследования 18 .
  2. Рассмотрите возможность учета характеристик отцовства, включая этническую принадлежность, возраст и индекс массы тела (ИМТ).

3. Ультразвуковое исследование

  1. Выполните допплеровское ультразвуковое исследование в день доставки, с женщинами в состоянии голодания. Выполните обследование в течение периода покоя плода, с женщиной в положении полу лежа, слегка наклоненной в поперечном направлении напротив интересующей области, чтобы избежать сжатия аорты и полой вены. Контролируйте выход вПо механическим и тепловым показателям на дисплее.
  2. Пупочная вена
    1. Визуализируйте пупочную вену в сагиттальной или косой перегородке брюшной полости плода. Измерьте внутренний диаметр сосуда в прямой части внутрибрюшной пупочной вены перед любыми видимыми ветвями. Используйте обычный B-режим и визуализируйте сосуд в перпендикулярном углу инсоляции для измерения диаметра и сохраните несколько оптимальных кадров для последующих измерений, чтобы минимизировать влияние изменения пульсирующего диаметра.
      1. Повторите измерения пять-десять раз 19 .
    2. На том же участке используйте допплеровское ультразвуковое исследование и отрегулируйте зонд, чтобы получить как можно меньший угол инсонизации (всегда <30 °), чтобы измерить среднюю максимальную скорость (TAMX). Получите скорость в течение 3 - 5 с (непульсирующий поток).
  3. Маточная артерия
    1. Использовать допплерУльтразвук для визуализации маточной артерии, когда он пересекает внешнюю подвздошную артерию, сразу после того, как он отходит от внутренней подвздошной артерии. Отрегулируйте зонд на этом сайте, чтобы получить низкий угол инсоляции (всегда <30 °) и измерить TAMX. Получите скорость как среднюю скорость трех сердечных циклов.
    2. Поскольку маловероятно получить перпендикулярный угол в том же месте, где измеряется TAMX, следуйте за судном дистально, чтобы получить правильный угол для измерения диаметра, как можно ближе к местам измерений диаметра. Исключить измерения диаметра, если какие-либо видимые сосуды отходят перед этим участком, как оценивается с помощью цветного допплеровского ультразвука.
      1. Используйте обычный B-режим и визуализируйте сосуд в перпендикулярном углу инсоляции для измерения диаметра и сохраните несколько оптимальных кадров для последующих измерений, чтобы минимизировать влияние изменения пульсирующего диаметра.
      2. Повторите измерения пять-десять раз 19 .
      li>
  4. Обратите внимание на положение плаценты.

4. Отбор крови на 4 сосуда

ПРИМЕЧАНИЕ. Временная шкала процедур описана на рисунке 1, а обзор образцов показан на рисунке 2 .

фигура 2
Рисунок 2 : Схематическая иллюстрация сосудистой сети плаценты и мест отбора проб.
В методе отбора проб из четырех сосудов образцы крови выводятся из маточной вены, радиальной артерии (как прокси для маточной артерии) и пупочных артерий и вены. Поток крови в маточной артерии и пупочной вены измеряется ультразвуком. Собирают образцы тканей из плаценты. Иллюстрация: Øystein H. Horgmo, Университет Осло.5847fig2large.jpg "target =" _ blank "> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

  1. Безопасные процедуры
    1. Обеспечьте весь персонал в операционном зале перчатками, хирургическими скрабами, масками и головными уборами.
    2. Обеспечьте, чтобы хирурги и исследовательский персонал контактировали с операционным полем с костюмами для хирургического скраба, масками, головными уборами, халатами и двойными перчатками. Очки необязательны.
    3. Обеспечить персонал, перевозящий образцы крови перчатками.
    4. Обеспечить персонал, обрабатывающий образцы плаценты перчатками и хирургической маской. Гомогенизация требует использования вытяжек.
  2. Подготовка в операционном зале
    1. Дайте брифинг и передайте оборудование всему персоналу, который поможет отбор проб до начала операции.
    2. Обратитесь к анестезиологу и анестезиологической медсестре, которая поможет с необходимым периферическим артериальным и венозным доступом и обеспечит, чтобыБез отбора проб жидкости не вводят внутривенно.
    3. Дайте три шприца (10 мл) без игл человеку, помогающему с образцом антекубитальной вены и двумя шприцами (один 20 мл и один 10 мл) и одним шприцем для крови (с гепарином) человеку, который помогает в радиальной артерии.
    4. Подготовьте два стерильных шприца (20 мл), пять стерильных шприцев (10 мл), три «иголки бабочки» и два шприца для крови для операционного поля.
  3. Доступ к кровеносным сосудам.
    1. Следуйте стандартной процедуре перед кесаревым сечением, чтобы обеспечить периферийный внутривенный (iv) доступ.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Анцебабиальная вена предпочтительнее, потому что легче извлечь образцы с этого сайта.
    2. Локализовать радиальную артерию на запястье ультразвуком или пальпацией. После 0,5 мл подкожной лидокаиновой аналгезии поместите артериальную линию в лучевую артерию. Отменить выборку с этого сайта в случае трех неудачных вставок илиЕсли женщина испытывает боль во время вставки.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Выполните хирургическую процедуру кесарева сечения в соответствии со стандартной процедурой. Ниже приводятся только корректировки, необходимые для процедуры отбора проб.
  4. Образцы материнской крови
    ПРИМЕЧАНИЕ. Получите все три образца материнской крови (маточная вена, лучевая артерия и антикубитальная вена) одновременно до разреза матки.
    1. Для маточной вены после открытия брюшной полости используйте втягивающее устройство для подъема брюшной стенки и выставляйте основные ветви маточных вен на передне-боковых сторонах матки. Получите кровь из ветвей маточной вены на той же стороне, что и плацента, по возможности, или используйте наиболее заметное венозное сплетение, если плацента расположена в средней линии матки.
      1. Вставьте иглу бабочки на шприц для крови в маточной вене под углом около 30 градусов и собирайте кровь через нежную аспирацию, чтобы избежатьгемолиз. При тщательном закреплении iv положения иглы бабочки замените заполненный шприц для крови газом через 20 мл и 10 мл шприца последовательно.
        ПРИМЕЧАНИЕ. Оптимальный доступ лучше всего обеспечивается при стоянии на контралатеральной стороне выбранной маточной вены.
    2. Для лучевой артерии аспирируют из внутриартериальной линии. Отбросьте первые 5 мл и затем аспирируйте 3 мл в гепариновый шприц для анализа крови, затем 3 мл в два шприца (20 + 10 мл).
    3. Для антекубитальной вены осторожно аспирируйте из внутривенного катетера. Отбросьте первые 5 мл, а затем аспирируйте 30 мл тремя шприцами (10 мл).
    4. Проведите окончательную проверку места отбора проб на маточной вене перед тем, как начать закрывать живот.
  5. Фетальные образцы крови
    1. Когда ребенок рождается, немедленно аспирируйте кровь из пупочной артерии, не зажимая пуповину или не доставляя плаценту. НачалоH шприц для анализа газов крови, и, если возможно, следуйте с тремя 10 мл шприцами.
    2. Когда артериальные пробы закреплены, закрепите шнур и передайте ребенка акушерке перед взятием проб из пупочной вены (кровь и 20 + 10 мл шприцев).
      ПРИМЕЧАНИЕ. Получите все пупочные образцы в течение нескольких секунд после доставки и с плацентой на месте, если она не отсоединилась спонтанно.
    3. Следуйте норвежским рекомендациям по затягиванию шнура. В случае несчастного ребенка зажмите и вырежьте шнур немедленно, а руку - ребенку акушерке и неонатологу.
  6. Обращение с образцами крови
    1. Поместите газовые шприцы крови на лед при подготовке остальной части образцов крови и проанализируйте их в анализе газового газа в течение 5 мин.
    2. Немедленно перенесите образцы крови в вакуумеры и поместите плазменные трубки на качалку в течение 1 - 2 мин, прежде чем положить их на лед. Оставьте сывороточные трубки на рабочем местеЧтобы выдерживать 30 минут.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Это важный шаг в процедуре, требующей дополнительного внимания, поскольку образцы из всех пяти сайтов должны быть подготовлены одновременно для обеспечения хорошего качества.
    3. Центрифугируйте образцы плазмы как можно скорее и в течение 30 минут при 6 ° C, 2500 xg в течение 20 минут.
    4. Через 30 мин центрифугируют образцы сыворотки при комнатной температуре в течение 10 мин при 2500 x g.
    5. Аликвоту супернатантов тщательно до 2 мл крио-пробирки, оставляя 0,5 мл супернатанта над гранулой, чтобы обеспечить отсутствие тромбоцитов плазмы.
    6. Храните образцы при -80 ° C.

5. Сбор плацентарной ткани

  1. Поместите плаценту на ледяной поддон для резки как можно скорее после того, как она была доставлена. Фотографируйте и измерьте самый длинный диаметр и диаметр на 90 градусов.
  2. Взвесьте плаценту.
  3. Запишите вес, два диаметра, любой gРодовая патология, количество сосудов в корме и временной интервал от доставки до того момента, когда плацента была помещена на лед.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Отправляйте плаценту к патологическому осмотру, если клинически указано.
  4. Поместите плаценту с материнской поверхностью вверх и определите 4 - 5 мест отбора проб, случайно расположенных в каждом квадранте плаценты, избегая областей откровенной патологии. Удалите децидую, используя ножницы, чтобы отрезать 3 - 5 мм от материнской поверхности. Соберите 1 - 2 см 3 ворсистой ткани с каждого участка.
  5. Промойте собранную ткань мягко в 50 мл холодной 1 М PBS. Разделите на несколько частей с каждого места отбора проб и аликвоты.
    Примечание. Размер кусочков плаценты будет зависеть от запланированных анализов.
  6. Добавьте аликвоты образцов ткани размером 0,1 - 0,5 см 3 в 5 криовых пробирок и замораживание замораживания в жидком азоте.
  7. Добавьте небольшие кусочки 0,1-0,2 см 3 в пробирку с 25 мл раствора для стабилизации РНК. Магазин в 46; С в течение 24 ч отбрасывают раствор стабилизации РНК и заменяют его. Замораживание.
  8. Добавьте кусочки 0,5 см 3 к 5 криограммам с 0,5 мл ОКТ, долейте ОКТ, смешайте и замораживайте.
  9. Храните образцы при -80 ° C до анализа.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Burton et al. Обеспечивает отличный обзор практических аспектов отборки плаценты в зависимости от запланированных анализов. 20 Приготовьте оставшуюся ткань для выделения микроворсиальных и базальных мембран и для сбора децидуальной ткани методом вакуумного всасывания. 21 , 22

6. Неонатальные характеристики

  1. Запишите характеристики новорожденных, в том числе апгар-баллы (1, 5 и 10 мин), пол, вес, длину, возраст гестации и прием в отделение интенсивной терапии новорожденных (длина и исход пребывания).
  2. Рассмотрите измерение состава тела новорожденных антропометрическими измерениями, смещение воздухаПлетизмографа или двойной рентгеновской абсорбциометрии. 23 , 24

7. Расчеты

  1. Предположите аналогичный состав крови в радиальной и маточной артериях и вычислите разницу концентраций маточно-плацентарного артериовенозного.
    Разность концентраций маточно-плацентарной артериовеноз = C A - C V
    Пупочная венозно-артериальная концентрация концентрации = C v - C a

    Где C - концентрация с индексами: A, радиальная артерия; V, маточная вена; V пупочная вена и a, пупочная артерия.
  2. Рассчитайте объемный кровоток, мл / мин (Q):
    Уравнение 1
    Где D - диаметр сосуда (см), TAMX - это усредненная по времени максимальная скорость, а h - коэффициент для профиля пространственной скорости крови. Используйте 0,5 в качестве коэффициента для пупочной вены и0,6 для маточной артерии 25 , 26 .
  3. Рассчитайте поглощение и освобождение плаценты в соответствии с принципом Фика:

    Утероплацентарное поглощение = ( C A - C V ) x Qm
    Поглощение плода =
    ( C v - C a ) X Q f

    Подстрочные индексы: m, материнская и f, эмбриональные.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Метод отбора проб с 4 сосудами применим в клинической практике, и мы успешно получили образцы крови от 209 пар матери / младенца. В 128 из них мы также достигли измерения объемного кровотока. Полная выборка из четырех сосудов и качественные измерения потока как материнского, так и эмбрионального сосудов были получены у 70 пар мать-плод ( рис. 3 ). Кроме того, мы до сих пор собирали образцы крови и плаценты у 30 преэкламптических пациентов. Ранее мы опубликовали статьи о плацентарной передаче питательных веществ человека, а также о плацентарном выпуске вазоактивных факторов, демонстрируя два применения метода 14 , 15 , 16 .

Пример того, как метод 4 сосуда используется для изучения переноса плаценты
Есть значительные артерииС обеих сторон плаценты, демонстрируя внутриутробное и внутриутробное поглощение глюкозы in vivo ( табл. 1 ). Плацентарный перенос глюкозы зависит от градиента глюкозы у матери-плода и, следовательно, от уровня глюкозы у матери. Тем не менее, мы ранее продемонстрировали, что этот градиент и, следовательно, перенос глюкозы существенно влияют также на уровень инсулина плода и потребление глюкозы. Это пример того, как этот метод иллюстрирует важный материнско-эмбриональный интеллект 14 .

судно Глюкоза ммоль / л Значение р *
Лучевая артерия 4,49 [4,22, 4,84]
Маточная вена 4.23 [3.94, 4.53]
Пупочная вена 3,78 [3,52, 4,06]
Пупочная артерия 3,24 [2,95, 3,56]
Сопряженные различия
Радиальная артерия - маточная вена 0,29 [0,13, 0,41] <0,001
Пупочная артерия - пупочная вена 0,54 [0,29, 0,76] <0,001
Радиальная артерия - пупочная артерия 1,25 [1,03, 1,51] <0,001

Таблица 1: Медианы [Q1, Q3] Концентрации и артериовенозные различия глюкозы
* Тест подписи под знаком Wilcoxon

Считается, что поглощение глюкозы плода от (плацентарного высвобождения до) пупочной циркуляции зависит не только отN градиент матери и плода, но на плацентарный кровоток 5 . Аналогичным образом, может быть уместным изучить поглощение глюкозы плода в зависимости от массы плаценты или веса при рождении. В n = 128 мы обнаружили средний (общий объем пуповины) Q1, Q3, равный 196,2 [158,3, 232,2] мл / мин, и рассчитали медианное [Q1, Q3] содержание глюкозы в плоде от (высвобождение плаценты до) пупочной циркуляции 0,10 [0,05, 0,15] ммоль / мин. Нормализованный вес при рождении равен 0,03 [0,02, 0,04] ​​(ммоль / мин) / кг. Плацента высвобождает 0,16 [0,10, 0,26] (ммоль / мин) на кг плаценты.

Пример того, как метод 4-сосуда используется для изучения поглощения плаценты
Исследования на животных показывают, что глутаминовая кислота имеет важное значение как в взаимопревращении аминокислот в плаценте, так и в печени плода, а также в качестве окислительного топлива в других метаболических путях 27 . Используя метод отбора проб 4-сосуда с плацентой, мы изучили uТероплацентарные и пупочные артериовенозные различия глутаминовой кислоты у людей ( табл. 2 ). Мы обнаружили поглощение плаценты (таким образом, высвобождение эмбриона) глутаминовой кислоты из пуповины. Далее мы обнаружили плацентарное поглощение глутаминовой кислоты из материнского кровообращения. Это поглощение плаценты из обоих циркуляций является примером того, как метод 4 сосудов может быть использован для демонстрации in vivo у человека, что плацентарный метаболизм питательных веществ является частью регуляции трансплацентарного переноса.

судно Кислота глютаминовая кислота мкмоль / л Значение р *
Лучевая артерия 61,5 [51,0, 77,7]
Маточная вена 51,0 [36,3, 65,0]
Пупочная вена 39,3 [24,7, 52,8]
Пупочная артерия 44,7 [33,1, 59,3]
Сопряженные различия
Радиальная артериальная маска 10,4 [1,6, 21,2] <0,001
Пупочная артериальная пупочная вена -8,7 [-16,0, 0,2] <0,001

Таблица 2: Медианы [Q1, Q3] Концентрации и артериовенозные различия глутаминовой кислоты
* Тест подписи под знаком Wilcoxon

Пример того, как метод 4-сосуда используется для изучения высвобождения плаценты
Установлено, что плацента выделяет прогестерон и для подтверждения нашего метода с 4 сосудами на материнской стороне плаценты мы измеряли высвобождение прогестерона in vivo приRm 28 . Мы обнаружили значительное плацентарное высвобождение прогестерона в кровообращение матери ( таблица 3 ). Наблюдаемая артериовенозная разница демонстрирует, как метод отбора проб плаценты с 4 сосудами может использоваться для обнаружения веществ, высвобождаемых плацентой, и имеет большое значение при изучении патологических беременностей.

судно Прогестерон нмоль / л Значение р *
Лучевая артерия 678 [514, 971]
Маточная вена 1852 [1059, 2786]
Сопряженные различия
Радиальная артериальная маска -1187 [-1855, -404] р <0,001

Таблица 3: Медианы [Q1, Q3] и маточно-плацентарная артериовенозная разница прогестерона
* Тест подписи под знаком Wilcoxon

Рисунок 3
Рисунок 3 : Блок-схемы и иллюстрация включенных и потерянных участников.
A. Показывает включение участников, демонстрируя, что участники были потеряны в основном из-за начала работы до начала кесарева сечения или отсутствия достаточного персонала для проведения исследования. B. Из 179 женщин с нормальной беременностью (синий) были получены четыре образца крови с четырьмя сосудами в 162 (91%) (неполные образцы плодной крови: черные, неполные образцы материнской крови: серый). Пятьдесят один (28%) участников не были включены для ультразвуковых измерений из-за материально-технических ограничений. Из 128 участников (72%), подвергшихся ультразвуку, измерения кровотока на эмбриональной стороне плаценты были получены у всех участников (светло-зеленый), тогда как полные измерения кровотока как на материнской, так и на плодной основе были получены у 77 (60%), (темно-зеленый). Иллюстрация: Øystein H. Horgmo, Университет Осло. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Метод отбора проб 4-сосуда с плацентой имеет значение для трех основных целей. Во-первых, его можно использовать для изучения того, как специфические вещества поглощаются плацентой на материнской стороне и, возможно, переносятся в пупочный кровоток и плод, о чем свидетельствуют наши исследования на глюкозе и аминокислотах. Во-вторых, этот метод очень важен для изучения веществ, продуцируемых плацентой, и высвобождается для циркуляции матерей или плода, о чем свидетельствуют результаты прогестерона. В-третьих, может быть полезно изучить, как плод in vivo устраняет отходы во время быстрого роста и ремоделирования тканей.

Критические этапы и логистические проблемы метода 4-сосуда
Прибор для взятия проб из 4-х сосудов плаценты ранее использовался для определения плацентарного переноса макронутриентов in vivo при нормальных физиологических беременностях 8 , 10 ,Ss = "xref"> 12, но с ограниченным количеством предметов исследования. Ограниченное использование выборки с 4 сосудами, вероятно, связано с требовательной логистикой процедуры. Для использования этого метода необходима успешная координация между пациентом, исследователями и персоналом отделений фетальной медицины, акушерства и анестезиологии. Мы считаем, что было большим преимуществом, что некоторые из основных исследователей - акушеры, зная клинические процедуры и ключевые сотрудники. Таким образом, процедуры исследования были реализованы наряду с ежедневной клинической практикой. Координируя и закрепляя каждый шаг процедуры, мы получили образцы из более чем 200 пар матери / новорожденного. Кроме того, наша стратегия заключалась в том, чтобы сохранить процедуру отбора проб на несколько рук, поскольку в процедуре, решающей успешный результат выборки, есть технические проблемы, и слишком много пробников могут вводить ненужные источники изменения данных. ConsequМы рекомендуем, чтобы все сонографические исследования выполнялись одним и тем же экзаменатором с использованием той же ультразвуковой машины. Оборудование следует выбирать с осторожностью, так как разрешение стены судна имеет решающее значение. Маточные артерии в третьем триместре особенно технически сложны для измерения, потому что размер и содержание матки затрудняют получение как угла перпендикулярной инсоляции, используемого для измерений диаметра, так и низкого угла инсоляции для измерения скорости потока на одном и том же участке. Более того, успешный отбор проб крови требует идентификации подходящего места отбора проб маточной вены и нежной аспирации. На ошейной стороне хрупкость эмбриональных эритроцитов требует особого внимания к аспирационной силе. По нашему опыту, отсроченная доставка или незначительный стресс у младенца была связана с ранним сужением пупочной артерии, что привело к уменьшению объема артериального образца.

Метод «взятия проб из 4-х сосудов плаценты» является инвазивной и требовательной процедурой. Поэтому критерии включения и исключения должны быть четко определены в соответствии с вопросом исследования, чтобы избежать ненужных процедур отбора проб. Пациентам следует обращаться только для включения после того, как было принято решение о режиме доставки, чтобы на показания кесарева сечения не влияли участие в исследовательском проекте. Хотя процедура требует небольшого дополнительного времени на рабочем месте, это требует наличия большего количества персонала, что делает его обязательным для ограничения неудобств и нарушений, вызванных выборкой. Мы использовали лучевую артерию в качестве прокси для маточной артерии, поскольку вставка артериальной линии менее инвазивна и обеспечивает одновременный отбор проб из артерии и вены. Некоторые группы используют артериализованную кровь, которая является еще менее инвазивной процедурой 13 . Однако, апаRt от одной заболеваемости локальной гематомы по отношению к артериальной линии, что приводит к временной парестезии руки, мы не испытывали побочных эффектов во время отбора проб с любого из 4-х сайтов. В частности, мы не наблюдали кровотечения из проколотой маточной вены.

Методологические / аналитические вопросы метода 4-сосудов
Важно рассмотреть несколько методологических вопросов при интерпретации результатов исследования 4-сосудов плаценты. Во-первых, если целью является вычисление массы вещества, взятого или высвобожденного плацентой, важно учитывать объем проходящей крови. Следует иметь в виду, что маточная вена не только истощает плаценту, но также истощает мышцы матки и что сосудистая сеть матки в разной степени анастомозируется с сосудом яичника и влагалища. Далее, важно учитывать, что обмен воды через плаценту может влиять на концентратИзмеренных и, таким образом, влияют на рассчитанные разности концентраций артериовенозных. В идеале это лучше всего решать путем корректировки различий концентрации воды, потерянных или приобретенных в каждой паре матери-плода. Это может быть достигнуто путем измерения вещества, которое не растворяется или не выделяется плацентой или маткой. Концентрации гемоглобина или рассчитанные проценты эритроцитов (гематокрит) могут служить коррекционными факторами для обмена воды. Кроме того, при интерпретации поглощения или высвобождения соединений на материнской стороне плаценты может быть интересно получить артериовенозные различия в других тканях для сравнения. Поэтому мы включили образец крови из антекубитальной вены, чтобы охарактеризовать специфические особенности плаценты, сравнив артериовенозные различия над плацентой с капиллярным слоем предплечья. Мы обнаружили, что это сравнение особенно интересно, когда мы тестировали плацентарное высвобождение sFlt-1 и рост плаценты faПоскольку системные эндотелиальные клетки могут быть потенциальным источником этих соединений 14 . В зависимости от исследовательского вопроса может быть важно связать артериовенозные различия с весом плаценты для расчета эффективности плаценты, то есть в плане (ммоль / л) / кг или (ммоль / мин) / кг плаценты.

Ограничения и сильные стороны метода с четырьмя сосудами
Хотя физиология плаценты менее подвержена стрессу при влагалищном родоразрешении, к ней относится несколько ограничений. Вагинальная доставка рекомендуется в большинстве случаев общих осложнений беременности (таких как преэклампсия, диабет, ожирение и умеренная макросомия плода), что может ограничить и уклонить набор. Даже при оптимизации каждого шага метода трудно получить полные измерения и образцы у каждого пациента из-за технических трудностей в процедуре отбора проб крови и ультразвука vol( Рис. 3 ). Кроме того, хотя ультразвуковые измерения проводятся как можно ближе к хирургии, они по своей сути проводятся до спинальной анестезии и взятия крови. Из этого следует, что материнский сердечный выброс (СО) может меняться и, возможно, влиять на маточно-плацентарный (и даже фетоплацентарный) кровоток. Возможное изменение СО, вызванное спинальным анестезионом, должно компенсироваться фенилэфрином, которое использовалось в текущем исследовании. Предварительные данные из подмножества наших участников (n = 23) не показывают значительного изменения СО до спинальной анестезии и во время выборки (неопубликованные данные). Использование метода отбора проб с четырьмя сосудами у людей, в отличие от животных, ограничивает как возможность введения временной переменной, так и манипуляции с содержанием 5 , 29 , 30 крови. Из этих соображений следует, что 4-сосуд Метод выборки является поперечным и в основном наблюдательным по своей природе, и полученные данные должны быть проанализированы соответствующим образом. С другой стороны, метод отбора проб с 4 сосудами дает уникальную возможность изучать физиологию и патофизиологию плаценты человека in vivo со всеми взаимодействующими факторами, которые никогда не могут быть воспроизведены in vitro . Он предлагает отличную возможность проверить гипотезы, которые возникли из животных или других экспериментальных исследований. Аналогичным образом, он может генерировать новые гипотезы, которые должны быть проверены механически in vitro и в исследованиях на животных.

Потенциальные применения метода 4-сосуда
При патологической беременности различия материнской и эмбриональной артериовенозной концентрации до настоящего времени изучались отдельно и позволяли тестировать некоторые из существующих гипотез in vivo 15 , 16 ,Ass = "xref"> 31. Метод выборки с четырьмя сосудами предлагает привлекательную возможность совместно изучать материнскую, плацентарную и эмбриональную единицу, а не как отдельные субъекты при патологической беременности и может пролить свет на старые и новые вопросы в рамках взаимодействия матери и плода. Метод отбора проб с 4 сосудами может быть применен к широкому спектру вопросов исследования как при нормальных, так и патологических беременностях в зависимости от дальнейшего анализа образцов. Выбор vacutainers, объем крови, диапазон плаценты и других образцов ткани должны быть определены в соответствии с вопросом исследования. Burton et al. Недавно опубликовали превосходную статью, описывающую процедуры для обеспечения образцов хорошего качества ткани плаценты, а также позволяют слияние различных биобанков для решения определенных головоломок, которым необходимо решить большое количество проб 20 . Образцы с 4 сосудами могут быть проанализированы для изучения специфического высвобождения экзосомы у материЦиркуляция, передача лекарств, метаболитов и токсинов. Анализы крупномасштабной омики (метаболомики, протеомики и липидомики) имеют потенциал для идентификации веществ и метаболитов в материнской плазме, которые секретируются плацентой. Таким образом, создание метода отбора проб на 4 сосуда может идентифицировать факторы, полученные из плаценты, в материнском кровообращении и, возможно, дразнить биомаркеры плацентарной функции. В сочетании с методами отделения от микрофлоры и эмбриональной плазменной мембраны, подвергнутой материнской линии, синцитиотрофобласта, перенос вещества может быть изучен вместе с активностью и расположением соответствующих транспортерных белков 21 . Кроме того, механизмы, регулирующие перенос питательных веществ in vivo, могут быть выяснены путем анализа уровней питательных веществ и микронутриентов в четырех сосудах и связаны с переносом питательных веществ на измерения питательной и энергетической зондирующей системы в плаценте 32 33 . Еще одним возможным подходом является введение в кровь глюкозы до доставки. Плацентарный перенос может быть связан с материальными метаболическими переменными, такими как профили липидов ИМТ, глюкозы и плазмы, а также с результатами плода, такими как вес при рождении и состав тела 18 . Вместе эти подходы, возможно, освещают интегративную роль плаценты, находясь в центре взаимодействия между состояниями и потребностями матери и плода.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторам нечего раскрывать.

Acknowledgments

Прежде всего, мы искренне благодарим матерей, которые участвовали в этом проекте. Затем мы признаем весь персонал, который помог и облегчил процедуру отбора проб, анестезиолог, анестезиолог-медсестра и хирургические медсестры. Проект не был бы возможен без финансирования из Регионального управления здравоохранения Юго-Восточной Норвегии и Норвежской консультативной группы по вопросам здоровья женщин, Университета Осло и местного финансирования, предоставляемого Университетской больницей Осло.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Maternal body composition
Impedance scale Tanita or similar
Ultrasound measurements 
Sequoia 512 ultrasound machine Acuson equipped with a curved transducer with colour and pulsewave Doppler (frequency bandwidth 2 - 6 MHz)
Blood samples
Arerial cannula BD Medical 682245 or similar
20 cc Eccentric Luer Tip Syringe without Needle Termo SS-20ES or similar. 3 needed.
10 cc Eccentric Luer Tip Syringe without Needle Termo SS-10ES or similar. 9 needed.
5 cc 6% Luer Syringe without Needle Termo SS-05S1 or similar. 2 needed.
Arterial blood gas syringe  Radiometer Medical or similar. 4 needed.
Sterile winged needle connected to flexible tubing, 21 gauge Greiner Bio-One 450081 (intended for single use).3 needed.
Vacutainer tube 6 mL EDTA  Greiner Bio-One 456043 or similar. Label with sample site. 10 needed.
Vacutainer tube 5 mL LH Lithium Heparin Separator Greiner Bio-One 456305 or similar. Label with sample site. 5 needed.
Vacutainer tube 6 mL Serum Clot Activator  Greiner Bio-One 456089 or similar. Label with sample site. 5 needed.
Vacutainer tube 3 mL  9NC Coagulation sodium citrate 3.2% Greiner Bio-One 454334 or similar. Label with sample site. 5 needed.
Cryogenic vials, 2.0 mL Corning 430488 or similar. Label with sample site, serum/type of plasma and ID. 90 needed.
Marked trays to transport the syringes to transport the blood samples in the operation theatre
Rocker for gentle mixing of the samples
Ice in styrofoam box
Liquid nitrogen in appropriate container
Placenta samples
Metal tray
Ice in styrofoam box
Calibrated scale
Metal ruler
1 M Phosphate buffered saline Sigma D1408 or similar. Dilute 10 M to  1 M before use
RNA stabilization solution Sigma R0901-500ML  or similar
Optimal Cutting Temperature (O.C.T.) compound vwr 361603E or similar
Cryogenic vials, 2.0 mL Corning 430488 or similar. Label with sample site. content and ID. 10 needed.
Centrifuge tubes, conical bottom 50 mL Greiner Bio-One 227,285 or similar. Label with "RNA later", sample site and ID. 2 needed.
Liquid nitrogen in appropriate container
Fetal body composition
Calibrated scale
Measuring tape

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Jansson, T., Powell, T. L. Role of the placenta in fetal programming: underlying mechanisms and potential interventional approaches. Clin Sci (Lond). 113 (1), 1-13 (2007).
  2. Hanson, M. A., Gluckman, P. D. Early developmental conditioning of later health and disease: physiology or pathophysiology. Physiol Rev. 94 (4), 1027-1076 (2014).
  3. Guttmacher, A. E., Spong, C. Y. The human placenta project: it's time for real time. Am J Obstet Gynecol. 213, 4 Suppl 3-5 (2015).
  4. Battaglia, F. C., Regnault, T. R. Placental transport and metabolism of amino acids. Placenta. 22 (2-3), 145-161 (2001).
  5. Hay, W. W. Placental-fetal glucose exchange and fetal glucose metabolism. Trans Am Clin Climatol Assoc. 117, 321-339 (2006).
  6. Woollett, L. A. Review: Transport of maternal cholesterol to the fetal circulation. Placenta. 32, Suppl 2 218-221 (2011).
  7. Prenton, M. A., Young, M. Umbilical vein-artery and uterine arterio-venous plasma amino acid differences (in the human subject). J Obstet Gynaecol Br Commonw. 76 (5), 404-411 (1969).
  8. Cetin, I., et al. Plasma and erythrocyte amino acids in mother and fetus. Biol Neonate. 60 (2), 83-91 (1991).
  9. Filshie, G. M., Anstey, M. D. The distribution of arachidonic acid in plasma and tissues of patients near term undergoing elective or emergency Caesarean section. Br J Obstet Gynaecol. 85 (2), 119-123 (1978).
  10. Haberey, P. P., Schaefer, A., Nisand, I., Dellenbach, P. The fate and importance of fetal lactate in the human placenta -a new hypothesis. J Perinat Med. 10 (2), 127-129 (1982).
  11. Prendergast, C. H., et al. Glucose production by the human placenta in vivo. Placenta. 20 (7), 591-598 (1999).
  12. Metzger, B. E., Rodeck, C., Freinkel, N., Price, J., Young, M. Transplacental arteriovenous gradients for glucose, insulin, glucagon and placental lactogen during normoglycaemia in human pregnancy at term. Placenta. 6 (4), 347-354 (1985).
  13. Zamudio, S., et al. Hypoglycemia and the origin of hypoxia-induced reduction in human fetal growth. PLoS One. 5 (1), 8551 (2010).
  14. Holme, A. M., Roland, M. C., Lorentzen, B., Michelsen, T. M., Henriksen, T. Placental glucose transfer: a human in vivo study. PLoS One. 10 (2), 0117084 (2015).
  15. Holme, A. M., Roland, M. C., Henriksen, T., Michelsen, T. M. In vivo uteroplacental release of placental growth factor and soluble Fms-like tyrosine kinase-1 in normal and preeclamptic pregnancies. Am J Obstet Gynecol. 215 (6), 781-782 (2016).
  16. Paasche Roland, M. C., Lorentzen, B., Godang, K., Henriksen, T. Uteroplacental arterio-venous difference in soluble VEGFR-1 (sFlt-1), but not in soluble endoglin concentrations in preeclampsia. Placenta. 33 (3), 224-226 (2012).
  17. Brar, H. S., et al. Uteroplacental unit as a source of elevated circulating prorenin levels in normal pregnancy. Am J Obstet Gynecol. 155 (6), 1223-1226 (1986).
  18. Myatt, L., et al. Strategy for standardization of preeclampsia research study design. Hypertension. 63 (6), 1293-1301 (2014).
  19. Kiserud, T., Rasmussen, S. How repeat measurements affect the mean diameter of the umbilical vein and the ductus venosus. Ultrasound Obstet Gynecol. 11 (6), 419-425 (1998).
  20. Burton, G. J., et al. Optimising sample collection for placental research. Placenta. 35 (1), 9-22 (2014).
  21. Illsley, N. P., Wang, Z. Q., Gray, A., Sellers, M. C., Jacobs, M. M. Simultaneous preparation of paired, syncytial, microvillous and basal membranes from human placenta. Biochim Biophys Acta. 1029 (2), 218-226 (1990).
  22. Staff, A. C., Ranheim, T., Khoury, J., Henriksen, T. Increased contents of phospholipids, cholesterol, and lipid peroxides in decidua basalis in women with preeclampsia. Am J Obstet Gynecol. 180 (3), Pt 1 587-592 (1999).
  23. Catalano, P. M., Thomas, A. J., Avallone, D. A., Amini, S. B. Anthropometric estimation of neonatal body composition. Am J Obstet Gynecol. 173 (4), 1176-1181 (1995).
  24. Ellis, K. J., et al. Body-composition assessment in infancy: air-displacement plethysmography compared with a reference 4-compartment model. Am J Clin Nutr. 85 (1), 90-95 (2007).
  25. Haugen, G., Kiserud, T., Godfrey, K., Crozier, S., Hanson, M. Portal and umbilical venous blood supply to the liver in the human fetus near term. Ultrasound Obstet Gynecol. 24 (6), 599-605 (2004).
  26. Acharya, G., et al. Experimental validation of uterine artery volume blood flow measurement by Doppler ultrasonography in pregnant sheep. Ultrasound Obstet Gynecol. 29 (4), 401-406 (2007).
  27. Wu, X., et al. Glutamate-glutamine cycle and exchange in the placenta-fetus unit during late pregnancy. Amino Acids. 47 (1), 45-53 (2015).
  28. Tuckey, R. C. Progesterone synthesis by the human placenta. Placenta. 26 (4), 273-281 (2005).
  29. Simmons, M. A., Meschia, G., Makowski, E. L., Battaglia, F. C. Fetal metabolic response to maternal starvation. Pediatr Res. 8 (10), 830-836 (1974).
  30. Simmons, M. A., Jones, M. D., Battaglia, F. C., Meschia, G. Insulin effect on fetal glucose utilization. Pediatr Res. 12 (2), 90-92 (1978).
  31. Bujold, E., et al. Evidence supporting that the excess of the sVEGFR-1 concentration in maternal plasma in preeclampsia has a uterine origin. J Matern Fetal Neonatal Med. 18 (1), 9-16 (2005).
  32. Jansson, T., Aye, I. L., Goberdhan, D. C. The emerging role of mTORC1 signaling in placental nutrient-sensing. Placenta. 33, Suppl 2 23-29 (2012).
  33. Cetin, I. Placental transport of amino acids in normal and growth-restricted pregnancies. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 110, Suppl 1 50-54 (2003).

Tags

Медицина выпуск 126 Плацента человек, Артериовенозная маточная вена выборка из четырех сосудов перенос питательных веществ биомаркер материнство эмбрион поток матки фетальный поток
Подход к выборке с четырьмя сосудами для интегративных исследований физиологии плаценты человека<em&gt; В Виво</em
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Holme, A. M., Holm, M. B., Roland,More

Holme, A. M., Holm, M. B., Roland, M. C. P., Horne, H., Michelsen, T. M., Haugen, G., Henriksen, T. The 4-vessel Sampling Approach to Integrative Studies of Human Placental Physiology In Vivo. J. Vis. Exp. (126), e55847, doi:10.3791/55847 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter