Summary
Denne detaljerede protokol beskriver transkranial stimulation elektrode placering på den tidsmæssige knoglen for at undersøge de kort - og langsigtede virkninger af transkranial elektrisk stimulation i frit flytte rotter.
Abstract
Transkranial elektrisk stimulation (TES) er en kraftfuld og relativt enkle tilgang til diffust påvirke hjerneaktivitet, enten tilfældigt eller i en lukket loop Hændelsesudløst måde. Selv om mange undersøgelser fokuserer på de mulige fordele og bivirkninger af TES i sund og patologiske hjerner, er der stadig mange grundlæggende uafklarede spørgsmål vedrørende virkningsmekanisme af stimulering. Der er derfor et klart behov for en robust og reproducerbar metode til at teste den akutte og kroniske virkninger af TES i gnavere. TES kan kombineres med regelmæssig adfærdsmæssige, elektrofysiologiske og Billeddannende teknikker til at undersøge neuronal netværk in vivo. Implantation af transkranial stimulation elektroder pålægger ikke ekstra begrænsninger på det eksperimentelle design, mens der tilbydes et alsidigt og fleksibelt værktøj til at manipulere hjerneaktivitet. Her giver vi en detaljeret, trinvis protokol for at fabrikere og implantat transkranial stimulation elektroder for at påvirke hjerneaktivitet i et tidsligt begrænset måde i månedsvis.
Introduction
Transkranial elektrisk stimulation (TES) er en værdifuld metodiske tilgang til at påvirke hjerneaktiviteten i et tidsligt begrænset måde. Afhængig af størrelse og placering af elektroderne for stimulation, TES kan påvirke store hjerne diskenheder og entrain neuronal populationer diffust1,2,3. Transkranial jævnstrøm stimulation er allerede lægeligt godkendt til behandling af depressiv lidelse4,5, og mange undersøgelser fokus på viser de kognitive effekter af transkranial stimulation i mennesker6 , 7. i øvrigt, lovende resultater blev rapporteret om potentialet i TES i kontrollerende epileptiske anfald8,9.
Trods den intensive forskning er der stadig mange åbne spørgsmål vedrørende de nærmere regler, potentielle bivirkninger, og de langsigtede resultat af at anvende denne metode10,11,12. Det er derfor afgørende vigtigt at have en robust, reproducerbare protokol til at undersøge virkningerne af TES i dyremodeller. Mange forstyrrelser (fx, depression, epilepsi, skizofreni) kan kun undersøges grundigt i vågen dyr, og arten af disse medicinske tilstande som regel kræver langvarig behandling, vi leverer en protokol til kronisk implantation af transkranial elektroder i rotter. Metoden præsenteres her kan bruges til adfærdsmæssige undersøgelser eller kan kombineres med implantation af optagelse elektroder (dvs.ledninger, silikone sonder, juxtacellular elektroder) eller med kronisk kraniel windows for elektrofysiologiske eksperimenter og billeddiagnostiske undersøgelser, henholdsvis. Afhængigt af det eksperimentelle design, kan timingen af stimuli være enten tilfældigt eller Hændelsesudløst specifikke adfærdsmæssige stikord eller elektrofysiologiske kendetegnende for særlige hjernen stater (anfald, theta svingninger)8, 11 , 13.
Det er vigtigt at nævne, at i modsætning til den aktuelt anvendte menneskelige tilgang, der bruger en legemliggørelse af elektroder placeret på huden, her viser vi en metode, der beskæftiger subkutane implantation højre over overfladen af den tidsmæssige knoglen, siden rotter knap tolerere noget placeret på deres hud, som er let tilgængelige ved hjælp af deres poter.
I overensstemmelse med principperne om erstatning, reduktion og raffinement, på grund af kronisk karakter af implantation, denne metode hjælper med at reducere antallet af dyr, da hvert dyr kan være ansat i forskellige eksperimentelle betingelser for måneder, tillader anvendelse færre dyr til at teste forskellige hypoteser.
I den foreliggende undersøgelse, vi leverer en detaljeret, trinvis protokol af transkranial stimulation elektrode manufacturing (figur 1A-B) og demonstrere den kroniske implantation af disse elektroder over temporal knoglerne af en seks-måned-forhenværende mandlige Long-Evans rotte.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Alle metoder beskrevet her er i henhold til direktiverne af de Europæiske Fællesskabers Råd (86/609 ECC) og er blevet godkendt af det etiske udvalg for Animal forskning på Albert Szent-Györgyi medicinske og farmaceutiske Center på University of Szeged (XIV/218/2016).
1. fabrikation af Stimulation elektroder
- For at gøre en stimulation fjerne elektrode, skære seks 10 cm lange stykker af miniature hook-up ledninger, 2 cm af beklædning på ene ende og 1 cm i anden enden.
- Twist to kabler sammen og lodde dem på den kortere flåede side.
- Erhverve en stribe af tre tape emballering af et integreret kredsløb med SOT-353 sag.
- Sy snoet ledningerne gennem de tre huller i pakken. Den længere flåede segment af ledninger bør være i hulrum i pakken. Placer kablerne, så slutningen af isolering er i overensstemmelse med kanten af hullerne.
- Sætte den dental cement på huller til at fix ledningerne.
Forsigtig: Dental cement skal være tæt nok til at undgå utæt i hulrummet af pakken. - Når cementen er størknet (minimum 10 min), flip-pakken og sætte et tyndt lag af superlim ind i hullet for at danne en vandtæt forsegling mod den porøse cement. Undgå limning flåede ledningerne.
- Twist kablerne sammen i kortere flåede side og lodde dem (figur 1A).
- Grab den længere flåede segment af ledningerne med spidsen af fine pincet, ruller dem rundt, og pak dem ind i hulrum (figur 1B). Skær overskydende kabel, hvis nødvendigt.
2. fabrikation af optagelse elektroder
- For at lave en optagelse så triplet elektrode (figur 1 c-D), skåret en én cm lang stykke af rustfrit stålrør ved hjælp af højhastigheds rotary. Fjerne fin fra enderne af røret med en skarp nål og sikre, at røret er rent for snavs og helt gennemtrængelige.
Bemærk: Brug ikke tænger, da de vil forvride røret. - Bøje en guldbelagt bestyrelsen spacer pin med en minimumslængde på 3 cm til at danne en J-form holder. Skær den længere ben af figuren 'J', og lodde det sammen for at komme tilbage den oprindelige form at gøre en aftagelig fælles mellem den lange lineære del, som vil blive afholdt af stereotaxisk enheden, og 'U' form, der vil holde elektroden, og tjener som en forankring . Lim røret og den kortere ben af indehaveren af 'J' sammen. Lim nogle yderligere 1 cm lange stænger, hvis det er nødvendigt, for stabilitet.
- Skær 3 stk af 2,5 cm lange elektrode ledninger med rustfrit stål, ultrafine saks. Sørg for at det er en klar og skarp nedskæring, og isoleringen er intakt på cirkulære overfladen af elektrode wire. Sørg også for at klippe spidsen ikke er bøjet på grund af den kraft. Bøje 1 eller 2 mm den ene ende af hver af ledninger i forskellige vinkler (f.eks.en venstre straight, en 45 ° og en ret vinkel) at gøre dem kan skelnes.
- Fyld glasset med ledningerne, vælge en passende afstand til elektroderne for eksperimentet (f.eks.for kortikale lokale felt potentielle (LFP) og aktuelle kilde tæthed (CSD) registrering, anbefalede fremspring i spidsen af ledningerne fra den åbning af røret: 4,5 mm, 4.1 mm og 3,7 mm, henholdsvis). Bemærk hvilke wire svarer til hvilken dybde for at opretholde en ordentlig kanalrækkefølge.
- Når ledningerne Juster til højre ved siden af hinanden og er parallelle med rør, for at lave elektrode ledninger, placere en enkelt dråbe flydende superlim i begge ender af røret med en skarp nål. Sørg for, at limen flyder ind i røret på grund af kapillær virkningen, men ikke mod optagelse websteder på de Fremspringende ender.
- Forberede en elektrode interface bord med en ordentlig microconnector kompatibel med registreringssystemet skal anvendes.
- Introducere ikke-optagelse, bent enderne af ledningerne ind i hullerne af elektrode grænsefladen bestyrelsen svarer til den ønskede optagelse kanal. Når alle ledninger er i position, skub guld stifter i hullerne med pincet.
Bemærk: Guld pins kan fastgøres på plads ved hjælp af dental cement, men i de fleste tilfælde, den er stabil nok selv uden denne sikkerhed trin.
3. anæstesi
- Placere dyret i en forseglet anæstesi induktion kammer og fyld den med 4-5% af isofluran i 2 L/min. medicinsk luft.
- Når rotten er liggende, fjerne dyret fra salen og placere den i et stereotaxisk ramme med en passende ventilation næse stykke.
- Indstilles isofluran til 2%, selv om satsen for luftstrømmen bør forblive den samme. Kontrollere niveauet af anæstesi. Hvis der er et fravær af den pote tilbagetrækning refleks reaktion på klemme, fortsætte, ellers øge dybde af anæstesi.
- Overvåge og vedligeholde rottens kropstemperatur på 37 ± 0,5 ° C med en varmblodet overvågningssystem. Påfør en dråbe af paraffin salve på øjne til at forhindre udtørring af hornhinden. Gentag denne procedure under operationen flere gange, hvis det er nødvendigt.
- Subkutant injicere 0,3 mg/kg atropin for at undgå slim i luftvejene. Gentag dette hver fire timer i tilfælde af længere operationer. Overvåge vejrtrækning og justere vaporizer, hvis nødvendigt.
4. implantation af Stimulation og optagelse elektroder
Bemærk: Autoklave alle nødvendige kirurgiske instrumenter og nøje følger de generelle regler for aseptik og antisepsis under hele proceduren. Undgå at berøre nonsterile områder uden for det kirurgiske område. Fordyb elektroderne for landbrugsethanol (70%) i 30 min før implantation.
- Fjerne de fleste af hår fra hovedbunden med en hårklipper. Påfør depilatory creme i hårbunden, Spred det jævnt på overfladen, og vent et par minutter. Brug en spatel til at forsigtigt fjerne fløden og de resterende hår. Skyl huden med vand, derefter med desinfektionsmiddel.
- Injicér 1-2% lidocain (ikke overstiger en total dosis på 7 mg/kg) subkutant til at bedøve huden. Anvende en enkelt dråbe af vet salve for øjnene (fx, paraffin).
- Foretage en grundig og en lang (~ 2 cm) sagittal indsnit i midterlinjen med en skalpel, fra pande til halsen. Dissekere væv herunder periosteum fra kraniet og derefter ved hjælp af en mejsel eller tand pincet rense området mellem cristae af to temporal knoglerne. Holde kraniet udsættes af tilbagetrækningskraften dissekeret huden ved hjælp af fire bulldogs.
- Forsigtigt placere fine pincet stejl kant af den tidsmæssige knoglen og musklerne og adskille dem. Gøre vippende bevægelser til at eksponere så meget af den store overflade af frontal knoglen som muligt, helst fra kanten af nakkeknude symmetriplan i koronale suturer, uden at beskadige musklerne.
- Placer retraktorer bitemporally at holde temporal knoglerne udsat.
- Skyl overfladen af kraniet med 1-2 mL 3% H2O2, derefter vaske det med 1-2 mL vand.
- Lufttørre overflade af frontal knogler meget omhyggeligt, mop op fugt med okulær pinde. Test hvis stimulation elektroder passe på den rensede lodrette kraniet overflade (den øverste kant af stimulation elektroden bør være i overensstemmelse med kanten af crista af den tidsmæssige knoglen). Re-justere bulldogs og retraktor eller forme stimulation elektroder med en saks, hvis nødvendigt.
- Fylde hulrum i stimulation elektroder med electroconductive gel og lægge et tyndt lag lim på randen af elektroderne.
- Placer stimulation elektrode på tør overflade af frontal knoglen med en nøjagtig bevægelse, og hold det fast på plads i et minut med fine pincet. Sørg for at ingen fugt er i berøring med limen. Moppe op med okulær pinde, hvis nødvendigt.
Forsigtig: I tilfælde af eventuelle ustabilitet af elektroden er oplevet, fjerne den. Efter rengøring knoglen, skal du gentage dette trin med en ny stimulation elektrode. - Put dental cement over kanterne af stimulation elektrode, mens den utætte fugt af væv er løbende tørret op med okulær pinde. Dække hele stimulation elektrode med cement.
- Når cementen er helt hærdet, gentage disse trin på den kontralaterale side.
- Bore nogle huller hele kraniet for forankring skruer. Drive miniature skruer i hullerne og sætte dental cement over dem. Brug en ~ 10% mindre diameter bore hovedet i forhold til skrue diameter.
- Afhængigt af formålet med eksperimenterne, enten lodde et stik til enderne af kablerne, Placer den på overfladen, og dæk med cement, eller fortsætte implanterer optagelse elektroder og optiske fibre eller forberede en kraniel vindue over kraniet. I dette sidstnævnte tilfælde, lodde stikkene og forankre dem at konstruere kun enden. I tilfælde af behov for langsigtede samtidige TES og LFP optagelser, implantat førnævnte elektrode trillinger i stedet for enkelt ledninger.
Bemærk: Denne opsætning giver mulighed for fjernelse af fælles tilstand stimulation artefakter8. Yderligere oplysninger om optagelse elektrode implantation, se tidligere protokoller14,15. - Vask de udsatte væv rigeligt med desinfektionsmiddel. Injicér 1-2% lidocain (ikke overstiger en total dosis på 7 mg/kg) subkutant.
- Debridér sår kanter og luk dem med simpel afbrudt suturer rundt stik/implantat. Desinficere såret med povidon-jod.
- Indsprøjtes 5 mg/kg carprofene subkutant. Gentag dette, hvis nødvendigt.
Bemærk: Alle andre analgetika kan blive brugt matcher de krav, som den lokale etiske tilladelse board. - Suspendere anæstesi, frigive earbars og næsestykket og sætte dyret i en postoperativ nyttiggørelse bur at genvinde bevidsthed.
- Sikre, at dyret er under tæt kontrol under de første postoperative timer. Fortsætte med at overvåge området implantatet med jævne mellemrum.
Bemærk: Dyret må ikke efterlades uden opsyn indtil den har genvundet tilstrækkelig bevidsthed for at opretholde brystbenet recumbency. Hus dyr individuelt indtil fuld helbredelse fra proceduren.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Implantation af kronisk stimulering elektroder (figur 1B) kan kombineres med yderligere implantation af optagelse elektroder (figur 1 c-D). Disse indstillinger er egnet til at danne oven på-anfordring optagelse og stimulation systemer til at blande sig med specifikke hjernen aktiviteter. Her præsenterer vi repræsentative resultater af et lukket kredsløb epilepsi påvisning og interventionsordningen, anvendes på lange-Evans rotter at udtrykke spontane anfald (figur 2A)9. Denne stamme er kendt for at vise de electrographic og adfærdsmæssige symptomer på mangel (petit mal) epilepsi (figur 2B). I tilfælde af et epileptisk anfald, som den registrerede intracortical signaler er analyseret i real-time, en udløser er sendt til en isoleret stimulus generator på passende tidspunkt til at blande sig med spike og bølge aktivitet i hjernen. Til gengæld leverer stimulus generator et charge-balanceret, trifasisk stimulus gennem bitemporal stimulation elektroder for at afbryde beslaglæggelse aktivitet.
Figur 2 c-D viser kapaciteten i de tidsligt målrettede stimuli til at afbryde igangværende anfald fra uge 1 til uge 16, demonstrere robusthed og pålidelighed af de implanterede stimulation elektroder. For at sætte disse resultater i sammenhæng, figur 2E viser optagelser af en aborterede eksperiment, hvor sekundære væv trængte ind mellem den tidsmæssige knoglen og elektrode overflade på grund af ukorrekt lukning og cementering af elektroderne (obduktion af den dyr bekræftet væv invasion). Udover at øge impedans af stimulation elektroder, er den voksende væv tilbøjelige til at give en elektrisk shunt. Dette eksperiment fremhæver den fuldkomne betydningen af omhyggelig isolation at opnå pålidelige og reproducerbare resultater under stimulation eksperimenter.
Figur 1: trin af stimulation og optagelse elektrode fabrikation. (A) Twisted ledninger syet gennem huller og fastgjort til emballagen før indpakningen flåede ledningerne i hulrum. (B) endelige form af stimulation elektroder. Indsatser: indpakket ledninger inde i emballagen; (C) Side Se af optagelse elektroder; (D) Top view til optagelse elektroderne. Indsatser: Spidsen af websteder optagelse 400 µm afstand. (E) intraoperativ billede af transkranial stimulation elektrode placering. Stimulation elektroderne er allerede implanteret, sammen med nogle af de forankring skruer. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 2: repræsentative resultater af lukket kredsløb beslaglæggelse intervention ved hjælp af stimulation elektroder af denne protokol. (A) Closed-loop Systemoversigt. Triplet optagelse elektroder er implanteret i parietal cortex og stimulation elektroder er placeret bitemporally på kraniet. Rotten er udstyret med forstærkeren på hovedet og tilsluttet en real-time beslaglæggelse detection system. (B) LFP spor af en uafbrudt spike og bølge beslaglæggelse (C og D) eksempel LFP spor af beslaglæggelse intervention på 1st og 16th uge af stimulation. (E) eksempel på manglende beslaglæggelse afbrydelse i tilfælde af væv vokser mellem elektroderne for stimulation og den tidsmæssige knoglen (bekræftet af obduktion) venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Det mest afgørende skridt i denne protokol er limning af pakken elektrode på knoglen overfladen. I tilfælde af uretmæssig forsegling, et hul er dannet mellem elektroderne og knoglen og sekundære arvæv kan vokse ind i denne kløft, som mindsker kvaliteten af stimulation. Knoglen overfladen skal være helt tørt under trin af stikning på pakken, og for så vidt angår oplever ustabilitet af elektroderne, det skal fjernes og erstattes med en ny pakke til at opnå de bedste resultater.
