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Genetics

확산 및 무부하 인간의 섬유 아 세포의 게놈 넓은 사본 감소율을 결정

Published: January 2, 2018 doi: 10.3791/56423

Summary

우리 성적 감소율, 모니터링 및 차동 부패 유전자 식별 생성 확산 및 무부하 기본 인간 피부 섬유 아 세포 프로토콜을 설명 합니다.

Abstract

정지는 임시, 가역 상태 셀 세포 분열을 중지 해야 하지만 증식 하는 능력을 유지. 우리를 포함 한 여러 연구 정지 관련 유전자 발현에 광범위 한 변화 된가 설명 했다. 이러한 변화 중 일부는 수준 또는 확산 관련 된 녹음 방송 요인 E2F MYC 등의 활동에 변화를 통해 발생합니다. 우리 mRNA 감퇴 확산 및 무부하 셀 사이의 유전자 발현에서 변화에도 기여할 수 있다 설명 했다. 이 프로토콜에서 우리 인간의 피부 포 피 섬유 아 세포의 증식 및 무부하 문화를 설정 하기 위한 절차를 설명 합니다. 우리는 다음 악티노마이신 d (ActD) 확산 및 무부하 셀에 새로운 전사를 억제 하는 절차를 설명 합니다. ActD 치료 성적 부패에서 새로운 전사 해리를 간단 하 고 재현성 접근을 나타냅니다. ActD 치료의 단점은 ActD 세포 생존 능력에 영향을 하기 때문에 시간 코스는 짧은 시간 프레임에 제한 되어야 한다입니다. 대 본 수준 사본 감소율을 확인 하려면 시간이 지남에 모니터링 된다. 이 절차는 유전자와 무부하 fibroblasts 대 확산에 차동 부패 하는 isoforms의 식별에 대 한 수 있습니다.

Introduction

성적 증명서의 정상 상태 수준 반영 성적 종합과 성적 부패의 기여. 규제 및 조정된 대 본 부패는 제어 생물 학적 과정1,2,,34중요 한 메커니즘입니다. 예를 들어 성적 감소율 염증 성 cytokine 종양 괴 사 인자5활성화 다음 이벤트의 시간 시리즈에 기여할 표시 되었습니다.

우리는 이전 확산 및 기본 인간 섬유 아 세포에 정지 사이 과도 많은 유전자6의 증명서 수준에 변화와 관련 된 나타났습니다. 이러한 변화 중 일부 녹음 방송 요인의 활동에 이러한 두 상태 사이의 차이 반영합니다.

녹취 록의 부패 속도 변화 또한 두 개의 서로 다른 상태7,8대 본 식 수준에 변화에 기여할 수 있다. 확산 및 정지 사이 과도 여러 microRNAs9의 수준에 변화와 관련 된 우리의 이전 연구 결과 바탕으로, 우리는 또한 변화에 차동 성적 부패에서 기여 여부 요청 무부하 fibroblasts 대 확산에 진 식입니다.

사본을 안정성을 모니터 하기 위해 우리는 성적 무부하 셀 대 확산에 게놈 넓은 감퇴의 속도 결정. 이를 위해, 우리는 새로운 전사의 억제제를 소개 하 고는 개별 성적표 사라진 시간이 지남에 속도 모니터링 하 여 무부하 fibroblasts 대 확산에 감소율 모니터링. 이 방법의 장점은, 단순히 새로운 사본 합성을 억제 함으로써 전체적인 유전자 발현을 모니터링 하는 방법에 비해 우리가 된다는 것에서 그들은 속도는 별도로이 성적에 대 한 부패 속도 확인할 수 복사할 수 있습니다.

새로운 전사를 억제 하 여 사본 감소율을 결정 ActD 치료 여러 이전의 연구에 성공적으로 적용 되었습니다. ActD 프로 염증 성 cytokines5치료에 기인 하는 사본 풍부에서에 RNA 안정성의 중요성을 해 부에 사용 되었습니다. 유사한 접근은 또한 그들은 차별화 된 근육 형10채택 차별화 된 C2C12 셀 대 확산 성적 부패 속도 차이 해 부하 사용 되었습니다. 또 다른 예로, 글로벌 mRNA 반감기 또한 만능에서 발견 된 하 고 차별화 된 마우스 배아 줄기 세포11. 이 예제에서 mRNA 감퇴 사본 풍부 규제에 대 한 및 다른 셀 상태를 셀의 변환에 대 한 중요 한 표시 되었습니다.

아래 설명 된 방법을 적용, 섬유 아 세포 확산 및 무부하 상태12에 비교할 때 약 500 유전자의 사본 감소율에 변화를 발견 우리. 특히, 우리는 예측에 관한 미르 29, downregulated 무부하 셀에는 대상 셀 전환 정지 때 안정화는 발견 했다. 여기 우리 확산 및 무부하 셀에 감소율을 결정 하는 데 사용 하는 방법을 설명 합니다. 이 방법론은 급속 하 게 부패 유전자에 대 한 정보는 때 두 비슷한 조건 하지만 뚜렷한 글로벌 mRNA 감퇴 속도 비교 유용 합니다. 그것은 또한 2 차원 3 차원 문화 대에서 성적 부패, 예를 들어, 셀 문화 조건의 효과 등 다른 질문을 해결 하기 위해 사용 될 수 있습니다. 감소율 등 microarrays RNA 시퀀스 또는 실시간 정량 Pcr 방법 결정된 게놈 넓은 수 또는 북부 blotting 유전자, 유전자 또는 isoform에 의해 isoform 기준 감소율을 결정 하기 위해 사용할 수 있습니다. 이 요금은 각 모니터링된 유전자의 반감기를 계산 하 고 부패 속도 두 가지 조건에 다른 유전자를 식별 하 사용할 수 있습니다.

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Protocol

설명 하는 모든 실험은 프린스턴 대학, 캘리포니아 대학, 로스 앤젤레스에서 제도적 검토 보드에 의해 승인 되었다.

1. ActD 시간 코스에 대 한 확산 및 접촉 저해 Fibroblasts 준비

참고:이 프로토콜 사용 하는 timecourse 4 timepoints입니다. 3 생물학으로 독립적인 샘플 timepoint 당 1 개의 실험에서 다른 조직 문화 접시를 수집 하 여 수집 될 수 있습니다 또는 실험 세포의 서로 다른 문화를 여러 번 반복 될 수 있다. 우리의 경험에서 한 10 cm (직경) 조직 문화 접시 (1 접시) 분석에 대 한 충분 한 RNA를 제공합니다. 필요한 경우 각 timepoint에 셀의 수를 늘리기 위해 각 샘플에 대 한 여러 조직 문화 요리를 풀링된 수 있습니다. 또한, 진정으로 독립적인 생물 복제로 다른 개인에서 격리 하는 섬유 아 세포와 같은 실험을 수행할 수 있습니다.

  1. 대 본 부패 분석에 대 한 셀의 확산 및 무부하 문화를 설정 합니다. 확산 셀 분할 셀 마다 3 일 동안 접촉 저해 세포 접촉 저해 되 고 있다.
    1. 접촉 저해 셀에 대 한 매체를 7 일 동안 매 2 일 변경. 2 일 전에 접촉 저해 fibroblasts 컬렉션에 대 한 준비가 proliferating 셀을 분할 합니다. 셀 문화 체계의 예는 그림 1에 표시 됩니다. 이 섹션의 나머지 단계는 설정 하 고 셀 분할에 대 한 상세한 프로토콜을 제공 합니다.
  2. 13설립된 프로토콜 따르면 신생아 피부에서 기본 피부 섬유 아 세포를 격리 합니다. 균질 인구를 위해 통로 섬유 아 세포입니다.
    참고: 섬유 아 세포 냉동 및 해 동, 필요한 경우 될 수 있습니다.
  3. 해 동 또는 필요한 경우 섬유 아 세포, replate. 37 ° C, 5% CO2조직 문화 인큐베이터에서 무 균 조건 하에서 10% 세럼과 DMEM에 섬유 아 세포 성장. 10 미만 구절에 대 한 성장 된 섬유 아 세포를 사용 합니다. 섬유 아 세포 이어야 한다 < 80% 합칠 확산 및 무부하 인구 수 있도록 셀 분할의 날에.
  4. 조직 배양 접시를 여러 접시, prewarm PBS, 트립 신, 및 보통 20 분 동안 37 ° C 물 욕조에 혈 청으로 분할.
  5. 발음 또는 피펫으로 replated 될 세포와 각 조직 배양 접시에서 매체를 제거를 사용 하 여.
  6. 각 접시 (10 mL 150 m m, 100 m m 플레이트에 대 한 솔루션의 5 mL, 6 잘 플레이트의 우물 2 mL에 대 한 솔루션의) 12 잘 접시의 우물 1 mL에 피펫으로 따뜻한 PBS.
  7. Aspirate 또는 피펫으로 각 조직 배양 접시에서 PBS를 제거 하려면.
  8. 부드럽게 피펫으로 1 트립 신-EDTA 각 접시 (8 mL 150 mm 접시, 100 m m, 6 잘 플레이트의 우물 2 mL 및 12 잘 접시의 우물 1 mL에 대 한 솔루션의 3 mL에 대 한 솔루션의)에 x.
    참고: 확인 1 살 균 10 diluting 하 여 트립 신-EDTA x 트립 신-EDTA 무 균 PBS에 x. 마지막 1 x 솔루션 0.05 %trypsin 및 0.02 %EDTA 이어야 한다.
  9. 5 분에 대 한 셀과 트립 신을 품 어.
  10. 부드럽게 접시 꺼내 접시에서 셀을 누릅니다.
  11. 피펫으로 세포를 단일 세포 현 탁 액으로 resuspend.
  12. 10% 세럼 150 m m 플레이트, 100 mm 접시, 6 잘 플레이트의 우물 2 mL에 대 한 솔루션의 3 mL에 대 한 솔루션의 (8 mL과 DMEM의 동일한 볼륨을 포함 하는 원뿔 튜브 셀 trypsin 솔루션에 전송 그리고 12의 우물 1 mL 잘 접시).
  13. 트립 신을 제거 하려면 1000 x g 에서 5 분간 4 ° C에서 셀 아래로 회전 합니다.
  14. 매체와 카운트의 적절 한 볼륨에 셀 셀 농도 결정 하는 hemacytometer와 resuspend.
  15. 확산에 대 한 100 m m 조직 문화 접시 당 씨앗 5 x 105 세포와 접촉 저해 셀.
  16. 이 메서드를 사용 하 여 확산 하 고 접촉 저해 샘플 분석 (그림 1)에 필요한 설정 합니다.

2. ActD 시간 코스

  1. ActD 1 mg/mL (ActD, 살 균 PBS의 사용 950 µ L 및 살 균 DMSO의 50 µ L의에 대 한 1 밀리 그램)의 재고 농도에서 resuspend.
    참고: ActD의 냉동된 재고 솔루션 안정 되어야 한 달-20 ° c.에 대 한 희석 솔루션은 무시 되 고 더 사용 하기 위해 저장 하지 해야 합니다.
  2. 모든 생물 복제 세포 배양 접시를 위한 prewarmed 매체의 적절 한 볼륨 ActD 추가 0, 120, 240, 그리고 480 분 timepoints (그림 2) 설정 했다. ActD 매체의 mL 당 15 µ g의 농도에 추가 합니다. 잘 혼합 하 고 오래 된 매체 떨어져 발음 ActD 포함 된 매체에 있는 셀에 추가.
    1. 1 mg/mL 주식에 대 한 추가 15 µ L 150 µ L을 추가 하는 매체, 예를 들어, 100 mm 접시에 대 한 매체의 10 ml의 각 ml ActD ActD.
  3. 제로 timepoint 샘플을 수집, 부드럽게 ActD 매체를 피펫으로 발음 하는 셀에 PBS를 prewarmed. 피펫으로 100 m m, 6 잘 플레이트의 우물 2 mL 및 12 잘 접시의 우물 1 mL에 대 한 솔루션의 5 mL 150 mm 접시에 대 한 솔루션의 10 mL.
  4. 부드럽게 발음 또는 피펫으로 PBS에서.
    참고: RNA 격리를 포함 하는 모든 단계는 RNase 무료 물, RNase 무료 microcentrifuge 튜브, RNase 무료 펫과 수행 되어야 한다. 장갑 착용 하 고 RNA와 함께 작업 하는 경우에 자주 변경 해야 합니다.
  5. 조직 문화 접시에 직접 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션 (1 mL/10-cm 플레이트 4 x 105 4 x 107 셀)을 추가 합니다.
    참고: 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션은 세포를 lysing 서로 다른 RNA, DNA, 그리고 단백질을 분리 하는 동안 RNA 품질을 유지 하는 monophasic 솔루션.
    주의: 페 놀 및 guanidine isothiocyanate은 부식성. 적절 한 보호를 사용 합니다.
  6. 피펫으로 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션-셀 혼합 균질 혼합물을 만들기 위해 여러 번 왔다 갔다.
    참고: 또는 최대 1 년-20 ° C에서 4 ° C 하룻밤에 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션 lysate를 저장할 수 있습니다.
  7. 후 적절 한 양의 시간 단계 2.3-2.6에 설명 된 방법을 사용 하 여 각 시간 포인트를 수집 합니다.

3. 페 놀 guanidine Isothiocyanate 솔루션 Lysate에서 총 RNA 격리

  1. RNA-단백질 복합물의 완전 한 해체를 위해 5 분 동안 실 온에서 샘플을 품 어.
    참고: 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션 프로토콜의 단계 다른 설명이 없는 한 상 온에서 수행할 수 있습니다.
  2. 방법론 사용으로 검출 될 수 있는 제어 스파이크에 녹취 록을 소개 합니다.
알려진된 수량 및 농도에 각 샘플에 이러한 컨트롤을 소개 합니다.
참고: 외부 RNA 제어 컨소시엄 (ERCC) 스파이크 컨트롤 믹스14 특별히 설계 되었습니다 스파이크에서 컨트롤로 RNA-이 대 한 그것은 또한 북부 오 점 또는 실시간 정량에 대 한 사용할 수 있습니다. 스파이크에 컨트롤 microarray 기술을 위해 특별히 설계 된 제공 ( 테이블의 자료참조)도 있습니다.
  • Microcentrifuge 튜브 2.0 mL를 피펫으로에 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션 혼합물을 전송. 사용 된 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션의 모든 1 mL에 대 한 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션 혼합물에 0.2 mL 클로 프롬을 추가 (예를 들어, 1.5 mL 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션 혼합물에 추가 하는 0.3 mL 클로 프롬).
  • 15 microcentrifuge 튜브를 적극적으로 흔들어 s 다음 3 분 동안 실 온에서 클로 프롬-페 놀-guanidine isothiocyanate 혼합물을 품 어 고.
  • 4 ° c.에 20 분 동안 12000 x g 에서 샘플을 회전
    참고: 초기 스핀 후 샘플 해야 별도 레이어로 3-상단 (그림 3)에 명확한 수성 층 그리고 바닥, 화이트/핑크 interphase, 중간에 빨간색 유기 층.
  • 수성 층 새로운 2.0 mL microcentrifuge 튜브는 micropipette를 사용 하 여 전송.
    참고: 수이 과정 동안에 interphase를 방해 하지 않도록 주의 하십시오. 수 분수의 일부 떠날 괜찮습니다. 또한 interphase 레이어는 interphase 등의 일부를 포함 하도록 레이어 DNA와 RNA를 오염 시킬 것 보다는 수성 분수의 일부를 두고 하는 것이 낫다. 수성 층이 됩니다 약 절반 초기 볼륨, 그래서 약 0.9 mL의 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션/클로 프롬 혼합물은 1.8 mL.
  • Interphase 및 유기 분수를 삭제 합니다.
  • 수성 분수 2-프로 판 올의 동일한 볼륨을 추가 하 고 반전 튜브 10 번. 수익률 10 미만6 셀 수집 때문에 낮을 것으로 예상 된다 하는 경우에 특히 샘플의 20 µ L 당 glycogen의 20 mg/mL 용액의 최대 1 µ L를 추가 합니다.
    참고:이 조밀 하 고, 단단한 펠 릿 스핀 단계 후 모니터링을 쉽게 발생 합니다.
  • 10 분 동안 실내 온도에 샘플을 품 어.
  • 4 ° c.에 20 분 동안 12000 x g 에서 샘플을 회전 되도록,이 회전의 끝에, RNA는 튜브의 하단에 흰색 펠 릿을 형성 시 켰 던.
  • 피 펫, 제거와 상쾌한 화이트 RNA 펠 렛을 방해 하지 특별 한 주의가지고 삭제.
    참고: 초과 에탄올을 제거 하는 손잡고 개최 하는 느슨한 피펫으로 팁을 사용할 수 있습니다. RNA 펠 릿 방해 하지만 삭제 하지 탐정 스핀을 반복 하 고 다시는 상쾌한을 제거 수 있습니다. 이 전체 절차를 반복 조사를 요구할 것 이다으로 펠 릿을 삭제 하지 마십시오.
  • 75% 에탄올과 물의 25 %nuclease 무료 솔루션을 준비 합니다. 펠 릿을 세척 하 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션 시 약의 1 mL 당 75% 에탄올의 1 mL를 추가 합니다.
  • 4 ° c.에서 10 분 동안 12000 x g 에서 샘플을 회전
  • 제거한 후에 상쾌한의 대부분를 피펫으로 사용 하 여 여전히 복용 하지 않도록 주의 펠 렛을 방해 하는 동안 최대한 많은 에탄올을 제거.
    참고: RNA 펠 릿이이 단계에서 적은 소형 이며 이동 하는 경향이 있다. RNA를 손실 되지 않도록 하려면이 시점에서 펠 릿을 처리할 때 특별히 주의 해야 합니다.
  • 펠 렛의 모든 초과 에탄올을 실 온에서 2 분에 대 한 샘플 12000 x g 회전.
  • 사용 하는 펠 렛을 방해 하지를 돌보는 micropipette 튜브에서 모든 초과 에탄올을 제거 합니다.
  • RNA 펠 릿 어 5 분 동안 건조 하자.
  • RNA 펠 릿을 nuclease 무료 물 50 µ L을 추가 하 고 resuspend nuclease 무료 물 속에서 펠 릿.
  • 샘플 1 µ L 치료 DNase (2 단위 / µ L) DNA를 제거 하 고 다음 비활성화 DNase 및 양이온 ( 재료의 표참조)를.
  • -80 ° c.에 2.0 mL microcentrifuge 튜브에 RNA 샘플 저장
  • 4입니다. 성적 풍부의 분석

    1. RNA를 계량 하 고 순도 분 광 광도 계를 사용 하 여에 대 한 RNA를 확인 합니다.
      참고: 260에서 흡 광도의 비율 280 nm nm RNA에 대 한 약 2.0 이어야 한다.
    2. 1 %agarose 젤 또는 저하의 정도 시각화 하는 해당 기술 RNA를 분석 합니다.
      참고: 두 취소 18S를 대표 하는 밴드 그리고 28S rRNA 명확 하 게 보이는 (그림 4)를 해야 한다. 이러한 밴드 표시 되지 않는 경우 RNA 저하 될 수 있습니다. 문제 촬영 팁 RNA 저하에 대 한 토론에 제공 됩니다.
    3. 모니터 대 본 풍부한 RNA의 수집된 aliquots에 비해 아군에 내부 표준 microarrays15, RNA-Seq16,17, 실시간 정량 Pcr 사용 하 여 또는 북부 몰아내고18.
      1. 알려진 풍요의 제어 아군에 비해 각 시간 지점에서 각 사본에 대 한 풍부를 결정 합니다.
        참고: microarrays, 값 형광 강렬 될 것입니다. 북부 오 점, x 선 필름에 밴드를 측정할 수 있습니다. 실시간 정량 pcr, 2-σσCT 방법19알려진된 표준 비교해보면 사본 풍부를 확인할 수 있습니다. RNA-Seq에 대 한 정규화 된 값은 FPKM 또는 kilobase 백만 읽기 매핑된 당 exon의 당 조각으로 확인할 수 있습니다. Isoform 특정 감소율에 대 한 RNA-Seq 데이터 DEXSeq20같은 isoform 인식 방법론을 사용 하 여 분석 수 있습니다. Isoform 특정 감소율은 최고의 RNA이 결정 Microarray 데이터 결정 될 경우, 유전자에 의해 유전자 단위가 아닌 프로브, 프로브 기초 데이터를 분석 해야 합니다. 애 널 리스트는 감지기의 제한 된 수의 정보를 해석할 때 주의 해야 합니다. 예를 들어, 5 이하의 프로브 특정 isoform에 대해 유익 하지 않은 있을 수 있습니다. 이 경우에, 분석 결과 신뢰할 수 있는 이러한 프로브 동작 충분히 일관 되는지 확인 해야 합니다.
    4. C-Myc 및 자신감을 요금을 정확 하 게 감지 했다 그 성적 부패를 GAPDH 처럼 천천히 부패 유전자 처럼 급속 하 게 부패 유전자 분석에 수집 된 샘플에서 격리 된 RNA17 에 실시간 정량 Pcr을 수행 합니다.
      참고: 추가 확인에 대 한 isoform 특정 실시간 정량 프로브 개발 고21동안 특정 isoforms의 풍부를 모니터링 하는 데 사용.

    5입니다.감퇴 속도 상수 결정

    1. 각 timepoint에 대 한 로그-변환 (유전자 또는 isoform 특정) 각 사본에 대 한 풍부한 값입니다.
      참고: 로그 변환 값으로 변환 됩니다 지 수 감퇴 곡선 선형 감퇴 모델22로 들어갈 수 있는 라인.
    2. 각 대 본 (유전자 또는 isoform 특정) 선형 감퇴 모델에 대 한 식 프로 파일에 맞게. 이러한 모델에 대 한 공식은 f (t) = C-r * t. 이 방정식에 C는 녹취 록의 시작을 나타냅니다 상수, r의 감소, 속도 이며 t는 시간 실험의 처음부터. 이 방정식에서 r*ln(10)와 감퇴 속도 결정 (참조11참조).
      참고: maSigPro 소프트웨어 패키지는 회귀 기반 접근 시간 코스 데이터23에 중요 한 유전자 식 프로필 차이 탐지 하도록 설계 되었습니다. 샘플 코드 및 maSigPro에 대 한 결과에 사용할 수 있습니다: https://www.bioconductor.org/packages/release/bioc/vignettes/maSigPro/inst/doc/maSigProUsersGuide.pdf.
    3. 필터 로그 선형 감퇴 모델에 맞게 실패 하는 유전자를. 이 ANOVA F-검정을 수행할 수 있습니다.
      참고: F 검정은 유사로 정의 되는 F-통계, 기반 샘플 의미 샘플 내에서 변이 나눈 사이. 선형 스텝 업 Benjamini 및 Hochberg 거짓 발견 절차24를 적용 하 여 여러 비교에 대 한 p 값을 수정 합니다. Q 값 F-검정 0.05 보다 큰 로그 선형 감퇴 모델에 맞게 실패 하는 유전자는 컷오프로 사용할 수 있습니다.
    4. 여 지 없이 세포 주기 상태와 시간 사이 중요 한 상호 작용 기간 성적을 결정 하는 ANOVA F-검정을 수행 (틀린 발견 비율, 루즈벨트 < 0.05).

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    Representative Results

    우리 이전 8 시간 코스12통해 확산 및 접촉 저해 기본 인간 섬유 아 세포에서 사본 감소율의 microarray 분석의 결과 보고 있다. 확산 및 접촉 저해 fibroblasts 비교 성적 안정성에 중요 한 변화는 유전자 목록이 보충 표 1에 제공 됩니다. 형광 강도 ActD 치료 후 시간 코스 이상과 시간 0에 제공 됩니다. 유전자는 ANOVA F-검정을 사용 하 여 확산 하 고 접촉 저해 조건에서 크게 다른 슬로프를가지고 유전자를 확인 하 여 목록에 포함 되었다. 유전자를 확산 하 고 무부하 fibroblasts에 다른 감소율의 예는 그림 5에 나와 있습니다.

    Figure 1
    그림 1 : ActD 시간 코스 분석에 대 한 확산 및 접촉 저해 번호판을 설정 하기 위한 프로토콜의 도식. ActD 치료에 대 한 셀의 문화를 확립 하기 위해 필요한 조치의 하루--하루 설명, 4 개의 timepoints 시간 과정에 사용 됩니다 가정 제공 됩니다. 편의상 한 접시 timepoint, 당 표시 됩니다 하지만 추가 접시 생물 복제 생성에 추가할 수 있습니다. 프로토콜 추가 셀의 더 플레이트 4 개 이상 timepoints는을 조정할 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

    Figure 2
    그림 2 : 회로도 ActD 시간 코스와 감퇴의 속도 계산에서 무부하 확산 인간의 섬유 아 세포에 비해. Transcriptional 억제 물 치료 표시 후 가상 사본에 대 한 시간이 지남에 남아 있는 mRNAs의 예상된 분수. 아래, 시간이 지남에 남아 있는 mRNA의 일부의 샘플 플롯에 더 안정적인 유전자 제공 됩니다 확산 셀 및 무부하 셀 보다 확산에 더 안정적인 유전자 보다 무부하. 각 datapoint 선명도 대 한 단일 값만 표시 됩니다. 실제 프로토콜에서 각 timepoint에 대 한 세 가지 방식이 있을 것입니다. 이 그림은 그녀의 동의 함께 엘리자베스 Pender 존슨의 박사 논문에서 수정 되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

    Figure 3
    그림 3 : 혼합 페 놀 guanidine isothiocyanate 시 약 및 클로 프롬의 사진 전과 원심 분리 후. 혼합물 때 페 놀 guanidine isothiocyanate 시 약 및 클로 프롬은 처음 결합, 혼합 후와 원심 분리 후 표시 됩니다. 혼합물을 centrifuged 후 빨간색 이면 아래 단계 유기 단계가입니다. 중간에 interphase 흐린 흰색입니다. 최고 단계 수성 단계 이며, 그것은 분명 하다. RNA는 강수량에 대 한 피 펫을 수집 한다 수성 단계에서 이다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

    Figure 4
    그림 4 : RNA 품질 모니터링 샘플 RNA 젤. 보여주는 그대로 RNA와 RNA 젤의 그림. 그대로 RNA 28S와 18S rRNAs 저명한 밴드 있다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

    Figure 5
    그림 5 : 무부하 fibroblasts 대 확산에 다른 감소율과 유전자의 예. 시간이 지남에 형광 강도 (유전자 발현) 무부하 fibroblasts 대 확산에 다르게 부패 4 개의 유전자에 대 한 표시 됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

    보충 표 1: 확산 및 무부하 섬유 아 세포에서 유전자 특정 형광 강렬. 데이터는 시간 0와 확산에 ActD 치료 후 시간 과정 제공 및 접촉 저해 섬유 아 세포. P 값, q 값, 및 틀린 발견 비율 제공 됩니다. 테이블은 BMC Genomics12에 그것의 원래 간행물에서 증 쇄. 이 파일을 다운로드 하려면 여기를 클릭 하십시오.

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    Discussion

    정지는 mitogens 또는 혈 청의 철수, 세포 접착 및 접촉 금지의 부족을 포함 하는 외부 신호에 의해 유도 될 수 있다. 접촉 금지, 정지, 유도 대 한 여러 가지 방법 중 하나는 세포 증식 세포 주기 세포 세포 접촉에 대 한 응답에서 종료 매우 진화론 보존된 과정 이다. 우리는 정지를 유도 하는 방법의 예를 들어 접촉 저해에 여기 초점. 이전 연구 보고가 셀 셀 문의 예측에 관한 속25에 영향을 미칠 수 있습니다, 따라서, 한 정지 방법에 정보를 제공 하는 결과 및 추가 연구는 결정 하는 데 필요한 변경 내용을 정지 와 관련 된 se 당.

    우리는 우리가 신생아 피부에서 고립 된 주 인간의 2 중 fibroblasts 사용. 우리는 10 번 미만 passaged 했다 섬유 아 세포와 함께 이러한 실험을 시작. 우리 때문에 나중에 통과 fibroblasts 삭제 그들은 senesce. 이 프로토콜은 확산 및 무부하 피부 섬유 아 세포에 초점을 맞추고, 하는 동안 설명 하는 절차 다른 종류와 다른 조건에서 셀의 감소율을 모니터링 하는 데 사용할 수 있습니다.

    우리는 mRNA 감퇴 속도 게놈 넓은 전사 차단 시간 코스를 사용 하 여 모니터링. 차단 시간 코스는 mRNA 반감기1,26계산 하려면 mRNA 전사에서 mRNA 감퇴를 디 커플링에 대 한 가장 널리 사용 되는 방법입니다. 여기서 설명한 방법에서 ActD, 마약 RNA 중 합 효소 II의 연신 율을 차단 하는 DNA의 B 형태와 단지 mRNAs27의 전사를 체포 하는 데 사용 됩니다. 대 본의 감퇴 율으로 성적표는 8 시간 동안 풍부 하 게에서 감소 하는 속도 결정할 수 있습니다.

    ActD 기반 접근 모니터링 성적 부패의 중요 한 제한 ActD 방지 세포의 생존에 영향을 미칠 것입니다 세계 전사는 이다. 이 지켜져야 한다 마음에 ActD 기반 데이터를 해석할 때 감소율 셀의 기본 상태 보다 더 많은 스트레스에 결정 되 고 있다. 또 다른 중요 한 관심사는 ActD의 효과 셀 접촉 저해 fibroblasts 대 확산 등 다른 국가에 대 한 다를 수 있습니다. ActD 치료의 부작용을 최소화 하기 위한 한 가지 방법은 시간 과정 기간이 짧은 유지 하는. 이러한 이유로, 우리는 8 h 시간 코스를 선택.

    성적 부패 속도28,29모니터링 ActD에 다른 접근이 있다. 온도 민감한 RNA 중 합 효소 II 대립 유전자와 효 모 종자 대 본 부패 속도30모니터링 하 사용 되었습니다. "앵커-멀리" 라는이 접근에 변이 RNA 중 합 효소 II rapamycin 치료31,32에 대 한 응답의 조건부 소모를 달성 하기 위해 효 모에 사용 되었습니다. 그것은 또한 활성 전사와 셀에 부패 모니터링 가능입니다. 예를 들어, thio 대체 uracil 뉴클레오티드, 세포로 소개 될 수 있다 mRNA에 통합 그리고 이후33,,3435를 감지. 이 방식으로는 다른 증명서는 합성 속도 계속 mRNA를 합성 하는 셀에 확인할 수 있습니다. 그들은 독성 때문에 이러한 접근 ActD 치료에 중요 한 이점이 있다. 그러나 우리의 경험에서는,, 있을 수 있습니다 가변성 이러한 방법으로 증명서의 복구. ActD 치료 성적 부패를 모니터링 하기 위한 간단 하 고 재현 가능한 접근 이다.

    제공 하는 프로토콜의 몇 가지 단계는 그것의 성공을 위해 중요 합니다. 1 개의 중요 한 문제점은 RNA 격리 동안 RNA 저하를 방지 합니다. 4.1 단계에서 RNA는 저하에 대 한 모니터링 해야 합니다. RNA에는 18와 28S rRNAs (그림 4)에 대 한 두 개의 명확한 봉우리 포함 되어 있지 않으면,이 성적 저하 발생 했습니다 표시 이다. 일부 악기는 RNA 무결성 번호 (린) 점수를 1에서 10까지 제공 합니다. 7-10 범위에서 린 점수와 추가 분석을 위해 사용할 수 있습니다. RNA을 타락 하는 경우 그것은 RNA 저하, 보장 등 솔루션 및 sterileware는 RNase-무료, 그리고 때 RNA에 대 한 처리 펫 장갑 착용을 방지 하기 위해 더 많은 예방 조치를 취해야 하는 것이 중요. 물 0.1% diethyl pyrocarbonate (DEPC) 37 ° C에서 2 시간 이상에 대 한 인 큐베이 팅으로 pretreated 수 고 압력가 마로 소독 적어도 15 분 노트에 대 한 그 DEPC 트리 기반 버퍼와 함께 사용할 수 없습니다. RNase 오염을 솔루션 작업 표면, 원심 분리기, 펫, RNases를 억제 하는 약에서 RNase 제거를 또한 사용할 수 있는 샘플으로 추가할 수 있습니다.

    또 다른 중요 한 단계 페 놀 guanidine isothiocyanate 솔루션의 단계의 분리 이다. RNA에 대 한 상위 단계를 수집 확인 해야 처리. 경우 잔여 페 놀, 230, 260, 280에서 흡 광도의 비율을 포함 하는 결과 RNA nm 비율 1: 2에 됩니다: 1 예상 대로. 230에서 예상된 흡 광도 보다 높은 nm 페 놀 오염 나타낼 수 있습니다. 이 경우, RNA 에탄올 다시 침전 하 고 어떤 잔여 페 놀을 제거 하려면 추가 여러 번 씻어 수 있습니다.

    마지막으로 때 RNA는 수송과 상쾌한 제거, 펠 릿은 끈 적, 얇은, 그리고 쉽게 방해 수 있습니다. 이 시점에서, 그것을 여분의 액체를 이륙에 중요 하다. 그것은 펠 릿을 찾아서는 방해 하지 있는지 확인 좋은 조명 튜브를 시각화 하는 것이 중요 수 있습니다. 추가 glycogen 펠 릿은이 시점에서 볼 수 있도록 도울 수 있다.

    부패의 시간 과정에 대 한 시간 점 선택 고려해 야 할 중요 한 문제 이기도 합니다. 우리는 선택 하는 4 개의 timepoints 감퇴 10000 이상의 유전자에 대 한 모니터링을 허용, 일부 유전자 8 h 시간 과정 동안 크게 붕괴 하지 않았다. 단기 성적 우선 순위가 높은 경우에, 조사는 30 분 예를 들어 120 분 전에 추가 샘플 컬렉션을 추가 싶을 수도 있다. 수명이 긴 성적표의 더 나은 평가 대 한 조사는 나중 timepoints에서 추가 샘플 컬렉션을 추가 할 수 있습니다.

    또 다른 잠재적인 문제는 감소율 예상된 분포를 따르지 않는 경우 발생할 수 있습니다. 예를 들어, 너무 많은 있을 수 있습니다 또는 로그 선형 부패를 보여주는 몇 가지 유전자 이상 8 h 속도. 이 경우, 그들은 예상된 패턴에 따라 여부를 결정 하기 위해 짧은 또는 긴 것으로 알려진 유전자의 감소율을 모니터링 도움이 됩니다.유전자는 시간이 지남에 긍정 보다는 부정적인 기울기를가지고, 그들은 수 제외 추가 분석에서로 로그 선형 감퇴 율을 설명 하지 않습니다. 마지막 문제 있다면 비교 되는 두 가지 조건에서 세포는 ActD 매우 다른 응답 되도록 많은 유전자는 하나의 조건에 빨리 부패 발생할 수 있습니다. 이 경우 두 상태 사이의 부패 속도 차이 뿐만 아니라 RNA 격리 두 상태에서 절대 감소율에 정보를 제공 하기 전에 포함 하는 것이 좋습니다 하는 스파이크에 컨트롤에 참조 하는 데 도움이 수 있습니다.

    확산 및 무부하 셀 또는 어떤 두 유사한 상태 사이 사본 감소율을 모니터링 하는 기능 추가 조절 하는 생리 적 변화에 대 본 부패의 중요성에 대 한 통찰력을 제공 하기 위해 잠재력이 있다. 응용 프로그램에는 세포와 종양 활성화, 노화 또는 바이러스 성 감염, 특정 유전자 또는 차별화의 두 개의 다른 국가에서 최저 없이 앞뒤 없이 포함 됩니다. 결과 RNA-Seq isoform 특정 변경 isoform 식 세포 생리 전환 받을 관찰에 변화에 대 한 통찰력을 제공할 수 있는 사본 감소율에 대 한 정보를 제공와 결합 수 있습니다.

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    Disclosures

    저자는 공개 없습니다 경쟁 관심사 있다.

    Acknowledgments

    HAC 리 타 알 렌 재단 (http://www.ritaallenfoundation.org)의 밀 튼 중 카셀 학자 이었다. 이 작품 HAC 우수성 그랜트 P50 GM071508의 국립 연구소의 종합 의료 과학 센터에서 (탐정 데이비드 Botstein), PhRMA 재단 그랜트 2007RSGl9572, 국립 과학 재단 부여 OCI-1047879 데이비드 8 월에 교부 금에 의해 투자 되었다 일반 의료 과학 R01 GM081686, 국립 연구소의 종합 의료 과학 R01 GM0866465, Eli의 국립 연구소 & 재생 의학의 Edythe 넓은 센터 & 줄기 세포 연구, 아이리스 칸토어 여자 건강 센터/UCLA CTSI NIH 그랜트 UL1TR000124, 그리고 백혈병 림프 종 사회입니다. 이 간행물에 보고 된 연구 보너스 번호 P50CA092131에서 국립 보건원의 국립 암 연구소에 의해 지원 되었다. Funders 연구 설계, 데이터 수집 및 분석, 결정 게시 또는 원고의 준비에 전혀 역할을 했다. HAC는 Eli의 멤버인 & Edythe 넓은 재생 의학 센터 & 줄기 세포 연구, UCLA 분자 생물학 연구소와 UCLA 생물 정보학 각 부처간 프로그램.

    Materials

    Name Company Catalog Number Comments
    Centrifuges for microcentrifuge tubes capable of reaching 12,000 x g and 4°C
    Equipment for running agarose gels
    Sterile tissue culture plates and conical tubes
    Dulbecco's Modified Eagle Medium Life Technologies 11965-118
    Fetal bovine serum VWR 35-010-CV
    Sterile serological pipets, pipettors and pipet tips for tissue culture
    Individually wrapped, disposable Rnase-free pipettes, pipette tips and tubes for RNA isolation and analysis
    Disposable gloves to be worn when handling reagents and RNA samples
    RNaseZap Invitrogen AM9780 For decontaminating work surfaces from RNase
    2.0 ml eppendorf tubes
    Trypsin-EDTA  Solution 10X Millipore Sigma 9002-07-07
    Sterile PBS Life Technologies 14190-250
    Trizol Thermo Fisher Scientific 15596018
    Actinomycin D Millipore Sigma A1410-2 mg inhibits transcription
    Sterile DMSO Fisher Scientific 31-761-00ML solvent for actinomycin D
    Chloroform Thermo Fisher Scientific ICN19400225 MP Biomedicals, Inc product
    Isopropanol Fisher Scientific BP2618500 molecular biology grade
    Ethanol Fisher Scientific BP28184 molecular biology grade
    RNase-free Glycogen (20 mg/ml aqueous solution) Thermo Fisher Scientific R0551 carrier for RNA precipitation
    TURBO DNA-free Kit Thermo Fisher Scientific AM1907 removes DNA with DNase, then, in a subsequent step,  inactivates DNA and removes divalent cations
    Agarose Thermo Fisher Scientific ICN820721 MP Biomedicals, Inc product
    Loading dye for RNA gel Thermo Fisher Scientific R0641 suitable even for denaturing electrophoresis
    Millenium RNA markers Thermo Fisher Scientific AM7150 RNA ladder
    One-color RNA Spike-in Kit Agilent Technology 5188-5282 Example spike-in control for Agient microarray analysis
    Tris base Fisher Scientific BP152-1 molecular biology grade, for TAE buffer
    Glacial acetic acid Fisher Scientific A38-500 for TAE buffer
    EDTA Fisher Scientific BP120-500 electrophoresis grade, for gels
    Ethidium bromide Millipore Sigma E7637 for molecular biology
    External RNA Controls Consortium RNA Spike-in Mix Thermo Fisher Scientific 4456740 Spike-in control for RNA Seq
    TruSeq Stranded mRNA Library Preparation Kit A (48 samples, 12 indexes) Illumina RS-122-2101 for RNA Seq
    96-well 0.3 ml PCR plate Thermo Fisher Scientific AB-0600 for real-time qPCR
    Microseal B adhesive seals Bio-Rad MSB1001 for real-time qPCR
    Rnase/Dnase-free Reagent Reservoirs VWR 89094-662 for real-time qPCR
    Rnase/Dnase-free Eight tube strips and caps Thermo Fisher Scientific AM12230 for real-time qPCR
    SuperScript Reverse Transcriptase Invitrogen 18090010 for real-time qPCR
    AMPure XP Beads Beckman Coulter A63880 for real-time qPCR

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    References

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    Mitra, M., Lee, H. N., Coller, H. A. More

    Mitra, M., Lee, H. N., Coller, H. A. Determining Genome-wide Transcript Decay Rates in Proliferating and Quiescent Human Fibroblasts. J. Vis. Exp. (131), e56423, doi:10.3791/56423 (2018).

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