Summary
Denne detaljerte protokollen beskriver Transkraniell stimulering elektrodeplassering på temporal benet for å undersøke kort - og langsiktige virkningene av Transkraniell elektrisk stimulering i fritt flytte rotter.
Abstract
Transkraniell elektrisk stimulering (TES) er et kraftig og relativt enkle tilnærming til diffusely påvirke hjerneaktiviteten enten tilfeldig eller i en lukket hendelse-utløst måte. Selv om mange studier fokuserer på mulige fordeler og bivirkninger av TES i sunn og patologisk hjernen, er det fortsatt mange grunnleggende åpne spørsmål mekanismen av stimulering. Derfor er det et klart behov for en robust og reproduserbar metode å teste akutte og kroniske effekten av TES i gnagere. TES kan kombineres med vanlig opptreden, elektrofysiologiske og imaging teknikker for å undersøke nevrale nettverk i vivo. Implantering av Transkraniell stimulering elektroder pålegger ikke ekstra begrensninger på eksperimentell design samtidig som den tilbyr en allsidig, fleksibel verktøy for å manipulere hjerneaktivitet. Her gir vi en detaljert, trinnvis protokoll for å dikte og implantat Transkraniell stimulering elektroder for å påvirke hjerneaktivitet på en timelig begrenset måte i månedsvis.
Introduction
Transkraniell elektrisk stimulering (TES) er en verdifull metodisk tilnærming til påvirke hjerneaktiviteten på en timelig begrenset måte. Avhengig av størrelsen og plasseringen av stimulering elektrodene, TES kan påvirke stor hjerne volumer og entrain neuronal bestander diffusely1,2,3. Transkraniell likestrøm stimulering er allerede medisinsk godkjent for behandling av depresjon4,5, og mange studier fokus på viser kognitive effekten av Transkraniell stimulering i mennesker6 , 7. videre lovende resultater ble rapportert om potensialet i TES kontrollere epileptiske anfall8,9.
Til tross for intensiv forskning er det fortsatt mange åpne spørsmål detaljert mekanisme handling, mulige bivirkninger og langsiktige utfallet av å bruke denne metoden10,11,12. Derfor er det kritisk viktig å ha en robust, reproduserbare protokoll for å undersøke virkningene av TES i dyremodeller. Gitt at mange lidelser (f.eks, depresjon, epilepsi og schizofreni) kan bare bli grundig undersøkt i våken dyr, og innholdet i disse medisinske tilstander vanligvis nødvendiggjøre langtidsbehandling, gir vi en protokoll for kronisk implantering av Transkraniell elektrodene i rotter. Metoden som presenteres her kan brukes for atferdsmessige studier eller kombineres med implantering av opptak elektroder (dvs., ledninger, silikon sonder, juxtacellular elektroder) eller kronisk skallen windows for elektrofysiologiske eksperimenter og imaging studier, henholdsvis. Avhengig av eksperimentell design, kan timingen av stimuli være enten tilfeldig eller hendelse utløser spesifikke atferdsmessige signaler eller elektrofysiologiske kjennetegnene av bestemt hjernen stater (beslag, theta svingninger)8, 11 , 13.
Det er viktig å nevne at i motsetning til den aktuelle anvendt menneskelige tilnærmingen, som bruker en legemliggjøring av elektroder plassert på huden, her viser vi en metode som bruker subkutan implantasjon rett over overflaten av temporal bein, siden rotter knapt tolerere noe på deres hud som er lett tilgjengelig fra deres paws.
I tråd med prinsippene for erstatning, reduksjon og raffinement, på grunn av kronisk natur implantasjon hjelper denne metoden for å nedskrive antallet av dyr, siden hvert dyr kan bli rekruttert i forskjellige eksperimentelle forhold i måneder, tillater bruk færre dyr å teste ulike hypoteser.
Studien, vi tilbyr detaljert, trinnvis protokollen Transkraniell stimulering elektrode produksjon (figur 1A-B) og demonstrere kronisk implantering av disse elektrodene over temporal bein av en seks-måneden-gamle mannlig lang-Evans rotten.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Alle metodene som er beskrevet her er i samsvar med direktiv av det europeiske fellesskap råd (86/609 ECC) og er godkjent av den etiske komiteen for dyr forskning ved Albert Szent-Györgyi medisinsk og farmasøytisk Center ved University of Szeged (XIV/218/2016).
1. fabrikasjon av stimulering elektrodene
- For å gjøre en stimulering elektrode, kuttet seks 10 cm lange biter av miniatyr oppkobling kabler, fjerne 2 cm kledningen på den ene enden og 1 cm på den andre enden.
- Vri to kabler sammen og loddetinn dem på kortsiden skrelles.
- Kjøpe en stripe av tre bånd pakking av en integrert krets med SOT-353 sak.
- Sy vridd ledningene gjennom tre hullene av pakken. Lenger skrelles segmentet av ledningene bør være i hulrom i pakken. Plasser kablene slik at slutten av isolasjon er i tråd med kanten av hullene.
- Sette dental sement på hullene å løse ledninger.
Forsiktig: Dental sement må være tett nok å unngå lekkasje inn i hulrommet i pakken. - Når sement er befestet (minimum 10 min), snu pakken og sette et tynt lag med superglue i hullet for å danne et vanntett forsegling mot porøse sement. Unngå liming skrelles ledningene.
- Vri kabler sammen på korteste skrelles og loddetinn dem (figur 1A).
- Ta det lenger skrelles segmentet av ledningene med spissen av fine pinsett, rulle dem rundt og pakk dem inn i hulrom (figur 1B). Kuttet festestripsene, om nødvendig.
2. fabrikasjon av opptak elektrodene
- For å gjøre en opptak trilling elektrode (figur 1 c-D), kuttet en én cm lang stykke rustfritt stålrør med høyhastighets roterende så. Fjern fin fra endene av røret med en skarp nål og sikre at røret er ren av rusk og helt permeabel.
Merk: Ikke bruk tang, som de vil forvrenge røret. - Bøye en gullbelagt styret spacer pin med Minimumslengden på 3 cm til J-figur innehaver. Kutte lengre beinet av "J" figuren, og loddetinn det sammen for å få tilbake den opprinnelige figuren å gjøre en avtakbar felles mellom den lang lineær delen, som arrangeres av stereotaxic enheten, og 'U' skikkelsen, som vil holde elektroden, og tjene som en forankring . Fest røret og kortere etappe av "J" abonnenten sammen. Lim noen ekstra 1 cm lange strekene, om nødvendig stabilitet.
- Klipp 3 stykker 2,5 cm lang elektrode ledninger med rustfritt stål, Ultrafin saks. Kontroller at det er et klart og tydelig kutt, og isolasjon er intakt på sirkulære overflaten av elektroden ledningen. Pass også på at kuttet spissen ikke er bøyd på grunn av kraften. Bøye 1 eller 2 mm på den ene enden av ledningene i forskjellige vinkler (f.eks, en venstre rett, en 45 ° og én rett vinkel) slik at de kan skilles.
- Fyll røret med ledninger, Velg en passende avstand mellom elektrodene for eksperimentet (f.eksfor kortikale lokale feltet potensielle (LFP) og gjeldende kilde tetthet (CSD) registrering, anbefalte protrusion av tips av ledningene fra den åpning av røret: 4,5 4.1 mm og 3,7 mm, henholdsvis). Merk hvilke wire tilsvarer som dybde for å opprettholde en riktig kanalrekkefølgen.
- Når ledningene justere høyre siden av hverandre og er parallelle med røret for å fastsette elektrode ledningene, Plasser en eneste dråpe flytende superglue i begge ender av røret med en skarp nål. Kontroller at limet strømmer inn i røret på grunn av kapillær effekten, men ikke mot opptak steder for utstikkende endene.
- Forberede en elektrode grensesnittet styret med en riktig microconnector kompatibel med opptak systemet skal brukes.
- Introdusere ikke-opptak, bøyd endene av ledningene inn i hullene på elektroden grensesnittet styret tilsvarer ønsket opptak kanalen. Når alle ledningene er i posisjon, presse gull pinnene inn i hullene med pinsett.
Merk: Gull pinner kan være løst i stedet bruker dental sement, men i de fleste tilfeller er det stabilt nok selv uten denne sikkerhet trinn.
3. anestesi
- Plasser dyret i en forseglet anestesi induksjon kammer og fyll den med 4-5% av isoflurane i 2 L/min medisinske luft.
- Når rotta er tilbakelent, fjerne dyret fra kammeret og plasserer den i en stereotaxic ramme med en riktig ventilasjon snuten.
- Angi isoflurane til 2%, men frekvensen av luftstrømmen bør forbli den samme. Kontrollere nivået av anestesi. Hvis det er et fravær av det pote uttak refleks Svar å knipe, Fortsett, ellers øke dybden av anestesi.
- Overvåke og vedlikeholde rottas kroppstemperatur på 37 ± 0,5 ° C med en homeothermic overvåkingssystem. Påfør en dråpe parafin salve på øynene for å hindre uttørking av hornhinnen. Gjenta denne fremgangsmåten under operasjonen flere ganger, hvis nødvendig.
- Subcutaneously injisere 0,3 mg/kg atropin å unngå Slim dannes i luftveiene. Gjenta dette hver fjerde time ved lengre operasjoner. Overvåke puste og justere fordamper, om nødvendig.
4. implantasjon av stimulering og opptak elektroder
Merk: Autoclave alle nødvendige Kirurgiske instrumenter og nøye følge de generelle reglene for asepsis og antisepsis under hele prosedyren. Unngå å berøre ikke-sterilt områder utenfor det kirurgiske området. Legg til elektrodene i etylalkohol (70%) i 30 min før implantasjon.
- Fjerne det meste av hår fra hodebunnen med en hårklipperen. Bruke depilatory krem på hodebunnen, jevnt på overflaten, og vent noen minutter. Bruk en slikkepott Fjern fløte og gjenværende hår. Skyll huden med vann, deretter med desinfeksjonsmiddel.
- Injisere 1-2% lidocaine (ikke overskrider en total dose 7 mg/kg) subcutaneously til nummen huden. Bruke en eneste dråpe vet salve for øynene (f.eks, parafin).
- Gjøre en grundig og en lang (~ 2 cm) sagittal snitt utviklet med skalpell, fra pannen til halsen. Dissekere vev inkludert periosteum i skallen, og deretter bruke en meisel eller tann pinsett rydde området mellom cristae av to temporal bein. Holde skallen ved å trekke dissekert huden med fire bulldogs.
- Forsiktig plassere fine pinsett mellom bratt kanten av temporal bein og muskler og atskilt. Gjøre jigging bevegelser å eksponere så mye av den store overflaten av temporal benet som mulig, fortrinnsvis fra kanten av nakkeknølen til flyet Koronal bildet, uten å skade musklene.
- Plasser retractors bitemporally å holde temporal bein utsatt.
- Skyll overflaten av skallen med 1-2 mL 3% H2O2, deretter vaske det med 1-2 mL vann.
- Air-Dry overflaten av temporal bein nøye, tørke opp fuktighet med okulær pinner. Test hvis stimulering elektrodene passer på renset loddrett skallen overflaten (øvre kant av stimulering elektroden bør være i tråd med kanten av crista av temporal benet). Juster bulldogs og retractors eller forme stimulering elektrodene med saks, hvis nødvendig.
- Fyll i hulrom i stimulering elektroder med electroconductive gel og sette et tynt lag med lim på kanten av elektrodene.
- Plasser stimulering elektroden på tørre overflaten av temporal bein med en nøyaktig bevegelse, og holder det fast på plass i ett minutt med fine pinsett. Kontroller at ingen fuktighet er i kontakt med limet. Tørke opp med okulær pinner, om nødvendig.
Advarsel: I tilfelle ustabilitet av elektroden er erfarne, fjerne den. Etter rengjøring benet, Gjenta dette trinnet med en ny stimulering elektrode. - Sette dental sement over kanten av stimulering elektroden, mens lekker fuktighet av vev er kontinuerlig tørket opp med okulær pinner. Dekk hele stimulering elektroden med sement.
- Etter sement er helt herdet, Gjenta disse trinnene på kontralateral side.
- Bore noen hull hele skallen for forankring skruer. Kjøre miniatyr skruene i hullene og satt dental sement over dem. Bruk ~ 10% mindre diameter bore hodet sammenlignet med skrue diameter.
- Avhengig av formålet av eksperimenter, enten loddetinn en kobling til endene av ledningene, plassere den på overflaten og dekk med sement, fortsette implanting opptak elektroder og optiske fibre eller forberede et skallen vindu over skallen. I denne siste tilfellet loddetinn kontaktene og feste dem til Konstruer bare på slutten. Ved behov for langsiktig samtidig TES og LFP innspillinger, implantatet nevnte elektrode trillingene i stedet for enkelt kabler.
Merk: Dette oppsettet tillater fjerning av vanlig modus stimulering gjenstander8. For detaljer om innspillingen elektrode implantasjon, se tidligere protokoller14,15. - Vask eksponert vev rikelig med desinfeksjonsmiddel. Injisere 1-2% lidocaine (ikke overskrider en total dose 7 mg/kg) subcutaneously.
- Debride såret kanter og lukke dem med enkle avbrutt suturer rundt kontakt/implantatet. Desinfiser såret med povidon-jod.
- Sette inn 5 mg/kg carprofene subcutaneously. Gjenta om nødvendig.
Merk: Noen andre smertestillende kan brukes som matchet kravene fastsatt lokale etiske tillatelse. - Suspendere anestesi, slipper earbars og revolveren og sette dyret i postoperative gjenvinning bur å gjenvinne bevissthet.
- Kontroller at dyret er under tett oppsyn i første postoperativ timer. Fortsette å overvåke implantat området med jevne mellomrom.
Merk: Dyret må ikke forlates før det har gjenvunnet tilstrekkelig bevissthet for å opprettholde sternal recumbency. Huset dyret individuelt til full gjenoppretting fra prosedyren.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Implantering av kronisk stimulering elektroder (figur 1B) kan kombineres med ekstra implantering av opptak elektroder (figur 1 c-D). Slike innstillinger er egnet til behovsbetinget opptak og stimulering systemer å forstyrre spesifikke hjernens aktiviteter. Her presenterer vi representant resultatene av en lukket epilepsi påvisning og intervensjon system, brukes på lang-Evans rotter uttrykke spontan beslag (figur 2A)9. Denne stammen kalles til å vise electrographic og atferdsmessige symptomene på fravær (petit mal) epilepsi (figur 2B). Ved et epileptisk anfall, som en intracortical signaler blir analysert i sanntid, en utløser sendes til en isolert stimulans generator på det riktige tidspunktet å forstyrre med topp-og-bølge aktivitet i hjernen. Til gjengjeld leverer stimulans generatoren en kostnad-balansert, triphasic stimulans gjennom bitemporal stimulering elektrodene for å avbryte beslag aktivitet.
Figur 2C-D viser kapasiteten for timelig målrettet stimuli avbryte pågående anfall fra uke 1 uke 16, demonstrere det robust og pålitelig implantert stimulering elektrodene. For å sette disse resultatene i sammenheng, figur 2E viser opptak av et avbrutt forsøk, der sekundære vev trengt mellom temporal bein og elektroden overflaten den uriktig tetting og sementere av elektrodene (obduksjon av den dyr bekreftet vev invasjonen). Foruten økende impedans på stimulering elektrodene, er voksende vevet sannsynlig å gi en elektrisk shunt. Dette eksperimentet fremhever fullstendig betydningen av forsiktig isolasjon å få et pålitelig og reproduserbar under stimulering eksperimenter.
Figur 1: trinn av stimulering og opptak elektrode fabrikasjon. (A) Twisted ledninger sydd gjennom hullene og fast til emballasjen før innpakning skrelles ledningene inn i hulrom. (B) endelig form for stimulering elektrodene. Innfelt: pakket ledningene inne emballasje. (C) Side visning av opptak elektrodene; (D) topp synspunkt opptak elektrodene. Innfelt: Tips av opptak områder, 400 µm avstand. (E) intraoperativ bilde av Transkraniell stimulering elektrode plasseringen. Stimulering elektrodene er allerede implantert, sammen med noen av forankring skruene. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Figur 2: representant resultatene av lukket anfall intervensjon med stimulering elektrodene på denne protokollen. (A) lukket-sløyfe systemoversikt. Trilling opptak elektrodene er implantert i parietal cortex og stimulering elektroder blir plassert bitemporally på skallen. Rotta er utstyrt med en på-leder forsterker og koblet til en sanntid anfall oppdagelsen system. (B) LFP spor av en uavbrutt spike-og-bølge anfall (C og D) eksempel LFP spor av beslag intervensjon på 1m og 16th uke stimulering. (E) eksempel på svikt i beslag avbrudd ved vev vokser mellom elektrodene stimulering og temporal bein (bekreftet av obduksjon) Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Det viktigste trinnet i denne protokollen er liming av elektroden pakken på bein overflaten. Ved uriktig forseglet, et gap er dannet mellom elektrodene og bein, og sekundære arrvev kan vokse i dette gapet, som reduserer kvaliteten på stimulering. Bein overflaten må være helt tørt under trinnene av stikker på pakken, og når det gjelder opplever ustabilitet av elektrodene, må det bli fjernet og erstattet med en ny pakke å få de beste resultatene.
En begrensning av denne metoden er at som huden ikke er helt lukket etter operasjonen, det er en relativt høyere risiko for infeksjon. Postoperativ omsorg i de første 4-5 dagene under gjenoppretting desinfeksjonsmiddel, og senere med pulver, bidrar til å hindre infeksjon. I vår erfaring forenkler denne behandlingen dannelsen av arrvev, noe som kan helt lukke såret mot den ytre verden.
Her presenterte vi en av de billigste, mest tilgjengelige metodene for elektrode fabrikasjon, men avhengig av de spesielle behovene til bestemte eksperimentene, endring av det ledende materialet kan være nødvendig, f.eksbelegg overflaten av kabler med ikke-polarisert elektrode grensesnitt materialer, f.eksPEDOT:PSS. Elektroden pakken kan være skreddersydd, 3D-trykt og endret av eksperimentelle, våre anbefalinger samsvarer med ikke kravene til en bestemt studie i tilfelle. I vår erfaring, størrelsen på Transkraniell elektrodene fabrikkert i denne studien gir implantations i både mannlig og kvinner rotter over 300 g kroppsvekt, men størrelsen på stimulering elektrodene kan reduseres ved å kutte mindre strimler i protokollen trinn 1.3. Videre kan alle lim og dental sement i protokollen erstattes med innbyttere, vurderer at det ytterste laget er i direkte kontakt med vev, derfor de burde være bio-kompatibel.
Studien ga vi en protokoll for bitemporal stimulering elektrode fabrikasjon og implantasjon, som er teknisk enkel å utføre, kostnadseffektive og pålitelige på lang sikt, slik at elektrisk stimulering eksperimenter på fritt flytte rotter9. Som stimulering elektrodene er plassert på temporal bein, beholdes helt vannrett skallen overflaten for andre implantations. Denne metoden kan kombineres med vanlig elektrofysiologiske15,16, optogenetic17, og tenkelig18 teknikker, gir muligheten for en allsidig kombinasjon av eksperimentelle protokoller.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Antal Berényi er eier og grunnlegger av Amplipex Ltd, et selskap produksjon store multipleksing biosignal forsterkere. Gábor Kozák og Tamás Földi ikke å avsløre.
Acknowledgments
Dette arbeidet ble støttet av EU-FP7-ERC-2013-Start grant (No.337075), 'Øyeblikk' programmet til det ungarske akademiet for vitenskap (LP2013-62) og GINOP-2.3.2-15-2016-00018 grant. Vi takker Máté Kozák for dokumentere stimulering og ta elektroder og Mihály Vöröslakos for de fruktbare diskusjonene under protokollen design.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cyanoacrylate liquid | Henkel | Loctite 401 | |
| Cyanoacrylate gel | Henkel | Loctite 454 | |
| Wire for stimulation electrodes | Phoenix Wire Inc. | 36744MHW - PTFE Microminiature Hook-Up Wire | |
| Board spacer | E-tec Interconnect | SP1-020-S378/01-55 | |
| Connector | E-tec Interconnect | P2510I-02 | |
| Tape packaging for stimulation electrodes | Nexperia | 74HC1G00GW | Tape packaging of any integrated circuit with SOT-353 case can be used |
| Grip Cement Industrial Grade | Caulk Dentsply | 675571 (powder) 675572 (solvent) | |
| Electroconductive gel | Rextra | ECG Gel | |
| Recording electrode wire | California Fine Wire Co. | .002 (50 micron) Tungsten 99.95% (CFW Material #: 100-211), HMl-Natural, cut to 3.0 inch pieces, Round, Cut length piece wire | |
| Ultrafine scissors | Hammacher Instrumente | Stainless HSB 544-09 | |
| Stainless steel tube | Vita Needle Company | 29 RW, 304SS Tubing, T.I.G. Welded and Plug | |
| High speed rotary saw | Dremel | Model # 395 | |
| Rotary saw holder | Dremel | Model # 220 | |
| Rotary saw cut-off wheel | Dremel | Model # 409 | |
| Ocular sticks | Lohmann-Rauscher | Pro-ophta Ocular Sticks | |
| Wet disinfectant | Egis | Betadine | |
| Dry disinfectant | Wagner Pharma | Reseptyl-urea | |
| Drilling machine | NSK-Nakanishi United Kingdom | Vmax35RV Pack | |
| Anchoring screws | Antrin Miniature Specialties, Inc. | 000-120x1/16 SL BIND MS SS |
References
- Ozen, S., et al. Transcranial electric stimulation entrains cortical neuronal populations in rats. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 30 (34), 11476-11485 (2010).
- Ali, M. M., Sellers, K. K., Frohlich, F. Transcranial alternating current stimulation modulates large-scale cortical network activity by network resonance. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 33 (27), 11262-11275 (2013).
- Helfrich, R. F., et al. Entrainment of brain oscillations by transcranial alternating current stimulation. Current biology : CB. 24 (3), 333-339 (2014).
- Bikson, M., et al. Transcranial direct current stimulation for major depression: a general system for quantifying transcranial electrotherapy dosage. Current treatment options in neurology. 10 (5), 377-385 (2008).
- Lefaucheur, J. P., et al. Evidence-based guidelines on the therapeutic use of transcranial direct current stimulation (tDCS). Clinical neurophysiology : official journal of the International Federation of Clinical Neurophysiology. 128 (1), 56-92 (2017).
- Kuo, M. F., Nitsche, M. A. Effects of transcranial electrical stimulation on cognition. Clinical EEG and neuroscience. 43 (3), 192-199 (2012).
- Sandrini, M., Fertonani, A., Cohen, L. G., Miniussi, C. Double dissociation of working memory load effects induced by bilateral parietal modulation. Neuropsychologia. 50 (3), 396-402 (2012).
- Berenyi, A., Belluscio, M., Mao, D., Buzsaki, G. Closed-loop control of epilepsy by transcranial electrical stimulation. Science. 337 (6095), New York, N.Y. 735-737 (2012).
- Kozak, G., Berenyi, A. Sustained efficacy of closed loop electrical stimulation for long-term treatment of absence epilepsy in rats. Scientific reports. 7 (1), 6300 (2017).
- Fertonani, A., Ferrari, C., Miniussi, C. What do you feel if I apply transcranial electric stimulation? Safety, sensations and secondary induced effects. Clinical neurophysiology : official journal of the International Federation of Clinical Neurophysiology. 126 (11), 2181-2188 (2015).
- Marshall, L., Binder, S. Contribution of transcranial oscillatory stimulation to research on neural networks: an emphasis on hippocampo-neocortical rhythms. Frontiers in human neuroscience. 7, 614 (2013).
- Reato, D., Rahman, A., Bikson, M., Parra, L. C. Effects of weak transcranial alternating current stimulation on brain activity-a review of known mechanisms from animal studies. Frontiers in human neuroscience. 7, 687 (2013).
- Thut, G., Miniussi, C. New insights into rhythmic brain activity from TMS-EEG studies. Trends in cognitive sciences. 13 (4), 182-189 (2009).
- Gage, G. J., et al. Surgical implantation of chronic neural electrodes for recording single unit activity and electrocorticographic signals. Journal of visualized experiments : JoVE. (60), (2012).
- Vandecasteele, M., et al. Large-scale recording of neurons by movable silicon probes in behaving rodents. Journal of visualized experiments : JoVE. (61), e3568 (2012).
- Zayachkivsky, A., Lehmkuhle, M. J., Dudek, F. E. Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System. Journal of visualized experiments : JoVE. (101), e52554 (2015).
- Ung, K., Arenkiel, B. R. Fiber-optic implantation for chronic optogenetic stimulation of brain tissue. Journal of visualized experiments : JoVE. (68), e50004 (2012).
- Mostany, R., Portera-Cailliau, C. A craniotomy surgery procedure for chronic brain imaging. Journal of visualized experiments : JoVE. (12), (2008).
