Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

基质血管部分富集脂肪移植治疗症状性端 neuromata

Published: November 23, 2017 doi: 10.3791/55962

Summary

本研究的目的是为了说明基质血管部分 (特别)-富集脂肪移植的技术过程, 作为一种新的治疗症状性端 neuromata。这种技术提供了机械屏障和生物作用的优势, 在细胞水平的加工和集中特别。

Abstract

本研究的目的是有条不紊地说明和突出的关键步骤, 基质血管分数 (特别)-丰富脂肪移植作为一种新的治疗症状端 neuromata 外周感觉神经, 并在本研究, 特别是桡神经 (SBRN) 的浅支。尽管有许多现有的治疗方法, 持续的术后疼痛和常见的疼痛复发仍然是非常普遍的, 独立的程序评估。神经瘤被 microsurgically 切除相应地规范化的协议。而不是在邻近的解剖结构, 如肌肉或骨骼的再生神经残肢的迁移, 脂肪移植应用 perifocally 和作为机械屏障。为了降低脂肪的吸收率, 提高移植物的再生潜能, 将高浓度的特别集成在嫁接中。特别是从皮下脂肪分离的酶和机械 lipoaspirate 由一个特定的商业隔离系统。富含特别的脂肪移植在细胞水平上提供了机械屏障和各种生物效应, 包括改善血管生成、炎症和纤维化。在神经再生过程中, 机械和生物效应都有助于减少神经残端的无条理的轴突突起, 从而防止了痛苦的端 neuromata 的复发。

Introduction

对有症状的末端 neuromata 的管理 SBRN 仍然是挑战与许多现有的外科治疗。主要地, 神经瘤切除并且剩余的神经末梢被安置入邻居结构例如肌肉1,2, 骨头3, 或静脉4。这被假设通过模仿末端器官的气氛防止再生神经束的 out-sprouting。然而, 这些技术都没有被证明是优越的, 因为高的疼痛复发率和不足的疼痛减少往往被观察到。

最近, 脂肪移植周围剩余的神经残端产生了可喜的结果, 并主张作为一个新的治疗方案的痛苦结束 neuromata 的上肢5。除了作为机械屏障, 以防止继续运动和轻拍疼痛, 脂肪移植的有益方面是相当归因于细胞水平。人体脂肪组织包含多种细胞类型, 包括脂肪、肥大细胞、周、内皮细胞、血管平滑肌细胞、成纤维细胞和脂肪来源的干细胞 (干细胞) 以及造血干细胞6。这种异质细胞群被称为脂肪衍生再生细胞 (ADRCs) 或特别, 并可从 lipoaspirate 获得一个隔离系统 (见材料表) 和应用酶试剂 (见材料表)7。确切的行动机制还没有完全理解;然而, 特别已与改善血管生成, 免疫, 分化和分泌细胞外基质8

特别的浓缩细胞数量增加到脂肪移植, 以减少吸收率和增加再生潜力的脂肪移植, 最近的研究显示疼痛复发后12月的脂肪移植没有添加特别5. 此外, 生物作用还通过减少残端的轴突发芽和随后的瘢痕坚持对神经本身产生有益的影响, 这可能导致神经卡压.

第一次临床研究描述特别脂肪移植作为一种新的手术选择治疗症状性端 neuromata SBRN 最近发表了10。一般来说, 该技术可以应用于任何发生在意外或医源性神经损伤后的听神经瘤。本次后续研究的目的是有条不紊地说明这一程序的技术方面。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

该议定书遵循了大学医院苏黎世人类研究伦理委员会的指导方针。

1. Neuromata 和患者选择的诊断

  1. 执行术前神经阻滞的近端, 以确定诊断。评估前臂中间三分之一的块, 排除 SBRN 交叉支配区的潜在诱因, 如侧前臂皮神经 (域)、骨间后神经 (针) 和尺神经背支,10
  2. 仅在减轻疼痛的患者中进行手术 (在疼痛的视觉模拟量表 (VAS) 上至少有5点)11

2. 手术准备

  1. 在手术前禁止病人进食6小时的食物或液体。
  2. 将病人放在手术室的中央, 在一个沙滩椅位置的通用手术台上。
  3. 将受影响的手臂/手放在手臂上休息。
  4. 要求麻醉进行气管内麻醉 (芬太尼2µg/千克, 罗库0.6 毫克/千克, 异丙酚 150-250 毫克)。
  5. 用聚维酮碘在吸脂术 (内大腿和/或上/下腹) 和神经瘤切除部位对皮肤进行消毒。
  6. 用不育的手术窗帘盖住病人, 留下暴露在抽脂部位和手术部位。