En begrænsning af denne metode er, at som huden ikke er helt lukket efter operationen, der er en forholdsvis større risiko for infektion. Postoperativ pleje i de første 4-5 dage i løbet opsving med desinficerende løsning, og senere med pulver, hjælper med at forhindre infektion. Vores erfaring letter denne behandling dannelsen af arvæv, som kan helt lukke såret mod den ydre verden.
Her præsenterede vi en af de billigste og mest tilgængelige metoder til elektrode fabrikation, men afhængigt af de særlige behov hos de bestemt eksperimenter, ændring af den ledende materiale kan være nødvendigt, fxbelægning overfladen af kablerne med ikke-polariserende elektrode interface materialer, fx, PEDOT:PSS. Pakken elektrode kan være skræddersyede, 3D-trykt og modificeret af eksperimentatorer, vores anbefalinger passer ikke kravene i en bestemt undersøgelse i sagen. Vores erfaring, størrelsen af transkranial elektroderne fabrikeret i denne undersøgelse giver mulighed for implantations i både han- og hunrotter over 300 g kropsvægt, men størrelsen af stimulation elektroder kan let reduceres ved at skære mindre strimler i protokollen trin 1.3. Derudover kan alle lim og dentale cementer i protokollen erstattes med erstatninger, i betragtning af at det ydre lag er i direkte kontakt med væv, derfor skal de bio-kompatible.
I den foreliggende undersøgelse forudsat vi en protokol for bitemporal stimulation elektrode fabrikation og implantation, som er teknisk simpelt at udføre, omkostningseffektive og pålidelige på lang sigt, giver elektrisk stimulation eksperimenter på frit flytte rotter9. Som stimulation elektroder er placeret på den tidsmæssige knoglen, bevares hele vandret kraniet overflade for andre implantations. Denne metode kan kombineres med regelmæssig elektrofysiologiske15,16, optogenetic17, og imaging18 teknikker, giver mulighed for en alsidig kombination af eksperimentelle protokoller.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Antal Berényi er ejer og grundlægger af Amplipex Ltd, en virksomhed fremstiller store multiplexing biosignal forstærkere. Gábor Kozák og Tamás Földi har intet at videregive.
Acknowledgments
Dette arbejde blev støttet af EU-FP7-ERC-2013-starter grant (No.337075), 'Dynamik' Program for det ungarske akademi for Videnskaber (LP2013-62), og GINOP-2.3.2-15-2016-00018 tilskud. Vi takker Máté Kozák til at dokumentere stimulation og optagelse elektroder og Mihály Vöröslakos for de frugtbare drøftelser under protokollen design.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cyanoacrylate liquid | Henkel | Loctite 401 | |
| Cyanoacrylate gel | Henkel | Loctite 454 | |
| Wire for stimulation electrodes | Phoenix Wire Inc. | 36744MHW - PTFE Microminiature Hook-Up Wire | |
| Board spacer | E-tec Interconnect | SP1-020-S378/01-55 | |
| Connector | E-tec Interconnect | P2510I-02 | |
| Tape packaging for stimulation electrodes | Nexperia | 74HC1G00GW | Tape packaging of any integrated circuit with SOT-353 case can be used |
| Grip Cement Industrial Grade | Caulk Dentsply | 675571 (powder) 675572 (solvent) | |
| Electroconductive gel | Rextra | ECG Gel | |
| Recording electrode wire | California Fine Wire Co. | .002 (50 micron) Tungsten 99.95% (CFW Material #: 100-211), HMl-Natural, cut to 3.0 inch pieces, Round, Cut length piece wire | |
| Ultrafine scissors | Hammacher Instrumente | Stainless HSB 544-09 | |
| Stainless steel tube | Vita Needle Company | 29 RW, 304SS Tubing, T.I.G. Welded and Plug | |
| High speed rotary saw | Dremel | Model # 395 | |
| Rotary saw holder | Dremel | Model # 220 | |
| Rotary saw cut-off wheel | Dremel | Model # 409 | |
| Ocular sticks | Lohmann-Rauscher | Pro-ophta Ocular Sticks | |
| Wet disinfectant | Egis | Betadine | |
| Dry disinfectant | Wagner Pharma | Reseptyl-urea | |
| Drilling machine | NSK-Nakanishi United Kingdom | Vmax35RV Pack | |
| Anchoring screws | Antrin Miniature Specialties, Inc. | 000-120x1/16 SL BIND MS SS |
References
- Ozen, S., et al. Transcranial electric stimulation entrains cortical neuronal populations in rats. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 30 (34), 11476-11485 (2010).
- Ali, M. M., Sellers, K. K., Frohlich, F. Transcranial alternating current stimulation modulates large-scale cortical network activity by network resonance. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 33 (27), 11262-11275 (2013).
- Helfrich, R. F., et al. Entrainment of brain oscillations by transcranial alternating current stimulation. Current biology : CB. 24 (3), 333-339 (2014).
- Bikson, M., et al. Transcranial direct current stimulation for major depression: a general system for quantifying transcranial electrotherapy dosage. Current treatment options in neurology. 10 (5), 377-385 (2008).
- Lefaucheur, J. P., et al. Evidence-based guidelines on the therapeutic use of transcranial direct current stimulation (tDCS). Clinical neurophysiology : official journal of the International Federation of Clinical Neurophysiology. 128 (1), 56-92 (2017).
- Kuo, M. F., Nitsche, M. A. Effects of transcranial electrical stimulation on cognition. Clinical EEG and neuroscience. 43 (3), 192-199 (2012).
- Sandrini, M., Fertonani, A., Cohen, L. G., Miniussi, C. Double dissociation of working memory load effects induced by bilateral parietal modulation. Neuropsychologia. 50 (3), 396-402 (2012).
- Berenyi, A., Belluscio, M., Mao, D., Buzsaki, G. Closed-loop control of epilepsy by transcranial electrical stimulation. Science. 337 (6095), New York, N.Y. 735-737 (2012).
- Kozak, G., Berenyi, A. Sustained efficacy of closed loop electrical stimulation for long-term treatment of absence epilepsy in rats. Scientific reports. 7 (1), 6300 (2017).
- Fertonani, A., Ferrari, C., Miniussi, C. What do you feel if I apply transcranial electric stimulation? Safety, sensations and secondary induced effects. Clinical neurophysiology : official journal of the International Federation of Clinical Neurophysiology. 126 (11), 2181-2188 (2015).
- Marshall, L., Binder, S. Contribution of transcranial oscillatory stimulation to research on neural networks: an emphasis on hippocampo-neocortical rhythms. Frontiers in human neuroscience. 7, 614 (2013).
- Reato, D., Rahman, A., Bikson, M., Parra, L. C. Effects of weak transcranial alternating current stimulation on brain activity-a review of known mechanisms from animal studies. Frontiers in human neuroscience. 7, 687 (2013).
- Thut, G., Miniussi, C. New insights into rhythmic brain activity from TMS-EEG studies. Trends in cognitive sciences. 13 (4), 182-189 (2009).
- Gage, G. J., et al. Surgical implantation of chronic neural electrodes for recording single unit activity and electrocorticographic signals. Journal of visualized experiments : JoVE. (60), (2012).
- Vandecasteele, M., et al. Large-scale recording of neurons by movable silicon probes in behaving rodents. Journal of visualized experiments : JoVE. (61), e3568 (2012).
- Zayachkivsky, A., Lehmkuhle, M. J., Dudek, F. E. Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System. Journal of visualized experiments : JoVE. (101), e52554 (2015).
- Ung, K., Arenkiel, B. R. Fiber-optic implantation for chronic optogenetic stimulation of brain tissue. Journal of visualized experiments : JoVE. (68), e50004 (2012).
- Mostany, R., Portera-Cailliau, C. A craniotomy surgery procedure for chronic brain imaging. Journal of visualized experiments : JoVE. (12), (2008).
