Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

Метод оценки Fc опосредованной эффекторных функций, вызванных гриппа гемагглютинин специфические антитела

Published: February 23, 2018 doi: 10.3791/56256

Summary

Мы описываем метод измерения активации Fc опосредованной эффекторных функций антителами, предназначенных гемагглютинина вируса гриппа. Этот assay также может быть адаптирована для оценки способности моноклональных антител или поликлональных сыворотки против других вирусных поверхностных гликопротеинов побудить Fc опосредованный иммунитет.

Abstract

Антитела играют решающую роль в муфты врожденного и адаптивного иммунного ответа против вирусных патогенов через их антиген связывания доменов и Fc регионы. Здесь мы опишем, как измерить активации ФК эффекторных функций моноклональные антитела против гемагглютинина вируса гриппа с использованием генетически Jurkat клеточной линии, выразив активации типа 1 Fc-с помощью этого метода, FcγR. вклад специфических взаимодействий Fc-FcγR, предоставленных иммуноглобулины могут быть определены с помощью assay в пробирке .

Introduction

Иммунитет, предоставляемый вакцины против сезонного гриппа традиционно были оценены гемагглютинации ингибирование (HI) пробирного1, который измеряет наличие антител, которые целевой сайт связывания рецептора гемагглютинина. Эти Привет активные антитела могут наделять стерилизации иммунитет, но обычно узкие в их масштабы защиты, предоставляя иммунитет к только выбрать несколько штаммов вируса гриппа. Выделение и характеристика широко реактивной моноклональных антител, которые признают гемагглютинина (HA) предлагаю развития универсальной вакцины от гриппа в пределах досягаемости2,3,4, 5 , 6 , 7 , 8. одной из основных целей универсальной вакцины от гриппа является сильным антител ответ к сохраняемой регионах гриппа вирус9,10,11,12 , 13 , 14 , 15 , 16. широко реактивной антитела, которые признают эти сохранены epitopes, состоящий из нейтрализовать и не нейтрализуя антитела17,18было показано требуют взаимодействия Fc-FcγR для оптимального защита в естественных условиях и выделить вклад Fc опосредованный иммунитет на общий иммунный ответ на гриппа вирус19,20.

Коррелляты защиты играют решающую роль в оценке иммунитет к инфекции. Эти метрики позволяют ученых и клиницистов, для оценки эффективности вакцин, значение данных и курс лечения. Только установленные коррелятом защиты от инфекции вируса гриппа является пробирного торможение гемагглютинации. Титр 1:40 ассоциируется со снижением риска болезни1,21 – 50% и отражает наличие антител, которые препятствуют склеиванию путем привязки сайта, расположенный на шаровых голову HA рецептора. Однако следует также отметить, что Т-клеток ответов может быть лучше коррелируют защиты от инфекции вируса гриппа в пожилом возрасте. Интересно, что недавний доклад свидетельствует о том, что нейраминидазы ингибирование активности может быть лучше предсказатель иммунитета к гриппа22. К счастью типичных в vitro assays такие, как нейтрализация или нейраминидазы ингибирование анализов можно измерить ха стебель или нейраминидазы специфических антител. Однако, большинство этих обычных в vitro анализов, только принимать во внимание функции регионе связывания антигена антитела и не измерить роль региона Fc. Кроме того вклад-нейтрализующих антител, которые защитить через Fc рецептор участия в естественных условиях , не обнаруженных17,18. Для того чтобы измерить защиты, обеспечиваемой антител, которые индуцируют Fc опосредованный иммунитет как зависимые ячейки при посредничестве цитотоксичности антител (ADCC), необходим надежный в vitro пробирного.

Описанный ниже метод оценивает способность мышиных моноклональных антител побудить Fc опосредованной функций с использованием генетически модифицированных линия клетки Jurkat, выразив активации мышиных типа 1 FcR, FcγRIV. Антитело участие FcγR передает, внутриклеточная сигнализация ядерный фактор что триггеры активированные Т-клетки опосредованной Люцифераза деятельности. Assay имеет ряд преимуществ над традиционными методами, которые требуют изоляции и культуры основных эффекторных клеток и использования проточной цитометрии для выявления активации Fc опосредованной эффекторных функций19,23,24 25, ,26. Во-первых протокол, описанные здесь может быть легко адаптирована для включения различных вирусных цели, FcγRs и антитела от разных видов (человека и мышиных). Во-вторых использование модифицированных клеток Jurkat линия, выражая, FcγR с Люцифераза Репортер ген под ядерный фактор активированные Т-клеток (NFAT) позволяет для assay большого формата, который может быть легко проанализирован с помощью пластины читатель измерения люминесценции. Здесь традиционной активации основного эффекторных клеток заменяется индукции NFAT-Люцифераза на антитела участие FcγR на поверхности клетки Jurkat. Этот assay формат 96-луночных пластина позволяет для измерения до четырех различных образцов в triplicates с семи разведения – количество выборок, которые могли бы быть громоздким, с использованием традиционных методов. Есть дополнительные очки рассмотреть этот assay, которые могут повлиять на дизайн экспериментов и интерпретации данных. Вирусная цели должны быть выражены на поверхности клеток, в порядке признания антитела. Чтобы избежать этого, целевой антиген (например внутренних вирусного белка) могут наноситься непосредственно на поверхности плиты. Однако это не еще не протестирована тщательно. Кроме того изменение линии клетки Jurkat выражает только один тип активации FcγR и не выразить любой тормозной FcγRs, в то время как главной ячейки линии Экспресс всех рецепторов в физиологических условиях.

Ранее мы использовали этот assay продемонстрировать что epitope специфики в рамках поликлональных играет решающую роль в регулировании Fc опосредованной эффекторных функций и оптимального активации антител зависимых клеточный ответ требует две точки контакт2827,. Здесь мы описываем метод, который оценивает способность стебель специфических моноклональных антител и активировать Мурина, активация FcγRIV. Хотя есть исключения29,30, большое количество широко реактивной антител целевых регионе антигенно сохранены стебель гемагглютинин и таким образом играют важную роль в развитии всеобщего гриппа вакцина.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Эксперименты, предварительно отформованных в этой рукописи были сделаны следующие Icahn школы медицины в институциональных кодекс этики и правил.

1. выражение гемагглютинина вируса гриппа через Transfection или инфекции

Трансфекция:

  1. Пластина человеческих эмбриональных почек (ГЭС 293T) клетки на плотности 2 х 104 клетки/хорошо в белой культуры ткани лечение 96-луночных пластины и дайте ему сидеть в течение 4 ч в инкубаторе 37 °C (с 5% CO2).
  2. Transfect клетки с 100 нг ДНК кодирования для вирусных гемагглютинин и 0,2 мкл Реагента трансфекции за Ну в общем объеме 50 мкл.
    Примечание: Оба плазмиды и transfectant реагент разводят в 1 x Opti-минимум основных СМИ (MEM) сокращение сыворотке среднего.
  3. После инкубации пластины в инкубатор 37 °C с 5% CO2 для 18 h, удалите трансфекции СМИ.

2. инфекции

  1. Плита A549 или Darby Мадин собак почечных клеток на плотности 2 х 104 клетки/хорошо в белой культуры ткани лечение 96-луночных пластины и расти по крайней мере 18 ч 37 °C инкубатор с 5% CO2.
  2. Разбавить вирус в 1 x MEM и заразить клетки на разносторонности инфекции 3, 1, или 0,33 за 1 ч в инкубаторе 37 °C с 5% CO2. Общий объем должен быть равен 100 мкл.
    Примечание: 10 x MEM разбавляется с водой, чтобы сделать 1 x MEM рабочей сток для разбавления вирус, упомянутых выше.
  3. После заражения, удалите посевным материалом и добавьте 100 мкл 1 x мем в пластину в отсутствие трипсина.
  4. Растут инфицированных клеток для 18-24 ч, 37 °C инкубатор с 5% CO2.

3. Оценка FcRg/NFAT-опосредованной активации деятельности Люцифераза моноклональные антитела или сера

  1. Во-первых замените средства роста transfected или зараженных клеток 25 мкл пробирного СМИ (1 x RPMI 1640 с 4% (vol/vol) низкая IgG плода говядину сера).
  2. В отдельную тарелку 96-луночных выполняют четырехкратное разведений антител интерес, начиная с 30 мкг/мл, с помощью анализа СМИ. Выполните разведений в triplicates и макетом плита пример иллюстрируется на рисунке 1A. Убедитесь в том включить элемент управления, что исключает антитела (без управления антитела), а также фон управления (только Пробирная буфера).
    Примечание: для обоих «не антитела» и фона элементов управления, добавить 25 мкл аналитического буфера вместо антитела.
  3. Передать 25 мкл антител серийно разреженных от шаг 3.2 соответствующие скважин на табличке transfected клеток или инфицированных клеток.
  4. Инкубируйте пластины в инкубатор 37 °C (с 5% CO2) за 15 мин.
  5. Добавьте 25 мкл соответствующие модифицированных эффекторных Jurkat ячейки, выражая мышиных FcgRIV или человеческого FcgRIIIa (75000 клеток/хорошо). Общий объем для каждого должно быть 75 мкл и начальный конечная концентрация антител в 10 мкг/мл (рис. 1B).
    Примечание: Для фона элемента управления, добавьте 25 мкл аналитического буфера вместо эффекторных клеток. Для изучения антитела зависимых клеточный фагоцитоза, может использоваться измененные ячейки Jurkat выражением человеческого FcgRIIa.
  6. Инкубируйте пластины в 37 ° C инкубатор с 5% CO2 на 6 ч.
  7. Оттепель и теплых Люцифераза субстрата буфер в воды 37 °C около 1 часа перед использованием.
    Примечание: Чтобы сделать буфер субстрата Люцифераза, воссоздания лиофилизированные Люцифераза пробирного субстрат в Пробирной буфер, предоставленный. Восстановленный субстрата буфер может храниться при-30 °C до-10 °C до шести недель.
  8. Добавление 75 мкл/хорошо Люцифераза субстрата буфера для всех скважин за исключением фона элемента управления.
  9. Читайте на люминометра.
  10. Рассчитать индукции сложить с помощью следующего уравнения: Сложите индукции = (индуцированные значение фона значение) / (стоимость фона значение не МАБ).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Мы продемонстрировали, что стебель конкретных МАБ, 6F12, но не голова конкретных конкретного головы МАБ, PY102, смогла активировать первичной естественных клеток-киллеров по upregulating CD107a и интерферона гамма19. Для моделирования стебель специфические антитела способность активировать первичных человеческих НК-клеток, мы показываем, что стебель конкретных МАБ, 6F12, энергично можно активировать модифицированных клеток Jurkat, выражая мышиных FcγRIV, ~ четырнадцатикратное. С другой стороны руководитель конкретного МАБ, PY102 и управления IgG делать не (рис. 2)28.

Расследовать если кратность инфекции (МВД) может повлиять на индукции Jurkat клеток, выражая мышиных FcγRIV, мы инфицированных клеток MDCK с X31 (реассортантных A вирус гриппа выражая гемагглютинин и нейраминидаза A/Hong Конг/1/68 (H3N2) вирус с внутренним сегментами A/Puerto Рико/8/34 (H1N1)) с MOI 3, 1, или 0,33. Двадцать четыре часа позже, Jurkat клетки, выражая мышиных FcγRIV и МАБ 9H 10 были добавлены к инфицированных клеток MDCK. На рисунке 3мы покажем, что клетки, инфицированные MOI 3 может вызвать люминесценции, примерно в 3 раза выше, чем MDCK клетки, инфицированные с мои 0,33.

Figure 1
Рисунок 1 : Схема образца пластины макета и состав экспериментальных групп. (A) Начальная концентрация для каждого образца, антитела на 10 мкг/мл и серийно разводили через пластину (столбец 1 к колонке 12) 4 раза. Каждый образец делается в triplicates. Строка G резервируется для элемента не МАБ и строка H является фоном. (B) окончательный объем для каждой экспериментальной группы перед добавлением Люцифераза субстрата буфера составляет 75 мкл. Следует отметить образца и «не МАБ группы» имеют 25 мкл эффекторных клеток добавил, в то время как фон элемента управления группы имеют 75 мкл пробирного средств массовой информации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2 : Индукция модифицированных Jurkat клеток, выражая FcgR стебель моноклональное антитело. A549 клетки были инфицированы с A/Puerto Рико/8/34 (H1N1) с MOI 3. На 24 часа пост инфекции, мышиных выражая FcγRIV Jurkat, были добавлены ячейки в сочетании с PY102, 6F12 или элемент управления IgG. Индукции Jurkat клеток были оценены сигнал люминесценции Светлячок Люцифераза под элементом ответа NFAT. Планки погрешностей = стандартных отклонений. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
Рисунок 3 : Многообразие инфекции затрагивает индукции стебель специфические антитела. MDCK клетки были инфицированы MOI 3, 1, или 0,33 с X31 (H3N2). В 24 ч пост инфекции, выражая FcgR Jurkat клеток в сочетании с 9H 10 (начального разбавления 10 мкг/мл) Добавлено. Индукции Jurkat клеток были оценены сигнал люминесценции Светлячок Люцифераза под элементом ответа NFAT. Планки погрешностей = стандартных отклонений. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Метод, описанный здесь позволяет измерить ха специфических моноклональных антител способность привлекать мышиных FcγRIV. Цель антигена, гемагглютинина вируса гриппа, выражается на поверхности клеток после заражения вирусом или трансфекции плазмидной ДНК. Assay далее поддается с использованием различных вирусных белков, поверхность выразил в сочетании с другими FcγRs (людей или Мурина). Кроме того, мы использовали образцы сыворотки для оценки способности в контекст поликлональных антител побудить ФК эффекторных функций (данные не показаны), которые могут обеспечить более актуальной информации при изучении адаптивного иммунного ответа вызванных инфекцией или вакцинации. Дополнительно мы предположить, что assay может быть изменено для измерения индукции антител, которые признают внутренней вирусные белки, непосредственно покрытие пластин с растворимого белка. Однако эта методология не были тщательно протестированы.

Индукция антител зависимых эффекторных функций может влияет несколько факторов, включая но не ограничиваясь эффекторных соотношение целевых (количество клеток эффекторов добавил в колодец), концентрация антител использовано, длина инкубации между Эффектор и целевых клетки и концентрация низкая IgG сыворотки, используемых в assay buffer.

Исторически стандартного анализа для измерения активности антител зависимой клеточной цитотоксичности антител или поликлональных сера включает первичной естественной убийца (НК) клетки заготавливаемым от доноров. Взаимодействие FcγR и активации внутриклеточных пути обычно определяется выражение маркеров активации CD107a и ИФН γ-19,-23,-24,-31. Хотя классические assay использует более релевантные эффекторных клеток, поскольку они не были инженерии генетически, доноров вариации аллельные различиями в FcγR могут повлиять на активации клеток NK и привести к вариации партии к партии. Альтернативных анализов, используется в качестве суррогатов для ADCC деятельности включают в себя FcγR на основе димер ELISA или убийство пробирного25выпуска хрома. Несмотря на то, что использование на основе димер ELISA FcγR высокой пропускной способности, проба не может быть физиологически соответствующие, как этот assay не использовать эффекторных клеток32. Хотя меры пробирного релиза хрома прямой убийство, это не высокую пропускную способность и требует первичных НК-клеток, которые снова доноров зависимых33. Один из последних методов описывают использование мышиных hybridomas Т-клеток, стабильно выражая химерных FcγR-CD3ζ цепи молекулы и меры активации через секреции IL-2. Assay описал аналогично методу описано здесь, который делает использование модифицированных Т-клеток как суррогат для эффекторных клеток, выразив особой активация FcγR34. Кроме того линия клетки (NK92.05-CD16), выражая FcγRIIIa может использоваться как эффекторных клеток и upregulation дегрануляции антигена, CD107a используется как маркер активации. Однако следует отметить использование вирионов и вирусных пептидов на ELISA пластины на последнем протоколе как белки, покрытием на гидрофобной поверхности не всегда могут резюмировать физиологические структуры антигены35.

Метод, описанный здесь это 96-луночных формат пробирного, использует физиологически соответствующих и изначально выразил Вирусная целей и могут быть изменены для человека или мышиных антител. Генетически модифицированные клетки Jurkat может быть сохранен в культуре и замораживают36. Хотя в настоящее время эффекторных клеток выразить только один активация FcγR, измеряя антитела зависимых клеточный эффекторные функции следует учитывать многие преимущества использования этого протокола, описанных в настоящем исследовании.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы заявляют отсутствие конфликта интересов.

Acknowledgments

Этот проект частично финансируется с федеральных средств от национального института аллергии и инфекционных болезней, национальные институты здравоохранения, Департамент здравоохранения и социальных служб, под CEIRS договора P01AI097092-04S1 (P.E.L.).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
A549 cells  ATCC CCL-185 Adenocarcinomic human alveolar basal epithelial cells
HEK 293T cells ATCC CRL-3216 Human embryonic kidney cells
Lipofectamine 2000 Life Technologies  11668019 Transfection reagent
1X Opti-MEM Reduced Serum Medium ThermoFisher Scientific 51985-034
White tissue culture treated 96-well plate Corning, Inc.  3917 Assay plates
10X MEM Gibco 11430-030
Jurkat cell expressing murine FcgRIV Promega M1201 Kit provides includes cells, Bio-Glo Luciferase assay system, 1X RPMI and low IgG serum
Jurkat cell expressing human FcgRIIIa Promega G7010 Kit provides includes cells, Bio-Glo Luciferase assay system, 1X RPMI and low IgG serum
Jurkat cell expressing human FcgRIIa Promega G9901 Kit provides includes cells, Bio-Glo Luciferase assay system, 1X RPMI and low IgG serum
Luminometer BioTek Synergy H1 Multi-Mode reader Luminescence plate reader
Bio-Glo Luciferase Assay System Promega G7940 Contains luciferase assay buffer and luciferase assay substrate
Madin Darby canine kidney cells ATCC CCL-34 Canine kidney cells

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Hobson, D., Curry, R. L., Beare, A. S., Ward-Gardner, A. The role of serum haemagglutination-inhibiting antibody in protection against challenge infection with influenza A2 and B viruses. J Hygiene. 70 (04), 767-777 (1972).
  2. Throsby, M., et al. Heterosubtypic neutralizing monoclonal antibodies cross-protective against H5N1 and H1N1 recovered from human IgM+ memory B cells. PloS One. 3 (12), e3942 (2008).
  3. Ekiert, D. C., et al. Antibody recognition of a highly conserved influenza virus epitope. Science. 324 (5924), 246-251 (2009).
  4. Ekiert, D. C., et al. A Highly Conserved Neutralizing Epitope on Group 2 Influenza A Viruses. Science. 333 (6044), 843-850 (2011).
  5. Tan, G. S., et al. A pan-H1 anti-hemagglutinin monoclonal antibody with potent broad-spectrum efficacy in vivo. J Virol. 86 (11), 6179-6188 (2012).
  6. Tan, G. S., et al. Characterization of a Broadly Neutralizing Monoclonal Antibody That Targets the Fusion Domain of Group 2 Influenza A Virus Hemagglutinin. J Virol. 88 (23), 13580-13592 (2014).
  7. Friesen, R. H. E., et al. A common solution to group 2 influenza virus neutralization. PNAS. 111 (1), 445-450 (2014).
  8. Dreyfus, C., et al. Highly Conserved Protective Epitopes on Influenza B Viruses. Science. 337 (6100), 1343-1348 (2012).
  9. Krammer, F., Palese, P., Steel, J. Advances in Universal Influenza Virus Vaccine Design and Antibody Mediated Therapies Based on Conserved Regions of the Hemagglutinin. Curr Top Microb and Immunol. , Chapter 408 (2014).
  10. Impagliazzo, A., et al. A stable trimeric influenza hemagglutinin stem as a broadly protective immunogen. Science. , (2015).
  11. Nachbagauer, R., Krammer, F. Clinical Microbiology and Infection. Clin Microb Infect. , 1-7 (2017).
  12. Krammer, F. Novel universal influenza virus vaccine approaches. Current opinion in virology. 17, 95 (2016).
  13. Steel, J., et al. Influenza virus vaccine based on the conserved hemagglutinin stalk domain. mBio. 1 (1), (2010).
  14. Krammer, F., Pica, N., Hai, R., Margine, I., Palese, P. Chimeric hemagglutinin influenza virus vaccine constructs elicit broadly protective stalk-specific antibodies. J Virol. 87 (12), 6542-6550 (2013).
  15. Krammer, F., Pica, N., Hai, R., Tan, G. S., Palese, P. Hemagglutinin Stalk-Reactive Antibodies Are Boosted following Sequential Infection with Seasonal and Pandemic H1N1 Influenza Virus in Mice. J Virol. 86 (19), 10302-10307 (2012).
  16. Hai, R., et al. Influenza viruses expressing chimeric hemagglutinins: globular head and stalk domains derived from different subtypes. J Virol. 86 (10), 5774-5781 (2012).
  17. Dunand, C. J. H., et al. Both Neutralizing and Non-Neutralizing Human H7N9 Influenza Vaccine-Induced Monoclonal Antibodies Confer Protection. Cell Host and Microbe. 19 (6), 800-813 (2016).
  18. Tan, G. S., et al. Broadly-Reactive Neutralizing and Non-neutralizing Antibodies Directed against the H7 Influenza Virus Hemagglutinin Reveal Divergent Mechanisms of Protection. PLoS Path. 12 (4), e1005578 (2016).
  19. DiLillo, D. J., Tan, G. S., Palese, P., Ravetch, J. V. Broadly neutralizing hemagglutinin stalk-specific antibodies require FcγR interactions for protection against influenza virus in vivo. Nat Med. 20 (2), 143-151 (2014).
  20. DiLillo, D. J., Palese, P., Wilson, P. C., Ravetch, J. V. Broadly neutralizing anti-influenza antibodies require Fc receptor engagement for in vivo protection. J Clin Invest. 126 (2), 605-610 (2016).
  21. Potter, C. W., Oxford, J. S. Determinants of immunity to influenza infection in man. Brit Med Bull. 35 (1), 69-75 (1979).
  22. Memoli, M. J., et al. Evaluation of Antihemagglutinin and Antineuraminidase Antibodies as Correlates of Protection in an Influenza A/H1N1 Virus Healthy Human Challenge Model. mBio. 7 (2), e00417 (2016).
  23. Jegaskanda, S., et al. Age-associated cross-reactive antibody-dependent cellular cytotoxicity toward 2009 pandemic influenza A virus subtype H1N1. J Infect Dis. 208 (7), 1051-1061 (2013).
  24. Jegaskanda, S., et al. Cross-Reactive Influenza-Specific Antibody-Dependent Cellular Cytotoxicity Antibodies in the Absence of Neutralizing Antibodies. J Immunol. 190 (4), 1837-1848 (2013).
  25. Jegaskanda, S., Wheatley, A. K., Kent, S. J. ScienceDirectAntibody-dependent cellular cytotoxicity and influenza virus. Curr Opin Virol. 22 (C), 89-96 (2017).
  26. Srivastava, V., et al. Identification of Dominant Antibody-Dependent Cell-Mediated Cytotoxicity Epitopes on the Hemagglutinin Antigen of Pandemic H1N1 Influenza Virus. J Virol. 87 (10), 5831-5840 (2013).
  27. He, W., et al. Epitope specificity plays a critical role in regulating antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity against influenza A virus. PNAS. 113 (42), 11931-11936 (2016).
  28. Leon, P. E., et al. Optimal activation of Fc-mediated effector functions by influenza virus hemagglutinin antibodies requires two points of contact. PNAS. , 201613225 (2016).
  29. Benjamin, E., et al. A Broadly Neutralizing Human Monoclonal Antibody Directed against a Novel Conserved Epitope on the Influenza Virus H3 Hemagglutinin Globular Head. J Virol. 88 (12), 6743-6750 (2014).
  30. Ekiert, D. C., Kashyap, A. K., et al. Cross-neutralization of influenza A viruses mediated by a single antibody loop. Nature. 488 (7417), 526-532 (2013).
  31. He, W., et al. Broadly Neutralizing Anti-Influenza Virus Antibodies: Enhancement of Neutralizing Potency in Polyclonal Mixtures and IgA Backbones. J Virol. 89 (7), 3610 (2015).
  32. Kristensen, A. B., et al. Antibody Responses with Fc-Mediated Functions after Vaccination of HIV-Infected Subjects with Trivalent Influenza Vaccine. J Virol. 90 (12), 5724-5734 (2016).
  33. Greenberg, S. B., Criswell, B. S., Six, H. R., Couch, R. B. Lymphocyte cytotoxicity to influenza virus-infected cells. II. Requirement for antibody and non-T lymphocytes. J Immunol (Baltimore, Md. : 1950). 119 (6), 2100-2106 (1977).
  34. Corrales-Aguilar, E., Trilling, M., et al. A novel assay for detecting virus-specific antibodies triggering activation of Fcγ receptors. J Immunol Meth. 387 (1-2), 21-35 (2013).
  35. de Vries, R. D., et al. Influenza virus-specific antibody dependent cellular cytoxicity induced by vaccination or natural infection. Vaccine. 35 (2), 238-247 (2017).
  36. Cheng, Z., et al. Development of a robust reporter-based ADCC assay with frozen, thaw-and-use cells to measure Fc effector function of therapeutic antibodies. J Immunol Meth. 414 (1), 69-81 (2014).

Tags

Иммунология выпуск 132,
Метод оценки Fc опосредованной эффекторных функций, вызванных гриппа гемагглютинин специфические антитела
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Bailey, M. J., Broecker, F., Leon,More

Bailey, M. J., Broecker, F., Leon, P. E., Tan, G. S. A Method to Assess Fc-mediated Effector Functions Induced by Influenza Hemagglutinin Specific Antibodies. J. Vis. Exp. (132), e56256, doi:10.3791/56256 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter