Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove

Bioengineering

Workflow gebaseerd op de combinatie van isotopische tracerproeven te onderzoeken van de microbiële metabolisme van meerdere nutriënten bronnen

doi: 10.3791/56393 Published: January 22, 2018

Summary

Dit protocol beschrijft een experimentele procedure voor het kwantitatief en uitgebreid onderzoek naar het metabolisme van meerdere nutriënten bronnen. Deze werkstroom, gebaseerd op een combinatie van isotopische tracerproeven en een analytische procedure, kan het lot van verbruikte voedingsstoffen en de metabole oorsprong van moleculen synthetized door micro-organismen te bepalen.

Abstract

Studies op het gebied van de microbiologie, is afhankelijk van de uitvoering van een breed scala aan methoden. In het bijzonder bijdraagt de ontwikkeling van geschikte methoden aanzienlijk aan het verstrekken van uitgebreide kennis van het metabolisme van micro-organismen groeien in chemisch welbepaalde media met unieke stikstof en koolstof bronnen. Daarentegen blijft het beheer via metabolisme van meerdere nutriënten bronnen, ondanks hun grote aanwezigheid in natuurlijke of industriële omgevingen, vrijwel onontdekte. Deze situatie is voornamelijk te wijten aan het gebrek aan geschikte methoden, die onderzoek belemmert.

Wij rapporteren een experimentele strategie kwantitatief en grondig verkennen hoe metabolisme werkt als een nutriënt wordt geleverd als een mengsel van verschillende moleculen, dat wil zeggen, een complexe bron. Hier beschrijven we de toepassing ervan voor de beoordeling van het partitioneren van meerdere bronnen van stikstof via het metabolische netwerk van gist. De werkstroom combineert informatie verkregen tijdens stabiele isotoop tracerproeven met geselecteerde 13C- of 15N-geëtiketteerden substraten. Het eerste bestaat uit parallel en reproduceerbare fermentatie in hetzelfde medium, waarin een mengsel van N-bevattende moleculen; een geselecteerde stikstofbron heet echter elke keer. Een combinatie van analytische procedures (HPLC, GC-MS) wordt uitgevoerd om te beoordelen van de labeling patronen van gerichte verbindingen en te kwantificeren van de consumptie en het herstel van substraten in andere metabolieten. Een geïntegreerde analyse van de volledige dataset geeft een overzicht van het lot van verbruikte substraten binnen cellen. Deze aanpak vereist een nauwkeurige protocol voor het verzamelen van monsters – vergemakkelijkt door een robot-assisted systeem voor online bewaking van fermentatie- en de verwezenlijking van talrijke tijdrovende analyses. Ondanks deze beperkingen toegestaan het begrip, voor de eerste keer, het partitioneren van meerdere bronnen van stikstof tijdens het metabolische netwerk van gist. Wij toegelicht van de herverdeling van stikstof uit meer overvloedige bronnen naar andere N-verbindingen en de metabole oorsprong van vluchtige moleculen en Proteïnogeen aminozuren bepaald.

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Begrip is hoe microbiële metabolisme werkt een belangrijke kwestie voor het ontwerp van efficiënte strategieën ter verbetering van fermentatieprocessen en het moduleren van de productie van fermenterende verbindingen. Ontwikkelingen in de genomica en functionele genomica in deze laatste twee decennia in belangrijke mate bijgedragen tot het verruimen van de kennis van de topologie van metabole netwerken in vele micro-organismen. Toegang tot deze informatie heeft geleid tot de ontwikkeling van onderwijsleermethoden die tot doel voor een uitgebreid overzicht van cellulaire functie1 hebben. Deze methodologieën is vaak afhankelijk van een model-gebaseerde interpretatie van meetbare parameters. Deze experimentele gegevens omvatten, aan de ene kant metaboliet opname en productie, en aan de andere kant, kwantitatieve intracellulaire informatie die wordt verkregen uit de isotoop tracer experimenten. Deze gegevens, verschaffen essentiële informatie voor de aftrek van de in-vivo -activiteit van verschillende routes in een gedefinieerde metabolische netwerk2,3,4. Op dit moment de beschikbare analytische technieken alleen inschakelen voor de nauwkeurige detectie van labeling patronen van moleculen bij het gebruik van een isotoop van één element en eventueel wanneer mede labelen met twee isotopische elementen. Bovendien onder de meeste omstandigheden van de groei bestaat de koolstofbron alleen uit één of twee-verbindingen. Bijgevolg waren benaderingen gebaseerd op de C-isotopische traceurs 13uit koolstof ondergronden breed en met succes toegepast voor de ontwikkeling van een compleet begrip van de koolstof metabolische netwerk operaties5,6,7 ,8.

Daarentegen in veel natuurlijke en industriële omgevingen, de beschikbare stikstof resource dat microbiële groei ondersteunt vaak bestaat uit een breed scala van moleculen. Bijvoorbeeld, tijdens de wijn of bier gisting, wordt stikstof geleverd als een mengsel van 18 aminozuren en ammonium bij variabele concentraties9. Deze array van N-verbindingen die toegankelijk voor anabolism zijn maakt deze complexe media voorwaarden sterk verschilt van de gangbare waarden voor fysiologische studies, zoals de laatste worden bereikt met behulp van een unieke bron van stikstof, meestal ammonium.

Over het geheel genomen geïnternaliseerd stikstof verbindingen kunnen direct worden opgenomen in eiwitten of catabolized. De structuur van het netwerk van stikstof metabolisme in vele micro-organismen, met inbegrip van de gist Saccharomyces cerevisiae, is zeer complex overeenkomstig de diversiteit van substraten. Schematisch, is dit systeem gebaseerd op de combinatie van de centrale kern van stikstof metabolisme die de interconversion van glutamine, glutamaat en α-ketoglutarate10,11, met transaminases en deaminases katalyseert. Via dit netwerk, amine groepen uit ammonium of andere aminozuren worden verzameld en α-keto zuren uitgebracht. Deze tussenproducten zijn ook synthetized via centrale koolstof metabolisme (CCM)12,13. Dit groot aantal vertakte reacties en tussenproducten, betrokken bij zowel het katabolisme van exogene stikstof bronnen en het anabolisme van Proteïnogeen aminozuren, vervult de anabole eisen van de cellen. De activiteit via deze verschillende met elkaar verbonden routes resulteert ook in de uitscheiding van metabolieten. In het bijzonder, kunnen α-keto zuren worden omgeleid via de Ehrlich pathway hogere alcoholen en hun acetaat ester derivaten14, die essentiële bijdragen aan de zintuiglijke profielen van producten te produceren. Vervolgens, speelt de werking van stikstof metabolisme een belangrijke rol in de productie van biomassa en de vorming van vluchtige moleculen (aroma).

De reacties, enzymen en genen die betrokken zijn in stikstof metabolisme zijn uitvoerig beschreven in de literatuur. Echter heeft de kwestie van de verdeling van meerdere bronnen van stikstof tijdens een metabolische netwerk nog niet aangepakt. Er zijn twee belangrijke redenen die dit gebrek aan informatie verklaren. Ten eerste, gezien de belangrijke complexiteit van het netwerk van stikstof metabolisme, een grote hoeveelheid van de kwantitatieve gegevens is vereist voor een compleet begrip van de werking ervan die niet beschikbaar was tot nu toe. Ten tweede, vele experimentele beperkingen en beperkingen van analytische methoden voorkomen de uitvoeringvan benaderingen die voorheen werden gebruikt voor de opheldering van CCM functie.

Om deze problemen, kozen we voor een systeem-niveau-aanpak die is gebaseerd op het combineren van gegevens uit een groot aantal isotopische tracerproeven te ontwikkelen. De workflow omvat:
-Een set van fermentatie uitgevoerd onder de dezelfde milieu-omstandigheden, terwijl een andere geselecteerde nutriënten bron (substraat) telkens heet.
-Een combinatie van analytische procedures (HPLC, GC-MS) voor een nauwkeurige bepaling, in de verschillende stadia van de gisting, van de resterende concentratie van gelabelde substraat en de concentratie en de isotopische verrijking van stoffen die zijn afgeleid van het katabolisme van het gelabelde molecuul, met inbegrip van afgeleide biomassa.
-Een berekening van het saldo van het massale en isotopische voor elk verbruikt gelabelde molecuul en een verder geïntegreerde analyse van de dataset te verkrijgen van een globaal overzicht van het beheer van meerdere nutriënten bronnen door micro-organismen door middel van de bepaling van flux ratio 's .

Voor de toepassing van deze methode, moet aandacht worden besteed aan het reproduceerbare gedrag van de stam/micro-organisme tussen culturen. Monsters uit verschillende culturen moeten bovendien worden genomen tijdens de dezelfde welomschreven gisting vooruitgang. In de experimentele werk die zijn gerapporteerd in dit manuscript, wordt een robot-assisted-systeem gebruikt voor online bewaking van fermentatie ter verantwoording voor deze beperkingen.

Bovendien is het essentieel om een reeks van gelabelde substraten (samengestelde aard en positie van het label) die geschikt is om het wetenschappelijke probleem van de studie te kiezen. Hier, 15N-geëtiketteerden ammonium, glutamine en arginine uitgekozen als de drie grote stikstof bronnen gevonden in druivensap. Hierdoor konden beoordelen van het patroon van stikstof herverdeling van verbruikte verbindingen naar de Proteïnogeen aminozuren. Wij ook gericht op het onderzoeken van het lot van de ruggengraat van de koolstof van de verbruikte aminozuren en hun bijdrage aan de productie van vluchtige moleculen. Om te voldoen aan deze doelstelling, uniform 13C-gelabeld leucine, werden isoleucine, threonine en valine opgenomen in de studie als aminozuren die zijn afgeleid van grote tussenproducten van het leertraject Ehrlich.

Over het geheel genomen verkenden we kwantitatief hoe gist beheert een complexe stikstof resource door herverdeling van exogene stikstof bronnen om te voldoen aan haar anabole eisen hele gisting tijdens het bovendien het verwijderen van de overdaad aan koolstof precursoren als vluchtige moleculen. De experimentele procedure gemeld in dit document kan worden toegepast om te onderzoeken van andere meerdere nutriënten bronnen gebruikt door een andere micro-organismen. Het lijkt een adequate aanpak voor de analyse van de gevolgen van genetische achtergrond of omgevingsfactoren op de metabolische gedrag van micro-organismen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. gisting en bemonstering

  1. Voorbereiding van de media en fermentoren
    Opmerking: Alle de fermentatie zijn uitgevoerd in parallel, met behulp van dezelfde stam en hetzelfde chemisch gedefinieerde synthetische medium (SM, samenstelling in tabel 1gegeven), waarin een mengsel van ammonium en aminozuren zoals stikstof15 bronnen. Voor elke gisting, een enkele stikstof samenstelling vindt u uitsluitend in een uniform gelabelde 13C of 15N formulier (100%), terwijl de anderen labelloze blijven. Voor elke stikstofbron van gelabelde die in de reeks experimenten wordt gebruikt (hier: 15NH4, U -15N4-Arg, U -15N2-Gln, U -13C6-Leu, U -13C5-Val, U -13C6-Ile, U -13C4-Thr), twee fermentoren worden bereid. Voor elke voorwaarde, is dubbele gisting uitgevoerd met behulp van alleen labelloze moleculen (7 controle fermentatie).
    1. Voor elke N-bron te worden bestudeerd, bereiden van 500 mL voor SM medium dat alle bronnen van de stikstof vermeld in tabel 1, met uitzondering van de verbinding bevat moet worden gebruikt bij 100% label formulier.
      Opmerking: Het gelabelde molecuul wordt toegevoegd in de volgende stappen.
    2. Pasteuriseren van elk medium in een maatkolf van 1 L (10 min, 100 ° C) met een magnetische roeren bar. Weeg de juiste hoeveelheid gelabelde molecuul te bereiken de uiteindelijke concentratie die wordt vermeld in tabel 1 en los het op in het medium.
    3. Steriliseren het medium gebruik een wegwerp vacuüm filtratie-systeem (celluloseacetaat membraan, 0,22 µm). Met behulp van een steriele maatcylinder, verdeel het medium tussen twee vooraf gesteriliseerd fermentoren (250 mL) die bevatten een magnetische roeren bar en zijn uitgerust met sloten van de gisting om te voorkomen dat de toetreding van zuurstof maar toestaan dat de release van CO2.
    4. Verwarm de gisting kolven tot 28 ° C door ze te plaatsen op de incubatie-kamer voor 1 nacht (temperatuur ingesteld op 28 ° C).
  2. Inoculatie en monitoring van fermentatie
    1. Groeien S. cerevisiae stam in steriele buizen met 10 mL van YPD medium bij 28 ° C met schudden (150 rpm) voor 12u. Pipetteer vervolgens 1 mL van YPD preculture en het overbrengen van 10 mL voor SM medium (in 15 mL steriele buizen). Incubeer de cultuur voor 12u bij 28 ° C met schudden (150 rpm).
    2. Klik onder laminaire flow, een aliquoot preculture verzamelen en kwantificeren van de bevolking van de cel met behulp van een elektronische deeltjes teller die is uitgerust met een 100 µm-diafragma. Centrifugeer het preculture (2.000 x g, 15 min, 4 ° C) en Suspendeer de pellet in een passende hoeveelheid steriel water om een eindconcentratie van 2.5 x 108 cellen/mL. Inoculeer elke gister met 1 mL van de celsuspensie.
      Opmerking: De robot-systeem waarmee de voortgang van de gisting is beschreven in Figuur 1.
    3. Het fermentatie-platform voor te bereiden door het installeren van de fermentoren in de gidsen van de steun die naar behoren zijn geplaatst op de opzwepende platen van 21-positie en het opzwepende tempo vastgesteldop 270 rpm. Om te beginnen de on-line monitoring van elke gisting, de robot-control toepassing start, vervolgens klikt u op "begin test" en selecteer het volume van de gisting (300 mL) worden uitgevoerd.
    4. De weergegeven interface staat de vermelding van het aantal en de positie van fermentoren op het platform. Om ervoor te zorgen dat dit gebeurt, klik met de rechtermuisknop op de locatie van de sleuf en kies "enable" om te activeren het toezicht van de gister gelegen op deze positie.
    5. Initialiseer de calculatiesoftware, permanent uitgevoerd op het systeem, voordat de overname van het gewicht. Klik op de "Initialiser"-knop en bevestig met "ok". Klik op de knop"Start" van de toepassing van de robot-controle om te beginnen met de acquisities van gewicht.
  3. Bemonstering
    Opmerking: Voor elke gister, monsters worden genomen wanneer de CO2 productie (waarde on-line op de computer met de calculatiesoftware) de vereiste set-punt bereikt: 5, 10, 40 en 90 g/L in deze studie.
    1. Bemonstering procedure voor culturen met gelabelde verbindingen.
      1. Centrifugeer twee 6 mL monsters (2.000 x g, 5 min, 4 ° C). Opslaan en opslaan van de bevroren supernatant in twee aliquots bij-80 ° C. Wassen van de pellets tweemaal met 5 mL gedestilleerd water en winkel bij-80 ° C voor de meting van isotopische verrijking.
    2. Bemonstering van de procedure voor culturen zonder gelabelde verbindingen
      1. Oogst 10 mL van de cultuur, die zal worden gebruikt voor de bepaling van het droog gewicht. De cellen van twee monsters van 10 mL pellet door middel van centrifugeren (2.000 x g, 5 min, 4 ° C). De pellets tweemaal met 10 mL gedestilleerd water wassen en bewaar ze bij-80 ° C voor de bepaling van eiwit en amino acid content.

2. kwantificering van verbruikte stikstof bronnen

  1. Enzymatische bepaling van de concentratie van de resterende ammoniak
    Opmerking: De bepaling van de concentratie ammoniak in supernatant wordt uitgevoerd met behulp van een commerciële enzym gebaseerde kit; alle de reagentia worden geleverd door de fabrikant.
    1. Een standaard ammoniakoplossing (61.4 mg/L) voor te bereiden door het oplossen van 25 mg nauwkeurig gewogen (NH4)2dus4 in een maatkolf van 100 mL.
    2. Om te voldoen aan de instructies van de fabrikant, voert u een verdunning 1:2 van de monsters die zijn genomen vóór gisting en bij 5 g/L van CO2 vrijgegeven. Breng de pH van de monsters naar ongeveer 8 door toevoeging van 1 M KOH. Neem nota van het toegevoegde volume en daarmee rekening in de verdunningsfactor.
    3. In 4 mL spectrofotometer cuvettes, mix 100 µL van monster (verdund indien nodig), gedistilleerd water of standaard ammoniumhydroxide-oplossing met 2 mL reagens 1 (0,75 mM ADP en 30 U/mL Glutamaat dehydrogenase in pH 7,8 buffer) en 500 µL van het reagens 2 (1.3 mM NADH). Incubeer gedurende 15 minuten bij kamertemperatuur en lees NADH absorptie bij 340 nm (A1).
    4. Voeg 500 µL van het reagens 3 (60 mM α-ketoglutaraat in pH 8 buffer), Incubeer het monster gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur en lezen de NADH absorptie bij 340 nm (A2).
    5. Bereken met behulp van ammoniak concentratie:
      Cammoniak (g/L) = 0.083 x [(0.839 x A1-A2)monster- (0.839 x A1-A2)gedestilleerd water]
    6. Controleer of de juiste concentratie wordt verkregen met de standaard oplossing.
  2. Chromatografische bepaling van residuele aminozuur concentraties
    Opmerking: De bepaling van aminozuur concentraties in supernatant wordt bereikt met behulp van een systeem voor de analyse van specifieke aminozuur dat is gebaseerd op ionenwisselingschromatografie met post kolom bewerking van N-verbindingen met ninhydrine, waarmee hun Colorimetrische detectie.
    1. Bereid een referentie-oplossing door het toevoegen van 200 µL van een commerciële mengsel van neutrale en zure aminozuren, 200 µL van een commerciële mengsel van fundamentele aminozuren en 200 µL van 2.5 mM glutamine aan 400 µL van 200 mM lithium citraat buffer, pH 2.2. Deze oplossing chemisch welbepaalde verwijzing wordt behandeld als een monster.
    2. Voeg toe 200 µL van 25% (m/v) sulfosalicylic zure oplossing waarin 2.5 mM norleucine (interne standaard) aan 800 µL van monster, tot het verwijderen van moleculen met een hoog molecuulgewicht. Incubeer gedurende 1 uur bij 4 ° C, centrifuge (3000 x g, 10 min, 4 ° C) en filter door een membraan porie-grootte nitrocellulose 0.22-µm (spuit systeem).
    3. In de programmeur software, klik op de knop "Uitvoeren" om te beginnen de vloeistofchromatografie (LC) analyses met de analyzer uitgerust met een catie-wisselingskolom (lithium formulier). Elueer de aminozuren met opeenvolgende lithium buffers maken zowel een pH verloop en een verloop in Contra ion concentratie in combinatie met een temperatuurgradiënt (tabel 2).
    4. Kwantificeren van de stikstofverbindingen na ninhydrine bewerking door een spectrofotometrische detector bij 570 nm (paarse kleur: reactie tussen ninhydrine en amine groep aminozuren) en 440 nm (gele verkleuring: reactie tussen ninhydrine en imine groep Proline).
    5. Het uitvoeren van een één-punt interne kalibratie met behulp van de referentie-oplossing en norleucine als een interne standaard voor het berekenen van de concentraties van aminozuren in de monsters met behulp van software van de fabrikant.

3. kwantificering van Proteïnogeen aminozuren

  1. Meting van droge cel gewicht
    1. 10 mL van de cultuur wordt gefiltreerd door een nitrocellulose filter (porie grootte 0,45 µm) dat is vooraf gewogen in een aluminium beker, met behulp van een vacuüm apparaat. Wassen tweemaal met 50 mL gedestilleerd water.
    2. Plaats de filter in de aluminium cup en drogen in een oven van warmte bij 105 ° C gedurende 48 h (totdat geen verdere verandering in gewicht wordt geconstateerd) voordat het filter in de beker tegenonderzoek. Bereken het gewicht verschil.
    3. Bereken het gemiddelde van ten minste 3 onafhankelijke metingen nauwkeurig bepalen het gewicht van de droge cel van de gist-cultuur.
  2. Kwantificering van het eiwitgehalte van cellen
    Opmerking: De kwantificering van de eiwitoplossing van de cellen wordt uitgevoerd ten minste in drievoud met behulp van labelloze cel pellets die zijn verkregen als beschreven in punt 1.3.2.
    1. Pak van eiwitten door toevoeging van 1 mL van DMSO oplossing (50% v/v) voor bevroren pellets en Incubeer bij 105 ° C gedurende 1 uur in een oven van droge hitte.
    2. Kwantificeren van het eiwitgehalte in de extracten van DMSO met behulp van de biochemische colorimetrische bepaling die is gebaseerd op de reductie van proteïnen van Cu++ tot Cu+ fosfaationen die verder zijn neergeslagen door bicinchoninic zuur in een blauwe complex (BCA assay).
  3. Bepaling van de relatieve bijdragen van aminozuren in eiwitten
    Opmerking: Het profiel van Proteïnogeen aminozuren geschiedt ten minste in drievoud van labelloze cel pellets (1.3.2.).
    1. Bereid een geoxideerde uittreksel door het opschorten van de cel pellet in 200 µL van permierenzuur zuur (90% mierenzuur, 10% waterstofperoxide). Incubeer gedurende 4 uur bij 4 ° C en stop de reactie door de toevoeging van 33,6 mg natriumsulfaat.
      Opmerking: De oxidatie stap is vereist voor het omzetten van cysteïne en methionine in methionine sulfon en cysteische zuur, dat verder zal worden gekwantificeerd door ionenwisselingschromatografie. Echter, sommige aminozuren (tyrosine, fenylalanine, histidine en arginine) worden gedenatureerd tijdens de behandeling van de oxidatie. Bijgevolg worden twee hydrolysaten (met en zonder oxidatie) bereid.
    2. 800 µL 6N HCL toevoegen aan cel pellets of uittreksel geoxideerd en Incubeer het monster in een hermetisch gesloten glazen buis voor 16 h bij 110 ° C in een oven van droge hitte. Voeg 200 µL van 2.5 mM norleucine en HCl verwijderen met een stikstofstroom. Wassen (resuspending van het gedroogde extract en vervolgens het verwijderen van de vloeistof met een stikstof-stream) tweemaal met 800 µL van gedistilleerd water en daarna met 800 µL van ethanol. Duren in 800 µL van 200 mM lithium acetaat buffer, pH 2.2.
      Opmerking: Aandacht moet uitgaan naar de incubatietijd voor de hydrolyse zoals sommige aminozuren niet stabiel onder zure omstandigheden zijn. De Fractie van de tryptofaan in eiwit wordt geschat uit gegevens gevonden in de literatuur16, zoals dit aminozuur is volledig gedenatureerd tijdens HCl hydrolyse.
    3. Een standaard hydrolysaat voorbereiden op de interne single-punts kalibratie. 160 µL van een commerciële oplossing van gehydrolyseerde aminozuren aan 840 µL van 200 mM lithium acetaat buffer, pH 2.2, waarin 625 µM methionine sulfon, 625 µM cysteische zuur en 625 µM norleucine toevoegen.
    4. Het bepalen van de relatieve concentraties van aminozuren in eiwitten met de chromatografische methode beschreven in punt 2.2.
  4. Berekeningen
    1. Bereken het percentage van de gewicht van elk aminozuur in eiwitten door de gemeten bedrag van elk aminozuur (mg/L) te delen door het totale bedrag van aminozuur dat werd gemeten in het eiwit extract (som in mg/liter).
    2. Dit percentage te vermenigvuldigen met de concentratie van proteïnen toe in de cultuur (mg/L), dat wil zeggen, het product tussen het eiwitgehalte van de biomassa en de droge stof, om te beoordelen van de concentratie van elk Proteïnogeen aminozuur in de cultuur (mg/L).

4. meting van isotopische verrijking van Proteïnogeen aminozuren

Opmerking: Voor het meten van isotopische verrijking van Proteïnogeen aminozuren, gebruiken de gelabelde cel pellets. Drie verschillende agenten worden gebruikt voor de bewerking stap te kwantificeren van de isotopische verrijking van aminozuren. De intensiteiten van cluster ionen zijn gemeten voor het inschatten van de labeling patronen van de aminozuren. Het signaal van de ion van elk cluster komt overeen met de overvloed van de massale isotopomers (m0 = zonder etikettering, m+ 1 = 1 gelabelde atoom,...) van een aminozuur-fragment. Een voorbeeld van een chromatogram dat wordt verkregen na de DMADMF procedure vindt u in Figuur 2.

  1. Biomassa hydrolyse
    1. De pellets van de cel (overeenkomend met 1-2 mg gedroogde biomassa) hydrolyseren door toevoeging van 1,2 mL 6 M HCl en het monster gedurende 16 uur bij 105 ° C in gesloten glazen buizen in een oven van droge hitte aan het broeden.
    2. Voeg 1.2 mL gedestilleerd water en centrifuge bij 3000 x g gedurende 5 min cellulaire puin te verwijderen. De bovendrijvende substantie over zes 400 µL breuken in open glazen buizen verdelen. Droog de breuken in een oven van warmte bij 105 ° C totdat ze de consistentie van siroop (4-5 h).
  2. Ethylchloroformate (ECF) bewerking
    1. Los van het gedroogde hydrolysaat in 200 µL van 20 mM HCl; dan, voeg 133 µL van pyridine: ethanol (1:4). Voeg 50 µL van ECF derivatize de aminozuren te wachten totdat alle CO2 heeft geweest vrijmaking. Breng het mengsel te centrifugeren buizen die 500 µL van dichloormethaan uitpakken van de derivatized stoffen bevatten.
    2. Vortex de buizen voor 10 s en centrifuge hen voor 4 min bij 10.000 x g; verzamelen de lagere organische fase met een pipet van Pasteur en overdracht GC flesjes die conische inzetglas bevatten zodat de monsters kunnen rechtstreeks worden geïnjecteerd in de GC/MS-instrument.
  3. (N, N)-Dimethylformamide dimethyl Acetaal (DMFDMA) bewerking.
    1. Los van het gedroogde hydrolysaat in 50 µL van methanol en acetonitril 200 µL. Voeg 300 µL van DMFDMA. Vortex de buis en overdracht van de monsters naar GC autosampler flesjes waarin conische inzetglas.
  4. N, O-Bis (trimethylsilyl) trifluoroacetamide (BSTFA) bewerking
    1. Het hydrolysaat opschorten in 200 µL van acetonitril. Voeg 200 µL van BSTFA, de glazen buis hermetisch te sluiten en incubeer gedurende 4 uur bij 135 ° C vóór de overbrenging van het extract rechtstreeks naar GC flesjes.
  5. GC-MS-analyse
    1. Het analyseren van monsters met een gaschromatograaf die is uitgerust met een autosampler injector en is gekoppeld aan een massaspectrometer.
      1. Instrumentspecifieke software gebruiken om te controleren van het instrument en de chromatogrammen analyseren. In het "Sequence"-menu, klik op de "Log voorbeeldtabel" als het monster lijst wilt maken en klik op de knop "Run" om te beginnen met de injecties.
        Opmerking: De gaschromatograaf is voorzien van een 30 m x 0,25 mm apolaire silica capillaire kolom met een 0,15 μm-laagdikte. De massaspectrometer vierpolige temperatuur instellen bij 150 ° C en houd de transferregel bij 250 ° C voor alle analyses. Drie analytische programma's, elk een specifieke aan elke bewerking agent, worden gebruikt.
      2. ECF derivaten: Gebruik helium als de mobiele fase met een stroom van 1,2 mL/min. de temperatuur van de inlaat vastgesteldop met 230 ° C en die van de bron bij 250 ° C. Programma de autosampler te injecteren 1 µL van monsters met een split-ratio van 3:1. Uitvoeren van de analyses, geleidelijk de oventemperatuur als volgt: 130 ° C gedurende 3 minuten; helling van 15 ° C/min. tot 260 ° C; Handhaaf de temperatuur bij 260 ° C gedurende 20 min.
      3. DMFDMA derivaten: Gebruik helium als de mobiele fase met een constante stroom van 1,2 mL/min. de temperatuur van de inlaat vastgesteldop met 230 ° C en die van de bron bij 250 ° C. Programma de autosampler te injecteren 1 µL van monsters met een split-ratio van 3:1. Uitvoeren van de analyses, geleidelijk de oventemperatuur als volgt: 60 ° C gedurende 1 min; helling van 20 ° C/min. tot 130 ° C; tweede verloop van 4 ° C/min. tot 260 ° C; Handhaaf de temperatuur bij 260 ° C gedurende 10 minuten.
      4. BSTFA derivaten: Gebruik helium als de mobiele fase met een constante stroom van 1,2 mL/min. de temperatuur van de inlaat vastgesteldop met 275 ° C en die van de bron bij 300 ° C. De analyses worden uitgevoerd (injectie: 1 µL), geleidelijk verhogen van de oventemperatuur als volgt: 110 ° C gedurende 1 min; eerste verloop van 2 ° C/min. tot 154 ° C; tweede verloop van 5 ° C/min. tot 300 ° C; Handhaaf de temperatuur bij 300 ° C gedurende 10 minuten.
      5. Detectie procedure: Voor elke bewerking, injecteren van een steekproef (1 µL) u in SCANMODUS werkt met positieve elektron effect ionisatie op 70 eV en neem nota van de retentietijd van elk aminozuur.
      6. Deze waarden gebruiken om te definiëren van de Vensters van de tijd in het chromatogram en voor de verschillende geselecteerde ionen, die kenmerkend zijn voor elk aminozuur en vermeld in tabel 3; deze waarden moeten worden opgenomen voor elk aminozuur. Deze informatie opnemen in de SIM-programma voor virusopsporing en uitvoeren van de analyses in de SIM-toegangsmodus met positieve elektron effect ionisatie op 70 eV.
    2. Verzamelen van de uitkomsten van de analyses; namelijk, elk aminozuur, opnemen een cluster van intensiteiten die overeenkomen met zijn verschillende massa isotopomers. Verwerken van de gegevens met behulp van de dedicatedsoftware17 te corrigeren voor het labelen van de natuurlijke en berekenen de isotopische verrijking van de Proteïnogeen aminozuren (gedefinieerd in de gelabelde breuk van een aminozuur met betrekking tot het totale bedrag in het eiwit monsters).
      Opmerking: De isotopische verrijking van een molecule (IE), uitgedrukt als een percentage, wordt berekend bij het verdelen van de som van de gecorrigeerde intensiteiten van de massale isotopomers met labeling (m1, m2,.. .mn) de som van de gecorrigeerde intensiteiten van alle isotopomers van de massa (m0, m-1m2,... mn):
      I. E. = (m1 + m2 +... + mn) / (m0 m1+ m2 +... + mn)

5. kwantificering en isotopische verrijking van vluchtige stoffen

  1. Extractie van gelabelde vluchtige stoffen
    1. Voeg 10 µL van Halfzwaar interne standaarden tot 5 mL van het supernatans (eindconcentratie van Halfzwaar verbindingen: 100 µg/L) in een tube van 15 mL glas. Voeg 1 mL dichloormethaan, strak sluit de buizen en schud ze op een rockende platform voor 20 min. Centrifuge voor 5 min op 3000 x g en verzamelen de lagere organische fase in een tube van 15 mL glas. Herhaal de winning van dichloormethaan.
    2. Droog het organische extract meer dan 500 mg van watervrij natriumsulfaat en verzamelen van de vloeibare fase met een pipet van Pasteur. Het extract concentreren door een factor vier onder stikstof flux en overbrengen naar een GC autosampler flacon.
  2. GC-MS kwantificering van vluchtige stoffen
    1. De gaschromatograaf met een capillaire kolom van gesmolten siliciumdioxide 30 m x 0,25 mm voorzien van 0.25 μm laagdikte en toepassen van een constante helium stroom van 1,0 mL/min. greep de injector en de transferregel bij 250 ° C.
    2. Injecteer 2 µL van het monster met een split-ratio van 10:1 en scheiden de uitgepakte vluchtige moleculen met behulp van de volgende oven temperatuursprofiel: Houd de temperatuur gedurende 3 minuten bij 40 ° C, verhogen door 4 ° C/min. tot 220 ° C en vervolgens houden de oven op 220 ° C gedurende 20 minuten.
    3. Detecteren van de verbindingen met behulp van een massaspectrometer met de temperatuur van de bron instellen op 230 ° C en de massaspectrometer vierpolige temperatuur ingesteld op 150 ° C. Het opnemen van de massaspectra in geselecteerd Ion Monitoring (SIM) modus met positieve elektron effect ionisatie op 70 eV en met behulp van de ion clusters specifiek om de vluchtige stoffen die worden vermeld in tabel 4.
    4. Gebruik een externe 7-punts kalibratie te kwantificeren van de concentraties van vluchtige moleculen van de bedragen van de intensiteiten van de bijbehorende ion-cluster. Het bereiden van stamoplossingen van elke verbinding (10 g/L) in 100% ethanol. Vervolgens, standaardoplossingen voor elke categorie van vluchtige moleculen (ethyl esters, acetaten, alcoholen en zuren) door het mengen van stamoplossingen worden bereid. Ten slotte, Verdun verschillende hoeveelheden van de standaardoplossingen in een 12%-hydroalcoholic oplossing met 5 gram per liter wijnsteenzuur, wordt verhoogd met de pH aangepast aan 3.3 ter voorbereiding van de ijkoplossingen.
    5. Parallel, corrigeren voor de natuurlijke etikettering van de intensiteiten van elk cluster ion en berekenen de isotopische verrijking van vluchtige stoffen, die is gedefinieerd in de gelabelde breuk van de moleculen en wordt uitgedrukt als een percentage met behulp van de speciale software 17.

6. de berekeningen voor een geïntegreerde analyse van de Dataset

  1. Collectie van de ruwe gegevens
    1. Met behulp van de werkbladen weergegeven in tabellen 5, 6, 7, en 8, voert u de waarden van de ruwe gegevens die overeenkomen met de concentratie van de extracellulaire aminozuren, cel drooggewicht, eiwitgehalte van cellen, concentratie van vluchtige moleculen, en isotopische verrijking van Proteïnogeen aminozuren en vluchtige moleculen.
      Opmerking: De gegevens die in tabellen weergegeven worden uitgedrukt in mM. Alle resultaten zijn eveneens uitgedrukt in mg/L door het vermenigvuldigen van de waarden in mM door het molecuulgewicht van elke molecuul of in mg N/L door te vermenigvuldigen met de millimolar concentratie van een Proteïnogeen aminozuur de atoommassa van stikstof (14 u) en door het aantal stikstof ato MS die worden geleverd door het katabolisme van dit molecuul.
    2. Bereken de massa percentage van elk aminozuur in eiwitten door het bedrag in mg/L in het hydrolysaat te delen door het totale bedrag van de aminozuren (hun som in mg/liter).
    3. Bereken middelen, standaarddeviaties en standaardfouten van het gemiddelde van de gegevens die zijn verkregen in de onafhankelijke experimenten.
    4. Bereken de concentratie (mg/L) van de Proteïnogeen voor elk aminozuur door vermenigvuldiging van het percentage van deze aminozuren in eiwitten (mg aa/g eiwitten) door de eiwitoplossing in de biomassa (g eiwitten/g DW) en het droge gewicht-inhoud (de productie van biomassa) in de medium (g DW/L).
  2. 15 N isotopische tracerproeven
    1. Met behulp van de werkbladen die zijn opgenomen in tabel 9, berekenen de gelabelde en labelloze fracties van stikstof die aanwezig zijn in de Proteïnogeen aminozuren (uitgedrukt in mg N/L) van de totale concentraties (uitgedrukt in mg N/L) en hun isotopische verrijking. Voor elk aminozuur, de gelabelde fractie komt overeen met het product tussen de totale concentratie en haar isotopische verrijking, en de labelloze deel is het verschil tussen het totaal en de gelabelde bedragen.
    2. Vervolgens bepalen de breuk van stikstof totaal in proteïnen die is opgenomen in de Proteïnogeen aminozuren gekwantificeerd in deze studie door optelling van de totale hoeveelheid Ala, glycine, Val, Asp, Phe, Leu, Ile, Thr, Ser, Pro, Lys, zijn, Glu en Arg (in mg N/L) en het totaal te delen een Mount stikstof aanwezig in eiwitten door dit bedrag.
    3. Berekenen van de stikstof die geboden door glutamine, arginine en ammonium dat werd teruggevonden in de Proteïnogeen zuren gekwantificeerd in deze studie door optelling van de gelabelde fractie (in mg N/L) van Proteïnogeen aminozuren die werden gekwantificeerd in de studie (Ala Glycine, Val, Asp, PHE Leu, Ile, Thr, Ser, Pro, Lys, zijn Glu en Arg) tijdens experimenten in aanwezigheid van 15N-geëtiketteerden arginine, glutamine, of ammonium en dit label-stikstof breuk delen door de totale hoeveelheid stikstof in de gekwantificeerde Proteïnogeen amino zuren.
    4. Beoordeling van de bijdrage van de 3 meest voorkomende aminozuren aan de intracellulaire pool van stikstof gebruikt voor DOVO biosynthese door het combineren van gegevens uit de 13C en 15N isotoop tracerproeven (werkblad in tabel 7).
    5. Van het totale bedrag (uitgedrukt in mM) van Proteïnogeen Val, Leu, Ile of Thr, aftrek van het deel dat is afgeleid van de directe integratie van verbruikte verbindingen (13C experimenten) en het deel dat was DOVO synthetized met behulp van stikstof uit de 3 belangrijke bronnen om te beoordelen van de breuk die was DOVO synthetized met behulp van stikstof uit de andere aminozuren.
    6. Vervolgens berekent de verhouding tussen de hoeveelheid aminozuur DOVO synthetized met behulp van stikstof door Gln, Arg en NH4+ (som uitgedrukt in mM) geleverd aan de totale hoeveelheid Proteïnogeen aminozuren (in mM) te kwantificeren van de bijdrage van arginine, glutamine en ammonium aan de intracellulaire stikstof-pool.
  3. 13 C isotopische tracerproeven
    1. Berekend van de gelabelde en labelloze breuken van de aminozuren Proteïnogeen van concentraties uitgedrukt in mM en isotopische verrijking van Proteïnogeen aminozuren die zijn verkregen tijdens proeven in aanwezigheid van het 13C-gelabeld Leu, Val, Ile of Thr. (zie 6.2.1, tabel 10).
    2. Berekend van de gelabelde en labelloze breuken van vluchtige stoffen uit concentratie uitgedrukt in mM en isotopische verrijking van vluchtige stoffen die zijn verkregen tijdens proeven in aanwezigheid van het 13C-gelabeld Leu, Val, Ile of Thr ( Tabel 10).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Figuur 3 geeft een schematisch diagram van de workflow die werd uitgevoerd voor het onderzoek naar het beheer door de gist van de meerdere bronnen van stikstof die zijn gevonden tijdens de wijn gisting.
Voor verschillende punten van de bemonstering, de kenmerken van de biologische parameters – groei, stikstof consumptiepatronen en het profiel van Proteïnogeen aminozuren – Toon een hoge reproduceerbaarheid onder fermentatie (Figuur 4). Deze consistentie valideert de relevantie van de aanpak gebaseerd op de combinatie van gegevens die tijdens een set van 14 onafhankelijke fermentatie werd gegenereerd.

Figuur 5 toont een uitgebreid overzicht van de herverdeling van stikstof uit de bronnen die beschikbaar in het druivensap aan alle Proteïnogeen aminozuren zijn. Deze analyse wordt voornamelijk ondersteund door de resultaten die zijn verkregen van experimenten uitgevoerd in de aanwezigheid van 15N-geëtiketteerden verbindingen. In combinatie met de bepaling van de massa en isotopische saldi, de meting van de isotopische verrijking van Proteïnogeen aminozuren gekwantificeerd de eerste van de bijdrage van stikstof-afkomstig arginine, glutamine, ammonium en andere bronnen aan de amine-groepen van elk van deze verbindingen. De belangrijke herverdeling van stikstof die hier is onderstreept weerspiegelt de wezenlijke rol van DOVO synthese van aminozuren in gist groei.

Voorts staat in deze studie vergelijken de bedragen van gelabelde stoffen in eiwitten met hun consumptie, de Fractie van de verbruikte N-bevattende moleculen die direct zijn opgenomen in eiwitten bij het invoeren van de cellen die moeten worden beoordeeld. Proteïnogeen aminozuren worden gedifferentieerd volgens hun niveau van directe opname in de biomassa; Sommigen van hen zijn uitsluitend (Asp, Glu) of meer dan 80% DOVO synthetized, terwijl slechts kleine hoeveelheden andere stoffen worden gegenereerd door DOVO synthese. Interessant is dat omvat deze laatste groep lysine en histidine, die de enige aminozuren waarop alle de verbruikte bronnen direct worden opgenomen.

Figuur 5B ook presenteert, voor sommige aminozuren, een vergelijking tussen de hoeveelheid verbruikte aminozuur dat rechtstreeks wordt teruggewonnen in de biomassa, berekend op basis van gegevens verkregen in 15N-labeling experimenten en experimenteel gemeten in 13 C-labeling experimenten. De kleine verschillen tussen deze waarden laten zien voor de betrouwbaarheid en de degelijkheid van de aanpak die in deze studie werd uitgevoerd.

Figuur 6 ziet u een voorbeeld van kwantitatieve partitionering (ratio's) ten opzichte van de lichtstromen via stofwisselingsroutes dat werd verkregen door de uitvoering van de werkstroom gemeld in dit document. Deze kaart werd getekend door het combineren van informatie van isotopische tracerproeven met behulp van 15N- en 13C-gelabeld substraten en beschrijft het partitioneren van de verbruikte alifatische aminozuren in het metabolische netwerk dat bij valine betrokken is en Leucine biosynthese in gist (voor berekeningen, Zie tabel 1 en tabel 2). Door het meten van de productie en isotopische verrijking van zowel Proteïnogeen aminozuren en vluchtige stoffen, beoordelen we het bedrag van deze verbindingen die synthetized van de koolstof-backbones van verbruikt U-C13- valine en U-C13 waren- Leucine, die correspondeert met de gelabelde breuk van de verbindingen. Vervolgens konden we om te bepalen van de bijdrage van CCM aan hun vorming (de labelloze breuk van de stoffen). Koolstof massa saldi instellen met behulp van de workflow en de Berekeningsprocedure die hier wordt voorgesteld tonen aan dat meer dan 96% van de geconsumeerde valine en leucine zijn hersteld in hun conversie producten, namelijk, Proteïnogeen leucine en valine en vluchtige hoger alcoholen. Deze bevinding bevestigt de geschiktheid van de gerapporteerde aanpak voor kwantitatief onderzoek van het metabolisme. De geïntegreerde en alomvattende analyse van de dataset biedt nieuwe inzichten in het lot van verbruikte aminozuren. Verrassend, een belangrijke fractie van valine en leucine zijn catabolized ondanks een aanzienlijke onevenwicht tussen de beschikbaarheid van deze stoffen in het medium en de inhoud daarvan in biomassa. De Fractie van exogene N-verbindingen direct opgenomen in de eiwitten hangt echter af van de aard van het aminozuur. Een ander belangrijk punt betreft de metabole oorsprong van Proteïnogeen aminozuren en vluchtige moleculen. De analyse van het 13C-labeling patroon van Proteïnogeen leucine en valine blijkt dat het skelet van de koolstof van deze aminozuren voornamelijk afkomstig is van precursoren die synthetized door de CCM waren. In overeenstemming met deze constatering, toont de lage opneming van labeling in isobutanol en isoamyl alcohol aan de zeer beperkte betrokkenheid van het katabolisme van valine en leucine die werden verbruikt door gist in de vorming van deze hogere alcoholen.

Figure 1
Figuur 1. Robotic systeem voor de monitoring van de fermentatie van hoge-doorvoer geautomatiseerde. (A) robotachtig platform. Fermentoren (a) zijn geplaatst in steun gidsen op magnetische roeren platen (b). Een veiligheidslichtgordijn (c) beschermt de gebruikers. Een robotarm (d) beweegt de fermentoren achtereenvolgens vanaf hun locatie op één van de 6 roeren platen tot een precisie evenwicht (e) aan de linkerkant van de werktafel, voor het meten van het gewicht elke 4 uur. Het robotachtige platform bevindt zich in een kamer temperatuurgevoelig. (B) Schematische weergave van de softwarearchitectuur. Een grafische interface, kunnen de gebruikers de experimentele instellingen definiëren. Deze informatie wordt doorgegeven aan de beheertoepassing die controles van de robotarm en slaat op de verschillende gewicht in verschillende rauwe data.xlm bestanden (1 bestand/gisting). De calculatiesoftware vervolgens verzamelt de XLM-bestanden en, voor elk punt van de tijd, de hoeveelheid CO2 die is uitgebracht (uitgedrukt in g/L), die evenredig aan de hoeveelheid suikers die hebben zijn verbruikt op dit moment, en de gisting snelheid is, berekend die komt overeen met het tarief van CO2 productie, in g CO2/L/h (evenredig is aan het tarief van de suikerconsumptie stijgt). Gegevens worden opgeslagen in een relationele database en gevisualiseerd met behulp van een toegewijde grafische interface. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 2
Figuur 2. GC-MS analyse van Proteïnogeen aminozuren: voorbeeld van alanine. (A) Chromatogram verkregen na bewerking van Proteïnogeen aminozuren met behulp van DMFDMA. (B) massa spectra van derivatized alanine. Twee belangrijkste bergtoppen die met fragmenten met m0/z corresponderen = 99 en m0/z = 158. (C) bewerking reactie van alanine met DMFDMA. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 3
Figuur 3. Workflow voor de kwantitatieve analyse van het metabolisme van meerdere stikstof bronnen door gist. Dit proces omvat (i) een reeks van 28 fermentatie (7 bronnen van stikstof en fermentatie met of zonder stikstofverbindingen in tweevoud); (ii) een analytisch deel dat verschillende procedures van winning en bewerking van moleculen en HPLC of GM-MS analyses en (iii) verwerking van raw-gegevens en een geïntegreerde analyse van de datasets betreft. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 4
Figuur 4. Reproduceerbaarheid van biologische parameters uit een aantal onafhankelijke fermentatie. (A-B) Gemiddelden en standaardafwijkingen van het droge gewicht en gehalte aan andere melkeiwitten die zijn verkregen van de 14 onafhankelijke fermentatie uitgevoerd met behulp van labelloze verbindingen. (C-D) Gemiddelden en standaardafwijkingen van Proteïnogeen en verbruikte aminozuren die werden gemeten tijdens 14 onafhankelijke fermentatie uitgevoerd met behulp van labelloze verbindingen. CO2 productie: 5 (groen), 10 (blauw), 40 (roze) en 90 (paars) g/L. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 5
Figuur 5. Herverdeling van stikstof uit de drie grote stikstof bronnen Proteïnogeen aminozuren tijdens de gisting. (A) metabole oorsprong van Proteïnogeen aminozuren: directe integratie van verbruikte tegenhanger (blauw) en DOVO synthese met behulp van stikstof geboden door verbruikte arginine (oranje), glutamine (groen), ammoniumsulfaat (roze) of andere aminozuren ( paarse). Uitgedrukt als een percentage van het totale bedrag van elk Proteïnogeen aminozuur. (B) vergelijking tussen de hoeveelheid verbruikte aminozuur (blauw) en het deel van de geconsumeerde aminozuur dat rechtstreeks wordt teruggewonnen in proteïnen, berekend op basis van de gegevens die werden verkregen in 15N tracerproeven (paars) of experimenteel gemeten tijdens de gisting met 13C-gelabeld moleculen (roze). Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 6
Figuur 6. Kwantitatieve analyse van valine en leucine metabolisme. Afscherming (groen) verbruikt leucine en valine (blauw) via het metabolische netwerk wanneer 40 g/L van CO2 worden geproduceerd. De balken zijn in verhouding tot het bedrag van elke stof en worden uitgedrukt in µM, met inbegrip van het deel dat synthetized van centrale koolstof metabolisme (Oranje was). Waarden in het normale lettertype: bedrag in µM; waarden in het cursief lettertype: percentage van verbruikte valine (blauw) of leucine (groen), die werd catabolized door middel van het traject. De berekeningen zijn opgenomen in tabel 1 en tabel 2. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Verbindingen Bedrag per liter
Glucose C6H12O6 240 g
Appelzuur C4H6O5 6 g
Citroenzuur C6H8O7 6 g
Kalium fosfaat KH2PO4 0,75 g
Kalium sulfaat K2SO4 0.5 g
Magnesium-sulfaat MgSO4, 7 H2O 0,25 g
Calciumchloride CaCl2, 2 H2O 0.155g
Natriumchloride NaCl 0,2 g
Myo-inositol 20 mg
Calcium pantothenaat 1,5 mg
Thiaminehydrochloride 0.223 mg
Nicotinezuur 2 mg
Pyridoxine 0,25 mg
Biotine 0.003
MnSO4· H2O 4 mg
ZnSO4·7H2O 4 mg
CuSO4·5H2O 1 mg
CoCl2·6H2O 0.4 mg
H3BO3 1 mg
(NH4) 6 Ma7O24 1 mg
Ergosterol 3,75 mg
Oliezuur 1,25 ΜL
Tween 80 125 ΜL
Tyrosine 8.6 mg
Tryptofaan 84.4 mg
Isoleucine 15,4-inch mg
Aspartaat 20.9 mg
Glutamaat 56.7 mg
Arginine 176.2 mg
Leucine 22.8 mg
Threonine 35.7 mg
Glycine 8.6 mg
Glutamine 237.8 mg
Alanine 68.4 mg
Valine 20.9 mg
Methionine 14.8 mg
Fenylalanine 17.9 mg
Serine 37.0 mg
Histidine 15,4-inch mg
Lysine 8.0 mg
Cysteïne 6.2 mg
Proline 288.3 mg
Ammoniak NH chloride4Cl 220 mg
De pH van het medium was aangepast aan 3.3 met NaOH 10 M.

Tabel 1. Samenstelling van het synthetische medium gebruikt in deze studie. Dit chemisch welbepaalde medium bootst de samenstelling van druivensap.

Elutie buffer Temperatuur
Van 0 tot 6 min Lithium citraat, 200 mM, pH 2,8 32 ° C
Van 6 tot en met 38 min Lithium citraat, 300 mM, pH 3 32 ° C
Van 38 tot en met 57 min Lithium citraat, 500 mM, pH 3.15 64,5 ° C
Van 57 tot 83 min Lithium citraat, 900 mM, pH 3,5 75 ° C
Van 83 tot 120 min Lithium citraat, 1650 mM, pH 3,55 75 ° C
Van 120 naar 130 min Lithium hydroxyde, 300 mM

Tabel 2. Voorwaarden gebruikt voor de scheiding van aminozuren door ionenwisselingschromatografie-. Elutie buffers met verhoogde concentraties van zout worden achtereenvolgens in combinatie met een temperatuurgradiënt gebruikt om de scheiding van de aminozuren.

Aminozuren Derivatiserings reagens RT (min) Ion clusters (m/z)
Alanine ECFeen 3.86 116, 117, 118, 119
DMFDMAb 6.37 99, 100, 101, 102
DMFDMAb 6.37 158, 159, 160, 161
Glycine ECFeen 4.19 102, 103, 104
ECFeen 4.19 175, 176, 177
DMFDMAb 6.61 85, 86, 87
DMFDMAb 6.61 144, 145, 146
Valine ECFeen 4,97 144, 145, 146, 147, 148, 149
DMFDMAb 7.37 127, 128, 129, 130, 131, 132
DMFDMAb 7.37 143, 144, 145, 146, 147, 148
DMFDMAb 7.37 186, 187, 188, 189, 190, 191
Leucine ECFeen 5,67 158, 159, 160, 161, 162, 163, 164
Isoleucine ECFeen 5.85 158, 159, 160, 161, 162, 163, 165
Threonine ECFeen 6,48 146, 147, 148, 149, 150
ECFeen 6,48 175, 176, 177, 178, 179
Serine ECFeen 6.53 132, 133, 134, 135
ECFeen 6.53 175, 176, 177, 178
Proline ECFeen 6.83 142, 143, 144, 145, 146, 147
Aspartaat ECFeen 7,89 188, 189, 190, 191, 192
DMFDMAb 11,77 115, 116, 117, 118, 119
DMFDMAb 11,77 216, 217, 218, 219, 220
Glutamaat ECFeen 8.81 202, 203, 204, 205, 206, 207
DMFDMAb 12,75 111, 112, 113, 114, 115, 116
DMFDMAb 12,75 143, 144, 145, 146, 147, 148
DMFDMAb 12,75 230, 232, 231, 233, 234, 235
Fenylalanine ECFeen 9,53 192 193, 194, 195, 196, 197, 198, 199, 200, 201
DMFDMAb 13.67 143, 144, 145, 146, 147, 148, 149, 150, 151, 152
Lysine ECFeen 11,95 156, 157, 158, 159, 160, 161, 162
Histidine ECFeen 12,54 327, 328, 329, 330, 331, 332, 333
Arginine BSTFAc 18,8 174 175, 176, 177, 178, 179
een ECF, ethyl chloroformate; b DMFDMA (N, N)-dimethylformamide dibutyl Acetaal; c BSTFA, (N,O-bis(trimethylsilyl)trifluoroacetamide).

Tabel 3. Analytische parameters die worden gebruikt voor de bepaling van isotopische verrijking van aminozuren met behulp van geselecteerde ion monitoring (SIM) modus. Deze tabel geeft een overzicht van de gebruikte voor de bewerking, de retentietijd van derivatized verbindingen en het cluster van ionen verkregen in MS (modus Electron Impact) voor elk aminozuur chemische agentia.

Aminozuren Derivatiserings reagens RT (min) Ion clusters (m/z)
Alanine ECFeen 3.86 116, 117, 118, 119
DMFDMAb 6.37 99, 100, 101, 102
DMFDMAb 6.37 158, 159, 160, 161
Glycine ECFeen 4.19 102, 103, 104
ECFeen 4.19 175, 176, 177
DMFDMAb 6.61 85, 86, 87
DMFDMAb 6.61 144, 145, 146
Valine ECFeen 4,97 144, 145, 146, 147, 148, 149
DMFDMAb 7.37 127, 128, 129, 130, 131, 132
DMFDMAb 7.37 143, 144, 145, 146, 147, 148
DMFDMAb 7.37 186, 187, 188, 189, 190, 191
Leucine ECFeen 5,67 158, 159, 160, 161, 162, 163, 164
Isoleucine ECFeen 5.85 158, 159, 160, 161, 162, 163, 165
Threonin ECFeen 6,48 146, 147, 148, 149, 150
ECFeen 6,48 175, 176, 177, 178, 179
Serine ECFeen 6.53 132, 133, 134, 135
ECFeen 6.53 175, 176, 177, 178
Proline ECFeen 6.83 142, 143, 144, 145, 146, 147
Aspartaat ECFeen 7,89 188, 189, 190, 191, 192
DMFDMAb 11,77 115, 116, 117, 118, 119
DMFDMAb 11,77 216, 217, 218, 219, 220
Glutamaat ECFeen 8.81 202, 203, 204, 205, 206, 207
DMFDMAb 12,75 111, 112, 113, 114, 115, 116
DMFDMAb 12,75 143, 144, 145, 146, 147, 148
DMFDMAb 12,75 230, 232, 231, 233, 234, 235
Fenylalanine ECFeen 9,53 192 193, 194, 195, 196, 197, 198, 199, 200, 201
DMFDMAb 13.67 143, 144, 145, 146, 147, 148, 149, 150, 151, 152
Lysine ECFeen 11,95 156, 157, 158, 159, 160, 161, 162
Histidine ECFeen 12,54 327, 328, 329, 330, 331, 332, 333
Arginine BSTFAc 18,8 174 175, 176, 177, 178, 179

Tabel 4. Analytische parameters die worden gebruikt voor de bepaling van isotopische verrijking en kwantificering van vluchtige stoffen met behulp van geselecteerde ion monitoring (SIM) modus. Deze tabel bevat een overzicht van de behoudtijd en het cluster van ionen verkregen in MS (modus Electron Impact) voor elke vluchtige stoffen.

Tabel 5. Verwerking van raw-gegevens verkregen uit de kwantificering van residuele aminozuren Dataset bevat gegevens uit metingen van de initiële en resterende aminozuren. Deze waarden worden gebruikt voor het berekenen van de hoeveelheid verbruikte aminozuur (door aftrekken). Gemiddelde en standaardafwijking worden berekend voor verdere berekeningen. Klik hier om te downloaden van deze tabel.

Tabel 6. Verwerking van ruwe data verkregen van de kwantificering van Proteïnogeen aminozuren. Deze dataset bevat gegevens over de samenstelling aan aminozuren van biomassa hydrolysaten (A) en de Fractie van de eiwitten in biomassa (B). Deze waarden worden gebruikt voor het beoordelen van de massale percentage van elk aminozuur aan eiwitten (C). Gemiddelde en standaardafwijking worden berekend voor verdere berekeningen. Klik hier om te downloaden van deze tabel.

Tabel 7. Proteïnogeen aminozuren. Dit werkblad wordt gebruikt voor het berekenen van de concentratie (in mM) Proteïnogeen aminozuren uit gegevens samengevat in tabel 5 en tabel 6. Gemiddelde en standaardafwijking worden berekend voor verdere berekeningen. Klik hier om te downloaden van deze tabel.

Tabel 8. Verwerking van ruwe data verkregen van de kwantificering van hogere alcoholen. Dataset bevat gegevens uit de meting van de vluchtige samengestelde concentraties (A) en zet gegevens uitgedrukt in mg/L aan µM (B). Gemiddelde en standaardafwijking worden berekend voor verdere berekeningen. Klik hier om te downloaden van deze tabel.

Tabel 9. Verwerking van raw-gegevens verkregen uit de bepaling van isotopische verrijking van Proteïnogeen aminozuren met behulp van 15N-geëtiketteerden substraten.
Gemiddelde en standaardafwijking worden berekend voor verdere berekeningen. Klik hier om te downloaden van deze tabel.

Tabel 10. Verwerking van raw-gegevens verkregen uit de bepaling van isotopische verrijking van Proteïnogeen aminozuren en vluchtige stoffen met behulp van 13C-gelabeld substraten.
Gemiddelde en standaardafwijking worden berekend voor verdere berekeningen. Klik hier om te downloaden van deze tabel.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Kwantificeren van compartimentering van de verbindingen via metabole netwerken met isotopische tracerproeven is een veelbelovende aanpak voor het begrip van de werking van het microbiële metabolisme. Deze methodiek, niet kan terwijl succesvol toegepast met één of twee gelabelde substraten, momenteel worden uitgevoerd om te studeren metabolisme van verschillende bronnen met behulp van meerdere gelabelde elemental isotopen (dat wil zeggen, meer dan twee substraten). Inderdaad, de beschikbare analytische technieken in staat stellen de nauwkeurige bepaling van de labeling patronen van Proteïnogeen aminozuren en moleculen uitsluitend bij het gebruik van de isotopen van een enkel element en eventueel wanneer mede labelen met twee elementen. Dus, om deze beperkingen en het beheer van meerdere nutriënten bronnen beoordelen door micro-organismen, kozen we om het herhalen van een set van culturen onder dezelfde milieu voorwaarden terwijl het labelen van een geselecteerde substraat met 13C of 15 N isotopen. Vervolgens verder biedt de combinatie van de specifieke informatie die wordt verstrekt door elke 13C of 15N tracer experiment een kwantitatieve uitgebreide weergave van het metabolisme van meerdere bronnen.

De verwezenlijking van de gerapporteerde aanpak berust op de implementatie van een reproduceerbare aantal culturen onder normale omstandigheden en het verzamelen van monsters uit een populatie van cellen in een gedefinieerde fysiologische toestand die hetzelfde is voor alle culturen (cel groei, gebruik van substraat, enz.). Deze voorwaarden moeten worden voldaan, zodat de gegevens die zijn verkregen uit onafhankelijke experimenten kan worden gemengd en samen geanalyseerd. Voldoen aan deze beperkingen vereist een nauwkeurige en regelmatige controle van de microbiële activiteit die werd uitgevoerd, in het experimenteel werk gemeld hier, met behulp van een robot-assisted systeem voor online bewaking van gist gisting activiteit. Meer conventionele methoden voor de teelt van het micro-organisme en toezicht, zoals de bepaling van de celgroei door het meten van de extinctie, kunnen echter worden gebruikt om te normaliseren van de bemonsteringsprocedure.

Een andere voorwaarde voor de uitvoering van deze methode is dat een duidelijke visie op de metabolische banen die bij het netwerk betrokken zijn moeten worden onderzocht. Deze kennis is essentieel voor het kiezen van de set van gelabelde substraten die zijn het meest geschikt voor het omgaan met de kwestie bestudeerd. De gelabelde stoffen, alsmede de aard en de plaats van de etikettering (13C, 15N of anderen) binnen de moleculen moet worden geselecteerd behoorlijk om ik) herstellen alle geboden door de substraten in de verbindingen die zijn afgeleid van etiketten hun katabolisme en zijn verder geanalyseerd in de procedure en ii) verkrijgen van redundante gegevens die aantonen de nauwkeurigheid van de methodologie en de geldigheid van de bevindingen dat. De hier beschreven procedure omvat ook een belangrijk aantal analyses die tijdrovende en dure in menselijke en financiële middelen worden kunnen. Bovendien kunnen sommige analytische beperkingen beperkt u het gebruik van deze methode. Eerst, gebruikers moeten ervoor zorgen dat alle de analysemethoden die vereist zijn voor de kwantificering van de stoffen geproduceerd tijdens microbiële metabolisme en voor de bepaling van hun isotopische verrijking zijn beschikbaar. Ten tweede, deze aanpak geldt alleen voor de beoordeling van het metabolisme van substraten voor welke alle de conversie verbindingen worden geproduceerd in voldoende hoeveelheden nauwkeurig worden gekwantificeerd.

In dit document pasten we deze werkstroom om te verkennen van het beheer van meerdere bronnen van stikstof door gist tijdens de gisting van de wijn. Dit verslag aangeboden nieuwe inzichten over gist metabolisme, met inbegrip van de aanzienlijke katabolisme van de meest geconsumeerde aminozuren, gecombineerd met hun lage directe opneming in eiwitten, en de belangrijke bijdrage van CCM precursoren te leveren die verder worden gebruikt voor zowel de DOVO synthese van Proteïnogeen aminozuren en de vorming van vluchtige moleculen.

Meer in het algemeen, de benadering die hier wordt beschreven kan worden gebruikt voor het kwantificeren van het partitioneren van meerdere substraten via het metabolische netwerk van elk micro-organisme. Het zal toestaan onderzoekers ophelderen van het lot van alle geconsumeerde stoffen, nadat ze de cellen invoeren en inspelen op de identificatie van de metabole oorsprong van precursoren en producten. Deze informatie kan nuttig zijn voor het vergelijken van de metabole activiteit van stammen die verschillende genetische achtergronden hebben of groeien onder verschillende omstandigheden en bijgevolg voor het ontwerpen van rationele strategieën ter verbetering van fermentatieprocessen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgments

Wij danken Jean-Roch Mouret, Sylvie Dequin en Jean-Marie Sabalyrolles bij te dragen tot de opvatting van het systeem van de Robot-assisted gisting en Martine Pradal, Nicolas Bouvier en Pascale Brial voor hun technische ondersteuning. Financiering voor dit project werd verstrekt door de Ministère de l'Education Nationale, de la Recherche et de la Technologie.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
D-Glucose PanReac 141341.0416
D-Fructose PanReac 142728.0416
DL-Malic acid Sigma Aldrich M0875
Citric acid monohydrate Sigma Aldrich C7129
Potassium phosphate monobasic Sigma Aldrich P5379
Potassium sulfate Sigma Aldrich P0772
Magnesium sulfate heptahydrate Sigma Aldrich 230391
Calcium chloride dihydrate Sigma Aldrich C7902
Sodium chloride Sigma Aldrich S9625
Ammonium chloride Sigma Aldrich A4514
Sodium hydroxide Sigma Aldrich 71690
Manganese sulfate monohydrate Sigma Aldrich M7634
Zinc sulfate heptahydrate Sigma Aldrich Z4750
Copper (II) sulfate pentahydrate Sigma Aldrich C7631
Potassium iodine Sigma Aldrich P4286
Cobalt (II) chloride hexahydrate Sigma Aldrich C3169
Boric acid Sigma Aldrich B7660
Ammonium heptamolybdate Sigma Aldrich A7302
Myo-inositol Sigma Aldrich I5125
D-Pantothenic acid hemicalcium salt Sigma Aldrich 21210
Thiamine, hydrochloride Sigma Aldrich T4625
Nicotinic acid Sigma Aldrich N4126
Pyridoxine Sigma Aldrich P5669
Biotine Sigma Aldrich B4501
Ergostérol Sigma Aldrich E6510
Tween 80 Sigma Aldrich P1754
Ethanol absolute VWR Chemicals 101074F
Iron (III) chloride hexahydrate Sigma Aldrich 236489
L-Aspartic acid Sigma Aldrich A9256
L-Glutamic acid Sigma Aldrich G1251
L-Alanine Sigma Aldrich A7627
L-Arginine Sigma Aldrich A5006
L-Cysteine Sigma Aldrich C7352
L-Glutamine Sigma Aldrich G3126
Glycine Sigma Aldrich G7126
L-Histidine Sigma Aldrich H8000
L-Isoleucine Sigma Aldrich I2752
L-Leucine Sigma Aldrich L8000
L-Lysine Sigma Aldrich L5501
L-Methionine Sigma Aldrich M9625
L-Phenylalanine Sigma Aldrich P2126
L-Proline Sigma Aldrich P0380
L-Serine Sigma Aldrich S4500
L-Threonine Sigma Aldrich T8625
L-Tryptophane Sigma Aldrich T0254
L-Tyrosine Sigma Aldrich T3754
L-Valine Sigma Aldrich V0500
13C5-L-Valine Eurisotop CLM-2249-H-0.25
13C6-L-Leucine Eurisotop CLM-2262-H-0.25
15N-Ammonium chloride Eurisotop NLM-467-1
ALPHA-15N-L-Glutamine Eurisotop NLM-1016-1
U-15N4-L-Arginine Eurisotop NLM-396-PK
Ethyl acetate Sigma Aldrich 270989
Ethyl propanoate Sigma Aldrich 112305
Ethyl 2-methylpropanoate Sigma Aldrich 246085
Ethyl butanoate Sigma Aldrich E15701
Ethyl 2-methylbutanoate Sigma Aldrich 306886
Ethyl 3-methylbutanoate Sigma Aldrich 8.08541.0250
Ethyl hexanoate Sigma Aldrich 148962
Ethyl octanoate Sigma Aldrich W244910
Ethyl decanoate Sigma Aldrich W243205
Ethyl dodecanoate Sigma Aldrich W244112
Ethyl lactate Sigma Aldrich W244015
Diethyl succinate Sigma Aldrich W237701
2-methylpropyl acetate Sigma Aldrich W217514
2-methylbutyl acetate Sigma Aldrich W364401
3-methyl butyl acetate Sigma Aldrich 287725
2-phenylethyl acetate Sigma Aldrich 290580
2-methylpropanol Sigma Aldrich 294829
2-methylbutanol Sigma Aldrich 133051
3-methylbutanol Sigma Aldrich 309435
Hexanol Sigma Aldrich 128570
2-phenylethanol Sigma Aldrich 77861
Propanoic acid Sigma Aldrich 94425
Butanoic acid Sigma Aldrich 19215
2-methylpropanoic acid Sigma Aldrich 58360
2-methylbutanoic acid Sigma Aldrich 193070
3-methylbutanoic acid Sigma Aldrich W310212
Hexanoic acid Sigma Aldrich 153745
Octanoic acid Sigma Aldrich W279900
Decanoic acid Sigma Aldrich W236403
Dodecanoic acid Sigma Aldrich L556
Fermentor 1L Legallais AT1357 Fermenter handmade for fermentation
Disposable vacuum filtration system Dominique Deutscher 029311
Fermenters (250 ml) Legallais AT1352 Fermenter handmade for fermentation
Sterile tubes Sarstedt 62.554.502
Fermentation locks Legallais AT1356 Fermetation locks handmade for fermentation
BactoYeast Extract Becton, Dickinson and Company 212750
BactoPeptone Becton, Dickinson and Company 211677
Incubator shaker Infors HT
Particle Counter Beckman Coulter 6605697 Multisizer 3 Coulter Counter
Centrifuge Jouan GR412
Plate Butler Robotic system Lab Services BV PF0X-MA Automatic instrument
Plate Butler Software Lab Services BV Robot monitor software
RobView In-house developed calculation software
My SQL International source database
Cimarec i Telesystem Multipoint Stirrers Thermo Fisher Scientific 50088009 String Drive 60
BenchBlotter platform rocker Dutscher 60903
Ammonia enzymatic kit R-Biopharm AG 5390
Spectrophotometer cuvettes VWR 634-0678
Spectrophotometer UviLine 9400 Secomam
Amino acids standards physiological - acidics and neutrals Sigma Aldrich A6407
Amino acids standards physiological - basics Sigma Aldrich A6282
Citrate lithium buffers - Ultra ninhydrin reagent Biochrom BC80-6000-06
Sulfosalycilic acid Sigma Aldrich S2130
Norleucine Sigma Aldrich N1398
Biochrom 30 AAA Biochrom
EZChrom Elite Biochrom Instrument control and Data analysis software
Ultropac 8 resin Lithium Biochrom BC80-6002-47 Lithium High Resolution Physiological Column
Filter Millex GV Merck Millipore SLGVX13NL Millex GV 13mm (pore size 0.22 µm)
Membrane filter PALL VWR 514-4157 Supor-450 47mm 0.45µm
Vacuum pump Millivac Mini Millipore XF5423050
Aluminium smooth weigh dish 70mm VWR 611-1380
Precision balance Mettler Specifications AE163
Dimethyl sulfoxid dried Merck 1029310161 (max. 0.025% H2O) SeccoSolv
Combustion oven Legallais
Pierce BCA protein assay kit Interchim UP40840A
Formic acid Fluka 94318
Hydrogen peroxide Sigma Aldrich H1009
Hydrochloric Acid Fuming 37% Emsure Merck 1003171000 Grade ACS,ISO,Reag. Ph Eur
Lithium acetate buffer Biochrom 80-2038-10
Commercial solution of hydrolyzed amino acids Sigma Aldrich AAS18
L-Methionine sulfone Sigma Aldrich M0876
L-Cysteic acid monohydrate Sigma Aldrich 30170
Pyrex glass culture tubes Sigma Aldrich Z653586
Pyridine Acros Organics 131780500 99% Extrapure
Ethyl chloroformate Sigma Aldrich 23131
Dichloromethane Sigma Aldrich 32222
Vials Sigma Aldrich 854165
Microinserts for 1.5ml vials Sigma Aldrich SU860066
GC/MS Agilent Technologies 5890 GC/5973 MS
Chemstation Agilent Technologies Instrument control and data analysis software
Methanol Sigma Aldrich 34860 Chromasolv, for HPLC
Acetonitrile Sigma Aldrich 34998 ChromasolvPlus, for HPLC
N,N-Dimethylformamide dimethyl acetal Sigma Aldrich 394963
BSTFA Sigma Aldrich 33024
DB-17MS column Agilent Technologies 122-4731 30m*0.25mm*0.15µm
Sodium sulfate, anhydrous Sigma Aldrich 238597
Technical nitrogen Air products 14629
Zebron ZB-WAX column Phenomenex 7HG-G007-11 30m*0.25mm*0.25µm
Helium BIP Air products 26699
Glass Pasteur pipettes VWR 612-1702

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Osterlund, T., Nookaew, I., Nielsen, J. Fifteen years of large scale metabolic modeling of yeast: developments and impacts. Biotechnol Adv. 30, 979-988 (2012).
  2. Gombert, A. K., Moreirados Santos, M., Christensen, B., Nielsen, J. Network identification and flux quantification in the central metabolism of Saccharomyces cerevisiae under different conditions of glucose repression. J Bacteriol. 183, 1441-1451 (2001).
  3. Wiechert, W. 13C metabolic flux analysis. Metab Eng. 3, 195-206 (2001).
  4. Fischer, E., Zamboni, N., Sauer, U. High-throughput metabolic flux analysis based on gas chromatography-mass spectrometry derived 13C constraints. Anal Biochem. 325, 308-316 (2004).
  5. Rantanen, A., Rousu, J., Jouhten, P., Zamboni, N., Maaheimo, H., Ukkonen, E. An analytic and systematic framework for estimating metabolic flux ratios from 13C tracer experiments. BMC Bioinformatics. 9, 266 (2008).
  6. Zamboni, N. 13C metabolic flux analysis in complex systems. Curr Opin Biotechnol. 22, 103-108 (2011).
  7. Kruger, N. J., Ratcliffe, R. G. Insights into plant metabolic networks from steady-state metabolic flux analysis. Biochimie. 91, 697-702 (2009).
  8. Quek, L. -E., Dietmair, S., Krömer, J. O., Nielsen, L. K. Metabolic flux analysis in mammalian cell culture. Metab Eng. 12, 161-171 (2010).
  9. Perpete, P., Santos, G., Bodart, E., Collin, S. Uptake of amino acids during beer production: The concept of a critical time value. J Am Soc Brew Chem. 63, 23-27 (2005).
  10. Magasanik, B., Kaiser, C. A. Nitrogen regulation in Saccharomyces cerevisiae. Gene. 290, 1-18 (2002).
  11. Ljungdahl, P. O., Daignan-Fornier, B. Regulation of amino acid, nucleotide, and phosphate metabolism in Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 190, 885-929 (2012).
  12. Cooper, T. G. Nitrogen metabolism in Saccharomyces cerevisiae. The molecular biology of the yeast Saccharomyces: Metabolism and gene expression. Strathern, J. N., Jones, E. W., Broach, J. R. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor. New York, USA. 39-99 (1982).
  13. Jones, E. W., Fink, G. R. Regulation of amino acid and nucleotide biosynthesis in yeast. The molecular biology of the yeast Saccharomyces: Metabolism and gene expression. Strathern, J. N., Jones, E. W., Broach, J. R. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor. New York, USA. 182-299 (1982).
  14. Hazelwood, L. A., Daran, J. -M., van Maris, A. J. A., Pronk, J. T., Dickinson, J. R. The Ehrlich pathway for fusel alcohol production: a century of research on Saccharomyces cerevisiae metabolism. Appl Environ Microbiol. 74, 2259-2266 (2008).
  15. Bely, M., Sablayrolles, J. M., Barre, P. Automatic detection of assimilable nitrogen deficiencies during alcoholic fermentation in oenological conditions. J Ferment Bioeng. 70, 246-252 (1990).
  16. Forster, J., Famili, I., Fu, P., Palsson, B. O., Nielsen, J. Genome-scale reconstruction of the Saccharomyces cerevisiae metabolic network. Genome Res. 13, 244-253 (2003).
  17. Millard, P., Letisse, F., Sokol, S., Portais, J. C. IsoCor: correcting MS data in isotope labeling experiments. Bioinformatics. 28, 1294-1296 (2012).
Workflow gebaseerd op de combinatie van isotopische tracerproeven te onderzoeken van de microbiële metabolisme van meerdere nutriënten bronnen
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Bloem, A., Rollero, S., Seguinot, P., Crépin, L., Perez, M., Picou, C., Camarasa, C. Workflow Based on the Combination of Isotopic Tracer Experiments to Investigate Microbial Metabolism of Multiple Nutrient Sources. J. Vis. Exp. (131), e56393, doi:10.3791/56393 (2018).More

Bloem, A., Rollero, S., Seguinot, P., Crépin, L., Perez, M., Picou, C., Camarasa, C. Workflow Based on the Combination of Isotopic Tracer Experiments to Investigate Microbial Metabolism of Multiple Nutrient Sources. J. Vis. Exp. (131), e56393, doi:10.3791/56393 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter