Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Cancer Research

Оценки в Vitro повреждения ДНК, используя Assay комета

doi: 10.3791/56450 Published: October 11, 2017

Summary

Assay комета является эффективным методом для обнаружения повреждения ДНК, включая одиночные и двуцепочечной ДНК разрывами страниц. Мы описываем щелочных и нейтральных комета анализов для определения повреждения ДНК в раковых клетках оценить терапевтический эффект химиотерапии.

Abstract

Повреждение ДНК является обычным явлением для каждой ячейки во время его жизни и определяется как изменение химического состава геномной ДНК. Лечения рака, такие как радио - и химиотерапии, ввести огромное количество дополнительных повреждений ДНК, ведущих к арест клеточного цикла и апоптоз ограничить прогрессии рака. Количественная оценка повреждения ДНК в ходе экспериментальной рака терапии является ключевым шагом для обоснования эффективности генотоксичных агента. В этом исследовании мы ориентируемся на одну ячейку электрофорез assay, также известный как assay кометы, которые могут количественно охарактеризовать одной и ДНК двухнитевые разрывы в пробирке. Assay комета является метод количественной оценки повреждения ДНК, который является эффективным и легко выполнять, и имеет низкий бюджет времени требованиями и высокую воспроизводимость. Здесь мы подчеркнуть полезность комета assay доклинические исследования, оценивая эффект генотоксичных olaparib/Темозоламид комбинированной терапии для U251 клеток глиомы.

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Assay комета была впервые разработана Остлинг и Йохансон в 1984 году, продемонстрировав, что миграция ДНК фрагменты из ядер под нейтральной условие1. Техника позднее был разработан Singh et al., показаны, что щелочной значительно увеличила специфичность и воспроизводимость пробирного2. С тех пор, пробирного нейтральных кометы в основном используется для обнаружения двуцепочечные разрывы ДНК, в то время как assay щелочной комета является более чувствительным для небольших сумм повреждения ДНК, включая одноместные и двойной нити ДНК влезает, щелочно лабильного сайтов, ДНК-ДНК или ДНК белковых сшивки и разрывы сингл нить ДНК, связанные с неполной иссечение ремонт сайтов3,4. Оба анализы позволяют визуализации фрагментированных ДНК и предоставляют простой способ количественно оценить повреждение ДНК. Комета рассматривается как чувствительный метод для в пробирке и в vivo генетических токсикологических исследований и применим для различных научно-исследовательских областях, таких как раннего отбора наркотиков кандидат, мониторинг окружающей среды, человеческого биомониторинга, и фундаментальные исследования в повреждения ДНК и ремонт5.

Принцип анализа, что под электрического поля, раздробленной ДНК мигрирует из nucleoid тела (также известный как «голова кометы») и формирует пятно ДНК в агарозном геле (также известный как «хвост кометы»). С нуклеотидом окрашивание, степень повреждения ДНК может быть определена количественно, анализируя «кометы» сформировал электрофорезом этой одной ячейки. Далее расчет момента хвост может помочь сравнить повреждение ДНК среди различных экспериментальных групп. По сравнению с традиционными методами обнаружения повреждения ДНК, комета assay прямой, чувствительных, недорогой и относительно простой.

Лучевой терапии и химиотерапии являются общие стратегии для лечения рака, создавая одинарная и двойная нить ДНК перерывы в хромосом6. Недавние улучшения в ремонт Ингибиторы ДНК позволяет более эффективным генотоксичных эффект химиотерапии и поэтому потенциально сокращает системные побочные эффекты, такие как анемия, инфекции и костного подавления7, 8. в этом исследовании, мы показали расследования ингибитор поли (АДФ рибоза) полимеразы (ПАРП), olaparib (УПВ)9. ППА является обильным ядерных белков и отвечает за базовые иссечение репарации ДНК путем формирования поли (АДФ рибоза) полимер10. Темозоламид (ТМЗ) является алкилирующим агентом, устно доступных и широко используется для лечения пациентов глиомы. Используя комета assay для количественного определения повреждения ДНК, мы демонстрируем, что сочетание olaparib с Темозоламид глубоко повышает повреждение ДНК клеток глиомы, который предполагает, что olaparib/Темозоламид комбинированной терапии является эффективной стратегией для лечения глиомы, по сравнению с Темозоламид только11.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. Подготовка реагентов

    1. ПБС разбавляют 100 мл 10 x PBS с 900 мл dH 2 O и скорректировать рН 7,4, с помощью рН метр. Хранить при комнатной температуре.
  1. Лизис раствор (LS)
    1. подготовить 2,5 М NaCl, ЭДТА динатрия 100 мм, 10 мм Tris база и 200 мм NaOH в 900 мл dH 2 O; это обычно занимает около 20 минут, чтобы позволить смесь полностью раствориться. Отрегулируйте пэ-аш до 10 с помощью рН метр. Добавить 1% натрия лауриловый sarcosinate и 1% тритон X-100 и окончательного громкость до 1000 мл. Прохладный до 4 ° C для по крайней мере 30 минут до использования.
  2. Электрофорез щелочной раствор (AES), рН > 13
    1. подготовить 200 мм NaOH и 1 мм динатриевой ЭДТА в 800 мл dH 2 O. Adjust pH и убедитесь, что это рН > 13. Окончательного громкость до 1000 мл. Сделать свежий перед использованием и охладите до 4 ° C для по крайней мере 30 минут до использования.
  3. Sollution нейтральных электрофорез (РЭШ)
    1. подготовить 1000 мл нейтральной электрофорез буфера путем смешивания 100 мм Tris база и 300 мм ацетат натрия до 1000 мл dH 2 O. Adjust pH 9.0 с уксусной кислоты кристаллизированной. Прохладный до 4 ° C для по крайней мере 30 минут до использования.
  4. ДНК осадков раствор (DPS)
    1. Подготовка аммония ацетат 7,5 М 10 мл бульона. Для 50 мл раствора осадков ДНК смешайте с 43.3 мл этанола 95% Ацетат аммония 6,7 мл 7,5 М. Хранить при комнатной температуре.
  5. Окрашивания раствора
    1. Добавить 1 мкл 10 000 x пятно зеленого флуоресцентного нуклеиновой кислоты (например, SYBR Грин) в 30 мл трис-ЭДТА буфер (10 мм трис-HCl, 1 мм динатриевой ЭДТА, рН 7,4) и хранить в 4 ° C. защитить от свет.
  6. 1% низких плавления агарозы
    1. расплава 1% Температура плавления агарозы (1 г на 100 мл dH 2 O) точки в микроволновую печь. Вихрем каждые 15-20 s, чтобы убедиться, что агарозы полностью расплавленного агарозы. Место агарозы в водяной бане 37 ° C для по крайней мере 20 минут перед употреблением.
  7. Предварительно теплой наконечники
    1. Cut off узкие концы Р200 наконечники 3 мм и тепло при 37 ° C перед закупорить агарозы.

2. Готовить слайды с кометой

  1. , слайд покрытие
    1. расплава агарозы 1% (1 г на 100 мл dH 2 O) в микроволновую печь для 2-3 мин, или до тех пор, пока агарозы полностью расплавленного. DIP стеклянных скольжениях микроскопа в агарозы и стереть одну сторону слайда с помощью безворсовой wipe.
    2. Заложить слайды на плоской поверхности для воздушно-сухой или тепла при 50 ° C для более быстрый сушки; прозрачный агарозы фильм должен быть сформирован после высыхания. Место с покрытием слайды в 37 ° C перед использованием.
  2. Подготовка единого клеточных суспензий
    1. культуры и лечить клеток глиомы
      1. культуры U251 мг клеток в среде DMEM-Хэм F-12 дополнена 10% FBS, пенициллин 100 ед/мл и 10 мкг/мл стрептомицина в 37 & # 176; C с 5% CO 2.
      2. Дайджест ячейки, используя 1 мл трипсина на 3 мин и нейтрализовать трипсина, используя среде DMEM-Хэм F-12 с FBS. Собирают в 15 мл трубки, спина на 300 g x 4 мин, аспирационная среднего и приостановить клетки на 2 x 10 5 клеток/мл в однократном ПБС.
        Примечание: Образец клеток должен быть подготовлен непосредственно перед началом анализа и все образцы должны быть обработаны в среде темные или серым, чтобы предотвратить повреждение ДНК от света.
      3. Сочетают суспензию клеток с агарозы 1% расплавленная низкую температуру плавления (при 37 ° C) в соотношении 1:10 (v/v), осторожно перемешать, закупорить вверх и вниз и сразу же Пипетка 30 мкл на слайд. Используйте сторону кончика пипетки распространить агарозы/ячейку смесь для обеспечения формирования тонкого слоя.
      4. Место слайда квартиры на 4 ° C в темноте за 10 мин, увеличивая гелеобразующего время 30 мин улучшает соблюдение образцов в условиях высокой влажности.
      5. Погрузите слайд в 4 ° C LS в темноте за 1 ч до ночевка.

3. Одноместный клеток электрофореза

  1. Перейти к щелочной (шаг 3.2) или нейтральные (шаг 3.3) комета пробирного
  2. для щелочных комета assay
    1. осторожно удалить слайды из LS, слить избыток буфера и аккуратно погрузить в AES на 1 ч в 4 ° C разрешить раскручивание ДНК. Хранить слайды в темноте.
    2. Добавить предварительно охлажденные AES в трее слайд электрофореза, не превышает 0,5 см выше слайды (это зависит от размера единиц электрофорез), место слайды внутри и накрыть крышкой. Установить 1 V/см (длина между электродами) напряжение питания и баллотироваться на 30 мин в 4 ° C.
    3. Слива избыток электрофорез решение от слайда. Аккуратно погрузите слайдов дважды в dH 2 O 5 минут при комнатной температуре.
    4. Мягко погрузите слайды в течение 5 мин при комнатной температуре на 70% спирте. Перейдите к шагу 4.
  3. Для нейтральных комета assay
    1. осторожно удалите слайды из LS, слить избыток буфера и аккуратно погрузить в РЭШ на 30 мин в 4 ° C. Держите слайд в темноте.
    2. Добавить предварительно охлажденные нейтральных электрофореза буфер электрофореза слайд лотка, не превышает 0,5 см выше слайды (это зависит от размера единиц электрофорез), место слайды внутри и накрыть крышкой. Установите напряжение питания 1 V/см (длина между электродами) и запустить за 45 мин на 4 ° C.
    3. Стока избыточной буфер из слайдов. Аккуратно погрузите слайды в DPS 30 мин при комнатной температуре.
    4. Мягко погрузите слайды в 70% этанол 30 мин при комнатной температуре. Перейдите к шагу 4.

4. Пятно кометы слайды

  1. сухие слайды при 37 ° C на 10-15 мин в темноте.
  2. Место 50-100 мкл Зеленый флуоресцентный нуклеиновой кислоты окрашивание раствора на каждую сушеные агарозы и пятно на 15 минут при комнатной температуре в темноте.
  3. Кратко промыть слайды в dH 2 O и высушить полностью при 37 ° C в темноте. Перейти к захвата изображений и анализа.

5. Приобретения и анализ изображений

Примечание: визуализации и количественной оценки разрывы ДНК основаны на эпифлуоресцентного и программное обеспечение пробирного Комета (см. Таблицу материалы) 12 .

  1. Место слайды на микроскопе с слайд владельца. Убедитесь, что гель агарозы сталкивается с объектива. Случайно захватить изображения из окрашенных комета слайдов с помощью микроскопа флуоресценции с 10-кратным объектив. Избегайте края и в районах вокруг любых воздушных пузырьков.
  2. Хвост кометы
  3. обеспечить каждого распространяется по горизонтали. Комета головы должна исходить от слева и хвост справа.
  4. Сохранить каждое изображение в двоичном формате TIF с ярким пятном ДНК и темным фоном. Загрузить изображения с помощью программного обеспечения " выбрать файлы для анализа " кнопку, которая находится в левой части панели инструментов. Окно Просмотр изображения должен появиться ( рис. 1).
  5. Нарисовать рамку измерения на экране и отрегулировать его размер в соответствии с кометой ячейки. Нажмите кнопку " Настройка " кнопку, чтобы настроить порог головы, кометы, и хвост согласно изображение, а затем нажмите " начать измерения " кнопку ( рис. 1).
  6. Выберите ячейку с помощью рамы
  7. и активировать измерения, нажав мышью на " Assay комета " кнопку; интенсивности изображение показывает вверх на " профили " окно с параметрами выбранного измерения. Результаты могут быть сохранены, нажав " хранить результат " кнопку ( рис. 1).
    Примечание: Программа вычисляет параметры, включая длину хвоста кометы, процент хвостатых ДНК, хвост момент (TM) и момент хвост оливкового (ОТМ). Моментов оперения рассчитываются по формулам как следовать:
    Equation 1
    Equation 2
  8. анализ по крайней мере 50 ячеек за лечение.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Настоящий Протокол описывает шаг за шагом рабочего процесса для комета пробирного исполнения и анализа данных (рис. 1). Результаты анализов щелочных и нейтральных кометы показали, что хвост кометы доксорубицин лечение U251 клеток (1 мкм, 20 h) был длиннее и более высокую интенсивность ДНК, предлагая существенное накопление фрагментированных ДНК из-за химиотерапии (рис. 2).

Количественный анализ для assay щелочная или нейтральная кометы показали значительное увеличение кометы хвост формирования после доксорубицин лечения (рис. 3A) указывает на повреждения ДНК. Результаты представлены как среднее ± SEM и t-тесты были использованы для статистических сравнений. Количественное определение момента хвост от обоих анализов подтвердили увеличение среднего хвост момент: для щелочных комета assay, 0.134 ± 0.0448 (n = 52) vs. 13,84 ± 1,325 (n = 51), p < 0,01; Для нейтральных комета assay, 0.596 ± 0.06668 (n = 78) vs. 9.979 ± 0.658 (n = 51), p < 0.01. Эти данные предоставляют количественному индекс для оценки повреждения ДНК. Кроме того сочетание лечения olaparib АБС битор PARP и Темозоламид значительно улучшено повреждение ДНК клеток глиомы (рис. 3 c), с увеличение продолжительности и интенсивности сигнала хвост кометы. Olaparib только не вводить повреждения ДНК, в то время как он потенцированные генотоксичных эффект химиотерапии агент Темозоламид (ДМСО, 0.9836 ± 0.3377 (n = 64); Olaparib, 0.6663 ± 0.2325 (n = 51); TMZ, 6.197 ± 0.572 (n = 51); Olaparib + TMZ, 44.04 ± 1.269(n = 115), p < 0.01).

Figure 1
Рисунок 1 : Пошаговое руководство анализа изображений с помощью программного обеспечения пробирного комета. (A) панели инструментов анализа комета программного обеспечения. Пробирного щелочной Комета (B) в качестве примера: Пользовательский интерфейс программного обеспечения пробирного кометы состоит из изображения, интенсивность профиля и приобретение окна данных. (C) изображения фона, комета региона и голова кометы были определены в программном обеспечении. (D) интенсивность профили головы кометы (красный) и хвост (зеленый), выводятся, соответственно. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2 : Представитель изображения анализов щелочных и нейтральных комета. U251 клеток глиомы относились с доксорубицином и исследованы щелочные (верхней панели) и нейтральный (нижняя панели) комета анализов (шкала бар = 10 мкм). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
Рисунок 3: Репрезентативных данных кометы хвост момент. (A) щелочная комета анализа данных участок. p < 0.01. (B) нейтральных комета анализа данных участок. p < 0.01. (C) комета пробирного анализа показали синергетический эффект комбинированной терапии, включая Темозоламид (ТМЗ) и olaparib (УПВ). p < 0.01. (D) представитель изображения клеток глиомы под сочетание лечения Темозоламид и olaparib (шкала бар = 10 мкм). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Assay комета является эффективным инструментом для измерения одно и двухнитевые разрывы ДНК на клеточном уровне. Assay широко применяется как «золотой стандарт» в исследованиях о генотоксичности и биомониторинга13, начиная от базового поражений, сшивки ДНК, разработки лекарственных средств и щелочных спецобъектов. В настоящем исследовании мы показали два отдельных пошаговые протоколы для щелочных и нейтральных комета анализов, соответственно. Объединяя одну ячейку электрофореза, флуоресцентной микроскопии и интерпретации изображений, оба анализы щелочных и нейтральных комета обеспечивают количественные подходы к оценке степени ДНК повреждения в пробирке.

Несколько ключевых шагов необходимы для успешного выполнения комета assay. Например следует позаботиться о том, на этапах подготовки реагента. Каждое решение необходимо свежезаваренным подготовлен и при соответствующей температуре по крайней мере 30 минут перед использованием, чтобы предотвратить эндогенных повреждений ДНК или ремонта во время подготовки проб. Еще одним жизненно важным шагом является подготовка жизнеспособных одноклеточных подвеска. Важно сохранить агарозы при 37 ° C перед использованием, чтобы увеличить выживание клетки во время подготовки слайдов кометы. Непосредственно перед началом анализа должен быть подготовлен подвеска клеток/агарозы. Использование на стороне наконечники для распространения клеток/агарозы подвеска помогает достичь тонкого слоя агарозы на слайдах, так, что большинство клеток может располагаться в одной фокальной плоскости при микроскопии. При необходимости поцарапайте края слайды с помощью алмаз наконечником пера для улучшения агарозы вложение.

Несмотря на преимущества assay кометы существует несколько ограничений этот традиционный метод14,15. Например пропускная способность комета assay ограничена процесса подготовки слайдов стекла. В некоторых случаях восемь навернулись стеклянное скольжение обеспечивает решение для улучшения анализа пропускной способности. Еще одним ограничением является, что комета assay просто представляет собой отношение фрагментированных ДНК в клетках. Дополнительная вспомогательная информация требуется тщательно изображают клеточные изменения помимо повреждения ДНК. В этом случае анализ апоптоза, γH2A.X окрашивание и immunoblotting может быть очень полезно обеспечить тщательный анализ различных аспектов выявить эффект ДНК повреждающих агентов.

Есть много программного обеспечения для анализа изображений кометы и вывода включает в себя множество различных параметров. Наиболее часто используемые параметры являются длина хвоста, процент ДНК в хвост и момент хвост. Длина хвоста только может использоваться при низких уровнях повреждения ДНК, так как он не склонны менять после хвост установленных14. Впоследствии интенсивность хвост увеличивается урон усиливается. Процент ДНК в хвост кометы — еще один полезный параметр, как линейно связан с частотой ломать. Хвост момент объединяет длина хвоста и хвост интенсивности в одно единственное значение, таким образом, это наиболее полезный и часто используемый параметр.

Комета assay широко применяется в генотоксичности тестирования и человеческого биомониторинга. С развитием ингибиторы фермента ДНК ремонт комета assay может ценным инструментом для тестирования комбинированной терапии, которые улучшают результаты традиционной химиотерапии.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы не имеют ничего сообщать.

Acknowledgments

Это исследование было поддержано интрамуральных исследовательской программы NIH, NCI и CCR. Все авторы получили интрамуральных исследовательский грант от НИЗ, NCI и CCR.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Reagents
10x PBS(Ca++, Mg++ free) TEKnova P0196
NaCl Sigma S5886
EDTA TEKnova E0308
Trizma base Sigma T1503
NaOH Sigma 72068
Sodium lauryl sarcosinate Sigma L7414
Triton X-100 Sigma 93443
Sodium acetate Sigma 32318
Glacial acetic acid Sigma 695092
Ammonium acetate Sigma A1542
SYBR Green Invitrogen S33102
Low melting point agarose Invitrogen 16520
Agarose Invitrogen 16500
95% ethanol WARNER-GRAHAM #64-17-5
Trypsin GIBICO 25300-054
Name Company Catalog Number Comments
Consumables
Glass tissue slides ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 63422-11
Kimwipes KIMberly-Clark
1.5 mL Microcentrifuge Tubes DENVILLE
Pipette Tips SHARP
Name Company Catalog Number Comments
Equipments
Microwave Avanti
Waterbath PRECISION
Horizontal electrophoresis chamber TREVIGEN Cometassay ES II
Power supply Bio-Rad
Incubator Quincy Lab Model 12-140E
Fluorescent microscope Zeiss LSM700
Micropipettor Eppendorf

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Ostling, O., Johanson, K. J. Microelectrophoretic study of radiation-induced DNA damages in individual mammalian cells. Biochem Biophys Res Commun. 123, (1), 291-298 (1984).
  2. Singh, N. P., McCoy, M. T., Tice, R. R., Schneider, E. L. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells. Exp Cell Res. 175, (1), 184-191 (1988).
  3. Tice, R. R., et al. Single cell gel/comet assay: guidelines for in vitro and in vivo genetic toxicology testing. Environ Mol Mutagen. 35, (3), 206-221 (2000).
  4. Shah, A. J., Lakkad, B. C., Rao, M. V. Genotoxicity in lead treated human lymphocytes evaluated by micronucleus and comet assays. Indian J Exp Biol. 54, (8), 502-508 (2016).
  5. Azqueta, A., Collins, A. R. The essential comet assay: a comprehensive guide to measuring DNA damage and repair. Arch Toxicol. 87, (6), 949-968 (2013).
  6. Goldstein, M., Kastan, M. B. The DNA damage response: implications for tumor responses to radiation and chemotherapy. Annu Rev Med. 66, 129-143 (2015).
  7. Gavande, N. S., et al. DNA repair targeted therapy: The past or future of cancer treatment? Pharmacol Ther. 160, 65-83 (2016).
  8. Torgovnick, A., Schumacher, B. DNA repair mechanisms in cancer development and therapy. Front Genet. 6, 157 (2015).
  9. Weston, V. J., et al. The PARP inhibitor olaparib induces significant killing of ATM-deficient lymphoid tumor cells in vitro and in vivo. Blood. 116, (22), 4578-4587 (2010).
  10. Brown, J. S., O'Carrigan, B., Jackson, S. P., Yap, T. A. Targeting DNA Repair in Cancer: Beyond PARP Inhibitors. Cancer Discov. 7, (1), 20-37 (2017).
  11. Lu, Y., et al. Chemosensitivity of IDH1-Mutated Gliomas Due to an Impairment in PARP1-Mediated DNA Repair. Cancer Res. 77, (7), 1709-1718 (2017).
  12. Konca, K., et al. A cross-platform public domain PC image-analysis program for the comet assay. Mutat Res. 534, (1-2), 15-20 (2003).
  13. Valverde, M., Rojas, E. Environmental and occupational biomonitoring using the Comet assay. Mutat Res. 681, (1), 93-109 (2009).
  14. Collins, A. R. The comet assay for DNA damage and repair: principles, applications, and limitations. Mol Biotechnol. 26, (3), 249-261 (2004).
  15. Karbaschi, M., Cooke, M. S. Novel method for the high-throughput processing of slides for the comet assay. Sci Rep. 4, 7200 (2014).
Оценки <em>в Vitro</em> повреждения ДНК, используя Assay комета
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Lu, Y., Liu, Y., Yang, C. Evaluating In Vitro DNA Damage Using Comet Assay. J. Vis. Exp. (128), e56450, doi:10.3791/56450 (2017).More

Lu, Y., Liu, Y., Yang, C. Evaluating In Vitro DNA Damage Using Comet Assay. J. Vis. Exp. (128), e56450, doi:10.3791/56450 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter