Summary
本文概述了一套光和电子显微镜技术, 研究昆虫的内外眼解剖。这些技术包括针对 ant 眼睛的工作而优化的几种传统方法, 详细的疑难解答, 以及针对不同样本和感兴趣区域的优化建议。
Abstract
本文概述了一套光学显微镜技术 (LM) 和电子显微镜 (EM), 可用于研究昆虫的内外眼解剖。这包括传统的组织学技术优化的工作在蚂蚁的眼睛, 并适应工作与其他技术, 如透射电子显微镜 (TEM) 和扫描电子显微镜 (SEM)。这些技术虽然非常有用, 但对于新手技术人员来说是很困难的, 因此本文将重点放在对不同标本的故障排除和优化上。我们提供了整个标本 (照片显微镜和 SEM) 成像技术的信息, 并讨论了它们的优缺点。我们强调了用于确定整个眼睛的透镜直径的技术, 并讨论了改进的新方法。最后, 我们讨论了制备样品的 LM 和 TEM, 切片, 染色和成像这些样品的技术。我们讨论在准备样本时可能遇到的障碍, 以及如何在它们周围进行最佳导航。
Introduction
对于大多数动物来说, 视觉是一种重要的感官形态。在定位目标、建立和遵守路线以及获取罗盘信息1、2的背景下, 视觉尤为重要。昆虫检测视觉信息使用一对复眼, 在某些情况下, 一个到三背放置简单的眼睛称为单眼3,4,5。
蚂蚁的眼睛特别感兴趣, 因为蚂蚁的多样性非常多样, 它们在物种中保存了一些关键的特性。尽管解剖、大小和生态学有巨大的变化, 但绝大多数物种都是群居的, 生活在殖民地;因此, 不同物种在中心位置和资源之间来回导航方面面临着类似的视觉挑战。在蚂蚁之间, 同样的基本眼睛 bauplan 可以观察到的动物范围从 0.5-26 毫米的体长, 从完全白天到严格夜间物种, 从缓慢的步行地下到跳跃的视觉捕食者6,7, 8、9、10。所有这些在生态学和行为上的惊人的差异引起了相同的基本眼睛结构的无数置换, 以适应不同的环境、生活方式和身体尺寸1112。因此, 研究蚂蚁的视觉生态学为确定的调查者提供了一个真正的宝库的可能性。
理解昆虫的视觉系统对于了解它们的行为能力是至关重要的。这是显而易见的综合研究, 很好地结合了解剖学与生态学和行为的成功在几个昆虫组 (例如, 参考13,14,15,16,17). 虽然蚂蚁导航和蚂蚁行为在一般的领域已经相当成功, 但很少有人把重点放在一些选定物种之外的蚂蚁视觉上。在这里, 我们将详细阐述调查蚂蚁眼设计的技术。当我们将重点放在蚂蚁, 这些技术可以应用, 稍加修改, 其他昆虫, 太。
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Protocol
1. 试样制备
注意: 有必要首先了解复眼的相对位置和单眼, 并在头部。这可以通过获取头部背景色的图像来实现。为此, 我们建议处理样品的显微或使用 SEM 技术。下面是这两个过程所涉及的步骤。
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标本采集
- 将标本直接收集到70% 乙醇中。尽可能收集不同的种姓。
- 标记带有时间、日期和地点的标本以及任何其他相关观察 (例如, 在觅食时收集, 交配聚集, 树枝内嵌套,等等)
- 收集足够多的标本, 在每次治疗中有多个复制。
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显微和 Z 堆叠
- 空气干燥的标本, 并安装在三角形点卡, 使用水溶性胶水, 然后在昆虫引脚。有关详细信息, 请参见参考18。
- 图像使用高放大显微镜与 Z 步进电机和彩色相机。
- 使用扩散器对标本进行均匀照明。
- 在不同的焦点平面上捕获图像, 并以无损的文件格式 (如 tiff) 保存图像, 并使用商业可用的软件将其集中在堆栈上。
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扫描电子显微
注: 用乙醇彻底清洁所有工具和工作表面, 以避免灰尘和其他微粒污染试样。- 在酒精中的脱水样品隔夜和空气干燥的培养皿。
- 用锋利的刀片将头部与身体的其余部分分开。
- 使用导电碳带或标签将头部安装在所需的视角 (如, 背朝上)。将碳带切成薄片, 并将其折叠以支撑头部胶囊。
- 使用溅射涂布机将黄金应用于试样表面2分钟, 在20毫安的旋转阶段。时间和电流可能需要根据仪器调整。
- 用新鲜碳带或标签将样品转移到新的铝存根上。
注: 未涂布的碳将提供一个黑色的背景, 但转移标本可能会损害金涂层。 - 用解剖显微镜检查样品的方位是否正确, 并根据需要调整一双细钳或类似的工具。注意不要刮伤金镀层;尽可能少的处理。
- 将试样加载到扫描电镜存根架上, 记下存根和试样相对的位置。
注: 一些中小型公司配备了舞台摄像头, 但许多不是, 它可能很难找到高放大率的小标本。 - 图像的标本。使用低加速电压, 以避免充电和小孔径的良好景深。
注意: 在与专门使用特定仪器的技术人员协商时, 设置最优化。
2. 量化小平面数和直径
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角膜复制品
- 使用乙醇保存的蚂蚁或为此目的安装的脚 (步骤 1.1.1)。
- 在昆虫针上或橡皮泥上安装动物。如果头部相对较大, 其余的身体部分可以被移除。
- 使用昆虫针或细牙签拾起一小滴快速干燥无色指甲油并且迅速地传播它在眼睛。确保针脚不会划伤眼睛。指甲油应该覆盖整个眼睛和一些周围的头部胶囊。
注意: 重要的是指甲油的厚度相对均匀的眼睛。 - 把指甲油放在室温下。
- 一旦它完全设置, 使用一个细的昆虫别针轻轻地抬起副本从头部胶囊周围的眼睛。
- 使用一副干净的镊子来举起复制品, 抓住覆盖头部而不是眼睛的部分。
- 确保眼睛方向的意识: 前、后、背和腹区域。
- 将复制副本放在玻璃幻灯片上。使用刀片修剪复制件, 小心地删除多余的材料周围的眼睛。用一根针或一副钳子来防止复制品移动。
- 如果眼睛是非常凸的, 使用剃刀刀片, 使3-4 良好的部分径向切口周围的边缘, 以帮助 ' 拼合 ' 的副本。如果眼睛是相对平坦的, 就没有必要做这样的切口。
- 将封面轻轻地放在眼睛副本上, 以确保复制副本的方向是已知的。不要施加压力, 因为这样可以消除指甲油上的角膜印象。
- 密封的片使用很少指甲油在四个角落。如果指甲油在盖板和玻片之间流动, 就会损坏复制品。
- 在复合显微镜上成像幻灯片。
注意: 如果只有一些方面是焦点, 那么这表明眼睛副本是不够扁平。丢弃并从步骤2.1.3 重新开始。 - 将图像导入到自由可用的程序中, 如 ImageJ/斐济, 可以测量每个复眼的复眼数和大小。
注意: 此方法也可用于准备单眼的副本。因为它是一个单一的镜头, 我们建议保持所有的单眼在一个副本。
3. 分析眼睛的结构
注意: 在大多数情况下, 研究眼睛的解剖需要两种互补的 LM 和 TEM 技术。初始处理阶段需要 LM 和 TEM 的相似技术。区别从剖切阶段起。处理样品需要使用危险化学品, 必须小心处理, 并负责任地丢弃。使用个人防护设备, 在通风柜中工作, 始终阅读安全数据表 (SDS), 并在启动前进行风险评估。
- 解剖
- 麻醉试样通过冷却或暴露于气体 CO2。
- CO2麻醉非常快 (一般低于1分钟), 应注意避免过度曝光, 因为这可能导致标本死亡。如果使用干冰颗粒 (固态 CO2) 避免与标本直接接触, 因为这会导致冷灼伤。
- 冷麻醉较慢;4° c 是充足的, 并且更冷的温度不推荐。为该物种建立适当的冷却时间。大或耐寒蚂蚁如公牛蚂蚁可能需要 > 10 分钟才能完全固定, 而较小的物种可能只需要1-2 分钟. 过度冷却会杀死标本 (避免与冰直接接触)。标本最好是存放在小, 泡沫塞, 塑料容器和放置在一个冰箱, 他们可以观察, 而不是在一个电动冰箱或冰柜。
- 将标本放置在培养皿上, 并在解剖显微镜下进行调整。快速工作是重要的, 以保持麻醉和避免退化的组织一旦作出切口 (这可能发生在几秒钟内)。
- 用镊子取下触角。如果与蛰虫一起工作, 最好先切除胃, 以免被蛰伤。
- 用锋利的刀片除去嘴部;钳可以用来保存标本。切开眼睛的前部 (大标本) 或尽可能靠近眼睛 (小标本), 而不拉扯大脑, 因为这可能会撕裂视网膜。
- 准备打开头部胶囊角度的标本, 使第一个切口是指着;这可能是在解剖显微镜下进行, 同时持有标本在钳或在视觉控制, 而持有标本之间的拇指和前指。
- 通过头部进行横切口切除头部的腹部;部分腹侧眼可移除大种, 以改善固定和浸润。此时头部仍应附着在身体上。
- 通过在复眼后方进行冠状切口, 从身体中切断头部囊。
- 将经解剖的头胶囊与复合眼放在冰冷定影液中: 2.5% 戊二醛和2% 甲醛磷酸盐缓冲剂 (pH 7.2-7.5)。
注意: 定影液具有腐蚀性和毒性;穿戴适当的保护和工作在通风罩。
注意: 重要的是要迅速的工作, 以阻止神经组织变性。解剖应完成在2分钟或更少 (有效的解剖可能需要一些实践)。
注意: 如果眼睛需要适应明亮或黑暗的条件, 那么首先将动物暴露在需要的光照条件下几个小时。在各自的光照条件下进行解剖。解剖可以在红色的灯光下进行, 以模拟黑暗。
- 麻醉试样通过冷却或暴露于气体 CO2。
- 试样加工
- 将样品保存在室温下, 在一个轨道振动筛上运动, 2 h. 大型标本可能需要更长的固定时间。
- 取下定影液, 并妥善处理。在室温磷酸缓冲液中洗涤样品 (3 次, 每瓶5分钟)。
注: 磷酸缓冲液包括8克氯化钠, 0.2 克氯化钾, 1.44克 Na2HPO4, 0.244 g 在蒸馏 H2O (pH 4) 的1升2中7.2。 - 卸下磷酸盐缓冲并添加 2% OsO4.将试样罐放在通风罩上1-2 小时的振动筛上。这是一个 post-fixation 的步骤来修复脂肪, 也为 TEM 提供对比。
注: 锇固定时间受标本大小影响;作为粗略的经验法则, 每 1 mm3计算 1 h 固定。 - 除去锇溶液并适当地处理它。将样品在室温缓冲液中洗涤 (3 次, 每次5分钟) 放在振动筛上。
- 将试样放在乙醇或丙酮浓度增加的情况下脱水;例如, 50、70、80和95% 分别为10分钟和最后 100% (2 次, 每15分钟)。将试样放在溶液变化的振动筛上。
注: 如有必要, 标本可贮存于70% 乙醇过夜。 - 排出乙醇, 加入100% 丙酮。在振动筛上留20分钟 (如果在丙酮中脱水, 请跳过这一步)。用新鲜丙酮代替, 再留出20分钟。
- 用树脂将以下丙酮的比率渗透到组织中: 2:1 (3 小时)、1:1 (隔夜)、1:2 (4 h) 和纯树脂 (隔夜)。每一个步骤都在通风柜内的振动筛上留下标本, 并将容器盖在最后两步。
注: 树脂太粘, 不能排干, 所以在每一步都必须将试样移到新的一次性容器中。 - 准备块以装载示例。块可以是定制的切割丙烯酸玻璃成小矩形块 (1.5 x 0.5 x 0.3 厘米)。块也可以通过浇注环氧树脂 (有许多商业套件可用) 到一个硅模具, 然后治愈它在12-14 小时的烤箱在60° c。
注意: 未 (液体) 树脂是致癌的, 应回到烤箱, 直到完全硬化。 - 将块垂直放置在模具中。小心地从液体树脂中抽取样品, 允许多余的树脂流失, 并将试样放在块的顶部。少量的额外的树脂可以用来把标本绑在木块上。
- 标记该块。打印纸张标签并将其嵌入块中或将其附加到块面上。
- 在60° c 的温度下, 将模具与预埋块放在烤箱中12-14 小时。
- 将标本块存放在一个干净的信封里。这样可以在几个月到几年内以这种方式存储。
- 将使用过的容器、脏手套和其他受污染的设备放在油烟罩内, 使丙酮完全蒸发 (最低12小时)。
- 在丢弃一次性设备或刮除镊子等其他物品的树脂之前, 在烤箱中固化树脂。
- 切片
- 观察解剖显微镜下的块, 确保标本定位适合于切片平面。
- 如果方向是不适当的, 使用珠宝商的锯切出标本和重新使用集树脂和新鲜树脂的碎片, 以重新标本。头部也可分成两半, 分开两只眼睛。在进行前再次固化树脂。
- 在可拆卸切片卡盘上安装块。取出卡盘并放置在支架上。
- 在解剖显微镜下用刀片修剪树脂块。
注意: 当卡盘安装在切片臂上时, 不要这样做, 因为它可以摇晃手臂并损坏轴承。 - 将卡盘重新装入切片臂上, 并对试样进行角度。
- 在适当的角度安装刀架 (0 °为玻璃刀, 请参阅制造商关于金刚石刀具的说明)。
注: 玻璃刀可以便宜地用玻璃刀具制造, 但必须定期更换, 因为他们失去了他们的优势;高品质的金刚石刀可以购买, 但昂贵, 需要特别照顾, 不适合初学者。 - 用装有过滤器的注射器 (0.45 µm 孔大小), 用蒸馏水填充刀船。
- 把船填满, 直到水位到达刀的边缘;半月板可能是凸在其他地区的船。
- 把船排出, 直到半月板非常轻微凹, 但仍然达到刀的边缘。水的水平可以在任何一点上调整, 但总是远离刀的边缘。
- 小心地把刀对准标本, 并将木块与刀对齐。这是最好的完成缓慢, 定期检查靠近的刀通过目镜和从侧面。
注: 如仪器不同, 请检查仪器手册中的具体说明。 - 设置切片的截面厚度。选择正确的厚度将取决于样本大小, 感兴趣的地区和使用的刀的种类。
- 如果使用玻璃刀选择更高的设置 (例如, 4 µm), 如果在到达感兴趣的区域之前必须将大量材料切掉。如果使用的是金刚石刀或样本非常小, 1-2 µm 可能更合适。
- 开始 "切割" (启动切片轮) 时, 刀是接近, 但尚未切割到标本, 以执行最后一部分的方法。部分应该开始出现在几个轮换;如果没有, 停下来, 非常小心地把刀子拉近一点。
- 当接近感兴趣的区域时, 调整剖面收集厚度 (1 µm 薄节)。
- 使用睫毛工具收集任何部分。
注: 睫毛工具, 可以用睫毛安装在薄棒指甲油。 - 如果必须移除大量的材料, 则可以通过移除该刀并将其与水一起冲洗, 从而使这些部分堆积并移除成批. 如果使用一把玻璃刀, 这可能是一个适当的时间来改变到一个新的部分的刀或一刀。
- 使用巴斯德吸管或理想情况下, 在幻灯片上放置一系列的蒸馏水小水滴, 过滤器配备注射器。
- 小心地将收集到的部分放在睫毛上的水滴上。
- 收集像这样的部分, 直到它是适当的检查切片的深度。
注意: 虽然它可能是乏味的, 它总是最好经常检查。 - 将幻灯片放在板设置为60° c 的位置。允许所有的水蒸发和部分坚持幻灯片。
- 以甲苯胺蓝为 10-60 s 的染料切片 (染色时间会随切片厚度而变化)。用装有过滤器的注射器 (如上所述) 分配染料。
- 在幻灯片的一端放置一滴染料, 并在不触及或刮掉部分的情况下, 用针头的侧面展开。将幻灯片放置在板上, 以近似10-20s。
- 用蒸馏水在洗瓶中喷洒, 然后把它放在热板上晾干。
- 检查复合显微镜下的图像。
- 重复, 直到到达感兴趣的区域。
- 对于超薄切片: 设置40-60 纳米之间的切割厚度以收集 TEM 剖面。
- 切割约3-5 节和检查厚度使用干涉颜色图。剖面应反射浅灰色时, 从一个角度看。
注: 氯仿烟雾可 pipetted 超过部分, 以放松任何折痕。这是最相关的经验丰富的用户, 初学者不必担心。太多的氯仿释放太靠近剖面可能损坏部分。 - 拿起一个 Formvar 涂层, 铜, 槽格与钳与 Formvar 侧拿起。小心不要刺穿 Formvar 涂层。
- 将栅格浸入上, 远离剖面, 然后将栅格与剖面下的表面平行。如有必要, 用睫毛在网格上引导切片。
- 用滤纸小心翼翼地绕过钳子的尖端, 把水夹在胳膊之间。如果不这样做, 水紧张可以拉的网格之间的武器或使它坚持一侧。这可能导致污染或机械损伤。
- 通过将栅格上在滤纸上, 小心地将多余的水从网格中移走。
- 将网格放置在网格托架中。
- 重复, 直到收集了足够的部分。
- 半薄剖面可以直接成像任何复合显微镜配备相机。浸油可以直接放在剖面上。幻灯片应存储在幻灯片框中, 以防止变色。
- 透射电镜对比超薄切片
注意: 以下步骤应在覆盖范围内进行, 因为染料是光, CO2敏感。此外, EM 染料使用重金属产生对比, 因此是有害物质。处理这些污渍时必须小心。- 用铝箔盖上几个大的培养皿来挡住光线。根据以下步骤进行操作。部分发现它们允许工作空间, 但尽快把盖子放回。
- 切一块蜡膜, 小心地放置五滴6% 饱和铀乙酸在它使用巴斯德吸管。
- 为制备溶液, 在蒸馏水中混合2克铀乙酸100毫升50% 甲醇, 并在使用前对溶液进行过滤。无法存储该解决方案, 每次19时都应使其新鲜。
- 小心地拿起镊子的 TEM 网格和平衡上的染料滴与部分侧向下。离开25分钟。
- 通过快速浸出蒸馏水, 分别冲洗网格;通过四不同的蒸馏水瓶取得进展。
- 在一张新鲜的胶片上放五滴柠檬酸铅。在染料液滴周围安排一些氢氧化钠颗粒 (这吸收大气 CO2防止碳酸铅的沉淀)。
- 制备柠檬酸铅溶液, 用蒸馏水煮沸0.5 小时. 让水冷却, 并在一个密封的容器, 添加0.3 克柠檬酸铅到100毫升的双蒸馏水。加入1毫升10米氢氧化钠, 密封容器紧紧, 并动摇, 直到溶解19。
- 将栅格放在染料滴上, 如4.3 所述, 并盖上。染色5分钟。
- 在蒸馏水中冲洗, 将网格浸入蒸馏水中20次。三罐蒸馏水的进展。
- 用滤纸吸收多余的水, 使网格在格子箱中晾干。
- 低加速电压下的透射电镜图像。
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Representative Results
这里描述的方法能够详细研究蚂蚁的简单和复眼。使用 Z 堆栈显微技术, 可以对头部的背景色进行成像, 从而获得视觉系统布局的概览 (图 1)。这是很好的准备解剖和确定所需的剖切角度。这项技术对于测量头部宽度、眼睛长度和 ocellar 透镜直径也很有用。SEM 成像也提供了详细的概述图像, 但另外允许获得高放大率和高分辨率的图像。对眼睛感兴趣的特定区域可以进行详细检查, 并且可以识别透镜形状的变化 (图 2)。SEM 图像是特别有用的解决蚂蚁小眼睛和单眼。角膜复制品提供关于每只眼睛的形状、大小和镜片数量的信息 (图 3)。使用 LM 技术成像的半薄切片允许对眼睛的内部解剖进行调查 (图 4和图 5);这包括透镜的厚度, 晶锥的直径, 晶体锥道的存在, 形状, 宽度和长度的 rhabdom, 映射的背缘区域, 和位置的主要和次生色素细胞。这项技术可以很好地补充超薄剖面成像使用 TEM, 这使得确定超微结构特别, microvillar 方向 (图 4) 和量化较小的结构 (例如,宽度收缩的结晶圆锥道,图 5)。
图 1: 澳大利亚糖蚁三种姓的 Z 堆叠显微,弓背 consobrinus.这提供了所有三种姓的视觉系统的布局概述。改编自引用20。缩放条 = 1 mm请单击此处查看此图的较大版本.
图 2: 蚂蚁视觉系统的扫描电子显微演示了这种技术的成像能力.顶行显示不同的眼睛位置和眼睛大小: (A) Myrmecia nigriceps;(B) Opisthopsis 锦鸡;和 (C) Amblyopone (注意非常小的眼睛, 白色箭头)。在高倍率下获得的图像显示: (D) 三简单的眼睛在工人的Myrmecia nigriceps;不同大小的复眼在 (E) Rhytidoponera 乐队(注意不同形状的复眼复眼的不同区域在黄色), (F) Amblyopone, (G) Myrmecia 形, (H) Orectognathus clarki和 (I)大头物种。刻度条 = 1 mm (A-c)、100µm (d-H)、10µm (I)。请单击此处查看此图的较大版本.
图 3: 蚂蚁眼和单眼的角膜复制品(a) Myrmecia nigriceps的工作人员的复合眼睛的副本。凸形副本通过切口进行拼合。 该插图显示后 (p), 前 (a), 和背部 (d), 腹侧 (v) 轴。(B) Myrmecia tarsata的工作单眼的副本。刻度条 = 0.5 mm (a), 10 µm (B)。请单击此处查看此图的较大版本.
图 4: rhabdom 剖面的 LM 和 EM 图像.(A) rhabdoms 在Myrmecia nigriceps中的横断面在甲苯胺蓝上染色, 可以用来区分圆形或长方形的 rhabdoms。透射电子显微显示: (B) 微绒毛在圆形 rhabdom 和 (C) 中的多方向微绒毛定向于两个相反的方向在矩形形状的 rhabdom。(D) 使用光学显微镜, 将矩形 rhabdoms 的长轴映射为在弓背 consobrinus的皇后的背部区域显示类似扇形的组织;内陷表示后 (p), 前 (a), 和侧 (l), 内侧 (m) 轴。从引用20改编的面板 D。刻度条 = 10 µm (a)、1µm (B-C)、100µm (D)。请单击此处查看此图的较大版本.
图 5: Myrmecia tarsata的 light-adapted 眼中的复眼的 LM 和 EM 图像。() 复眼的纵向部分, 显示角膜 (C)、结晶锥 (CC)、锥道 (ct)、rhabdom (Rh) 和原色素细胞 (PPC).(B) 在面板 a 中的虚线矩形框, 从透射电镜下查看的另一节, 量化圆锥道的窄宽。改编自引用21。缩放栏 = 10 µm.请单击此处查看此图的较大版本.
图 6: 薄和超薄切片的常见问题 (固定和渗透, 切割和染色).(a) 由于不充分的穿透 (箭头) 在大头物种的薄节中, 组织的固定不良;(B) 在剖切期间在Iridomyrmex calvus (薄) 中进行翻录;(C) 完美染色 (左) 和过染色 (右) 与甲苯胺蓝在Myrmecia croslandi;(D) 由于树脂和组织密度的匹配不佳 (树脂太软), 在剖切期间 (箭头) 的色素 (圆形) 和组织撕裂。折叠的部分 (星号), 可以发生时, 收集部分从刀船;(E) 由于着色不足 (与插页比较)、铅酸盐晶体 (白色箭头) 从曝光到 CO2, 以及垂直刀痕 (黑色箭头) 造成的对比差;(F) 由于固定在Melophorus hirsutus复眼中而导致的组织 (白色箭头) 上的孔;(G) 树脂太软, 在切片中被视为垂直波纹时导致 chitter;(H) 剖面太厚 (约 100 nm) 导致深色图像的对比度较差, 被污染的蒸馏水导致细菌和微粒物质散布在整个部分 (白色箭头) 的大头物种。刻度栏 = 25 µm (a-b), 10 µm (C-H)。请单击此处查看此图的较大版本.
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Discussion
上面概述的一系列方法允许对蚂蚁和其他昆虫的光学系统进行有效的调查。这些技术告诉我们的理解采样分辨率, 光学灵敏度, 和潜在的偏振敏感性的眼睛正在研究。这些知识为他们的视觉能力的生理和行为调查提供了重要的基础。此外, 虽然这里详述的方法侧重于蚂蚁视觉系统, 但这些技术可以用于其他昆虫, 尽管在协议中稍加修改 (例如, 增加了固定的持续时间和在较厚的组织中渗透).稍加修改的协议已被用来表征的视觉系统的各种昆虫包括蝉22, 苍蝇14, 蜜蜂23, 黄蜂24, 蝴蝶25, 和飞蛾26。虽然这里概述的大多数技术已经使用了一段时间, 这篇文章还是在研究蚂蚁的光学系统和比较替代技术和描述常见陷阱的背景下把它们结合在一起的机会。
目前有许多成像技术有重叠的应用, 很难评估哪种技术适合手头的任务。这里的一个相关示例是选择一个概述成像技术。头部和眼睛的外部形态以及光学系统在头部的相对位置可以用 SEM 或显微进行。对这些技术的优缺点进行了回顾27, 但是, 在成像眼睛时还有一些特殊的注意事项。当成像的相对定位和眼睛的大小, 这两种技术都有其优缺点。SEM 图像缺乏颜色信息, 因此色素沉着相关显微更好。然而, SEM 图像可以更详细地说明细微结构, 如 inter-ommatidial 毛和小平面边界, 甚至揭示了在显微技术下不可见的表面特征 (例如, ocellar 透镜, 表面雕刻复合眼透镜)。SEM 是一种多用途的技术, 当它涉及到探索性成像和识别特性的兴趣, 因为它可以在很大范围的标本大小, 同时仍然保持非常高的分辨率在这个范围内。然而, 它并不像解剖显微镜那样广泛地被接受, 需要更高层次的专业知识。通常没有单一的方法来获取所需的信息。在这种情况下, 考虑哪些是可用的, 哪些是最重要的投资资源是很有用的。
在获得最精确的小平面数和小平面直径的测量中, 角膜的指甲油复制品被证明是最有用的。现在已在各种昆虫中使用11,22,28,29。虽然从 SEM 获得的图像质量远远优于, 但眼睛的曲率可以防止对整个小平面阵的精确测量。通过从微计算机断层扫描获得的扫描仪5, 也可以对小平面大小和小平面分布进行映射。
在 LM 和 TEM 技术中, 通常很难知道样品是否已经准备好, 直到成像的最后阶段。为了避免并发症, 重要的是要建立良好的做法, 如保持清洁的工作空间和工具, 定期准备新鲜的解决方案, 并彻底过滤水。肉眼看不到的污染物会破坏它们的样本。因此, 用溶剂 (如乙醇或丙酮) 和 non-lint 产生的擦拭来擦拭表面和仪器是有用的。这是最相关的切片, 染色 EM 切片, 并在准备扫描电镜样品。同样, 蒸馏水来源可以提出问题, 并引入污染物, 所以它总是最好检查过滤器, 定期改变它们, 并始终使用新鲜过滤的水 (不要储存)。大多数固定、污渍和嵌入材料不能无限期地存储, 因此必须将所有解决方案都标记为准备日期。重要的是采取系统的方法, 并预留足够的时间来执行的协议, 没有中断。
适应不同物种的技术总是一个试验和错误的问题。在蚁内工作时, 主要的区别在于动物的大小和头部的肌肉质量。在他们的头部有更多肌肉组织的蚂蚁通常需要更长的时间来修复。对于非常大的蚂蚁, 最好是去除下颌肌肉、气管和下颌腺体, 同时确保最小的神经组织干扰。在小蚂蚁和少数下颌肌肉的人中, 通过去除下颌骨和暴露 clypeal 区域, 可以获得足够的固定。在这些情况下, 小孔使用细节针可以在头部, 以改善固定。
重要的是要注意, 环境条件也可能影响准备工作。炎热和潮湿的环境 (特别是热带的野外观测站) 可以证明是渗透阶段的一个挑战。温暖的条件可能导致树脂部份地聚合过早地导致未使用的树脂变得越来越黏性。在这种情况下, 最好的选择是把树脂储存在小的, 单一的使用, 在冰箱或冰柜的容器。冷却固定有助于在温暖的条件下更快地消除组织衰变。然而, 冷却的解决方案将更加缓慢地消散, 这意味着治疗时间应延长, 以确保适当的渗透。
考虑到这些注意事项, 对蚂蚁和其他昆虫的光学系统的调查可以证明是非常有益的。研究视觉系统使我们能够估计视觉领域的大小, interommatidial 角度, 光学灵敏度和取样分辨率。了解眼睛的解剖, 就能了解和解释动物的行为。例如, 解剖学可以让我们对动物的视觉能力做出预测, 比如它们是白天还是夜间活动, 而这可能不是以前的记录。鉴于目前有关少数蚂蚁视觉系统的知识, 我们希望我们的方法能启发生物学家和 myrmecologists 研究蚂蚁的复眼和单眼, 以进一步了解它们。
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Disclosures
作者声明没有相互竞争的利益。
Acknowledgments
我们感谢 Jochen Zeil, 保罗库珀和比尔吉德格雷纳分享他们的昆虫解剖学知识, 并展示了我们在这里描述的几种技术。我们感谢在雁努高级显微镜中心的有才华和支持性的工作人员和 MQU 的显微镜组。这项工作获得了澳大利亚研究理事会 (DE120100019、FT140100221、DP150101172) 的研究生奖学金和助学金的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Ant | Myrmecia midas | ||
| Stereomicroscope | Leica M205 FA | ||
| Sputter coater | Pro Sci Tech | ||
| Ethanol | Sigma Aldrich | ||
| Petri dish | ProSciTech | ||
| Dissecting microscope | Leica MZ6 | ||
| Insect Pin | ProSciTech | ||
| Colourless nail polish | Non branded: from any cosmetic store | ||
| Glass slide | ProSciTech | ||
| Razor blade | ProSciTech | ||
| Foreceps | ProSciTech | ||
| Cover slip | ProSciTech | ||
| Compound microscope | Leica DM5000 B | ||
| Glutaraldehyde | Sigma Aldrich | ||
| Paraformalydehyde | Sigma Aldrich | ||
| Potassium Chloride (KCl) | Sigma Aldrich | ||
| di-Sodium Hydrogen phosphate (Na2HPO4) | Sigma Aldrich | ||
| Potassium di-Hydrogen Phosphate (KH2PO4) | Sigma Aldrich | ||
| Sodium Chloride (NaCl) | Sigma Aldrich | ||
| Osmium tetroxide | Sigma Aldrich | ||
| Acetone | Sigma Aldrich | ||
| Araldite Epoxy Resin | Sigma Aldrich | ||
| Pasteur pipette | Sigma Aldrich | ||
| Toluidie Blue | Sigma Aldrich | ||
| Hotplate | Riechert HK120 |
References
- Zeil, J. Visual homing: an insect perspective. Curr. Opin. Neurobiol. 22, 285-293 (2012).
- Wehner, R. Desert ant navigation: how miniature brains solve complex tasks. J. Comp. Physiol. A. 189, 579-588 (2003).
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