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Medicine

절연 및 성인 쥐 Cardiomyocytes의 재배

Published: October 19, 2017 doi: 10.3791/56634

Summary

여기, 우리는 분리와 성인 쥐 심 실 cardiomyocytes (ARVC)의 재배에 대 한 프로토콜을 제시. 단기 및 장기 재배에 대 한 고립 된 ARVC는 사용할 수 있습니다. 분리와 ARVC의 재배는 심장 질환에 대 한 새로운 치료 regimens 개발에 중요 한 역할을 재생할 수 있습니다.

Abstract

그대로 마음에 인접 한 셀 성인 cardiomyocytes 영향. 격리의 방법 및 성인 cardiomyocytes의 경작, 및 특정 환경에서 이러한 셀의 동작의 정확한 조사 가능 하다. 이 원고는 성공적인 격리와 성인 쥐 심 실 cardiomyocytes (ARVC)의 재배에 대 한 프로토콜을 제공합니다.

쥐 자 궁 경부 전위 깊은 마 취에 의해 희생 이다. 그런 다음 심장 추출 되 고 대동맥 적용 되지 않습니다. 그 후, 관류 칼슘 소모와 콜라 치료 Langendorff 관류 시스템에서 수행 됩니다. 나중에, 심 실 조직 되 면 다진, 다시 유통, 필터링, 생리 적인 칼슘 농도 도달할 때까지 점진적 추가 CaCl2 3 원심 분리 단계 뒤. ARVC 셀 문화 요리에 도금 된다. 세포 배양 후, ARVC 수 재배 최대 6 일 동안 혈 청에 포함 된 문화 매체를 변경 하지 않고. ARVC의 격리 칼슘 민감한 과정 이다입니다. 세포내 칼슘 농도 있는 작은 변화 일으킬 품질 및 고립 된 세포의 생존 능력에 있는 감소.

갓 절연 ARVC 막대 모양입니다. 재배의 첫 번째 일 이내 그들은 손실 막대 모양의 형태와 양식 pseudopodia 같은 구조 (확산). 이 형태 형성 동안 ARVC는 처음 이어서 걸 스트레스 섬유와 드 노 보 sarcomerogenesis 통해 개혁 그들의 수축 성 요소 저하. 재배의 1 주일 후 대부분 ARVC 명확 하 게 감지 크로스 줄무늬와 광범위 한 모습을 보여줍니다. 이 과정은 ionomycin와 치료 약하게 확산으로 세포내 칼슘 농도에 민감 하다. 이 과정을의 드-하 고 다시-differentiation 키 표식은 β myosin 무 겁 사슬 (β-MHC), oncostatin M (OSM), 및 swiprosin-1 (EFHD2) 있습니다. 최근 연구는 심장 개장 동안 기능 본 vivo에서 모방 심장 다시 de differentiation 발생 문화 조건 하에서 제안 했다. 따라서, 절연 및 ARVC의 재배 cardiomyocytes의 생물학 이해에 중요 한 역할을 재생 합니다.

Introduction

Vivo에서 성인 cardiomyocytes는 전기 syncytium myocytes 사이 셀 연락처를 기반으로 작동 합니다. 또한, 그들은 심장 섬유 아 세포, 내 피 세포, 신경 세포, 염증 세포1같은 인접 한 세포에 의해 영향을 받습니다. 초기 단계를 선도 하 고 심장 마비, 분리와 성인 심 실 쥐의 심장 비 대, 동안 본 부하 조건 변경 cardiomyocytes의 능력을 그들의 세포내 조직 적응을 공부 하기 위하여 cardiomyocytes (ARVC)는 필요한2,,34. 역사적으로, cardiomyocytes가 했다 미 발달 병아리 마음5,6에서 격리 된 처음. 몇 년 후, 말기 차별화 cardiomyocytes의 첫 번째 절연 칼슘 고갈7을 사용 하 여 설명 했다. 그러나, 이러한 성인 cardiomyocytes 칼슘 허용 되었고 따라서 하지 사용 될 수 있는 기능 분석 실험. 마지막으로, 1976 년에 새로운 프로토콜 활성화 파월과 트위스트 생리 조건8에서 성인 심 실 cardiomyocytes 조사. 첫 번째 단계로 서, 그들은 낮은 칼슘 농도 및 생리 적인 농도 단계적 절차에서 그 후 증가 칼슘 성인 cardiomyocytes 고립. 오늘, 분리와 성인 cardiomyocytes의 재배에 대 한 대부분의 프로토콜이 칼슘 프로토콜을 사용 하 고 조밀한 셀 연락처1의 효소 소화에 콜라를 사용 합니다.

성공적인 재배 송아지 태아 혈 청 (FCS) 또는 oncostatin M (OSM)가 필요 합니다. ARVC 수행는 데-그리고 다시-differentiation sarcomere 해체와 개혁9,10,,1112를 포함 하 여 광범위 한 구조 변경 합니다. Β-myosin 무거운 체인 (β-MHC) 처럼 태아 형 유전자의 재 식이이 과정 동반 비, 및 pseudopodia 같은 구조, 퍼지는4,11, 이라고의 형성에서 알려진 13. swiprosin-1 (EFHD2), 새로 확인된 된 단백질 재배 ARVC11의 재 분화는 주요 역할을 수행 하는 또한. 그 결과, ARVC 문화에 광범위 하 게, 다형성 셀 문화2,4,14에서 2 ~ 3 주 후 저절로 수축을 표시 하는 변환.

최근의 발견을 심장 다시 de differentiation 모방 문화 조건 하에서 발생 하는 대로 본 기능 vivo에서 심장 개장10,15동안 밝혀졌다. 개장 하는 심장 심장 질환16동안 핵심 과정 이다. 심장 질환은 여전히 산업화 사회에서 죽음의 주요 원인, 성인 cardiomyocytes의 생물학의 더 나은 이해 중요 하다 (누가, 2015). 절연 및 ARVC의 새로운 전략 및 심장 질환의 치료에 대 한 의약품 개발을 도울 수 있다. 이 원고와 분리와 ARVC의 재배에 대 한 프로토콜을 제공 합니다. 또한,이 방법의 몇 가지 중요 한 부분 토론 섹션에서 강조 표시 됩니다.

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Protocol

조사 관리 및 사용의 실험실 동물은 미국 국립 보건원 (NIH 간행물 번호 85-23, 개정 1996)에 의해 출판에 대 한 가이드에 따라 실시 됩니다. 일반적으로, 남성 wistar 쥐 3 ~ 4 개월을 세 고 250-350 g의 평균 무게와 더불어이 프로토콜에 대 한 사용 됩니다. 한 쥐 마음은 20 문화 요리에 대 한 충분 한 (접시 당 1 mL; 내부 직경: 35mm) 10 4 셀/1000 m m 2 x 1.5의 대략적인 셀 밀도와.

1. 미디어의 준비 및 시 약

  1. Creatine-carnitine-황소자리 매체 (CCT 매체)
    참고: CCT 매체는 매체 199 creatine, carnitine, 그리고 황소자리의 추가 따라 복잡 한 매체 이다.
      매체 199의
    1. 준비 1 L: 3.6 g Hepes, 1 시간에 대 한 믹스에 추가. 다음 655.5 mg creatine (5mm), 395.4 mg carnitine (2mm), 625.5 mg 황소자리 (5 m m)를 추가 합니다. Carnitine와 황소자리에 pH를 변경 < 7. 어떤 오염 셀, 예를 들면 내 피 세포 또는 섬유 아 세포의 성장을 억제 하기 위해 매체에 10 µ M 시 토 신 β-D-arabinofuranoside를 추가 합니다. 7.4 및 살 균 필터 매체를 NaOH (2 mM)와 pH를 조정 합니다. CCT 매체 저장 4 ° c.
  2. 파월 매체
    1. 1 L 파월 매체에 대 한 해산 6.43 g NaCl (110mm) 0.19 g KCl (2.5 m m), 0.16 g KH 24 (1.2 m m), 0.3 g MgSO 4 7 H 2 O (1.2 m m), 5.96 g Hepes (25 m m), 그리고 1.98 g (+ D )-아쿠아 살 균에서 포도 당 monohydrate (10 mM). 7.4 및 살 균 필터 매체를 NaOH (2 M)와 pH를 조정 합니다. 스토어 파월 매체 4 ° c.
  3. 칼슘 염화 물 (CaCl 2)
    1. 100mm CaCl 2 솔루션 (50 mL)을 준비 하 고 포함 된 500 µ L CaCl 2 aliquots를 준비. Aliquots-20에서 동결 ° c.
  4. 문화 매체의 준비
    1. 준비 3 셀 문화 매체: 매체, 도금 매체, 및 세척 매체 중 도금. CCT 매체를 사용 하 여 모든 3 개의 매체 (표 1)에 대 한 기준으로. CCT 매체 문화 접시 당 1 mL로 계산 합니다. 따라서, 20 문화 요리 20 mL CCT 매체를 준비 (내부 직경: 35mm).
    2. 셀 문화 접시: 각 셀 문화 플레이트 코트 (내부 직경: 35mm) 사전 도금 매체 1 mL와 함께. 사용 하기 전에 적어도 2 시간 또는 하룻밤 37 ° C에서 코팅된 판 저장.

2. 성인 Cardiomyocytes의 절연

  1. Langendorff 준비 관류 시스템
    1. 열 도금 매체 및 세척 매체 37 ° C. Defreeze 500 µ L CaCl 2의 튜브와 콜라의 25 mg에 무게.
    2. 플러시 Langendorff 관류 시스템과 아쿠아 살 균, 이후에 파월 중간 5 분에 대 한 시스템을 순환 하 게
    3. Langendorff 관류 시스템을 80 mL 파월 매체 채울 없이 어떤 공기 거품 및 가스 95% 산소 매체.
    4. 40 mL 파월 매체와 튜브 (50 mL)를 준비 하 고, 37 ° C에가 열 하 고 95% 산소 가스.
    5. 길이 약 25 ㎝의 스레드는 정 맥을 제거 마음을 연결에 대 한 준비.
    6. Degrease 면도날 알코올 (볼륨 70%) 하 고 헬기에 그것을 건다. 헬기에 플라스틱 디스크 클램프.
  2. 심장의 추출
    1. 4% ~ 5 %isoflurane 남성 wistar 쥐를 Anesthetize 하 고 자 궁 경부 전위와 희생. 늑 골 아치 뒤에 복 부는 복 부 전단으로 열고, 흉 강 여 다이어 프 램을 통해 잘라가 위의 동일한 쌍.
    2. 흉 강에 매우 두개골 thymus 위에서 절단 하 여 폐와 흉 선, 심 혼을 제거합니다. 얼음 처럼 차가운 소금물에 자료를 즉시 전송.
    3. 해 시저 (대형)와 심장에서 폐와 흉 선 제거 및 캡슐 집게와 자료를 편집증으로 전송 후자 새로운 염.
  3. 격리
    1. 캡슐 집게 해 시저 (크거나 작은)을 사용 하 여 심장에서 thymus, 기관, 지방, 결합 조직의 잔류물 처럼 과잉 조직을 제거. 대동맥을 폭로 하 고 첫 번째 및 두 번째 아가미 arch. 사이 해 시저 (크거나 작은)와 그것을 끊다
    2. 는 Langendorff 관류 시스템의 떨어지는 시작. Langendorff 관류 시스템의 정에 마음을 놓고 먼저 준비 스레드 나중 악어 클램프와 그것을 흥분 시키는. 그것은 혈액의 무료 때까지 마음을 린스.
    3. 25mg 콜라 5-6 mL 따뜻한 파월 매체에 녹이 고 12.5 µ L CaCl 2 (30 µ M).
    4. 는 떨어지는 마음 위에 Langendorff 관류 시스템과 연결 되어 유리 깔때기를 이동 하 여 순환 닫고 관류 시스템 해결된 콜라를 추가 합니다. 초당 1 방울의 드롭 속도 25 분 동안 관류 시작.
      참고: 관류, 하는 동안 심장 팽창 되며 밀랍 모양의 얻을.
    5. 25 분 후 관류를 중지 하 고 마음 Langendorff 관류 시스템에서 제거. 심장에서 대동맥, 심 방, 및 결합 조직 제거 하 고 오른쪽과 왼쪽 심 열.
    6. 잘라 두 번 90 °의 각도에서 심장 (절단 폭: 0.7 m m, 속도: 0.15 cm/s). 10 두 scalpels와 수동으로이 과정을 반복 s 각 면.
    7. 새 튜브 (50 mL)에 관류 매체의 12 mL를 전송합니다. 37 또 다른 5 분 동안이 매체 및 다이제스트 셀에 셀 슬러리를 붓고 ° C. 믹스 솔루션 매분마다.
    8. 새 튜브 (50 mL)에 나일론 메쉬 (200 µ m)를 통해 소화 마음으로 솔루션 필터.
    9. 원심 29 x g 3 분 삭제에 필터링된 솔루션은 상쾌한 고 12.5 µ L CaCl 2 (250 µ M) 셀 펠 릿을 포함 하 여 6 mL 따뜻한 파월 매체를 추가 합니다. 부드러운 진동 운동을 통해 펠 릿 resuspend 다시 2 분 삭제는 상쾌한 29 x g에서 원심을 6 mL 따뜻한 파월 매체 대체 25 µ L CaCl 2 (500 µ M)를 추가 합니다. 부드러운 진동 운동을 통해 셀 펠 릿을 녹이 고 12 mL 따뜻한 파월 중간 포함 120 µ L CaCl 2 (1 mM) 추가. 1 분 16 x g에서 3 시간 동안 원심 분리기. 다시는 상쾌한 제거.
    10. 미리 따뜻하게 도금 매체와 셀 펠 릿 혼합.
    11. 배양 배지에서 사전 도금 매체를 제거합니다. 전송 매체, 절연된 cardiomyocytes 각 문화 접시를 포함 하 여 도금 1 mL. 1 헤 37 ° C에서 신선한 절연된 cardiomyocytes 품 어
    12. 배양 배지에서 도금 매체를 제거합니다. 각 문화 접시를 세척 1 mL를 추가 하 고 매체를 변경 하지 않고 6 일 37 ° C에서 접시를 저장.
    13. 다른 화학 물질과 ARVC에 치료의 영향 조사, 먼저 매체를 세척 하 고 그 후 다른 화학 물질을 추가 하 여 도금 매체를 새로.
      참고: 가벼운 현미경 검사 법 평가: 각 셀 준비, 150 ~ 300 cardiomyocytes 모니터링 해야 하루 가벼운 현미경 검사 법에 의해. 모든 계산된 cardiomyocytes 그들의 모양에 따라 그룹으로 세분화 (예를 들어, " 막대 모양 ", " 다운 라운드 ", " 확산 ", 및 " 특이 한 모양을 "). 카테고리 " 확산 " pseudopodia와 같은 구조를 가진 모든 cardiomyocytes 포함. " 특별 한 모양을 "는 불규칙 한 표면 가진 모든 ARVC 및 없음 감지 그대로 세포 막.

3. 예를 들어 실험

    1. 분석 형태학 및 구조 변환 ARVC의 공초점 레이저 현미경 검사 법에 의해 재배 중 형광/면역 형광 성인 cardiomyocytes의 얼룩. Phalloidin-TRITC를 사용 하 여 F-말라 구조 조사 " 막대 모양 ", " 다운 라운드 ", 및 " 확산 " ARVC. 제조 업체에 따라 얼룩 수행 ' s 프로토콜. Phalloidin-TRITC 얼룩에 대 한 예로 참조 Nippert 에 주어진 11. 면역 형광 형광/얼룩과 차이에 드-하 고 다시-differentiation 재배 성인 cardiomyocytes 실험적 치료 (예를 들어,와 사이에서 수축 성 기구의 Swiprosin-1, ionomycin) 조사 수.
  1. 실시간 양적 RT-PCR (qRT-PCR)
    1. 다른 유전자의 mRNA 표현에서 변화를 조사 하기 위해 qRT-PCR을 수행 (예를 들어, OSM, Swiprosin-1, β-MHC) ARVC의 재배 중. 충분 한 샘플 크기에 대 한 더 큰 문화 요리 사용 (내부 직경: 60 m m) 2 mL 볼륨. 5 문화 요리 ARVC 한 샘플을 생성합니다. MRNA의 절연 및 변환 제조 업체에 따르면 cDNA의 수행 ' s 프로토콜.
  2. Immunoblot 기법
    1. 수행 서 몰아내고 단백질 식 (예를 들어, Swiprosin-1) ARVC의 경작 동안에 변화를 조사. 샘플 당 하나의 문화 접시 (1 mL)을 사용 하 여.

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Representative Results

문화에서 성인 cardiomyocytes: 그림 1 마지막 세척 후 갓 절연된 성인 cardiomyocytes 2 h에 대 한 개요를 보여 줍니다. 모든 cardiomyocytes의 약 75%는 막대 모양의 형태를 했다. 나머지 25%는 둥근 형태와 전혀 감지 그대로 세포 막 (그림 1) 특이 한 모습을 보여주었다. 최대 재배 (6 일)의 끝에 pseudopodia 같은 구조 없이 둥근 형태에 남아 약 10% 15% 모든 cardiomyocytes의 보여주 확산, 및 모든 cardiomyocytes의 75%는 불규칙 한 표면와 없이 특이 한 모습을 제시를 감지 그대로 세포 막 (데이터 표시 되지 않음).

Figure 1
그림 1: 신선 하 게 고립 된 쥐 cardiomyocytes의 개요. 막대 모양의 형태를 보여준 갓 격리 cardiomyocytes의 일부분은 평균 cardiomyocytes의 75%에 도달 했다. 셀의 나머지 25%는 불규칙 한 표면와 아무 감지 그대로 세포 막 특이 한 모습을 제시. 녹음 갓 격리 cardiomyocytes 세척 후 가벼운 현미경 2 h에 의해 실시 됐다. 가벼운 현미경 검사 법 2 배 확대. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

가벼운 현미경 검사 법, 갓 격리 된 ARVC는 막대 모양 및 크기 (그림 2A)에서 약 100 µ m 나타났다. 갓 절연 자발적 계약 ARVC 칼슘 허용 되지 않았습니다. 라운드와 감지 그대로 세포 막 없이 모든 세포 손상 되었고 하지 가능한 (그림 2A-B). 다음 일에 ARVC 모양 막대의 대부분이이 형태를 잃었다. 셀 있어 감지 그대로 세포 막으로 반올림 됩니다. 이 ARVC 가능한 했다입니다. 하루 3 후자 셀부터 pseudopodia 같은 구조 형성. 이러한 ARVC의 일부는 그들의 둥근된 모양 (그림 2B)를 확산 하는 동안 보관. 다른 평면으로 변환 다형 ARVC (그림 2B).

Figure 2
그림 2: 절연 쥐 cardiomyocytes. (A) 갓 격리 된 ARVC은 일반적으로 막대-모양. (B) 6 일 후에 문화, pseudopodia 같은 구조 (확산) 지금 둥근된 ARVC에서 명확 하 게 감지 했다. 일부 ARVC 광범위 한 형태학을 완전히 변경. 특이 한 모양으로 ARVC 표시는 불규칙 한 표면 없음 감지 그대로 세포 막. 가벼운 현미경 10 배 확대. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

갓 절연 ARVC 일반적으로 (그림 3, 0) 명확 하 게 보이는 크로스 줄무늬 모양 막대 했다. 셀 형태학에 있는 변화는 문화에서 다음 일 동안 관찰 되었다. 첫째, ARVC는 그들의 모든 수축 성 요소 (그림 3, 일 1, 2)를 잃었다. 이 데 노 보 sarcomerogenesis 연루, 개혁에 선행 되었다. 개혁 (확산, 그림 3, 6 일 3) pseudopodia와 같은 구조의 형성에 의해 선행 되었다. 드 노 보 sarcomerogenesis 걸 스트레스 섬유 (그림 3, 3 일)의 모습으로 시작 했다. 또한, 말라 번들 perinuclear 지역에 등장 하 고 새로 형성 sarcomeres (그림 3, 4 일 및 5) 조립. 후자의 성장 미리 형성한 걸 스트레스 섬유에 따라 (그림 3, 주 6) 주변으로. 재배 기간 (하루 6a) 끝에 확산에 새로 조립된 sarcomeres에서 전형적인 크로스 줄무늬 ARVC 관찰 되었다.

Figure 3
그림 3: 형광 얼룩. 데-그리고 다시-differentiation ARVC의 fcs가 20% 문화에 표시 됩니다. 갓 고립 된 그들의 일반적인 막대 모양 (0 일) ARVC 문화 (1 일)의 첫 번째 일 동안 sarcomeres 저하에 의해 라운드 되었다. 그들은 모든 그들의 수축 성 요소 (주 2) pseudopodia (확산; 구조로의 형성에 의해 따라 잃었다 3-5 일) 및 그들의 수축 성 요소를 나타내는 데 노 보 sarcomerogenesis (주 6)의 후속 개혁. 하루 6 문화에서, 크로스 줄무늬는 명확 하 게 감지할 수 다시 (하루 6a). 제조 업체의 프로토콜;에 따라 Phalloidin TRITC와 얼룩 "화살표": pseudopodia 같은 구조 (예제); *: perinuclear 지역에서 말라 번들 (모범적인 표시). 이 그림의 부분에 간행 된다11. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

그림 4 는 재배 기간 동안 확산 과정의 운동 표시 됩니다. 시험의 각 시간에 pseudopodia와 같은 구조를 보여주는 ARVC의 분수 % (그림 4)에 확산으로 제공 됩니다. 확산 하루 3 시작 하 고 경작의 시간 동안 지속적으로 증가. 14.7 모든 계산된 ARVC의 % ± 1.39%는 경작에 있는 6 일 후 pseudopodia 같은 구조를 보여주었다.

Figure 4
그림 4: 재배 시간 6 일 동안 모든 계산된 cardiomyocytes (%에 확산)으로 정규화 pseudopodia 같은 구조와 cardiomyocytes에 운동 증가 확산 (n = 33 셀 준비). 데이터는 ± SEM.를 의미 하는 대로 표시 됩니다. 이 수치는11에 게시 됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

ARVC의 확산에 ionomycin의 효과: 분리와 ARVC의 재배는 칼슘 민감한 프로세스1,8입니다. 세포내 칼슘 농도 증가, ionomycin (1 µ M), ARVC의 치료는 컨트롤 (그림 5)에 비해 pseudopodia와 같은 구조의 형성에 중요 한 (p ≤0.01) 감소를 발생 합니다. 직접 비교, 17.19% ± 2.45% 모든 계산된 ARVC의 제어 조건 하에서 확산을 보여주지만 ionomycin (재배의 주 6)의 pseudopodia 모양의 구조를 형성 하는 모든 계산된 ARVC의 유일한 9.87% ± 2.77%. 따라서, ionomycin 42.58% 확산 감소.

= "jove_content" fo:keep-together.within-페이지 = "1" >Figure 5
그림 5: ionomycin와 치료에서 속도 론 확산. 0에서 ionomycin (1 µ M)과 치료 제어에 비해 셀 확산에 매우 중요 한 감소를 발생 합니다. 데이터는 ± SEM; 의미 하는 대로 표시 됩니다. n = 4 셀 준비; 맨-휘트니 U 테스트; * p 0.05; * * p ≤0.01 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

또한, ionomycin 제어 조건 (그림 6)에 비해 특이 한 모습으로 ARVC의 비율을 증가 했다. 하루에 6, 모든 71.11% ± 4.65% ARVC ionomycin 특이 한 모습을 보여 치료를 계산. 그러나, 제어 조건 하에서 유일한 51.35% ± 3.55%는 ARVC의이 그룹에 분류 했다.

Figure 6
그림 6: 건강 하지 못한 모습으로 ARVC. 치료 ionomycin (1 µ M)를 0에서 특이 한 모습을 보여준 ARVC의 수가 크게 증가 발생 합니다. 6 일에 제어 및 ARVC ionomycin와 치료의 차이 중요 했다. 데이터는 ± SEM; 의미 하는 대로 표시 됩니다. n = 4 셀 준비; 맨-휘트니 U 테스트; * p 0.05 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

재배 ionomycin, 치료에서의 3 일에서 qRT-PCR 공개 mRNA 표현의 β-MHC (p ≤0.01)와 OSM, ARVC (그림 7A와 C)의 탈 분화에 뚜렷한 역할을 감소. Swiprosin-1, ARVC의 재 분화에 대 한 마커 크게 downregulated, 너무 했다 (그림 7B).

Figure 7
그림 7: 드-하 고 다시-differentiation ionomycin와 치료에서 경작된 ARVC의
(1 µ M) oncostatin M (OSM)의 하루 0 발생 감소 mRNA 표현 및 β-MHC, 모두 핵심 역할 성인 cardiomyocytes의 탈 분화에. 또한, Swiprosin-1, 성인 cardiomyocytes의 재 분화에 중요 한 선수의 mRNA 표정 또한 ionomycin 처리에 의해 감소 했다. 3 일 경작; 데이터는 ± SEM; 의미 하는 대로 표시 됩니다. n = 그룹; 당 30 세포 배양 배지 맨-휘트니 U 테스트; * p 0.05; * * p ≤0.01 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

중 도금 매체
20 mL CCT 매체
2 %vol. 페니실린/스 (400 μ)
4 %vol. FCS (800 μ)
도금 매체
20 mL CCT 매체
2 %vol. 페니실린/스 (400 μ)
세척 매체
20 mL CCT 매체
2 %vol. 페니실린/스 (400 μ)
참고: 사전 도금 매체에 4 %vol. FCS 1 Vol.-% laminin (0.5 μ g/c m2)으로 교체할 수 있습니다. 또한, 몇 일 동안 cardiomyocytes 양성을 위한 세척 매체 20 Vol.-% FCS를 추가 합니다. 사용 하 여까지 도금 매체 및 4-8 ° C에 의해 세척 매체를 저장 합니다.

표 1: 문화 미디어 cardiomyocyte 격리 사용

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Discussion

성인 cardiomyocytes에 vivo에서 의 행동은 다른 셀 (예:신경 세포, 내 피 세포, 섬유 아 세포, 염증 세포)와 그들이 형성 하는 전기 syncytium 많은 상호 작용에 의해 영향을1. 따라서, 성인 cardiomyocytes의 스트레스 적응을 독점적으로 공부 해야 분리와 ARVC의 재배 합니다. 분리 하 고 ARVC를 재배의 주요 효과: 1) 기질과 셀 연락처;에서 그들을 분리 2) 수축 자극;에서 그들을 분리 3) 3 차원 조직에서 2 차원 환경에 적응 하도록 강요. 이러한 조건 하에서 ARVC 드와 다시 differentiation 위에서 설명한 대로 있고 또한 심장 개장 vivo에서 (β-adrenoceptor 둔감, 리어셈블리 sarcomeres, ) 동안 본 여러 각 색 한을 수행 4. 따라서, 성인 cardiomyocytes의 이러한 셀 및 다른 치료에 그들의 응답을 조사 하는 유효한 방법을 나타냅니다. 이러한 통찰력은 실험에 대 한 vivo에서 , 불필요 한 실험을 피하 하 고 시험 동물의 수를 감소에 도움 것 이라고 이후에 사용할 수 있습니다. 물론, 일부 연구 결과 본 체 외에서 발생 하지 않습니다 vivo에서 (예를 들어, pseudopodia와 같은 구조의 형성). 기존 셀-셀-연락처 전기 syncytium 내에서 생리 적 조건17에서 과도 한 성장을 방해 합니다. 그럼에도 불구 하 고, 절연 및 재배 ARVC 성인 cardiomyocytes의 동작을 조사 하기 위해 사용할 수 있습니다. 또한, 인 간에 있는 심장 질환에 대 한 새로운 치료 전략의 첫 번째 재판 ARVC 함께 수행할 수 있습니다.

분리와 성인 cardiomyocytes의 재배에 대 한 설명된 방법에는 몇 가지 중요 한 포인트 포함 되어 있습니다. 성공적인 결과 얻으려면 다음 항목 간주 해야 합니다.

1. 칼슘 관용: 역사적으로, 성인 cardiomyocytes의 칼슘 허용 했다 성공적인 격리 및 성인 cardiomyocytes1,7, 의 가장 중요 한 요소 중의 하나 8. 요즘, 프로토콜 생리 적인 칼슘 조건1,3에서 재배 되도록 설정 됩니다. 이 원고는 고립 된 ARVC의 품질에 변경 된 세포내 칼슘 농도의 영향을 보여 줍니다. Ionomycin, 세포내 칼슘 농도 증가 하는 특이 한 모습으로 cardiomyocytes의 수에 확산에 상당한 감소와 상당한 증가 발생 합니다. 또한, 그것은 마커의 키 위한 심장 드-하 고 다시-differentiation downregulation 발생: β-MHC, OSM, 및 Swiprosin-1. 따라서, 새로운 환경에 적응 하는 ARVC의 기능 지장을 초래할 수 재배 중 세포내 칼슘 농도 변화. 비록 일부 ARVC 확산 하 고 적응할 수 있었다 (9.87% ± 2.77% 모든 계산된 ARVC; 그림 5) 이러한 조건 하에서 ARVC의 정확한 조사는 불가능합니다. 따라서, 정확한 절연 및 ARVC의 재배에 대 한 설립된 칼슘 프로토콜 사용 되어야 한다. 또한, 그것은 조사 처리 중 ARVC의 칼슘 hemostasis 방해가 보장 되어야 합니다.

2. 콜라: 콜라의 다른 배치가 있습니다. 각 일괄 처리 품질 및 효과1에서 차이 보여 줍니다. 따라서, 저자는 주문 하 고 다른 배치의 샘플 테스트를 권장 합니다. 또한, 소화와 각 새로운 배치의 콜라의 양이 시간 별도로 평가를 필요 사용. 따라서, 농도 및 시간 설명 하는 프로토콜에서 소화의 다른 프로토콜에 약간 달라질 수 있습니다.

3. 심장 관류까지 시간: ARVC의 높은 품질을 보장 하기 위해, 가능한 한 짧게 해야 몸과 Langendorff 시스템과 관류의 시작에서 마음을 추출 사이의 시간. 머리말 붙인된 시간 심장에 손상을 원인과 가능한 비 ARVC의 높은 숫자에 결과.

또한, 관류와 소화 후 좋은 결과 매우 저조한 필수적 이다 조직을 자르고 5 분 동안 관류 솔루션을 온난 화. 생물 학적 조직의 불필요 한 손상을 방지 하려면 그것은 모든 시간 지점에서 신중 하 게 처리 되어야 합니다. 또한, 그것은 그 치료 OSM 지적 한다 또는 FCS의 낮은 농도 또한 드와 다시 differentiate4,10,,1819ARVC을 활성화. 하지만, 하지 않고 이러한 영양 치료, ARVC2는 몇 일 이내 중복 제거.

결론적으로, 분리와 ARVC의 재배 독점적으로 성인 cardiomyocytes의 동작을 조사 하는 가능성의 다양 한 제공 하는 중요 한 방법입니다.

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Disclosures

표시 된 결과 프란체스카 Nippert의 박사 논문의 일부입니다.

Acknowledgments

작가 나 딘 Woitasky와 피터 볼 크 기술 지원에 대 한 감사. 또한, 저자는 원고를 준비 하 고 그녀의 도움에 대 한 부인 클 라우 디 아 로렌스 (의료 작가, ACCEDIS)을 감사 합니다. 이 원고 DFG (Schlu 324/7-1)에 의해 재정적으로 지원 되었다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Langendorff perfusion system inhouse construction double-walled with a water
based heating system
Tissue chopper Mc Ilwain Cavey Laboratory Engeneering Co. Ltd.
Aortic Cannula, OD 1,8 mm inhouse construction
Abdominal shears Aeskulap BC772R
Capsule forceps Eickemeyer 171307
Dissecting scissor large Aeskulap BC562R
Dissecting scissor small Aeskulap BC163R
Mash with Polyamid Neolab 4-1413 mash size 200 μm
plastic disc Cavey Laboratory Engeneering Co. Ltd.
Collagenase Typ II Worthington LS004177

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References

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절연 및 성인 쥐 Cardiomyocytes의 재배
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Nippert, F., Schreckenberg, R., Schlüter, K. D. Isolation and Cultivation of Adult Rat Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (128), e56634, doi:10.3791/56634 (2017).

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