Summary
遺伝子破壊ミュータンス連鎖球菌の世代の簡易・迅速かつ比較的安価な手法について述べる株;この手法は、様々 な種の遺伝子破壊系統の世代の適応可能性があります。
Abstract
特定遺伝子の機能解明のための典型的な方法は、野生型株および興味の遺伝子が崩壊したひずみの比較の表現型解析を含みます。適切な抗生物質耐性マーカー遺伝子を含む遺伝子破壊 DNA コンストラクトは細菌の遺伝子破壊株の生成に役立ちます。しかし、遺伝子クローンの手順を必要とする従来の工法は、複雑で時間のかかるプロトコルを伴います。ここでは、比較的簡易、迅速かつコスト効果の高いミュータンス連鎖球菌の遺伝子破壊法を説明します。2 段階核融合ポリメラーゼの連鎖反応 (PCR) 中断構築および形質転換をエレクトロポレーションを生成する方式します。このメソッドは、PCR 以外の酵素反応を必要としませんし、また中断構築のデザインの面での柔軟性を提供しています。エレクトロポレーションの雇用は有能なセルの準備を容易に、変換効率を向上します。本法は、様々 な種の遺伝子破壊系統の世代の適応可能性があります。
Introduction
遺伝子機能解析は通常興味の特定の遺伝子が崩壊したひずみと野生型株の表現型の比較を行います。この遺伝子破壊法は、イチイ、哺乳類に細菌からの広い範囲で遺伝子機能解析のために利用されています。遺伝子破壊ひずみ; の生成に必要な遺伝子破壊コンストラクトとはこのデオキシリボ核酸 (DNA) の構築は上流と下流の並ぶターゲット遺伝子の領域を融合した抗生物質耐性マーカー遺伝子から成り、相同組換えによってゲノムに組み込まれています。遺伝子破壊ひずみは、抗生物質を含んでいる選択的なメディアを使用して分離することが。遺伝子破壊株の建設に使用される従来の方法ポリメラーゼの連鎖反応 (PCR)、適切なプラスミドの制限の消化に遺伝子の結紮によるターゲット遺伝子の増幅などの複雑な手順が必要酵素、および抗生物質耐性マーカー遺伝子を挿入する桿菌。このプロセスは時間がかかり、各ステップの成功に応じて、数週間に数日を取るです。さらに、混乱の構造のデザインはターゲット遺伝子の制限酵素サイトに依存です。これらの問題を解決するには DNA の PCR によるスプライシング方法1,2遺伝子破壊変異体キイロタマホコリカビ3と阻害の sp PCC68034のデザインが報告されています。本研究では混乱の建設のため (融合 2 ステップ PCR を指定) 変更された PCR ベース法を活用、比較的簡易、迅速かつ安価な方法で遺伝子破壊の連鎖球菌株を生成する方法を開発しました。構築および形質転換をエレクトロポレーション。
PCR ゲノム DNA、抗生物質耐性マーカー遺伝子 PCR のテンプレートとして、4 つのペアを適切に必要な 2 段階核融合には、オリゴヌクレオチドのプライマーが設計されています。最初のステップ (1st PCR)、ターゲット遺伝子、ターゲット 1 kb の並ぶ下流域の 1 kb の並ぶ上流域と抗生物質耐性マーカー遺伝子は PCR によって増幅されます。逆のプライマーの前方のプライマーは、増幅の上流と下流の 5' 領域には並ぶ領域、それぞれ、15 拠点マーカー遺伝子の両端に相補的なが含まれます。マーカー遺伝子増幅の前方および逆のプライマーの 5' 領域は同様に 15 拠点の標的遺伝子の上流の並ぶ領域の下端およびターゲット遺伝子の下流の並ぶ領域の上部の端に補足を含めるそれぞれ。したがって、3 つの増幅されたフラグメントは融合サイトで重複する 30 塩基対の領域を含みます。2 番目のステップ (2nd PCR)、1st PCR テンプレートとしてによって増幅される 3 つの断片を使用して入れ子になった、PCR のプライマーと PCR が行われます。テンプレートの相補的な領域はさらに、2nd PCR によって互いにリンクされます。最後に、相同組換えの構造は、電気穿孔法による野生型株に導入です。成功した遺伝子破壊は、特異的プライマーを用いた PCR による検証可能性があります。中断構築は高忠実度 DNA ポリメラーゼを使用して増幅される DNA の ligation または DNA 消化など、追加の酵素反応は構成要素を生成する必要ありません。さらに、ゲノム上の削除または保存領域はプライマー デザインに応じて柔軟に選択されるかもしれない。