3. 肿胀吸脂

  1. 在抽脂领域用 #11 刀片手术刀做几处直径约 3-5 毫米的小刺 (穿刺) 切口。切割到皮下层的距离。
  2. 注射含有稀释利多卡因和肾上腺素 (500 毫升林格氏乳酸溶液, 20 毫升1% 利多卡因, 1 毫克肾上腺素) 的肿胀溶液, 通过14口径者 (浸润套管) 进入皮下脂肪层 (3 毫米深度)脂肪收获区。
  3. 等待至少20分钟, 使肿胀的解决方案生效。
  4. 钩3毫米收集套管 (外径3毫米, 长度26厘米), 以60毫升图米注射器和开始收割脂肪通过刺切口。
    注: nondominant 手持续控制套管的放置和过程。
  5. 拉回图米注射器的柱塞到60毫升的标记, 并放置一个蚊子钳沿撤回柱塞, 以保持负压在注射器和避免持续真空创造的主导手。
  6. 在所提供的图米注射器支架中, 将图米注射器放置在垂直位置, 以获得至少220毫升的脂肪组织;这使得脂肪沉淀和分离的液体。
  7. 在没有大量血液的情况下, 要特别注意获得高质量的脂肪移植。
    注意: 当增强血液含量被注意时, 改变抽脂的区域。
  8. 用简单的缝线缝合切口, 并按要求施加压力 (压缩带)。
  9. 将 lipoaspirate 转化为一次性无菌隔离系统。
  10. 保持一个图米注射器与 lipoaspirate 在提供的立场为了得到脂肪分数为以后 lipofilling。

4. 脂肪组织加工

  1. 关闭无菌耗材集。
    注意: 隔离系统 (参见材料表) 通过执行湿测试来确认完整性。
  2. 按照显示屏上的说明进行操作。
    注意: 该过程主要是由软件控制的, 只需在控制面板上按下 "下一步" 或 "后退" 按钮, 就可对列出的步骤进行手动确认。lipoaspirate 被转移到组织收集罐。在组织收集罐中, 用林格氏乳酸溶液对 lipoaspirate 进行称量和自动清洗, 以去除残余的血细胞和润湿液。
  3. 如果需要, 增加更多的脂肪。
    注: 根据所收获的脂肪组织的重量, 隔离系统要求用户添加更多的脂肪或计算额外的酶试剂添加量。
  4. 在隔离系统提示时添加所需的酶试剂量。
    注意: 在酶消化过程中, 油脂和特别的分离得到了实现。因此, 组织处于摆动运动中。酶消化完成后, 特别自动转移到离心室中进行细胞浓度测定。在离心机室中, 特别被集中到一个细胞颗粒 (离心机速度大约 3000 x g)。最后, 细胞颗粒经历了一系列的冲洗与林格的乳酸溶液, 以减少残留酶水平的输出。当工艺完成时, 获得5毫升的清水 (特别)。

5. 手术程序

  1. 要接近的神经瘤, 做一个皮肤切口在以前被诊断的神经瘤站点在前臂的远端三分之一。
  2. 在外科手术双目放大镜放大镜 (2.5-3.5X) 的使用下, 继续解剖皮下组织, 并确定累及神经近端的听神经瘤。
    1. 随后, 跟踪神经远端, 并确定了听神经瘤 (基于视觉检查)。
  3. 一旦完全延长的神经瘤是明确的, 开始通过一个直接的反式神经元剪刀切除。如果没有发现任何神经瘤, 只会进行松。
  4. 继续与其余的神经残肢的松, 直到3厘米近的手腕。
    注意: 神经残端应位于主切口正中。
  5. 将两到四小穿刺 (刺伤) 切口 (直径1毫米) 与手术刀一起通过表皮和真皮皮肤在主要方法周围。
  6. 将二到四钝套管 (16 口径, 长度9厘米) 通过刺切口神经到树桩。
    注意: 套管的尖端应该指向神经残端。
  7. 用胶粘敷料固定套管的位置。
  8. 将缝线周围的套管, 并留在原位缝合材料没有固定的节点。
  9. 缝合主切口, 以防止移植的流出。
    注意: 确保套管保持原位

6. 特别脂肪移植的应用

注: 经过大约1.5 小时的加工, 5 毫升的加工特别已准备好进一步使用。

  1. 在10毫升的交流注射器中抽取5毫升的特别。
  2. 以同样的方式, 在对立的10毫升注射器中抽取2毫升的沉淀脂质分数。
  3. 混合5毫升的特别与2毫升的沉淀脂质分数通过交替拉回一个注射器的柱塞和拉下来的沟通, 反对注射器的柱塞, 直到充分的混合得到。
  4. 在两到四10毫升的注射器中, 将特别的脂肪移植物均分。
  5. 通过将注射器连接到钝套管, 在神经残端周围均匀地分布准备好的特别-富脂接枝。
    注: 在应用移植前, 确保套管在正确的位置, 并注意不要脱臼套管, 而应用脂肪移植。
  6. 小心地取下套管。
  7. 然后, 用柜绷带将小的穿刺切口带上。
  8. 固定的手通过应用夹板在内在的加号位置 (掌 (MCP) 关节屈曲在 60-70, 间 (IP) 关节充分延长, 拇指在拳头投射, 手腕在背屈°)。如果只有松的神经被执行, 不需要夹板, 手臂和手腕包扎10天。

7. 术后病人的处理

  1. 将病人转移至 post-anesthesia 恢复后, 并在病房内进行足够的监测。
  2. 手术后10天继续固定手腕。
  3. 在48小时后后进行绷带的第一次更换, 并按固定间隔继续 (每隔一天直到出院)。
  4. 切除缝合术后 12-14 天。
  5. 在随访2、6、12和36月时对疼痛进行临床评估。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

利用统计软件对数据进行分析, 并以标准偏差表示。应用科尔莫戈罗夫斯米尔诺夫试验验证了研究人群的非参数分布, 证实了负经验分布。根据研究人群的非参数性质, 采用魏氏对相关样本进行测试, 比较术前和术后结局。统计学意义被认为在 p 值小于 0.0510

五例平均年龄为49.8 ±16.6 岁的患者包括在该研究中。在手术前和术后疼痛评分的比较是在表 1中的每一个疼痛模式和整体疼痛。特别脂肪移植的治疗不能明显减轻疼痛。然而, 所有疼痛模式的相关减少可从术后2月开始, 并显示为持续36月随访后无疼痛复发 (图 1)。

自发性疼痛可从术后1.6 ±0.55 降至手术后1.2 ± 1.1 (p = 0.414), 峰值从2.2 ±1.3 到1.4 ± 1.34 (p = 0.180), 感觉从1.6 ±1.14 到1.2 ± 1.64 (p = 0.713), 从2.8 ±0.45 到1.8 ± 1.3 (p = 0.197) 和运动 pa 的轻拍痛苦在从2.8 ±0.45 到1.4 ± 1.34 (p = 0.066)。从术前2.2 ±0.97 到术后1.4 ±1.26 的疼痛总体减轻, 手术后36月 (p = 0.104)。

Figure 1
图 1: 疼痛模式的趋势.术前和2、6、12、36月均进行疼痛模式评估 (平均± SD)。此图已从以前的出版物中修改过10.请单击此处查看此图的较大版本.

表1。平均疼痛评分±标准偏差 (p 值) 特别富脂接枝前后
自发性疼痛 感觉 轻拍疼痛 运动疼痛 整体疼痛评分
术前评分 1.6 ±0.55 2.2 ±1。3 1.6 ±1.14 2.8 ±0.45 2.8 ±0.45 2.2 ±0.97
2月 0.8 ± 0.84 (0.102) 1.4 ± 1.52 (0.285) 1.2 ± 1.64 (0.713) 1.6 ± 0.89 (0.083) 1.4 ± 1.52 (0.102) 1.28 ± 1.24 (0.225)
6月 1.6 ± 1.52 (1.0) 1.8 ± 1.64 (0.655) 1.4 ± 1.52 (0.713) 1.6 ± 1.52 (0.157) 1.2 ± 1.64 (0.102) 1.52 ± 1.45 (0.345)
12月 1.6 ± 1.52 (1.0) 1.8 ± 1.64 (0.655) 1.4 ± 1.52 (0.713) 1.8 ± 1.3 (0.180) 1.6 ± 1.52 (0.109) 1.64 ± 1.38 (0.345)
36月 1.2 ± 1.1 (0.414) 1.4 ± 1.34 (0.180) 1.2 ± 1.64 (0.713) 1.8 ± 1.3 (0.197) 1.4 ± 1.34 (0.066) 1.4 ± 1.26 (0.104)
p 值显示术前和手术前后评分的差异

表 1: 影响神经瘤皮肤的多种疼痛方式.不同的疼痛模式影响的神经瘤的皮肤, 我们的病人评价为每一个疼痛的方式 [无 (0), 轻度 (1), 中度 (2), 和严重疼痛 (3), 0 至 3)。临床检查是在手术前和随访时进行的2、6、12和36月后。术后疼痛评分的评估, 在最初的位置疼痛, 以及在现场的特别丰富脂肪移植。已从以前的出版物10中修改了此项。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

本研究的目的是有条不紊地说明的技术方面, 特别脂肪移植作为一种新的治疗症状性端 neuromata。

Neuromata 的 SBRN 与外科手术成功率只有 33%12。瓦伦et al.提出了一系列有利的结果, 早期随访使用神经脂肪移植 (框架) 没有添加特别8患者的痛苦 neuromata 的上肢5。然而, 疼痛减少在6月后疼痛复发在12月随访5

虽然疼痛减少没有证明是统计学意义上的特别丰富脂肪移植的 SBRN, 一个明确的趋势, 以恒定的疼痛减少被注意到所有疼痛方式10。此外, 疼痛减少持续2月至36月后无疼痛复发。因此, 2 月后的临床评估似乎是未来远期预后的可靠预测指标。然而, 一个更大的随机序列是必要的检测潜在的统计意义。这一有利的结果可能是在更大的剩余体积脂肪移植的背景下看到的。以往的研究表明, ADSC 脂肪吸收率降低时, 应用与 non-enriched 嫁接13比较。此外, 特别脂肪移植的再生潜能由细胞水平上的许多机制推动, 主要是改善血管生成、炎症和纤维化。ADSC 作为特别的一个组成部分, 通过表达生长因子如 VEGF 和 bFGF 在细胞水平上的14来触发血管生成。免疫系统受造血细胞的影响, 如巨噬细胞的 M2 表型或 T 辅助单元和自然杀伤细胞15。细胞信号可以受到减少的炎细胞因子的影响, 如 TNF α和 IL-616。它对神经组织本身也有有益的作用, 它可以减少无序的神经生长和随后痛苦的皮肤疤痕。白et al.建议每200µL 脂肪组织的理想浓度为1万细胞, 以获得最佳的移植成活和作用机制。高剂量的特别与显著增加的脂肪吸收率17相关。

多项手术技术在治疗痛苦的 neuromata SBRN 已广泛发表。肱肌的神经瘤切除术和肌内移位术仍然是流行和广泛的表现。特别脂肪移植与肌内移位相比, 不需要肱肌的手术准备, 并与较短的手腕固定。此外, 该技术不限于所呈现的神经群体, 并可以适用于任何在上肢或下肢的任何瘤。

尽管手术前进行了有效的神经阻滞来确认诊断并排除了重叠神经的疼痛, 但不能绝对排除相互干扰。SBRN 和域的解剖重叠可能导致术后神经支配区域的无条理的生长。此外, 目前的研究是有限的, 由于少数病人。虽然这项研究是迄今为止最大的调查长期结果和说明特别脂肪的技术方面的一个单一的神经人口, 进一步的随机试验与更多的参与者是需要确认的有利这种新技术的发展趋势。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

作者没有致谢。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Cytori Celution System Cytori isolation system
Celase Cytori enyzme reagent
liposuction system
tumescent solution (500 ml Lactated Ringers, 20 ml of 1% lidocaine and 1 mg epinephrine)
14-gauge infiltrator
3 mm-collecting cannula (15, 26, 32 cm)
60 mL Tommey syringes
mosquito clamp
Toomey syringe stand
4 cannulas (fat injecting cannulas 1.5 mm, syringe NO.2, 90 mm) Chalybs
10 mL syringes
connecting device for syringes
#11- and #15-blade scalpel
stevens scissors
pins pincette
bipolar electrocautery
suture material
adhesive dressing
binocular loupes magnifier glasses (2.5-3.5x) Carl Zeiss
Statistical Package for Social Sciences, version 22 IBM

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Mackinnon, S. E., Dellon, A. L. Results of treatment of recurrent dorsoradial wrist neuromas. Ann Plast Surg. 19 (1), 54-61 (1987).
  2. Hazari, A., Elliot, D. Treatment of end-neuromas, neuromas-in-continuity and scarred nerves of the digits by proximal relocation. J Hand Surg Br. 29 (4), 338-350 (2004).
  3. Goldstein, S. A., Sturim, H. S. Intraosseous nerve transposition for treatment of painful neuromas. J Hand Surg Am. 10 (2), 270-274 (1985).
  4. Koch, H., Haas, F., Hubmer, M., Rappl, T., Scharnagl, E. Treatment of painful neuroma by resection and nerve stump transplantation into a vein. Ann Plast Surg. 51 (1), 45-50 (2003).
  5. Vaienti, L., Merle, M., Battiston, B., Villani, F., Gazzola, R. Perineural fat grafting in the treatment of painful end-neuromas of the upper limb: a pilot study. J Hand Surg Eur. 38 (1), 36-42 (2013).
  6. Zuk, P. A., et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Eng. 7 (2), 211-228 (2001).
  7. Fraser, J. K., et al. The Celution System: Automated Processing of Adipose-Derived Regenerative Cells in a Functionally Closed System. Adv Wound Care (New Rochelle). 3 (1), 38-45 (2014).
  8. Guo, J., et al. Stromal vascular fraction: A regenerative reality? Part 2: Mechanisms of regenerative action. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 69 (2), 180-188 (2015).
  9. Lutz, B. S., Ma, S. F., Chuang, D. C., Chan, K. H., Wei, F. C. Interposition of a pedicle fat flap significantly improves specificity of reinnervation and motor recovery after repair of transected nerves in adjacency in rats. Plast Reconstr Surg. 107 (1), 116-123 (2001).
  10. Calcagni, M., et al. The novel treatment of SVF-enriched fat grafting for painful end-neuromas of superficial radial nerve. Microsurgery. , (2016).
  11. Hawker, G. A., Mian, S., Kendzerska, T., French, M. Measures of adult pain: Visual Analog Scale for Pain (VAS Pain), Numeric Rating Scale for Pain (NRS Pain), McGill Pain Questionnaire (MPQ), Short-Form McGill Pain Questionnaire (SF-MPQ), Chronic Pain Grade Scale (CPGS), Short Form-36 Bodily Pain Scale (SF-36 BPS), and Measure of Intermittent and Constant Osteoarthritis Pain (ICOAP). Arthritis Care Res (Hoboken). 63 Suppl. 63, Suppl 11. S240-S252 (2011).
  12. Stokvis, A., van der Avoort, D. J., van Neck, J. W., Hovius, S. E., Coert, J. H. Surgical management of neuroma pain: a prospective follow-up study. Pain. 151 (3), 862-869 (2010).
  13. Kolle, S. F., et al. Enrichment of autologous fat grafts with ex-vivo expanded adipose tissue-derived stem cells for graft survival: a randomised placebo-controlled trial. Lancet. 382 (9898), 1113-1120 (2013).
  14. Zhu, M., et al. Adipocyte regeneration after free fat transplantation: promotion by stromal vascular fraction cells. Cell Transplant. 24 (1), 49-62 (2015).
  15. Eto, H., et al. Characterization of human adipose tissue-resident hematopoietic cell populations reveals a novel macrophage subpopulation with CD34 expression and mesenchymal multipotency. Stem Cells Dev. 22 (6), 985-997 (2013).
  16. Premaratne, G. U., et al. Stromal vascular fraction transplantation as an alternative therapy for ischemic heart failure: anti-inflammatory role. J Cardiothorac Surg. 6, 43 (2011).
  17. Paik, K. J., et al. Studies in Fat Grafting: Part V. Cell-Assisted Lipotransfer to Enhance Fat Graft Retention Is Dose Dependent. Plast Reconstr Surg. 136 (1), 67-75 (2015).

Tags

神经生物学 问题 129 基质血管分数 脂肪源性干细胞 脂肪移植 神经瘤 浅特别
基质血管部分富集脂肪移植治疗症状性端 neuromata
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Zimmermann, S., Fakin, R. M.,More

Zimmermann, S., Fakin, R. M., Giesen, T., Giovanoli, P., Calcagni, M. Stromal Vascular Fraction-enriched Fat Grafting for the Treatment of Symptomatic End-neuromata. J. Vis. Exp. (129), e55962, doi:10.3791/55962 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter