Summary
Zebrafish 태아 그리고 애벌레의 microinjection 많은 zebrafish 모델에서 사용 되는 중요 하지만 어려운 기술 이다. 여기, 우리 미 도구 안정화에 도움의 범위와 microinjection 및 이미징 zebrafish의 방향 제시.
Abstract
Zebrafish 대규모 유전과 화학 스크린을 통해 기본적인 발달 생물학에 걸친 다양 한 인간 질병 및 실험 연구의 증가 범위에 대 한 유용한 도구 강력한 모델로 떠오르고 있다. 그러나, 많은 실험, 특히 감염 및이 종이 식 모델에 관련 된 microinjection와 배아와 힘 드는 기법 기술 및 전문 지식이 필요로 하는 애벌레의 이미지에 의존 합니다. 정밀도 현재 microinjection 기법의 처리량을 개선 하기 위해, 우리는 이전에 복 부, 등, 또는 측면 방향 동양 zebrafish 태아 2 일 게시물 수정 (dpf)에 안정화를 microstructured 장치의 시리즈를 개발 합니다 절차입니다. 배아의 이미징에 도움, 우리는 또한 채널 4 zebrafish 유리 커버 슬립에 대 한 동시에 옆 방향으로 간단한 장치 설계. 함께, 우리가 여기 제시 도구 zebrafish 기술의 최적화를 위한 유용한 장치를 생성 하기 위해 photolithographic 접근의 효과 보여 줍니다.
Introduction
Zebrafish의 기본적인 발달 생물학 대규모 유전 연구에서 다양 한 분야에 대 한 강력한 모델로 등장 하 고 화학 스크린1,2. 일상적인 유전자 조작, 유전자 overexpression, 최저, CRISPR/Cas9 mutagenesis, transgenesis 등 상업적으로 간단한, 쉬운--사용의 개발을 주도하 고 있다 단일 셀 zygote에 유전 물질의 microinjection에 의존 방향을 사출3계란 안정화를 사용할 수 있는 도구. 감염, 이식 등 다른 접근으로 나중 단계 태아 그리고 애벌레 더 큰 게이지 모 세관 바늘4를 사용 하 여 microinjection을 해야 하는 경우가 많습니다. 그러나, 더 큰 계기 바늘의 사용으로 밀거나 태아 롤링 없이 표적 조직에 침투 하기 어려운 중요 한 기술적 과제, 선물. 이러한 조건에서 절차 동안 건조를 방지 하는 것은 어렵다, 하는 동안 태아를 안정화 하는 데 필요한 적절 한 물 긴장 및 배아 수 있습니다 이상적으로 표적 조직에 주입에 대 한 지향.
Microinjection, 다음 그것이 주입된 태아 성공적으로 주입 되어, 그를 선택 하 고 초기 시간 포인트의 이미지를 캡처 화면 종종 유용 합니다. 이러한 과제를 해결 하기 위해 우리는 microinjection5, 그리고 빠른 이미지 기반 심사 후 주입을 위한 다양 한 방향에서 2 dpf 배아를 안정화 하는 데 도움이 microstructured 장치의 범위를 개발 했습니다.
이 장치에 충분 한 구조 해상도 얻으려면, 우리는 photolithographic 기술을 활용. 최근 미세 제작 추정 마이크로 전자 산업 등에서 일반적으로 사용 되는, 이러한 접근 1-1000 µ m, zebrafish 태아 그리고 애벌레의 조작에 적합 한 규모에서에서 배열 하는 수직 구조를 얻을 수 있습니다. 모든 장치입니다 (PDMS), 저렴 한, 생물학으로 비활성, 육체적으로 강력 하 고 투명 한은 사용 하 여 날조 되었다.
Microstructured 표면 배열 (MSAs) 꽃무늬 최고 표면 PDMS의 블록으로 포맷 했다, 계란 microinjection 위해 간단한 채널 agarose 블록에 유사한 일반적으로 사용. 포스트 주입 심사에 대 한 이미징 장치 6 표준 유리 바닥 6 잘 플레이트에 배열할 수 있다. 이 소자는 배아의 쉬운 로딩을 위한, 언로드 절차 편리 하 게 이미지 기반 구조 촉진 특정 배아의 수에 의해 개발 된 이전 그 장치 보다 더 많은 사용자 친화적인 방식으로 접근을 차단 합니다 비비 실험실6.
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Protocol
애벌레의 microinjection 프로토콜 2011N000127에서 매사 추세 츠 종합 병원 분과 연구 동물 관리에 의해 승인 되었다.
1. 장치 제조
참고: 모든 컴퓨터 보조 그리기 (CAD) 파일 여기에서 설명 하는 사진 평판 마스크를 디자인 하는 데 사용 (그림 1) 다운로드를 위해 사용할 수 있습니다. 링크 테이블의 자료를 참조 하십시오.
- 표준 photolithographic 기법7를 사용 하 여 클래스 1000 클린 룸에 마스터 형 웨이퍼를 조작. 미세 배열 및 채널에 대 한 제조업체의 지침에 따라 순차적으로 3 별도 마스크를 사용 하 여 3 계층에 에폭시 기반 부정적인 감광 제 패턴: 얕은 기능에 대 한 100 µ m, 중간 기능에 대 한 200 µ m 및 400 µ m에 대 한 깊은 기능. 이미징 장치에 대 한 두 가지 패턴 레이어 얕은 기능과 깊은 기능에 대 한 600 µ m에 대 한 400 µ m를 사용 하 여 경우
- 15 cm (그림 2)을 주조에 대 한 페 트리 접시의 기초를 완성 된 웨이퍼를 테이프.
2. Microstructured 표면 배열-PDMS의 준비
- 장치를 사용할 수 있도록입니다 (PDMS), 금형으로 마스터 웨이퍼를 사용 하 여 캐스팅. 초기자의 5 g PDMS 단위체의 50 g을 결합 하 고 플라스틱 플라스틱 포크와 접시의 무게에 철저 하 게 혼합.
- 신중 하 게 금형 혼합물을 따르십시오.
- 1 시간에 16-25 inHg (54-85 kPa)에서 진공 desiccator에 드.
- 치료는 PDMS, 적어도 3 h 65 ° C에서 구워. PDMS 확고 하지만 유연한 고체를 치료 한다.
- 메스의 팁과 웨이퍼 표면 사이 접촉을 유지 하는 메스를 사용 하 여 마스터 웨이퍼 장치 주위 잘라 신중 하 게 합니다. 집게를 사용 하 여, 웨이퍼와 깨끗 한 10 cm 배양 접시, 기능 쪽 (그림 3)에 PDMS 복제 껍질.
- 산소 플라즈마 35 플라즈마 오븐을 사용 하 여 장치 취급 hydrophobicity를 줄이기 위해 s.
- Zebrafish 태아 매체 (E3) 168 mg/L 에틸 3-aminobenoate methanesulfonate (MS-222, pH 7.5)의 포함 된 커버. 전송 피 펫을 사용 하 여 장치의 표면에 물이 흐르는 깊은 기능에서 모든 거품을 제거 합니다.
3. Microstructured 표면 배열-Agarose의 준비
- 네거티브 PDMS 몰드를 만들기 위해 먼저 산소 플라즈마와 PDMS 장치 취급.
-
1H, 1H, 2H, 불활성 표면8만들려고 2H-Perfluorooctyltriethoxysilane (PFDTS) 실 란 증기 PDMS 장치 취급. 간단히:
- 수 처리 기능-사이드 업 연기 후드 내에서 진공 챔버에 PDMS를 놓습니다.
- PDMS, 옆 작은 오픈 유리 또는 알루미늄 접시를 놓고 신중 하 게 PFDTS의 200 µ L 플라스틱 (98 %silane) 접시에.
주의: PFDTS silane 높은 휘발성은, 물으로 강력 하 게 반응, 가연성 이며 접촉에 심각한 피부 및 안구 손상의 원인. 사용 하기 전에 자세히 읽기 MSDS입니다. - 진공 챔버를 닫고 진공 15-30 분, 또는 PFDTS silane 완전히 증발 때까지 적용 합니다.
- 장치를 페 트리 접시에 놓고 2.1-2.3 단계에서 설명한 대로 준비 신선한 PDMS 몰드로 사용 합니다.
- 적어도 3 h, 65 ° C에서 구워 다음 처리 장치에서 신선한 PDMS의 전체 레이어를 껍질과 신선한 배양 접시에 놓습니다. 이 다음 agarose를 부정적인 형으로 사용할 수 있습니다.
- Agarose를 준비 하려면 낮은 고 온도 agarose E3에서 전자 레인지에서의 2% 솔루션은 agarose는 완전히 녹아 때까지 끓인 다.
- 부정적인 PDMS 몰드에 붓는 뜨거운 agarose 고 흐르는 뜨거운 agarose에 의해 전송 피 펫을 사용 하 여 기능 장치 취재 agarose에서 모든 거품을 제거 합니다.
- 일단 거품이 제거 되는 agarose 설정 하 4 ° C에서 냉동.
- 손으로 밑에서 PDMS를 변형 하 여 부정적인 PDMS 몰드에서 agarose 블록을 제거, 새로운 배양 접시, 및 MS-222를 포함 하는 e 3와 젖은 agarose 블록을 전송 합니다.
4입니다. PDMS 이미징 장치 준비
- 장치를 사용할 수 있도록, PDMS, 금형으로 마스터 웨이퍼를 사용 하 여 캐스팅. PDMS 단위체의 50 g 5 g (동일 단계 2.1에서에서 사용) 초기자 및 플라스틱 플라스틱 포크와 접시의 무게에 철저 하 게 혼합 결합.
- 신중 하 게 금형 혼합물을 따르십시오.
- 1 시간에 16-25 inHg (54-85 kPa)에서 진공 desiccator에 드.
- 치료는 PDMS, 적어도 3 h 65 ° C에서 구워. PDMS 확고 하지만 유연한 고체를 치료 한다.
- 마스터 웨이퍼에서 소자를 잘라내어 포트 1.5 m m 펀치를 사용 하 여 밖으로 펀치.
- 치료 장치 및 6-잘 유리 하단 잘 산소 플라즈마 35 접시 s, 단계 2.6에에서 설명 된 대로.
- 10 분 동안 85 ° C 열판에 그것을 배치 하 여 한 장치 기능-사이드-아래 6 잘 플레이트의 각 유리 coverslip에 본드.
참고: 확인 하 고 성공적인 결합, 한쪽 집게를 사용 하 여 보 세 장치 회사 압력을 적용. 장치는 유리 coverslip에 연결 된 유지 되어야 합니다.
5. 제 브라 문화
- 표준 기술3를 사용 하 여 2 dpf 문화 zebrafish 태아.
- Dechorionate 배아 포 셉 또는 1 mg/mL 효소를 사용 하 여 그들을 수 있도록 장치에 로드 하기 전에 적어도 30-60 분 (참조 자료 테이블)3 을 혼합.
- 배아는 E3 (168 mg/L) MS-222 (pH 7.5) 25 X의 1 mL을 추가 하 여 재고 솔루션을 사용 하 여 그들의 페 트리 접시에 anaesthetize
6. Microstructured 표면-디벗 배열에 Zebrafish의 방향
- 배아의 쉽게 조작할 수 있는 e 3의 얇은 (1-2 m m) 층에 의해 포함 되는 그것의 페 트리 접시에 2.7 (그림 3A) 단계에서 PDMS 블록을 준비 합니다.
- 전송 피 펫을 사용 하 여 PDMS 블록의 표면에 배아 (조건 당 일반적으로 10-20)의 필요한 수를 전송 합니다.
- Micromanipulation 도구를 사용 하 여 (머리 루프 또는 이와 유사한), 배아 microstructured divots (그림 3A)에 밀어. Divots의 사용은 지 느 러 미 및 복 부 방향에 특히 적합 합니다.
참고:와 엄격한 divots (지 느 러 미 및 복 부)에 맞게, 배아, 디벗을 병렬로 블록의 표면에 위치 하 고 머리 루프를 사용 하 여 위치에 그들을 압 연. 깊이 디벗으로 그들을 밀어 그들을 안정적으로 유지 하는 데 도움이 됩니다.
7. Microstructured 표면-에서 Zebrafish의 방향을 Microstructured 채널
- E3 PDMS 블록 microstructured 채널 (그림 3B) e 3의 수준, 블록의 가장자리 아래로 떨어지면 하지만 여전히 존재 저수지와 채널에는 PDMS에 얇은 층에서 때까지 전송 피 펫을 사용 하 여 패턴을 그립니다.
- 가장자리를 오버플로 하지 않도록 주의 되 고 전송 피 펫을 사용 하 여 저수지에 단계의 5.3 10 배아를 전송.
- 머리 루프를 사용 하 여 적절 한 채널의 입구에 깔때기에 각 배아를 조작 하 고 태아의 머리는 채널 쪽으로 고 태아는 적절 한 방향으로 채널 입력 되도록 방향.
- 각 태아 orienting microfeatures 장소에 그것을 유지 하는 데 도움이 채널 벽에 도달할 때까지 머리 루프를 사용 하 여 채널 아래로 슬라이드. Microstructured 채널의 사용은 특히 측면 방향에 대 한 권장 됩니다.
참고: microinjection 중 슬라이딩 배아를 줄이기 위해, 저수지에서 e 3를 그려서 표면 장력의 양을 조정 해보십시오.
8입니다. 제 브라 microinjection
-
Microinjection 바늘을 준비 합니다.
- 앞에서 설명한4micropipette 끌어당기는 사람을 사용 하 여 붕 규 산 유리 microcapillary 바늘을 확인 합니다. 결과 바늘 약 10 m m의 테이퍼 길이 한쪽 끝 지점으로 테이퍼 합니다.
- 이 경우 100 nM chemoattractant에 주입 하는 솔루션을 준비 (N-Formylmethionine-leucyl-페닐알라닌 (fMLP) 또는 Leukotriene b 4 (LTB4))와 100 nM 70 kDa Rhodamine dextran 추적 프로그램 PBS에.
- 가늘게 가늘게 한 피 펫을 사용 하 여 바늘에 솔루션의 5 µ L 로드 팁 (자료 표 참조).
- 마그네틱 스탠드에 장착 하 고 picopump microinjector에 연결 된 micromanipulator에 바늘을 탑재 합니다.
- 집게와 테이퍼 팁을 곤란 하 게 하 여 45 ° 각도로 바늘의 팁을 휴식.
- 1 주입 bolus 크기 조정 picopump 컨트롤러에 주입 시간을 조정 하 여 nL.
- Microinjection 바늘의 각도 조정 합니다. Micromanipulation 컨트롤러에 45 °의 바늘 각도 일반적으로 태아의 길이에 평행 하 게 바늘으로 좋은 출발점. 험한 각도 microinjection 동안 태아의 측면 움직임을 최소화 하기 위해 사용할 수 있습니다.
- 왼손으로 페 트리 접시와 오른쪽으로 바늘 micromanipulator controlling, microinjection,이 경우 otic 소포의 의도 사이트로 최대한 바늘 가까이 가져.
참고: otic 소포 직사각형 기관 후부 두 작은 뚜렷한 어두운 직사각형 구조 (otoliths)를 포함 하는 눈으로 확인할 수 있습니다. - Micromanipulation 컨트롤러를 사용 하는 바늘의 팁, 소포 내 (이 경우 otic 소포)에 대상 조직을 관통 하 고 picopump 발 스위치를 사용 하 여 미리 설정 된 볼륨을 주입.
참고: 조직 침투를 저항 하는 경우 부드럽게 micromanipulation 컨트롤러 노브 도청 보십시오. - 배아를 출시, E3 표면 위쪽에서 전송 피 펫을 사용 하 여 아래쪽 또는 배아 주변 E3에 출시 되는 접시를 소용돌이 흐름.
- MS-222 전송 피 펫을 사용 하 여 없이 e 3의 복구 접시에 배아를 전송.
9. 장치 이미징 PDMS를 사용 하 여 배아의 심사
- 포트를 통해 흐르는 E3 (+ MS-222) 단계의 4.7 장치 프라임. 이 행 해질 수 있다 1000 µ L 피 펫 또는 좁은 팁 전송 피 펫을 사용 하 여.
- 채워 잘 e 3 + MS-222 장치 덮여 때까지.
- 잘 사용 하 여 각 전송 피 펫에 8.7 단계에서 4 삽입 된 배아를 제공 합니다. E3 + MS-222 (5.3 단계)를 로드 하기 전에 1-2 분 동안 배양 하 여 배아 미리 마 취 될 수 있습니다.
- Micromanipulation 도구를 사용 하 여 (머리 루프 또는 이와 유사한), 동양 (꼬리 1 또는 머리-첫 번째, 사용 하는 장치에 따라), 원하는 방향으로 영상 채널의 입구에서 배아 및 장치 (그림 4A)에 부분적으로 그들을 밀어. 이 장치에 균등 하 게 그들을 그릴 데 도움이 됩니다.
- 배아 채널 (그림 4B) 이미징에 대 한 올바른 방향으로 그려집니다 때까지 1000 µ L 피 펫 또는 전송 피 펫을 사용 하 여 포트에서 장치를 통해 E3를 그립니다.
참고: 트래핑 지점 과거 배아를 빨 아 하지 않도록 주의 하십시오,이 배아를 손상 하 고 그들의 방향을 변경 합니다. - (그림 4C) 이미징을 위한 현미경을 잘 플레이트를 전송 합니다.
-
이미지를 거꾸로 형광 현미경을 사용 하 여입니다.
- 적절 한 렌즈를 선택 하 여 확대를 조정 합니다. 10 배는 일반적으로 이미징 zebrafish 호 중구 마이그레이션에 대 한 유용한 확대.
- 각 신호는 분명, 하지만 하지 포화 되도록 광원 강도 및 각 채널에 대 한 노출 시간을 조정 합니다.
- 각 채널에 대 한 이미지를 캡처하십시오. 여기, 우리가 사용 하는 녹색 형광 단백질 (GFP, 예: 470/22, Em: 525/50), 텍사스 레드 (TxRed, 예: 585/29, Em: 628/32) 채널을 전송. 멀티 채널 이미지 후 처리 하는 동안 결합 될 수 있다 (그림 4B-I).
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Representative Results
여기서 설명 하는 접근은 (그림 1)의 설계 및 제조 2 dpf zebrafish, photolithographic (그림 2)와 소프트 리소 그래피 (그림 3) 기법을 사용 하 여 함께 사용 하기 위해 장치를 보여 줍니다. 이 방법을 사용 하면 많은 설계 반복 및 수정, 빠른 테스트 하 고 변경 및 개발의 다른 단계에서 제 브라와 함께 사용 하기 위해 미세 크기의 최적화 응용 프로그램을 확장할 수 있습니다.
우리 도전 microinjection 기술과 편리한 이미징이이 소자의 사용을 보여 줍니다. Otic 소포 (그림 4D, 흰색 파선된 윤곽선) zebrafish9호 중구 모집을 테스트 하기 위한 유용 하 고, 면역 권한이 고 고립 된 사이트를 제공 합니다. 표준 chemoattractants, 100에 응답 zebrafish 호 중구의 기능을 테스트 하려면 fMLP 및 LTB4의 nM 2 dpf zebrafish 태아 (그림 4 층, J)의 otic 소포에 microinjected 했다 microstructured 채널 장치 ( 를 사용 하 여 그림 1G) 안정화 측면 방향에 배아를. 주사와 높은 분자량 Rhodamine dextran 추적 그리고 호 중구 모집의 시각화를 촉진 하기 위하여 Tg(mpx:EGFP) 배아에서 수행. Uninjected (그림 4D, H)는 배아 및 배아 Rhodamine 혼자 (그림 4E, 나) 부정적인 컨트롤으로 사용 했던 주사. Microinjection, 태아 이미징 채널 장치 (그림 1A, B)으로 옮겨 졌다 고 30 분에 5 h 포스트 주입 EVOS 형광 현미경 (그림 4C)를 사용 하 여 몇 군데 (그림 4D-G 및 그림 4 H-K, 각각). 예상 했던 대로, 형광 호 중구 수가 적은 했다 채용 (그림 4I), 초기 timepoint에 모의 주입 otic 소포를 가능성이 손상 중재 모집 때문. 흥미롭게도, Rhodamine dextran 추적 실험 기간 동안에 otoliths에 축적 관찰 되었다. 두 chemoattractants (그림 4 층, J)에 대 한 호 중구 LTB4에 대 한 응답에서 특히 높은 숫자에서 보충 했다 (그림 4 층).
여기에 표시 된 대표적인 결과 microinjection에 대 한이 메서드를 사용 하 여 성공적인 zebrafish의 이미징 보여 줍니다. Zebrafish 호 중구 모집 분석의 맥락에서 이러한 도구와 함께 상세한 라이브 이미징 기술과 정교한 셀 마이그레이션 분석10 의 응용이이 분야에서 미래 실험을 위한 유용한 플랫폼을 제공할 수 있습니다.
그림 1: 컴퓨터 보조 그리기 (CAD) 디자인의 포토 리소 그래피 마스크. (A C) CAD 디자인 microstructured 표면 divots 측면 (A), (B), 복 부 및 등 쪽 (C) 방향에서 위치에 대 한. 다른 컬러 라인 그린 100 µ m와 다른 기능에 대 한 CAD 마스크 디자인 대표, 블루 200 µ m, 및 빨간 400 µ m 기능 높이. 눈금 막대 500 µ m. (D-F) CAD 디자인 측면 (D), (E), 복 부 및 등 쪽 (F) 방향에서 위치 microstructured 채널에 대 한 =. 다른 컬러 라인 그린 100 µ m와 다른 기능에 대 한 마스크 디자인 대표, 블루 200 µ m, 및 빨간 400 µ m 기능 높이. 눈금 막대: 500 µ m. (G-난) 이미징 장치 로드 머리-첫 번째 (G) 또는 꼬리 (H와 나) 먼저에 대 한 설계를 위한 CAD 디자인. 파란색 라인 레드 라인 600 µ m 기능을 대표 하는 동안 400 µ m 기능을 나타냅니다. 화살표 표시 방향 애벌레 로드 됩니다. 눈금 막대 = 200 µ m. 이 그림 Ellett 외 에서 수정 되었습니다. 5 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2: 실리콘 마스터 웨이퍼. (A) 개별 애벌레 divots에 방향을 위한 마스터 웨이퍼 쇼 기능의 상위 섹션. (B) 섹션 microstructured 채널에 대 한 디자인을 보여주는 마스터 웨이퍼의 바닥. 이 그림 Ellett 외 에서 수정 되었습니다 5 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3: Microstructured PDMS 장치. (A) PDMS 블록 개별 애벌레 방향을 위한 divots 보여주는 마스터 웨이퍼에서 캐스팅. (B) PDMS microstructured 채널을 보여주는 마스터 웨이퍼에서 캐스팅을 차단 합니다. 이 그림 Ellett 외 에서 수정 되었습니다. 5 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 4: 대표 결과: 이미징 zebrafish neutrophils otic 소포에 chemoattractants의 microinjection 배달 다음의 모집. (A-B) 로드 하 고 이미지에 대 한 배아를 장착입니다. (A) 머리-첫 번째 장치 배아 포트 표시 (검은색 화살표)를 로딩에 대 한 준비와 함께. 그들은 위치 (노란색 화살표)으로 그려 왔다 후에 배아를 (B)는 로드 영상 현미경에 장치 된 (C) 6-잘 유리 하단 플레이트. 이 형식은 표준 거꾸로 한 현미경을 사용 하 여 잘 (24 배아 총) 당 배아 중심 4의 측면 이미지 수 있습니다. (D-G) 호 중구 (EGFP-녹색) uninjected (D) 배아 및 다음 otic 소포 microinjection Rhodamine dextran (빨간색, 오픈 흰색 화살표) 혼자의 (E), 100 nM LTB4 (F)와 100 nM fMLP (G) 30 분 포스트 주입 (mpi). (H K) 호 중구 (EGFP-녹색) uninjected (H) 배아에와 다음 otic 소포 microinjection Rhodamine dextran (빨간색, 오픈 흰색 화살표) 혼자의 (나), 100 nM LTB4 (J)와 100 nM fMLP (K) 5 h 포스트 주입 ( hpi)입니다. 눈금 막대 = 200 µ m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
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Discussion
여기, 우리는 사용 설명 장치 우리는 최근 2 dpf zebrafish microinjection의5, 촉진 하기 위하여 소개 하는 배아의 편리한 이미징에 대 한 간단한 agarose 무료 장착 장치 개발. 이러한 도구는 zebrafish 기법에 대 한 유용한 장치 제조를 위한 photolithographic 기술의 유틸리티를 강조 표시합니다.
우리는 발견 MSA 장치 특히 유용 세포 또는 입자의 주입을 위해 microinjection 바늘 같은 곰 팡이 conidia 또는 배달에 대 한 더 큰 구멍 바늘의 사용을 요구 하는 인간의 암 세포 내에서 집계 하는 경향이 있다. Otic 소포 (그림 4)에 주입 배아 자주 바늘과 접촉 시 롤로 특정 도전을 선물 한다. 우리 동양 하는 측면에서 zebrafish 안정화 microstructured 채널의 사용 하 여 찾을 방향 처리량 및 우리의 손에 있는이 기술의 정확도 크게 향상.
호 중구 모집의이 종이 식 전이 평가 등 다른 시간 지점에서 옆으로 지향된 zebrafish의 빠른 이미징에 대 한 배아와 도중 손상의 감소 가능성 사이 장착 일관성을 증가 agarose를 피하 포스트 구조를 이미지입니다. 이 소자는 또한 오랜된 시간 경과 영상에 대 한 약속을 표시 하 고 성공적으로 최소한의 물고기 운동 12 h 이상의 멀티 채널, multiplane 이미지를 캡처하는 데 사용 되었습니다. 그들은 agarose에 의해 제한 되지, 때문에이 기간 (~ 300 µ m에서 54-78 hpf)11 동안 애벌레의 활성 신장 제한 되지 않습니다 하 고 정상적으로 진행할 수 있습니다.
준비 및 이러한 도구 사용에 가장 중요 한 단계는 대부분 PDMS 기반 미세 장치 사용에 공통: 장치 철저 하 게 젖은 고 거품 피할. 이러한 문제를 방지 하려면 그들은, 산소 플라즈마 처리에 의해 수 여 하는 표면 화란은 여전히 존재 하는 동안 조작 후에 즉시 e 3에 장치를 젖은. 산소 플라즈마로 다시 치료 또한 뚜렷이 화란 세 PDMS 장치에 복원에 사용할 수 있습니다.
여기에 사용 되는 정확한 형상 두 번째 하루 후 수정 동안 zebrafish photolithographic 기법, 하지만 현재 디자인 제한 사용의 높은 해상도 활용 합니다. 현재 플랫폼에 따라 형상의 재설계 1 dpf 및 microinjection에 대 한 3 dpf의 성공적인 방향을 수 있습니다. 더 부 력 4 dpf 애벌레 비정상적된 수영 방광으로의 방향 것 가능성이 더 도전 고 높은 물 긴장에와 함께 아늑한 형상 필요. 진공 또는 흐름을 통합 하는 복잡 한 장치 발달 단계의 더 넓은 범위에 적용 되는 다른 접근을 제공할 수 있었지만 펌프와 튜브, 비용 및 장치 실패의 위험을 증가의 사용도.
PDMS는 날조, 여기에 설명 된 것과 같은 장치를 위한 유용한, 비용 효과적인 자료 제공 생체 적합성, 투명도 및 재사용 합니다. 제 브라에 대 한 PDMS 장치를 사용 하 여 하나의 단점은 hydrophobicity, 도전 소자의 표면에 e 3의 얕은 층의 유지 보수를 할 수 있습니다. 이 재사용을 제한 하 고 장치의 취약성을 증가 agarose에 microinjection 장치를 캐스팅 하 여이 문제를 방지할 수 있습니다. 기본 대체 PDMS12, 화란 또는 적절 한 플라스틱 기판의 사용 증가 생체 표면 처리의 것입니다.
2 dpf에서 zebrafish의 microinjection에 대 한 현재 메서드 중 물 긴장4 를 사용 하거나 간단한 채널 캐스팅 agarose 상업 금형을 사용 하 여 무력화 하는 애벌레의 위치에서. 이러한 접근 오리엔테이션의 제한 된 제어를 제공 하 고 태아의 급속 한 건조에 의해 복잡 하 게 될 수 있습니다. 마이크로 구조는 divots에 통합 하 고 여기에 사용 되는 채널은 방향 및 물 긴장, 따라서 건조의 위험을 감소에 전적으로 의존 하지 않고 애벌레를 무력화 하도록 설계 되었습니다. 비록 이러한 divots 깊이 그들 microinjection에 대 한 액세스할 수 divots 3D 인쇄 된 금형을 사용 하 여 만든 이전 이미지 목적13, 배아의 방향에 대 한 사용 되어 왔습니다.
Zebrafish 이미징에 대 한 미세 시스템의 사용은 점점 더 일반적인14되고있다.
여러 개의 흐름을 통해 시스템 수요15,,1617에 화합물을 소개 하는 기능으로 시간이 지남에 zebrafish 개발의 관찰 수 있도록 개발 되었습니다. 더 복잡 한 장치를 쉽게 조작할 수 있는 단순 구면 기하학이 시스템18,19에서 상대적으로 높은 처리량을 제공 하는 그들의 chorion에서 배열 배아 설계 되었습니다. 여러 그룹 배열 및 이미징 애벌레 단계 zebrafish 다양 한 방향6,20, 수동 micropump 비비 연구소6에 의해 개발 된 "얼룩말" 시스템을 구동 되 고 가장 사용자 친화적인 플랫폼을 개발 했습니다. . 얼룩말 시스템 달리 우리 설명 하는 장치는 여기 표준 전송 피 펫을 사용 하 여 흡입, 생성 된 사용 하 여, 애벌레의 병렬 보다는 순차적 로딩 하는 동안 채널에 애벌레를 그릴 수 후에 의해 이미징 개별 애벌레의 구조 동일한 포트를 통해 긍정적인 흐름을 적용합니다. 또한, 우리의 접근 PDMS 장치 이미징에 대 한 기존의 유리 하단 6 잘 플레이트에 접착 될 수 있다 그래서 더 작은 풋프린트를 필요 합니다.
현재 실험 설계 microinjection 및 기존의 microinjection 장비와 표준 사용 될 수 있도록 주로 이미징에 대 한 별도 장치를 활용 하 여 현미경을 거꾸로. 이미 zebrafish 계란의 자동된 microinjection에 대 한 미세 접근21, 존재 하 고 "물고기-트랩" 유형 방법에 매우 정확한 개 애벌레20의 함께, 그것은 예측 그 장치 통합 자동화 된 애벌레 주입 및 이미징 될 수 있습니다 또한 언젠가 현실.
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Disclosures
저자는 관심 없음 충돌 선언합니다.
Acknowledgments
저자는 데이비드 란 게 나 우 수족관 공간; 아낌없이 제공 감사 하 고 싶습니다. 에릭 스톤, 존 C. 무어와 진 탕에 대 한 여기에 사용 된 zebrafish 스트레인 조달에 대 한 레너드 Zon의 연구소에서 zebrafish 유지 보수 및 시 약, 및 앤 로버트 슨와 엘리엇 Hagedorn 도움이. 그들은 또한 옥 타 비오 Hurtado photolithographic 기술에 대 한 조언을 감사 하 고 싶습니다. FE는 어린이 미국 호주 협회 위한 Shriner의 병원에서 동호회에 의해 투자 되었다. 이 작품은 NIH에 의해 투자 되었다 GM92804를 부여.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dow Corning Sylgard 184 Polydimethylsiloxane (PDMS) | Ellsworth Adhsives | 184 SIL ELAST KIT 0.5KG | For casting the devices. Kit includes PDMS monomer and Initiator |
| Low gelling temperature agarose | Sigma Aldrich | A9414-10G | For casting agarose devices |
| PFDTS silane | Sigma Aldrich | 448931-10G | For casting of negative PDMS molds |
| Tricaine (MS-222) | Sigma Aldrich | E10521-10G | To anesthetize zebrafish |
| Rhodamine Dextran 70,000 Da | ThermoFisher | D1818 | To trace microinjections |
| Leukotriene B4 (LTB4) | Cayman Chemicals | 20110 | Neutrophil chemoattractant |
| N-Formylmethionine-leucyl-phenylalanine (fMLP) | Sigma Aldrich | F3506-50MG | Neutrophil chemoattractant |
| 15 cm Petri dish | Fisher scientific | 08-757-148 | For Casting from the master wafer |
| Glass-bottom 6-well plates | MatTek | P06G-0-20-F | For imaging devices |
| Borosilicate glass microcapillaries | World Scientific Instruments | TW-100-4 | For microinjection needles |
| Transfer pipettes | Sigma Aldrich | Z350796 | For transferring zebrafish embryos |
| Microloader tips | Fisher scientific | E5242956003 | For loading the microinjection needles |
| Harris Uni-Core 1.5 mm punch | Ted Pella Inc. | 15111-15 | To punch ports in PDMS imaging devices |
| No. 11 Scalpel | Fine Science Tools | 10011-00 | For cutting PDMS |
| Dumont No. 5 Forceps | Fine Science Tools | 11252-10 | For dechorionating embryos and breaking microinjection needle tips |
| Marzhauser Micromanipulator | ASI | MM33-R | For manipulating microinjection needle |
| Magnetic stand | MSC | SPI - 87242624 | For mounting micromanipulator |
| MPPI-3 Picopump controller | ASI | MPPI-3 | To control microinjection volume and timing |
| EVOS inverted fluorescent microscope | ThermoFisher | EVOS FL | To image injected embryos |
| Dissecting microscope | Nikon | SMZ745 | For visualizing microinjecion |
| AutoCAD software | Autodesk | Download AutoCAD files from: https://dx.doi.org/10.6084/m9.figshare.4282853 and on the ZFIN community protocols wiki page: https://wiki.zfin.org/display/prot/ZFIN+ Protocol+Wiki |
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