現在の仕事では、連鎖球菌種の迅速で簡単な遺伝子の中断方法を示すことミュータンス連鎖球菌グルコシルトランスフェラーゼをエンコード、 gtfC遺伝子のコーディングの地域の全体の削除を行った。さらに、 gtfB-破壊ひずみは、同じ方法で生成されました。GtfCとgtfBの両方でエンコードされた花色は、齲蝕原性歯科バイオ フィルム開発5,6に貢献します。野生型のバイオ フィルム形成能力ひずみ (s.mutans WT) gtfC-ひずみ (, S. mutans ΔgtfC)、およびgtfBを中断-中断ひずみ (, S. mutans ΔgtfB) を評価しました。比較の表現型解析。このプロトコルは、追加種に遺伝子破壊の二段階法のアプリケーションを拡張し、幅広い分類群の遺伝子機能の研究の変更可能性があります。
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Protocol
1 プライマー デザイン
- 遺伝子破壊の検証と融合 2 ステップ PCR のプライマーを準備します。
。 注: 表 1 は、このプロトコルで使われるプライマー シーケンスを示しています。S. mutans Δ gtfC を生成するために使用 2 段フュージョン PCR 法の模式図を 図 1 に示します。- スペクチノマイシン耐性遺伝子 (spc r) 7 をゲノムのターゲット領域の交換用プライマーを設計します。このプロトコルは spc r gtfC 遺伝子のコーディング領域の全体を置き換えます 。
- には 5 に 15 拠点 spc r の上部と下部の両端に相補的なが含まれて ' を逆の地域とそれぞれのプライマーをダウン-フォワード。同様に、5 に 15 拠点 gtfC の上流の並ぶ領域の下端および gtfC の下流の並ぶ領域の上部の端に補足を含める ' spc r の地域-前方および spc r-プライマーをそれぞれ反転 ( 図 1 a).
注: シーケンスを逆、ダウン-前方の spc r - 前方、および spc r - 逆プライマー、中断構築定款のサイトによって自動的に決まります 。
- 設計を構成するまで進むと上下逆プライマー > 上流と下流に並ぶ gtfC 遺伝子の領域がそれぞれ 1 kb。最大フォワードの融解温度 (T m) を設定し、ダウン前後を逆プライマーの溶ける温度に従ってプライマーをそれぞれ上下逆 ( 図 1 a).
注: T m を決定する次の数式を参照して: T m (° C) = 2 (* NA + * NT) + 4 (* NC + * NG) - 5、* N はプライマー ヌクレオチド (A、T、C、または G) 指定した id の数を表します 。
- デザイン 2 nd PCR ( 図 1 b) の入り込まれたプライマー (N_up リバース N_up 前後).
注: 最も外側のプライマー (アップ前方と上下逆) は、2 nd PCR のプライマーとして使用することがあります、ただし、入り込まれたプライマー (N_up リバース N_up 前後) はこのプロトコルで設計されました。入り込まれたプライマーが 2 nd PCR、代表結果 に示すとおりの頻繁に要求します 。
- Spc r 特定設計プライマー。GtfC 混乱の画面にコロニー PCR のプライマーを使用します 。
- GtfC の検証のための設計プライマー中断します
。 注: これらのプライマーを使用して増幅される PCR の製品は、gtfC または spc r 上流または下流の並ぶ gtfC の領域との境界を跨ぐ。プライマー セット ' gtfC 最大フォワードと gtfC を逆 ' と ' gtfC ダウン-前方および gtfC ダウン逆 '、gtfC と ' gtfC 最大フォワードと spc r 2-逆 ' と ' spc r 2 前方および gtfC ダウン逆 ' spc r 固有です 。
2。ゲノム DNA の抽出 , S. mutans
- 連勝株式 s. 変異体 の UA159 脳心臓注入 (BHI) 寒天プレート上に。嫌気条件下 37 ° C で一晩プレートをインキュベートします 。
- 滅菌つまようじを使用して単一コロニーをピックアップし、5 mL BHI ブイヨンに接種します。嫌気条件下 37 ° C で一晩 s. 変異体 の文化をインキュベートします 。
- 2,000 × g. で 15 分間遠心する細菌の細胞培養は、リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) の 5 mL の細胞ペレットを再懸濁します 。
- 2,000 × g に 15 分間の遠心分離は、200 μ L の PBS で細胞ペレットを再懸濁します 。
- 製造元によって提供される指示に従ってビード暴行ベース ゲノム DNA 抽出キットを使用して懸濁液からゲノム DNA を抽出します。
- 転送懸濁液 2.0 mL のサンプル チューブ ガラス ビーズ (キットに付属) を含みます。細胞懸濁液に溶解液 (キットに付属) の 750 μ L を追加します 。
- は、しっかりとキャップし、ビーズの破壊装置のチューブ ホルダーでチューブを対称的に配置。5 分間最大速度で処理。スピン フィルター (キットに付属) 2.0 mL 管で 7,000 × g . で 1 分間遠心 10,000 × g に 1 分間遠心ビーズ殴られてサンプル転送清
- DNA 結合の追加 1,200 μ 濾液のバッファー (キットに付属)。2.0 mL 管および遠心 10,000 × g に 1 分間に 800 μ L の混合物 (キットに付属) スピン列を転送
- フローから破棄追加予備洗浄バッファー (キットに付属) を 200 μ l 添加スピン列を列行列を洗って、10,000 × g の流れを破棄に 1 分間遠心、スピンを 500 μ L の洗浄バッファー (キットに付属) を追加します。列に列行列を洗浄し、10,000 × g に 1 分間遠心
- スピン列を新しい 1.5 mL 遠心チューブに配置し、列のマトリックスに 100 μ L の溶出バッファー (キットに付属) を追加します 。
- 30 の遠心分離機 s 10,000 × g ゲノム DNA を溶出します。260 で吸光度を測定することによって DNA 濃度・純度を推定 nm と 280 nmusing 分光光度計 A 260/A 280 比が 1.8 より大きいことを確認します 。
3。PCR 増幅
- 1 st PCR テンプレート (表 1 参照) として s. 変異体 の WT ゲノムおよび合成 spc r 遺伝子を使用して PCR を実行します。GtfC 遺伝子の上流の並ぶ領域、gtfC 遺伝子のプライマーとして 1 ( 図 1 a)、上記の 3 つのセットを使用して spc r 遺伝子下流並ぶ領域を増幅します。表 2 および 表 3.
注: PCR のプライマーおよび試薬、増幅サイクルが要約 表 1 表 2、および 表 3 にそれぞれします 。
- 1% アガロースゲルの各 PCR の製品を分別し、ゲルのバンド カッターを使用して対応するバンドをです 。
- 回転カラムとシリカ膜ベースのゲル抽出キットを使用してゲルから各増幅 DNA 製品を浄化します。
- 転送きれいな遠心にゲルのスライスはチューブし、500 μ L (キットに付属) バッファーをバインドのミックスします。ゲルのスライスを完全に溶解するまでに 55 ° C 15 分で混合物をインキュベートします 。
- (キットに付属) コレクション チューブ (キットに付属) スピン列に配置、スピンの列にサンプルをロードし、30 の遠心分離機 11,000 × g で s。流れを破棄、シリカ膜を洗浄し、30 の遠心分離機回転カラムを洗浄バッファー (キットに付属) の 600 μ L を追加 11,000 × g で s.
- フロー ・ スルーとシリカ膜を乾燥する 11,000 × g で 2 分間遠心を破棄します 。
- スピン列を新しい 1.5 mL 遠心チューブに配置、50 μ l 添加溶出バッファー (キットに付属)、2 分間室温でインキュベートして 増幅された DNA を溶出する
- 11,000 で 2 分間遠心分離機 × g。260 で吸光度を測定することによって DNA 濃度・純度を推定 nm と 280 nmusing 分光光度計 A 260/A 280 比が 1.8 より大きいことを確認します 。
- 実行、2 nd 2 段階核融合 表 2 に従って、PCR のテンプレートとして 3 つの約モルの断片を用いた PCR の PCR および 表 3.
注: これらのフラグメント増幅された、ネストされたプライマーを使用して融着接続 ' N_up 進むと N_down リバース ' または最も外側のプライマー ' を前方と上下逆 ' ( 図 1 b)。PCR のプライマーおよび試薬、増幅サイクルはそれぞれ 表 1 表 2、および 表 3 に要約が 。
- 0.8% の agarose のゲルの PCR 反応混合物 (5 μ L) の 10 分の 1 をロードし、適切な増幅 ( 図 1) の生成を確認する期待されるバンドのサイズの増幅バンドのサイズを比較します 。
- 残り最終的な PCR の製品を精製することがなくエタノール沈殿物によって集中。
- 追加 55 μ L の超純粋な水 100 µL.Add に全体の音量を調整する残りの PCR の混合物 3 M 酢酸ナトリウム (10 μ L)、pH 5.2、100% エタノール (250 μ L) の 2.5 倍量の順の 10 分の 1 のボリューム。混合し、-80 で 30 分間凍結 ° C
- 4 ° C で 15,000 × g で 20 分間遠心管の底にペレットをチェック、上澄みを廃棄します。70% エタノール、4 ° C で 15,000 × g で 5 分間遠心の 1 mL にペレットを洗浄し、上澄みを廃棄します。約 30 分のペレットを風乾、10 μ L の超純水で溶解する 。
4。有能なセルの準備および細胞形質転換
- 連勝株式 s. 変異体 の UA159 BHI 寒天培地プレート上に。嫌気条件下 37 ° C で一晩プレートをインキュベートします 。
- 滅菌つまようじを使用して単一コロニーをピックアップし、5 mL BHI ブイヨンに接種します。嫌気条件下 37 ° C で一晩 s. 変異体 の文化をインキュベートします 。
- BHI スープ 50 mL に 2 mL の変異体米 の文化を転送し、600 の光学濃度 37 ° C で 6-8 時間インキュベート嫌気条件下で 0.2 0.4 nm (外径 600).
- 4 ° C で 2,000 × g で 15 分の細胞を遠心分離機、上澄みを廃棄、40 mL の 10% グリセロールの 40 mL に続いて冷たい水で二回セルを洗浄しています
。 注: 残留物質に影響を与える後続エレクトロポレーション 。
- は、10% のグリセロールの細胞ペレットの付着を低減、パスツール ピペットと慎重に上清を吸引します。新鮮な 10% のグリセロールの 1 mL の細胞を再懸濁します、各 1.5 mL 遠心チューブに懸濁液の 50 μ L を分注、使用直前まで-80 ° C で保存します 。
- は、冷たいの有能なセルのセクション 3 で説明した中断のコンストラクトの 5 μ L の 50 μ L 約数をミックスします。エレクトロポレーション キュベット (電極間の 0.2 cm 距離) の混合物に追加します。黄色ブドウ球菌 モードを採用 (1.8 kV、600 Ω、10 μ F、1 パルス) electroporate エレクトロポレーション装置の 。
- エレクトロポレーションの直後に BHI ブイヨンの 500 μ L のセルを中断し、スペクチノマイシン含む BHI 寒天培地プレートに懸濁液の 50 μ L を追加します
。 注: 余分な培養時間後電気穿孔法は必須ではありません。ただし、エレクトロポレーション後 1-2 時間インキュベーションは、変換効率が向上します 。
- 嫌気条件下 37 ° C で 2-6 日のプレートをインキュベートします
。 注: 上記のよう に, S. mutans Δ gtfB が構築されます。GtfB 遺伝子のコーディング領域の全体は , S. mutans Δ のエリスロマイシン耐性遺伝子 8 に置き換えられます gtfB。各 , S. mutans 緊張は嫌気条件下 37 ° C で BHI ブイヨンで培養です 。
5。遺伝子破壊と記憶域の検証
- ランダムなコロニーをピックアップし、コロニー の表 2 および 表 3 に従って PCR を実行する pcr にそれらを接種します。PCR のプライマーおよび試薬、増幅サイクルはそれぞれ 表 1 表 2、および 表 3 に要約が 。
- Spc r を確認する 1% の agarose のゲルの PCR 反応混合物をロード-特定の DNA バンド 。
- 嫌気条件下 37 ° C で 2 日間スープ滅菌つまようじとスペクチノマイシン含む BHI の 10 mL のサブカルチャーのセルを使用して肯定的なコロニーを拾う 。
- , S. mutans Δ の生成を確認 gtfC。
- は、細胞懸濁液を均等に分割します。上記で説明した細胞からゲノム DNA を抽出 (ステップ 2.3。 2.5.5 に。)。表 2 および 表 3 に従って gtfC 中断 (表 1) の検証のためのプライマーを用いて PCR のテンプレートとしてゲノム DNA を PCR を実行します
。 注: PCR のプライマー、試薬、および増幅サイクルのとおり 表 1 表 2、および 表 3 にそれぞれします 。
- 2% の agarose のゲルの pcr を読み込み、適切な増幅 。 の生成を確認する期待されるバンドのサイズの増幅バンド サイズを比較
- 2,000 × g で 15 分の残りの細胞懸濁液を遠心分離機で 4 ° C は、5 mL の PBS で細胞ペレットを再懸濁します 。
- 4 で 2,000 × g で 15 分間遠心する C. セル 25% グリセロールを含んで BHI ブイヨン 1.5 mL にペレットし、-80 ° Cor-20 ° C で保存を再懸濁します °
- は、細胞懸濁液を均等に分割します。上記で説明した細胞からゲノム DNA を抽出 (ステップ 2.3。 2.5.5 に。)。表 2 および 表 3 に従って gtfC 中断 (表 1) の検証のためのプライマーを用いて PCR のテンプレートとしてゲノム DNA を PCR を実行します
6。表現型解析
BHI 寒天培地プレート上に- 連勝各 変異体米 のひずみ。嫌気条件下 37 ° C で一晩プレートをインキュベートします 。
- 滅菌つまようじを使用して単一コロニーをピックアップし、BHI ブイヨン適切な抗生物質の有無の 2 mL に接種します。嫌気条件下 37 ° C で一晩インキュベートします 。
- ガラス試験管に抗生物質がない 1% や 5% のショ糖を含む BHI 培地 2 mL に一晩文化懸濁液 20 μ L を接種する; 試験管、嫌気条件下 37 ° C で一晩傾斜した位置の細胞の培養します 。
- 渦ガラス試験管 10 s 文化懸濁液をデカントし、。3 回蒸溜水で試験管を洗います。0.25% クマシーブリリアント管壁にバイオ フィルムを染色する (CBB) を青し、し、1 分間インキュベートの 1 mL を追加
- 染色液をデカント、3 回、蒸留水を試験管を洗うし、試験管をドライします 。
- 色密度と、CBB 染色-バイオ フィルムの表現型解析におけるバイオ フィルム形成能の決定を視覚的に拡張機能を評価します 。
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Representative Results
図 2は 1st PCR からそれぞれの製品のサイズを示す 1% の agarose のゲルの観察、良いと一致した予測サイズ約 1 kb の。図 3は、2nd PCR の製品のゲルの電気泳動分析を示しています。図 4は、 , S. mutansコロニー破壊コンストラクトとコロニー PCR の製品のゲルの電気泳動分析変換を示しています。すべてのコロニーから amplicons 予測サイズであった。 PCR の製品のgtfC混乱とゲル電気泳動法の検証のためのプライマー結合部位を図 5に示します。GtfC -特定のプライマー セットを使用して増幅した PCR 産物は、 spcrを使用して PCR の製品が得られるに対し、 , S. mutans ΔgtfCではなく, S. mutans WT で確認された-特定プライマー セットが確認された, S. mutans ΔgtfC、しかしない, S. mutans重量の各, S. mutans緊張のショ糖由来バイオ フィルム形成能を示します図 6 。付着バイオ フィルムはショ糖の存在下で, S. mutans WT によって形成されました。S. mutans ΔgtfBの付着バイオ フィルム形成能は, S. mutans重量の, S. mutans ΔgtfC展示スクロース存在下で非常に低い付着バイオ フィルム形成よりも低かった。
図 2 段階融合 PCR 1:Strategy.Sの模式図。mutans ΔgtfC建設が表示されます。遺伝子の長さがスケールします。(A)上流と下流の並ぶgtfCとspcr領域遺伝子座は PCR によって増幅されました。テンプレートのプライマー結合部位は、同一のパターンで示されます。(B)第 2 PCR のステップを行った (テンプレートとして) 入り込まれたプライマーの最初の PCR のステップで増幅された 3 の断片を使用しています。(C)細菌の菌株の相同組換え破壊コンストラクトが得られました。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 2: 代表的な電気泳動から 1st PCR の製品のです。GtfCの上流の並ぶ領域とgtfCとspcrの下流の並ぶ地域の産物が表示されます。M: 分子マーカー。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 3: 2nd PCR の製品の代表的なゲルの電気泳動。入り込まれたプライマーで増幅製品と最も外側のプライマーが表示されます。実線の矢印は、中断のコンストラクトの予測サイズを示します。M: 分子マーカー。
図 4:コロニー PCR (A). gtfC中断のためのスクリーニングスペクチノマイシン含む BHI 寒天培地プレート上に, S. mutansコロニーそれぞれの丸囲み数字はコロニーの ID を示します(B)代表的な電気泳動のコロニー PCR の製品;各丸の車線数は、図 4 aに対応する植民地 ID を示します。M: 分子マーカーは、WT: 野生型ゲノム DNA をテンプレートとして使用します。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
GtfC PCR による中断の図 5: 検証します。(A)のプライマー結合部位。遺伝子の長さがスケールします。PCR を行った, S. mutansゲノム DNA をテンプレートとして使用プライマー セット: gtfC最大フォワードとgtfCを逆 ( gtfCの特定);gtfCダウン-前方およびgtfCを上下逆 ( gtfCの特定);gtfC最大フォワードとspcr2 逆 (特定のspcr);spcr2 前方およびgtfCを上下逆 (特定のspcr)。(B)代表的なゲル電気泳動 PCR の製品;各丸のレーン数は図 5 aに対応するプライマーを示します。マーカー バンドのラベルに単一の電気泳動イメージが分かれています。M: 分子マーカー (100 塩基対梯子)。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 6: バイオ フィルム開発に基づく表現型解析します。各, S. mutans緊張によって形成されるショ糖由来のバイオ フィルムは、鮮やかなブルーで染色しました。WT: , S. mutans WT、ΔgtfB: , S. mutans ΔgtfB、ΔgtfC: , S. mutans ΔgtfC.この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
| プライマー | シーケンス (5' 3') | 期待されるバンドのサイズ (bp) | |
| gtfC中断の 2 ステップ PCR | |||
| 第 1 回の PCR | |||
| 最大フォワード 逆 |
AAGATATTTTGATAAGCAATCTGGGAACATGTATC CGAACGAAAATCGATATTTCCTCCAAAAATAGTTA |
1,036 | |
| spcr-フォワード spcr-リバース |
ATTTTTGGAGGAAATATCGATTTTCGTTCGTGAAT CTTCTAAGATAAGTACATATGCAAGGGTTTATTGT |
1,188 | |
| ダウン-フォワード 上下逆 |
AAACCCTTGCATATGTACTTATCTTAGAAGAATAG TTAAGAGCAAGTTTAAGATAGAACATGTTACTCAC |
1,059 | |
| 第 2 PCR | |||
| N_up フォワード N_down リバース |
TTTTATTGAAAACGAAGAAGGTAAATGGCTGTATC GCCATACTTAGAGAAATTTCTTTGCTAAATTCTTG |
3,132 | |
| GtfC破壊の検証 | |||
| コロニー PCR のスクリーニングのため | |||
| S _spcr-フォワード S _spcr-リバース |
GGATCAGGAGTTGAGAGTGGACTAAAACCAAATAG | 535 | |
| 最終確認 | |||
| gtfC最大フォワード gtfCを逆 |
TACGGCCGTATCAGTTATTACGATGCTAACTCTGG GGTTGGTTGAGATGTTGCTGAAGTTGCTGTACTTG |
498 | |
| gtfCダウン-フォワード gtfCを上下逆 |
GCCTTAATTGGTTGGCATGTTGTTGAAGGAAGACG TTGTCCACTTTGAAGTCAACGTCTTGCAAGGCATG |
557 | |
| gtfC最大フォワード spcr2 リバース |
上記で説明しました。 CCACTCTCAACTCCTGATCCAAACATGTAAGTACC |
641 | |
| spcr2 フォワード gtfCを上下逆 |
GTGGCTGAATCTTCTCCATTAGAACATAGGGAGAG 上記で説明しました。 |
623 | |
| 試薬 | 原液濃度 | ボリューム | 最終濃度 |
| Dna ポリメラーゼのプレミックス | 2 × | 25 Μ L | 1 × |
| 前方のプライマー | 5 Μ M | 2 Μ L | 0.2 Μ M |
| 逆プライマー | 5 Μ M | 2 Μ L | 0.2 Μ M |
| テンプレート DNA | 変数 | 変数 | 変数 * * * * * * |
| 脱イオン水 | - | 50 μ L まで | - |
表 2:PCR の試薬。* 1stステップ pcr 法の100 ng。* * 2nd pcr 法の1stステップ PCR 増幅の 30-50 ng の各。コロニー pcr 法の細菌細胞の反応混合物への直接添加します。
| サイクルのステップ | 温度 | 時間 | サイクル数 |
| 初期変性 | 98 ° C | 2 分 | 1 |
| 変性 アニール 拡張機能 |
98 ° C 55 ° C 72 ° C |
10 s 5 s 私アンプリコン依存 (1 分/1 kbp) |
35 |
| 最終的な拡張 | 72 ° C | 私アンプリコン依存 (1 分/1 kbp) |
1 |
テーブル 3:PCR 増幅サイクル。
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Discussion
現在のプロトコルの上流と下流の並ぶゲノムのターゲット領域の領域に約 1 kb を増幅する 1st PCR のためのプライマーを設計されなければなりません。このような長い並ぶシーケンスは相同組換えの効率を改善する必要があります。
プライマーのシーケンス (逆アップ、ダウン-フォワード、 spcr-前方、およびspcr-逆) このプロトコルで中断構築定款のサイトに基づいてが決定された自動的に。各プライマーには 15 拠点 5' 領域で 2nd PCR テンプレートの終わりに補足が含まれます。長い結合部位破壊コンストラクトのより効率的な生産が可能にします。各プライマーの 5' 領域で少なくとも 10 相補的な塩基を含めることを推奨します9。
入り込まれたプライマー (N_up リバース N_up 前後) は、最も外側のプライマー (上下逆アップ前後) よりもむしろ 2nd PCR に使用されました。2nd PCR の最も外側のプライマーの使用はいくつかの場合に有益であります。(データは示されていない) の最も外側のプライマーを用いて, S. mutans ΔgtfBの混乱の構造の正常な拡大が達成されました。しかし、2ndの PCR のステップの最も外側のプライマーの使用は頻繁に不十分な PCR 増幅、図 3に示すように結果します。解決するにこの問題9に入り込まれたプライマーの使用が見つかりました。ただし、中断構築が大幅に増幅機能はない入り込まれたプライマーを使用してとき、第 1 回の PCR で使用されるプライマーの再設計は要求されるかもしれない。
コロニー PCR により遺伝子破壊株の便利なスクリーニングできます。Spcrを使用して遺伝子破壊株の生成に知られていたシーケンスを増幅するプライマーを適用できます。エレクトロポレーションは、エレクトロポレーションを使用して達成の変形の効率は一般により他のプロシージャで有効になって, S. mutans WT、破壊構造の導入に使われました。連鎖球菌10、11,12能力刺激ペプチド、ウマ血清または馬の血清を使用して変換が認められています。エレクトロポレーション装置が必要です。 が、プロシージャの有能なセル準備など、関連する代替方法10,11のそれらよりはるかに簡単です。さらに、動物福祉の観点からは、電気穿孔法の使用をお勧めします。
この議定書は、番号 ofantibiotic マーカーによって、複数の遺伝子破壊に適用されます。GtfC- とgtfBの両方を生成する- , S. mutans緊張、 gtfCの DNA の構造物などを破壊-2 ステップ PCR で建設中断可能性があります, S. mutans Δ に変換するgtfB.S. mutans ΔgtfCと, S. mutans ΔgtfBゲノム必要がありますの相同の配列を維持するために 2 ステップ PCR のテンプレートとして使用するこの場合は、 gtfCとgtfBが隣接しているため相同再結合。実際、遺伝子破壊, S. mutansをダブル歪み以前この議定書9によって作成されました。
S. mutansの遺伝子破壊の議定書は、様々 な種の遺伝子破壊系統の世代の適応可能性があります。このプロトコルでは、従来のプロトコルに関連する遺伝子クローニングのステップは必要ありません。さらに、PCR は唯一の必要な酵素反応;したがって、制限の酵素、リガーゼ、大腸菌プラスミッドのベクトルは必要ありません。さらに、現在のプロトコル構造デザインはターゲット遺伝子の制限酵素サイトの独立した中断構築のデザインの面で柔軟性が提供しています。研究者は、削除または上流の並ぶ領域の増幅用逆プライマーと下流の並ぶ地域の拡大のため前方のプライマーを設計するゲノムに保存されている地域を定めることができます。並ぶ領域これらはすぐ上流であり、DNA の領域の下流ですぐに目的の削除、それぞれ。このような柔軟性は、近接遺伝子の発現に対する極性効果など、外部からの影響を減らすために使用可能性があります。
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Disclosures
著者が明らかに何もありません。
Acknowledgments
この作業は、[許可番号 16 K 15860 へ曲がらなければなりません、15 K 15777 ニューハンプシャー] 学術振興会によって支えられました。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Streptococus mutans | Stock strain in the lab. | Wild-type strain (Strain UA159) | |
| Genomic DNA extraction kit | Zymo Research | D6005 | |
| Bead-beating disruption apparatus | Taitec | GM-01 | |
| Synthetic genes | Eurofins Genomics | Custom-ordered | Spectinomycin- and erythromycin-resistance gene |
| Thermal cycler | Astec | PC-708 | |
| PCR primers | Eurofins Genomics | Custom-ordered | 35 bases in length |
| DNA polymerase | Takara | R045A | High-fidelity DNA polymerase |
| Gel extraction kit | Nippon Genetics | FG-91202 | DNA extraction from agarose gel |
| Gel band cutter | Nippon Genetics | FG-830 | |
| Spectrophotometer | Beckman Coulter | DU 800 | |
| Electroporator | Bio-rad | 1652100 | |
| Electroporation cuvette | Bio-rad | 1652086 | 0.2-cm gap |
| Anaeropack | Mitsubishi Gas Chemical | A-03 | Anaerobic culture system |
| Brain heart infusion broth | Becton, Dickinson | 237500 | Bacterial culture media |
| Spectinomycin | Wako | 195-11531 | Antibiotics |
| Erythromycin | Wako | 057-07151 | Antibiotics |
| Sucrose | Wako | 196-00015 | For biofilm development |
| CBB R-250 | Wako | 031-17922 | For biofilm staining |
References
- Horton, R. M., Hunt, H. D., Ho, S. N., Pullen, J. K., Pease, L. R. Engineering hybrid genes without the use of restriction enzymes: gene splicing by overlap extension. Gene. 77 (1), 61-68 (1989).
- Horton, R. M., Cai, Z., Ho, S. M., Pease, L. R. Gene splicing by overlap extension: tailor-made genes using the polymerase chain reaction. BioTechniques. 54 (3), 129-133 (2013).
- Kuwayama, H., et al. PCR-mediated generation of a gene disruption construct without the use of DNA ligase and plasmid vectors. Nucleic Acids Res. 30 (2), E2 (2002).
- Sakurai, I., Mizusawa, N., Wada, H., Sato, N. Digalactosyldiacylglycerol is required for stabilization of the oxygen-evolving complex in photosystem II. Plant Physiol. 145 (4), 1361-1370 (2007).
- Aoki, H., Shiroza, T., Hayakawa, M., Sato, S., Kuramitsu, H. K. Cloning of a Streptococcus mutans glucosyltransferase gene coding for insoluble glucan synthesis. Infect Immun. 53 (3), 587-594 (1986).
- Hanada, N., Kuramitsu, H. K. Isolation and characterization of the Streptococcus mutans gtfC gene, coding for synthesis of both soluble and insoluble glucans. Infect Immun. 56 (8), 1999-2005 (1988).
- LeBlanc, D. J., Lee, L. N., Inamine, J. M. Cloning and nucleotide base sequence analysis of a spectinomycin adenyltransferase AAD(9) determinant from Enterococcus faecalis. Antimicrob Agents Chemother. 35 (9), 1804-1810 (1991).
- Macrina, F. L., Tobian, J. A., Jones, K. R., Evans, R. P., Clewell, D. B. A cloning vector able to replicate in Escherichia coli and Streptococcus sanguis. Gene. 19 (3), 345-353 (1982).
- Murata, T., Hanada, N. Contribution of chloride channel permease to fluoride resistance in Streptococcus mutans. FEMS Microbiol Lett. 363 (11), (2016).
- Perry, D., Wondrack, L. M., Kuramitsu, H. K. Genetic transformation of putative cariogenic properties in Streptococcus mutans. Infect Immun. 41 (2), 722-727 (1983).
- Lau, P. C., Sung, C. K., Lee, J. H., Morrison, D. A., Cvitkovitch, D. G. PCR ligation mutagenesis in transformable streptococci: application and efficiency. J Microbiol Methods. 49 (2), 193-205 (2002).
- Ge, X., Xu, P. Genome-wide gene deletions in Streptococcus sanguinis by high throughput PCR. J Vis Exp. (69), (2012).
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遺伝学、問題 128、遺伝子破壊、DNA コンストラクト、ポリメラーゼの連鎖反応、プライマー設計、抗生物質耐性マーカー遺伝子、ミュータンス連鎖球菌、エレクトロポレーション、相同組換え View Video
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