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Neuroscience

Inflamação induzida pela mielinização Mouse modelo

Published: June 12, 2018 doi: 10.3791/56573
Automatic Translation
1, 1
1Synaptic Plasticity Project, Tokyo Metropolitan Institute of Medical Science

Summary

Este protocolo descreve um método de inflamação química com mielinização e fornece um modelo do rato da epilepsia. Este protocolo também pode ser usado para investigar a vulnerabilidade à indução de convulsões e patogênese após crises epilépticas em ratos.

Abstract

Mielinização (PTZ) é um antagonista dos receptores GABA-A. Uma injeção intraperitoneal de PTZ em um animal induz uma convulsão aguda, grave em uma dose alta, Considerando que injeções sequenciais de uma dose de subconvulsive têm sido utilizadas para o desenvolvimento da química kindling, um modelo de epilepsia. Uma única injeção de baixas doses de PTZ induz uma convulsão leve sem convulsão. No entanto, injeções de baixas doses repetitivas de PTZ diminuem o limiar para evocar um ataque convulsivo. Finalmente, administração contínua de baixa dose de PTZ induz uma severa convulsão tônico-clônica. Este método é simples e amplamente aplicável para investigar a fisiopatologia da epilepsia, que é definida como uma doença crônica que envolve ataques repetitivos. Este produto químico acender protocolo causa convulsões repetitivas em animais. Com este método, estimou-se a vulnerabilidade a ataques mediada por PTZ ou o grau de agravamento de crises epilépticas. Estas vantagens levaram à utilização desse método para triagem de droga anti-epiléptica e genes relacionados com epilepsia. Além disso, este método utilizou-se para investigar o dano neuronal após ataques epiléticos, porque as alterações histológicas observadas no cérebro de pacientes epilépticos também aparecem nos cérebros dos animais acendeu o produto químico. Assim, este protocolo é útil para produzir convenientemente modelos animais de epilepsia.

Introduction

Epilepsia é uma doença neurológica crônica que se caracteriza por convulsões recorrentes e afeta aproximadamente 1% das pessoas. Os mecanismos subjacentes da geração epileptogenesis e apreensão em pacientes de epilepsia não podem ser totalmente esclarecidos em estudos clínicos. Portanto, um modelo animal adequado é necessário para o estudo da epilepsia1.

Uma variedade de modelos animais de epilepsia têm sido utilizados para investigar a fisiologia da epilepsia e para identificar a droga anti-epiléptica2,3. Entre estes modelos, indução farmacológica convulsão é um método comum usado para gerar um modelo animal para a investigação da patologia de epilepsia4. Este método é simples e barato. Inflamação mediada por eletrodo também é um método comumente usado, mas os custos deste procedimento são mais elevados, e o método requer habilidades cirúrgicas e elétricas para induzir convulsões repetitivas5.

Indução farmacológica também é vantajosa porque o calendário e o número de apreensões são facilmente controladas. Modelos de genética do rato que apresentam convulsões espontâneas também são usados no estudo da epilepsia. No entanto, prever quando e quantas vezes as convulsões surgem nesses modelos genéticos pode ser impossível6. Um sistema de monitoramento é necessário para observar o comportamento epiléptico de camundongos geneticamente modificados6.

Ácido Kainic, pilocarpina e mielinização (PTZ) são amplamente utilizados como indutora de apreensão de drogas7. O ácido Kainic é um agonista de receptores de glutamato, e pilocarpina ativa receptores colinérgicos. PTZ é um ácido gama aminobutírico (GABA)-um antagonista de receptor8. PTZ suprime a função de sinapses inibitórias, levando ao aumento da atividade neuronal. Este regulamento causa convulsões generalizadas em animais9. Uma única injeção de ácido kainic e Pilocarpina pode induzir convulsões agudas, especialmente estado de mal epiléptico (SE)10,11 e kainic ácido ou pilocarpina-mediada SE promove convulsões espontâneas e recorrentes crônicas12 , 13. gravações eletroencefalográficos (EEG) e análise do comportamento têm indicado que a espontâneas convulsões recorrentes são observadas um mês após uma única injeção de12,13. Uma única injeção de uma dose convulsiva de PTZ também induz convulsão aguda. No entanto, crônicas espontâneas convulsões após uma única injeção de PTZ são difíceis de promover. Administração crônica de PTZ é necessária para induzir convulsões repetitivas14. Em ambos os métodos, a geração de convulsões repetitivas é capaz de induzir a uma patologia mais semelhante da epilepsia humana do que a geração de crises agudas. No caso de PTZ, cada injeção evoca uma convulsão, e severidade de apreensão torna-se mais grave, de forma gradual, com cada injeção. Finalmente, uma única injeção de baixa dose PTZ induz uma severa convulsão tônico-clônica. Nesta fase, cada injeção evoca convulsões graves. Além disso, a duração e a latência de apreensão também mudam ao longo das injeções. A latência de convulsão tônico muitas vezes torna-se mais curta na última fase de acender15. Além disso, agravamento de convulsão é acompanhado por uma apreensão prolongada duração16. Investigar o mecanismo molecular que regula a gravidade do ataque, latência e duração é útil para triagem droga anti-epiléptica17,18,19.

As convulsões comumente são induzidas por uma única administração sistémica de PTZ, e a recuperação é muito rápida, dentro de 30 min4,5. Assim, o número de apreensões é mais controlável no modelo PTZ-gravetos. No entanto, monitorização de EEG indicou que picos generalizados podem ser vistos até 12 h após apreensão mediada por PTZ20. Portanto, animais de preferência devem permanecer em observação por 24 h após a convulsão tônico ou Mioclônicas21 para análise mais precisa dos mecanismos de inflamação.

A administração de fármacos antiepiléptico, como etossuximida, valproato, fenobarbital, vigabatrina e retigabine3, antes ou após a injeção de PTZ atenua o agravamento do ataque gravidade3,22, 23. Da mesma forma, ratos do KO que falta genes envolveram na exacerbação de apreensão, tais como matriz metaloproteinase-9,24, FGF-2225 e neuritin26, foram mostrados para expor a gravidade reduzida convulsão após múltiplas injecções de PTZ. Além disso, observar alterações histopatológicas após ataques epilépticos é possível com este método. Em pacientes com epilepsia do lobo temporal, existem alterações histológicas típicas no cérebro, tais como fibra musgosa brotando de27,28, grânulo anormal neurônio migração29, astrogliosis30celular neuronal morte no hipocampo31,32e esclerose hippocampal33. Alterações semelhantes são observadas em animais modelo epiléptica. Entre os métodos disponíveis, mediada por PTZ inflamação química é um método bom, Reproduzível e baixo custo para produzir um modelo animal de epilepsia. Em um modelo SE mediada por pilocarpina, controle de crises é difícil e muitos ratos morrem ou deixam de desenvolver-SE34. Em contraste, mortalidade e gravidade de apreensão são mais controláveis no modelo de PTZ. Além disso, PTZ é menos caro do que o ácido kainic, e habilidades na cirurgia de cérebro de rato não são necessárias para a administração de drogas.

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Protocol

Todos os procedimentos experimentais foram aprovados pelo Comitê de uso de Tokyo Metropolitan Instituto de ciência médica e cuidado Animal. Pós-natal, 8 - 16 semanas os ratos são recomendados. Toda a tensão pura é aceitável para o experimento. Camundongos C57Bl/6 são mais resistentes a PTZ, Considerando que BALB/c e Swiss ratos albinos são mais sensíveis a PTZ. C57Bl/6 foram utilizados neste estudo. Vulnerabilidade de PTZ também depende da idade do rato. Em comparação aos mais jovens ratos, ratos mais velhos são mais refratários a PTZ35. O número de animais utilizados para este método pode variar, mas pelo menos 6 a 10 animais são necessários para cada condição.

1. preparação de PTZ

  1. Dissolva 2 mg/mL PTZ em estéril 0,9% NaCl (p/v). Prepare PTZ no dia do uso.

2. injeção de PTZ

  1. Execute todas as experiências entre 09:00 e 12:00 (meio dia).
  2. Medir o peso do corpo do animal.
  3. Coloque o animal em uma câmara de observação para habituação.
  4. Durante o período de habituação (3 min), calcule o volume de solução PTZ para a injeção com base no peso do corpo do animal e a dose de injeção previamente determinada.
    Nota: por exemplo, quando é usada a 35mg/kg PTZ, 0,875 mg de PTZ é necessário para um rato pesando 25g (35 mg / kg x 0,025 kg = 0.875 mg). Portanto, deve ser injetada 437.5 μL de uma solução PTZ de 2 mg/mL (0.875 mg/2 mg / mL = 0,4375 mL). A dose de injeção de PTZ depende do genótipo do rato e tensão. Para camundongos C57BL/6 de tipo selvagem, recomenda-se uma dose de 30-35 mg PTZ/kg de peso corporal para o primeiro julgamento. Sensibilidade-PTZ depende o rato estirpes utilizadas36,37. A dose de injeção varia de acordo com a finalidade do experimento.
  5. Injete PTZ intraperitonealmente com uma seringa de 1 mL, conectada a uma agulha de calibre 27 ao quadrante esquerdo ou direito do abdômen do animal. Evite a injectar na linha.
    1. Evite injeções repetidas na mesma posição.
  6. Observar comportamentos animais por 30 min após a administração de PTZ (figura 1A) e classificar e marcar o comportamento anormal, como mostrado abaixo. Se possível, manter os animais em observação por 24 h, ou pelo menos uma injeção de pós adicionais 6-10 h, especialmente quando o escore de severidade de apreensão atinge 3 ou acima.
    1. Observe quaisquer apreensões suaves ou mudanças comportamentais nos animais para além do período de observação de 30 min. Esta prolongada observação período pode dirigir um efeito particularmente importante e completo de um subconvulsive dose de PTZ na geração de crônicas não provocadas convulsões em epilepsia.
    2. Além disso, medida a duração de apreensão de cada apreensão observada como alterações na duração da convulsão referem-se a gravidade do ataque. Além disso, a latência para a primeira convulsão após a injeção de PTZ é outra medida importante para coletar. A latência, duração e frequência de apreensão de monitoramento é fundamental para qualquer estudos moleculares após um ataque.
  7. Injete PTZ cada outro dia (figura 1A). O número de injeções varia de acordo com o objetivo do experimento. Estes são exemplos representativos.
    1. Para gerar animais completamente acendeu, uma vez que um animal experimenta um ataque com uma pontuação de 5 (tónico-clónica), termine a injeção nas três administrações adicionais. Neste caso, aumente a dose de injeção se o escore de apreensão não aumenta para três administrações consecutivas. Cada animal pode receber um número diferente e dose de injecções de PTZ.
    2. Fixa o número e a dose de injeção de PTZ em todas as condições para avaliar a vulnerabilidade de PTZ, incluindo avaliações de antidrogas epilepsia e estudos do fenótipo de camundongos geneticamente modificados. Dar a todos os animais o mesmo número de injeções de PTZ; recomenda-se um total de 8 a 12 injeções. Se um animal morre, a pontuação de ataque deve ser classificada com 6.
    3. Determinar a dose de injeção necessária para manter uma convulsão de alta pontuação (4 ou 5) para 10 ou mais injeções estudar as alterações histopatológicas que ocorrem ataques epilépticos. Neste caso, o número total de injeção deve variar de 25 a 30. Diminua a dose da injeção, se a pontuação de ataque atinge 5. Se a pontuação de ataque diminui para 3 ou mais baixo, aumente a dose de injeção.

3. apreensão Pontuação

  1. Observar os comportamentos animais e gravar os resultados.
    1. Classificar e marcar os comportamentos epilépticos como segue38,39 (figura 1B):
      0: comportamento normal, nenhuma anormalidade.
      1: imobilização, deitado de barriga.
      2: cabeça acenando, facial, membro anterior ou membro posterior mioclonia.
      3: mioclonia contínua de todo o corpo, Mioclônicas empurrões, rabo preso rigidamente.
      4: criação, tônico apreensão, caindo de lado.
      5: tônico-clônica, caindo nas suas costas, selvagem, correndo e pulando.
      6: morte.
  2. Altere os critérios comportamentais com base na Racine Pontuação40, dependendo das condições experimentais.

4. após um ataque análise

  1. Análise de Immunohistopathological
    1. Fixação de perfusão
      1. Preparação
        1. Dissolva o paraformaldeído 4% (p/v) (PFA) em tampão de fosfato 0,1 M (pH 7,4). Aquece a solução a cerca de 70 ° C com a adição de uma gota de 1 M de NaOH (aproximadamente 1 µ l de 1 M NaOH para 50 mL de solução de PFA).
        2. Preparar o gelado 4% PFA e tampão fosfato salino (PBS).
        3. Configure uma bomba peristáltica, com um tubo e agulha. Execute cerca de 20 mL de água através do tubo para limpar resíduos. Em seguida, coloque a extremidade aberta do tubo em PBS gelado.
      2. Transcardial perfusão e preparação do cérebro fixa
        1. Anestesia profundamente o mouse com etanol a 50% isoflurane/50% em um pequeno pote.
        2. Mantenha o mouse na posição supina fixando as pontas de suas patas dianteiras e os membros traseiros.
        3. Corte da linha mediana ventral do abdômen e expor o diafragma.
        4. Corte o diafragma ao longo da margem costal. Em seguida, corte ambas as partes laterais das costelas e corpo. Beliscar o processo xifoide pela pinça de bloqueio e evert a caixa torácica. Manter a posição do processo xifoide, fixando-o com uma agulha ou Beliscá-lo com pinça. Expor o coração.
        5. Insira a agulha no ventrículo esquerdo e fazer um corte no átrio direito com uma tesoura. Estar ciente para não empurrar a agulha longe demais para o coração, como ele pode furar uma parede interior.
        6. Iniciar um fluxo constante de PBS gelado através da agulha para lavar o sangue (aproximadamente 15-20 mL/min).
        7. Quando o sangue foi limpo do corpo, mova o tubo para uma solução de paraformaldeído 4% (cerca de 60 mL) sem a adição de bolhas. Em seguida, pare a perfusão.
        8. Cortar o pescoço traseiro e espinha e retire a pele da cabeça e a parte dorsal do crânio com tesoura de dissecação.
        9. Corte o osso pré-maxilar entre as órbitas oculares e remover completamente a porção dorsal do crânio.
        10. Criar um fosso entre o cérebro e o osso jugal do lado posterior e cortar os nervos trigêmeo e quiasma óptico em baixo do cérebro. Retire o cérebro cuidadosamente e colocá-lo em um frasco contendo 4% PFA. Fixe o cérebro a 4 ° C, durante 12-16 h.
    2. Preparação de fatia do cérebro
      1. Transferi o cérebro fixo de 20% sacarose/PBS até o cérebro afunda-se na solução para permitir a cryoprotection.
      2. Corte o cérebro fixo baseado na fatia necessária orientação e uma parte necessária do cérebro.
      3. Defina o cryomicrotome. Coloque a lâmina na posição e manter a fase de micrótomo em uma temperatura abaixo dos-20 ° C.
      4. Coloque o cérebro pré-cortados no palco e revestir o cérebro com 20% de sacarose/PBS. A solução de sacarose/PBS gradualmente irá congelar, cobrindo o cérebro no palco, até que o cérebro está completamente incorporado no congelado 20% sacarose/PBS.
      5. Corte o cérebro (30 µm de espessura) deslizando a lâmina através do tecido. Transfira as fatias em PBS e mantê-los em 4 ° C.
    3. Imuno-histoquímica fluorescente
      1. Lave as fatias necessárias em 0,1% Triton X-100/PBS (PBST) durante 10 minutos, 3 vezes a temperatura ambiente (RT).
      2. Bloquear as fatias incubando-os em PBST com 2% cabra soro ou 5% albumina de soro bovino (BSA) para 1-2 h em RT
      3. Incubar as fatias em uma solução de anticorpos com a concentração adequada de anticorpo primário em PBST com 2% cabra soro ou 5% BSA para pernoites de 1 a 7 a 4 ° C.
      4. Lave as fatias em PBST durante 10 minutos, 3 vezes a RT
      5. Incube as fatias em uma solução de anticorpo secundário com a concentração adequada de anticorpo secundário em PBST por 1-2 h em RT, protegido de luz.
      6. Monte as fatias em lâminas de vidro e cubra com meio de montagem e cobertura de vidro.
      7. Observe as fatias com microscopia de fluorescência.
  2. Teste da três-câmara
    1. Preparação
      1. Preparar pelo menos 2 2 - ratos de 129/Sv 6 meses de idade do mesmo sexo como os ratos de assunto para ser o "mouse estranho." Se habituar todos os ratos na gaiola antes da análise. Para cada sessão de treino, coloque o rato na gaiola e deixar o mouse por 15 min.
      2. Antes de cada fase de habituação com o mouse do assunto, limpe todo o aparelho e as duas gaiolas por limpar a superfície com etanol a 70%.
      3. Coloque as gaiolas vazias nos aposentos de aparato 3-câmara dois lado e abra as portas entre as câmaras.
      4. Para se habituar o mouse do assunto, colocar um rato do assunto na câmara de centro e permitir o mouse para mover-se livremente em todo o aparelho até que o mouse tem investigado as duas gaiolas, além de um adicional de 5 min. animais de assunto que podem ter medo da gaiola que não investigar a gaiola por 20 min e não deve ser usado para esta análise. Esses animais evitar a gaiola e raramente perto da gaiola.
      5. Depois que o animal move-se para a câmara de centro, feche as portas e deixe o mouse mover-se livremente na câmara centro por 5 min. Durante este período, colocar um dos 129/Sv ratos em uma gaiola para se habituar a gaiola.
    2. Análise de sociabilidade
      1. Realizar esta análise imediatamente após o período de habituação do mouse assunto.
      2. Coloque a gaiola contendo um rato 129/Sv, denominado "gaiola de estranho 1", em uma das câmaras de lado e coloque a gaiola vazia, denominada "gaiola de objeto", na câmara do outro lado.
      3. Abra a porta e monitorar o comportamento do mouse assunto.
      4. Permitir que o mouse assunto mover-se livremente por 10 min e gravar os seguintes parâmetros comportamentais. Se o mouse do assunto tem medo do rato na gaiola 1 estranho, conforme indicado pelo mouse evitando a forasteiro 1 gaiola e permanecendo no canto de uma das câmaras, o animal não deve ser usado para a análise.
        a) o tempo gasto em cada câmara, a câmara 1 estranho, a câmara de objeto e câmara do centro.
        b) o tempo gasto investigando cada gaiola, a gaiola do estranho 1 e a gaiola de objeto. (O rato é classificado como a gaiola a investigar se o mouse está cheirando ou toughing o mouse ou gaiola)
        c) o número de entradas em cada câmara (opcional)
        d) total distância percorrida (opcional)
      5. Depois que o mouse se move para a câmara de centro, feche as portas.
    3. Análise social novidade
      1. Realizar esta análise imediatamente após a análise da sociabilidade.
      2. Limpe as duas gaiolas com etanol a 70%.
      3. Coloque outro rato 129/Sv em uma das gaiolas, denominadas "Gaiola de estranho 2" e gaiola de lugar a 2 de estranho em uma das câmaras. Coloque o mouse estranho 1 na outra gaiola, denominada "gaiola estranho 1" e coloque a gaiola 1 estranho na outra câmara.
      4. Abra a porta e monitorar o comportamento do mouse assunto.
      5. Permitir que o mouse do assunto se mover livremente por 10 min e medir os mesmos parâmetros comportamentais descritos para a análise de sociabilidade.
        Nota: O mouse estranho 1 e 2 de estranho deve ser escolhido aleatoriamente. A câmara de estranho 1 e câmara de objeto, bem como o estranho 1 câmara e câmara estranho 2 devem ser determinados aleatoriamente.
  3. Discriminação do medo contextual
    1. Condicionado
      1. Antes de cada tentativa de condicionamento, limpe o aparato experimental por limpar a superfície com etanol a 70%.
      2. Coloque um rato em um aparelho de condicionamento com condições específicas (forma de aparelho, cor da parede, material do piso, odor, iluminação e volume do ruído de fundo devem ser pre-determinadas). Por exemplo, o aparelho de condicionamento utilizado aqui foi um aparato quadrado com paredes claras do plexiglás, um piso de grade metálica, um odor de etanol, brilho de 100 lux e ruído de 65 dB de fundo branco.
      3. Condicionar o mouse pelo pé-choque com sincronismo pseudo-aleatório de choques elétricos de 0.1-mA por 2 s x 3 vezes ao longo de 5 min.
      4. Retorne o rato da gaiola para casa após condicionamento.
    2. Avaliação de memória
      1. Antes de cada avaliação, limpe o aparato experimental por limpar a superfície com etanol a 70%.
      2. No dia seguinte seguir condicionado, posicione o mouse no interior do aparelho mesmo como condição de choque e medir o tempo de congelação ao longo de 5 min.
      3. Mais tarde no mesmo dia, coloque o mouse em um novo aparelho e medir o tempo de congelação durante uma avaliação de 5 min. Um aparelho triangular com paredes brancas do plexiglás, assoalho da placa, sem odor, brilho de 30 lux e ruído de 70 dB branco foi usado aqui.
      4. Compare o tempo de congelação entre a mesma condição e a condição de romance. Os ratos com uma capacidade de memória normal congelará mais nas mesmas condições do que na condição de romance. O congelamento é definida imobilidade do animal para mais de 2 s.

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Representative Results

Injeção repetitiva de PTZ induz um aumento na severidade de apreensão. Seis camundongos C57BL/6 foram tratados com PTZ, e outro de 6 ratos foram tratados com soro fisiológico como um grupo de controle. A dose PTZ foi 35 mg/kg e 10 injeções foram administradas. A pontuação de ataque aumentado gradualmente com injeções de PTZ, Considerando que sem convulsões ou comportamentos anormais foram evocados por injeções de solução Salinas (Figura 2). ANOVA seguida pelo teste de Bonferroni mostrou diferença significativa entre o grupo de PTZ-tratados e o grupo tratados com solução salina.

Convulsão repetitiva promove formação aberrante ramo axonal (brotação de fibra musgosa) e migração anormal de células grânulo no hipocampo. Os ratos foram tratados com PTZ para 25 injeções (dose foi ajustado entre 24 mg/kg e 35 mg/kg, para manter a convulsão grave em camundongos sem induzir a morte causada por um ataque grave). O cérebro de rato foram fixado 3 semanas após a última injecção. Cérebros de controle foram corrigidos antes de injeções de PTZ. Fatias do cérebro foram immunostained com anti-synaptoporin (x 500) e anticorpos anti-ZnT3 (x 500) para observar o surgimento de fibra musgosa (Figura 3A) e com o anticorpo anti-doublecortin (x 200) para observar a migração anormal de células grânulo ( Figura 3A). Fibra musgosa brotando na camada de célula grânulo foi observada em fatias PTZ-tratada (Figura 3A). Células grânulo recem-nascido, que são imunorreativas para doublecortin, observaram-se dentro do hilo em fatias os PTZ-tratada (Figura 3A). A camada de células grânulo e Hilo, mostrado na Figura 3A é ilustrada na Figura 3B.

Convulsões repetitivas também afectar o comportamento normal de ratos. Doze camundongos C57BL/6 foram tratados com PTZ (35 mg/kg, 10 injeções), e outro 12 ratos foram tratados com soro fisiológico como um grupo de controle. Duas semanas após a última injecção, os ratos foram analisados em um teste de 3-câmara (Figura 4A) e o teste de discriminação de medo contextual (Figura 5A). Ratos tratados com PTZ mostraram sociabilidade normal (Figura 4B). Ratos passaram mais tempo na câmara 1 estranho que no objeto de câmara (salina: p = 0,003, PTZ: p = 0,027) e investigou a forasteiro 1 gaiola mais do que eles investigaram a gaiola de objeto (salina: p = 0,009, PTZ: p = 0,004). No entanto, ratos tratados com PTZ mostraram a novidade social anormal (Figura 4) indicativo de memória social prejudicada. Controle de ratos passava mais tempo na câmara 2 estranho no 1 estranho câmara e investigou a gaiola 2 estranho mais do que eles investigaram a gaiola 1 estranho, Considerando que os ratos acendeu não mostrou qualquer diferença significativa no tempo gasto nas câmaras ou tempo gasto investigando as gaiolas (tempo na câmara: salina: p = 0,006, PTZ: p = 0,126. Tempo a investigar: salina: p = 0,002, PTZ: p = 0,426). Ratos tratados com PTZ também mostraram memória prejudicada no teste de medo contextual (Figura 5B). Controlar os ratos mostraram um tempo de congelamento na condição de choque do que na condição de romance, Considerando que os ratos tratados com PTZ não mostrou qualquer diferença significativa no tempo de congelação (salina: p < 0,001, PTZ: p = 0,060). Realizaram-se testes t não pareados para análises estatísticas.

Figure 1
Figura 1: breve descrição do protocolo. (A) ilustração esquemática da inflamação mediada por PTZ. (B) ilustrações de comportamentos animais representativos para os escores de apreensão respectivos. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 2
Figura 2: avaliação do comportamento convulsivo. O golo de apreensão média é indicados no gráfico. Seis ratos foram utilizados em cada Estado, e realizou-se uma série de injeções. Após cada injeção, as pontuações de apreensão foram monitoradas e marcou. Em comparação com injeções de solução Salinas, injeções de PTZ aumentaram significativamente gravidade de apreensão (p < 0,001: ANOVA de medidas repetidas). Cada Pontuação de convulsão é mostrada como a média ± SEM. clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 3
Figura 3: fibra musgosa mediada por PTZ germinação e anormal a migração de células grânulo. (A) máximo projetou imagens de imuno-histoquímica do hilo, camada granulosa e camada molecular de fatias hippocampal dos ratos antes de acender (à esquerda) e depois acender (à direita). Anti-synaptoporin (topo) e anticorpos anti-ZnT3 (médio) foram usados para visualizar os axônios de neurônios do grânulo (fibras musgosas). O anticorpo anti-doublecortin foi usado para visualizar os neurônios recém-nascidos grânulo (parte inferior). Mediada por PTZ convulsões repetitivas induzem fibra musgosa brotando (setas) e migração anormal de células grânulo para o Hilo (setas). Barra de escala, 50 μm. A posição aproximada de cada imagem é indicada em (B). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 4
Figura 4: comportamento social anormal mediada por PTZ. (A) ilustração esquemática do teste 3-câmara. (B) a quantidade média de tempo gasto em cada câmara e a quantidade média de tempo gasto investigando cada gaiola no teste de sociabilidade são mostrados. (C) a quantidade média de tempo gasto em cada câmara e a quantidade média de tempo gasto investigando cada gaiola no teste de novidade social são mostrados. Havia doze ratos em ambos os grupos PTZ e solução salina-tratados. Mediada por PTZ convulsões induzidas pelo comportamento social anormal (* * * p < 0,001, n.s. = não significativo). Todos os momentos são mostrados como a média ± SEM. clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 5
Figura 5: deficiência de memória mediada por PTZ. (A) ilustração esquemática do teste de discriminação de medo contextual. (B) a percentagem média de tempo de congelação em cada condição são mostrados. Havia doze ratos em ambos os grupos PTZ e solução salina-tratados. O gráfico mostra a média ± SEM. clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

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Discussion

Aqui, apresentamos um protocolo amplamente acessível para o estabelecimento de um modelo animal farmacológico de epilepsia. Mediada por PTZ inflamação química tem uma longa história e é um modelo comumente aceitado para o estudo da patologia celular e histopatologia de epilepsia41. O modelo de inflamação química da epilepsia tem sido avaliado anteriormente por Suzdak e Jansen, 199542. Indução de convulsão farmacológica, especialmente com PTZ, é um método fácil e simples para evocando convulsões graves. Alterações na dose injeção correlacionam com a severidade do ataque. Assim, é muito fácil identificar a dose adequada ao longo de vários ensaios alterar a dose PTZ e examinando o comportamento resultante.

Muitos pesquisadores têm tentado criar nocaute ou bater-em ratos como modelos de epilepsia e ter conseguido produzir ratos que apresentam convulsões espontâneas43,44. No entanto, indução farmacológica apreensão ainda é considerada um bom modelo para a epilepsia. Um outro método comum para indução de convulsão, além de modificação genética envolve implantar eletrodos no cérebro do animal e indução de convulsões mediada por eletrochoque. Este método é caro e difícil e exige habilidade cirúrgica para implante do eletrodo no locus preciso no cérebro5.

Química indução de convulsões permite a rápida investigação de epileptogenesis e droga anti-epiléptica triagem no baixo custo2,4. A frequência e gravidade das convulsões espontâneas e SE variam dependendo da droga utilizada. Pilocarpina e ácido Kainic são usados principalmente para provocar-SE e as convulsões espontâneas ou recorrente crônica subsequente45,46,47. Por outro lado, PTZ é usada tanto para promover SE quando administrado em uma dose alta e desenvolver quimicamente acendeu animais quando administrado em uma dose subconvulsive48,49. Além disso, os mecanismos de drogas convulsivas que induzem convulsões são bem conhecidos. Assim, bloquear o mecanismo necessário para induzir a apreensão pode ajudar a identificar a droga anti-epiléptica. Por outro lado, os modelos genéticos são obrigados a investigar os mecanismos que evocam epilépticas50. Depois que os mecanismos pelos quais são induzidas convulsões são elucidados, o rastreio da droga anti-epiléptica pode ser iniciado.

Nos resultados do representante mostrados aqui, comportamento animal foi observado por 30 min após a administração de PTZ. No entanto, como mencionado na seção de protocolo, comportamento animal é de preferência observado por 24h ou pelo menos de 6-10 h após a injeção de PTZ, especialmente quando o ataque marcar atinge 3 ou superior. Apesar de um animal, sistema de monitoramento pode ser necessário para observar o animal durante todo o dia, uma observação prolongada é fundamental para a obtenção de uma compreensão profunda da epilepsia. Além disso, a duração da convulsão e latência de apreensão são medidas úteis para recolher. Estas medidas são importantes quando relacionados alterações na latência e duração de apreensão com gravidade tempo e apreensão.

A histopatologia após um ataque de animais quimicamente acendeu foi investigada, especialmente no hipocampo. Convulsões repetitivas ou SE induzir fibra musgosa brotando de27,28, migração anormal do grânulo recém-nascido neurônios25,29, astrogliosis no hipocampo30e apoptose de neurônios piramidais 31 , 32. essas alterações histológicas no cérebro interrompem funções neurológicas em pacientes epilépticos. Por exemplo, a associação da epilepsia com transtornos do espectro do autismo (ASD) e deficiência intelectual (ID) é bem reconhecida51,52,53. Se ataques epilépticos induzem ASD e ID ou ASD e ID induzir sintomas epilépticos ainda é uma pergunta complicada. Estudos recentes têm mostrado que convulsões mediada por PTZ induzem deficiências social-cognitivo de ASD como54 e aprendizagem défices 55,56,57, como ID. Estes resultados indicam que a histopatologia mediada por epilepsia provoca a disfunção neuronal e transtornos psiquiátricos.

As alterações histológicas promovidas pela epilepsia demorar a desenvolver após a indução de convulsões. A este respeito, indução farmacológica apreensão é vantajosa porque os pesquisadores podem controlar o tempo, o número e a gravidade das convulsões em animais. Incluindo inflamação química, modelos animais de epileptogenesis vão continuar a promover a investigação de ambos o mecanismo de indução de epilepsia e distúrbios neurofisiológicos relacionados.

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Disclosures

Os autores declaram não há conflitos de interesse.

Acknowledgments

Este trabalho foi parcialmente financiado por números de concessão JSPS KAKENHI 24700349, 24659093, 25293239, JP18H02536 e 17 K 07086, números de concessão MEXT KAKENHI 25110737 e 23110525, AMED Grant número JP18ek0109311 e o SENSHIN Medical Research Foundation e o Japão Fundação de pesquisa da epilepsia.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Pentylenetetrazole Sigma-Aldrich P6500
Sodium chloride MANAC 7647-14-5
Mouse CLEA Japan C57Bl/6NJcl, postnatal 8 week, male
Syringe (1mL) Terumo SS-01T
Needle(27G x 3/4") (0.40 x 19 mm) Terumo NN-2719S
Weighing scale Mettler PE2000 This item is a discontinued product. Almost equivalent to FX-2000i with FXi-12-JA from A&D company.
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Sodium hydroxide nacalai tesque 31511-05
Peristatic pump ATTO SJ1211
Sucrose nacalai tesque 30404-45
Microtome Yamato REM-700 This item is a discontinued product. Almost equivalent to REM-710
Microtome blade Feather S35
Triton X-100 Sigma-Aldrich X-100
anti-synaptoporin antibody Synaptic systems 102 002
anti-ZnT3 antibody Synaptic systems 197 002
anti-doublecortin Santa Cruz sc-8066 This item is a discontinued product. We did not test equivalent product (sc-271390).
Contextual fear discrimination test apparatus O'hara
Three chamber test apparatus Muromachi

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Shimada, T., Yamagata, K. Pentylenetetrazole-Induced Kindling Mouse Model. J. Vis. Exp. (136), e56573, doi:10.3791/56573 (2018).

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