Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

열 등 한 베 나 정 맥의 협 착 증: 깊은 정 맥 혈전 증의 Murine 모델

Published: December 22, 2017 doi: 10.3791/56697

Summary

우리가 설명 여기에 열 등 한 베 나 정 맥 협 착 증 깊은 정 맥 혈전 증의 murine 모델. 이 모델이 혈액 흐름 제한, 인 간에 있는 정 맥 혈전 증의 주요 트리거 중 하나.

Abstract

깊은 정 맥 혈전 증 (DVT) 및 그것의 파괴적인 합병증, 폐 색 전 증, 높은 사망률과 심각한 건강 문제. 혈관에 혈전 형성의 메커니즘은 애매 한 남아 있다. 이동성 (예를 들어, 수술 또는 장거리 비행 후)의 부족은 DVT를 선도 하는 주요 요인 중 하나 이다. 이동성의 부족의 병 태 생리 결과 정 맥 밸브에 혈액 흐름 침체입니다. 여기, 모델은 혈전 증 운전 요인으로 이러한 흐름 소동을 설명 합니다. 이 모델에서 부분 흐름 제한 (협) 열 등 한 베 나 정 맥 (IVC)에서 만들어집니다. IVC 루멘 48 h에 대 한의 약 90%의 폐쇄 혈전 인간 구조적으로 유사한의 개발에 결과. 유사성은: i) 대부분의 혈전 볼륨은 빨간색, 즉, 내 피 단층 iii) 비-걸치기, iv) 높은 플라즈마 D 이합체 수준, 그리고 v) 가능성을 방지 하기 위해 적혈구와 섬유 소, 흰 부분 (잔 줄)의 ii) 존재의 구성 저 분자 무게 헤 파 린에 의해 혈전 증입니다. 혈전과 가변 크기 포함 하는 야생-타입 마우스의 일정 비율 (0-35%)는 혈전을 생성 하지 않을 수 있습니다. 시각적인 관찰 및 측정, 혈전 혈전 개발의 역학을 모니터링 수 있는 초음파 등 비-침략 적 기술에 의해 구상 될 수 있습니다. 점에서 짧은 시간 (1-6 h) intravital 현미경 직접 관찰 하는 이벤트 (예를 들면, 혈관 벽 세포의 모집)에 적용할 수 있습니다 혈전 형성을 앞. 세계의 여러 팀에서이 방법의 사용은 DVT 개시의 기본 메커니즘을 폭로 하 여 그 예방에 대 한 도움이 될 수 있는 잠재적인 대상을 식별 가능 했다.

Introduction

깊은 정 맥 혈전 증 (DVT) 깊은 정 맥에 혈전의 개발은 일반적으로 (그러나 뿐만 아니라) 다리에. 폐 색 전 증으로 접속사에 (PE; 정 맥 혈전 색 전 증, VTE로 함께 지정) 그것은 매년 약 900000 미국에서 개발 하 고 심각한 건강 문제와 경제적인 문제1,2를 나타냅니다. PE, DVT, 합병증 발생 한 혈전 초기 위치에서 분리 되 면 호흡기 부족 및 죽음을 일으킬 수 있습니다 폐에 도달. 사망자 VTE 초과 에이즈, 유 방 암, 교통 사고, 결합 된3에서 사망 합니다.

외에 DVT를 일으키는 주요 요인 이유, 알려진 암 등 외상, 이동성 4,5의 부족 이다. 이 수술 (특히 정형 외과), 마비, 장거리 항공편 또는 다른 이유에서 발생할 수 있습니다. 혈관에 혈액의 흐름 근육 펌프에 따라 달라 집니다과 그러므로 정체 혈액에 사지 immobilization 결과 정 맥 밸브에 혈전 증에 이르게 합니다. 여기에 설명 된 방법의 목적은 이러한 혈액 흐름의 왜곡6,7을 정리 하입니다. 열 등 한 베 나 정 맥 (IVC)에서 부분 흐름 제한 조건 인간의 정 맥 밸브에는 혈전의 형성에서 결과 인간의 혈전6구조에 비슷한 만든 모방 합니다. 혈전의 큰 부분 빨간색 이며 적혈구, 섬유 소, 혈소판의 구성 됩니다. 혈전 작은 "흰 부분" "의 선 잔" 인간의 정 맥 혈전에 설명 된 닮는 (그림 1), 혈소판에 풍부 하 게 있다. 혈전의 두 부분 포함 또한 호 중구8, 첫 번째 셀 미래 혈전6,9의 사이트에서 모집 중입니다. 반면 흰 부분에 호 중구 그물8없는 것 빨간 부분에서 중 성구 호 중구 extracellular 함정 (그물), 추방. 마찬가지로 인간의 DVT를 마우스에 혈전 증 동반 된다 높은 플라즈마 D 이합체 수준 (그림 2). 저 분자 무게 헤 파 린 (enoxaparin), 환자에 있는 DVT 예방에 사용 되는 또한 쥐에 혈전 증을 방지 합니다. 이 방법의 중요 한 장점은 인간의 DVT10의 특징은 내 피 노출9의 부재입니다. 이 기능을 사용 하면 IVC 협 보다, 혈전 증의 예를 들어 유도 DVT의 임상으로 더 관련 모델 제 2 철 염화 물, 내 피 노출을 유도 하 고 있는 혈전 혈소판11, 의 우위 하 게 구성 하 여 12,13. IVC는에 완전 한 스테이 시스의 모델은 여러 팀14,,1516선호 합니다. 협, 잔여 흐름, 선박에서 유지 달리 스테이 시스의 응용 프로그램은 완전히 흐름 멈추고 따라서 혈전 증 사이트를 체계적으로 관리 물질의 접근을 제한 한다. 또한, 그것은 혈전 증 협 착 증 및 혈 행에 의해 유도 된 기본 메커니즘은 다른 것 같다: 협 지역의 염증의 개발에 결과 (endothelium, Weibel Palade 본문 내용의 릴리스, 면역 세포의 채용의 활성화와 혈관 벽에 혈소판) 반면에 스테이 시스가 오히려 혈전 증을 일으킬 것 "immunothrombosis"6,,917, 원인 기반, 특히 조직 요소와 다른 응고 및 fibrinolysis 관련 메커니즘18,,1920. 따라서, 협 착 증 및 스테이 시스 모델 비록 그들의 메커니즘을 확실히 겹칠 수 있습니다 정 맥 혈전 개발의 약간 다른 측면을 반영 합니다. DVT21,22 의 전해 IVC 모델 (EIM)만 부분적으로 가려지는 혈관 벽 혈전을 유도 합니다. 따라서, 혈전 성장에 다른 약물의 조직 관리의 효과 테스트 하기 위해 편리 하다. 그러나,이 모델에이 메커니즘의 병 태 생리 관련성을 적어도 명백한 만드는 전기 전류에 의해 IVC 벽 무결성 (바늘의 삽입)의 파열 및 혈전 증의 유도 가정 합니다.

Protocol

모든 동물 절차는 동물 복지의 윤리적인 검토 기관 및 영국 홈 오피스 (영국, 프로젝트 라이센스 40/3745)에 의해 승인 되었다. 마우스 C57BL/6 배경, 8-12 주 오래 된, 두 남녀의 19-25 g 몸 무게에 사용 됩니다.

1. 동물 마 취

  1. 유도 챔버에 마우스를 놓고 5% isoflurane 100% 산소의 혼합물에 의해 마 취를 유도 합니다. 0.5 L/분의 유량 기다릴 마우스 완전히 이동 중지 될 때까지 사용 하 고 호흡의 주파수의 드문 된다.
  2. 상공에서 마우스를 제거 하 고 전기 깎기로 복 부를 면도. 복에서 복 부 구멍의 오염을 피하기 위해 가능한 철저 하 게 머리를 제거 합니다.
  3. 부정사 위치에 마우스를 놓고 마우스의 코 마 취 시스템에 연결 하는 콘에 배치 합니다. 2-3% (정확한 % 약간 다를 수 있습니다 동물 동물에서) isoflurane % 감소. 동물 평소 하지만 피하 헐 떡이 고 보다 낮은 되 고 그것의 호흡 속도와 자 고 있는지 확인 합니다. 경우 헐 떡이 고, 0.5 %isoflurane% 감소.
    1. 적절 한 anesthetization를 확인 하 고 부정적인 경우에 수술을 시작 하는 페달 반사를 확인 하십시오. 건조를 방지 하기 위해 눈에 수 의사 연 고를 적용 합니다.
  4. 안티-살 균 솔루션 적용 (1 %Hibitane) 마우스의 복 부 고 외과 사이트 (예를 들어, 원형 패션에 밖으로 안쪽)의 잠재적인 재 오염을 제외 하는 방법에는 꽃 봉 오리는 메 마른 목화를 사용 하 여 영역에. 3 회 반복 한다.

2. 응용 IVC 협 및 마우스 복구

참고: 모든 악기 뿐만 자료 (면봉, 거 즈, 식 염 수 )로 수술 영역을 접하는 살 균 되어야 합니다. 연산자는 수술 전에 스크럽 하 고 멸 균 장갑과 가운을 절차 중에 착용 해야 합니다. 현미경 핸들 살 균 호 일에 포장 되어야 합니다.

  1. 수술 전에 및 전체 실험 기간 동안 마우스 방지 통증 치료를 제공 합니다. 예를 들어 buprenorphine 0.1 mg/kg 피하 30 분 전에 수술 하 고 다음 12 시간 마다 동물 안락사 될 때까지 사용 합니다. 혈전 증이 방법에서 개발로 마찬가지로 살 균 염증,는 premedication으로 항 염증 제 약물을 사용 하지 않습니다.
  2. 무 균 드 레이프와 마우스를 커버 하 고 수술의 사이트 노출 드 레이프에 구멍을 만들. 가 위를 사용 하 여 복 부 중간, 흉 골에서 아래로 1.5 c m를 따라 절 개를 확인 합니다. 면봉을 사용 하 여 마우스의 왼쪽을 창 자 exteriorize 하 고 밖으로 건조 하지 않도록을 따뜻한 (37 ℃) 식 염 수에 젖은 멸 균 거 즈와 함께 그들을 커버.
  3. IVC와 함께 왼쪽된 신장 정 맥 IVC의 융합의 사이트에서 꼬리 방향으로 쪽 지점 (있을 수 있습니다 0, 1 또는 2 그들의) 확인 합니다. 7-0 불활성 Prolene 봉합으로 가능한 IVC 가까이 모든 보이는 측면 지점 선
    1. 하려고 하지는 집게와 측면 지점 오히려 직접 들고 한 손에 집게와 그들을 둘러싼 지방 조직의 그들을 올려 고 다른 손에 집게와 지점 아래 터널을 확인 합니다. 다시 분기를 가까이 하지 마십시오.
  4. 집게와 주변 조직을 잡고, 당겨 최대 IVC 및 긴장 사이 IVC는 대동맥 정확 하 게 는 IVC와 왼쪽된 신장 정 맥 사이의 각도에 작은 지역에서 생산 하는 왼쪽. IVC도 2-3 mm 아래 (꼬리 방향)에서 대동맥을 분리 하는 사실상 불가능 하다는 것을 고려.
  5. 에 당신의 오른손은 IVC와 대동맥 사이의 구멍 집게 팁 분기 움직임을 사용합니다. 명심에서 하십시오 더 많은 운동 했다고, 선박 손상의 더 높은 기회. 이상적으로, 3-5의 움직임의 수를 최소화 하십시오.
  6. 길이 약 2 m의 7-0 불활성 Prolene 봉합의 조각을 준비. IVC 주변에서 연산자의 왼쪽에는 마우스의 복 막 구멍에 그것을 배치 합니다.
  7. 당겨는 IVC와 왼쪽 다시. 팁은 IVC의 다른 쪽에 표시 오른쪽 집게 팁은 IVC와 대동맥 사이의 구멍에 삽입 합니다. (그림 3A) 구멍을 통해 봉합 및 다시 당기기를 가져가 라.
  8. 임시 매듭 봉합을 하지만 그것을 닫지 마십시오. 30g 바늘 ("스페이서") 걸으로 매듭으로 구부려 놓고 지금 (그림 3B) 닫습니다.
  9. (그림 3C) 스페이서를 제거 합니다.
  10. 창 자는 목화와 함께 복 막 구멍에 다시 버드와 그것에 그들을 동등 하 게 배포를 반환 합니다.
  11. 연속 루프를 사용 하 여 6-0 vicryl 봉합과 복을 닫습니다. 매듭으로 처음과 마지막 루프를 닫습니다.
  12. 가까운 피부 금속 물림 쇠를 사용 하 여입니다.
  13. 따뜻한 (37 ° C)의 0.5 mL 마우스 주입 피하는 유기 체의 액체 균형을 복원 하려면 포도 당 염 분.
  14. 따뜻한 (25 ° C) 챔버 또는 룸에는 개별으로 마우스를 배치 하 고 음식을 넣어 안에 물 젤. 마우스는 (일반적으로, 약 1 h) 완 치 될 때까지 관찰 합니다.

Representative Results

여기에 IVC 흐름 왜곡에 의해 유도 된 DVT의 모델 설명 되어 있습니다. 유도 IVC에 협 착 증의 왜곡을 시작 및 혈액 흐름의 그리고 후에 (이 경우 48 h) 동안 침체 결과 혈전, 구조적으로 유사한 인간 DVT의 개발에 혈전 (그림 1A). 내부는 IVC 혈전의 존재는 시각적으로 쉽게 감지 (그림 1B). 모델 및 인간의 DVT 사이 중요 한 유사성은 높은 플라즈마 D 이합체 수준 (그림 2). D-이합체 섬유 소 강 직의 제품 이며 혈액의 존재는 활성 thrombotic 과정 것 나왔다.

모델은 그림 3A-C단계 제공 됩니다. IVC는 신중 하 게 노출 하 고는 IVC와 대동맥 사이의 구멍을 만든 봉합 (Prolene 7-0)는 IVC 아래 구멍을 통해 뽑아. 다음는 IVC는 출혈 봉합에 의해 스페이서 (30g 바늘, 그림 3D)에 있는 공백 제거 후. 이 절차는 약 90%에 대 한 허용 특허 나머지 10%를 떠나 IVC 루멘의 폐쇄. 그러면 결국 혈전 증으로 이어지는 혈액 흐름 침체.

그림 4 모델, 가변 혈전 크기의 주요 단점을 보여 줍니다. 이러한 혈전 동일한 실험에서 가져온 모든 동일한 근원, 나이 및 유사한 체중의 야생 타입 남성 쥐에서 수행. 비록 모든 쥐의 혈전 (혈전 증의 유 병 율 100%)을 생산, 그들의 크기는 명확 하 게 넓은 범위에서 변화 한다.

Figure 1
그림 1: 48 h 제한/협 후 대표적인 혈전. (A) 전형적인 혈전 후 48 h IVC 협. 참고 빨간색 (적혈구 농축)과 화이트 (혈소판 농축) 부품. (왼쪽)와 (B) IVC 또는 (오른쪽)는 혈전 없이. 스케일 바 = 2 m m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 2
그림 2 : IVC 협 응용 프로그램 후 D-이합체 플라즈마 레벨 상승. 마우스는 IVC 협을 받게 했다. 혈액 표시 시간 포인트에서 찍은, 3.8% 나트륨 시트르산, 플라즈마와 안정된 1:9 원심 분리 (2300 x g, 5 분)에 의해 준비 되었다 및 D 이합체 수준 제조업체의 지침에 따라 ELISA 키트에 의해 결정 되었다. 원형 지정 운영 하는 가짜 쥐, 십자가 지정 IVC 협. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 3
그림 3: 제한/협 쥐에 있는 DVT의 열 등 한 베 나 정 맥 (IVC) 모델에서 흐름. 모델의 연속 단계 제공 됩니다. (A)는 IVC와 대동맥 사이의 구멍은 하 고는 봉합 주위는 IVC 통해 가져온. (B) 매듭 스페이서 (30g 바늘)에 닫힙니다. (C) 는 공백 제거: 외과 의사 보고 마우스를 닫기 전에 마지막 보기. 노란 점선은 IVC를 정합니다. 어브 왼쪽된 신장 정 맥에 대 한 의미합니다. 스케일 바 = 0.2 m m. (D) 스페이서 (30g 바늘). 스케일 바 = 2 m m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 4
그림 4 . 혈전 크기의 다양성
마우스는 48 h IVC 협을 받게 했다. 제시는 혈전 얻은 동일한 실험에서. 스케일 바 2. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Discussion

여기, 혈액 흐름 왜곡, DVT에 대 한 주요 트리거 요소를 모방한 IVC 협의 프로토콜 제공 됩니다. 48 h 이내 C57BL/6 마우스의 65-100%, 2-6 h6,,823 내 쥐의 25-50%에서 혈전의 개발을 유도 하는 IVC의 협 (Brill, 게시 되지 않은 데이터, 2016). 방법의 주요 한계는 혈전 크기24 (그림 4), 단기 (6 h) 및 장기 (48 h) IVC 협 후 관찰 되는 변화. 이러한 변화에 대 한 이유 (그 같은 조건, 공백, 같은 마 취 등, 사용 하는) 무명 남아 있지만 하나 그 해부학 추측 수 있습니다 마우스 (예를 들어, 너비 IVC, 번호 및 측면 및 후면의 위치 사이 변이 지점)이이 현상을 기반이 됩니다. 혈전 크기에 변화에서 주요 결과를 혈전 증 유행 한 혈전와 쥐의 (%)를 만든다. 혈전 증 유행 우발 테이블 및 피셔의 정확한 테스트를 사용 하 여 비교할 수 있습니다. 실험 중 하나 때 예외가 podoplanin 억제 항 체의 주입 7관찰 후와 같은 혈전 증 발병 률 감소 혈전 크기.

이 방법은 정 맥 혈전 증 개시 공부 때 특히 유용 하다. 그것은 혈관 벽의 혈전 증으로 결국 이어지는 세포의 모집 등에서 초기 이벤트를 조사 하 고 있습니다. 약의 프로 또는 안티 thrombotic 효과 혈전 증 보급 되 고 기본 판독으로이 모델을 사용 하 여 평가할 수 있습니다. 48 h에 대 한 협 6 h 협 prothrombotic 표현 형 경우 사용할 수 있는 반면 안티 thrombotic 형 공개에 적용 됩니다. 혈전과 주변 IVC 벽의 조직학 분석 또한 수행할 수 있습니다.

질문 여부 측면 분기 한다 출혈 또는 특허 왼쪽 열려 남아 있습니다. 한 그룹 측 분기의 결 찰 혈전 크기를 증가 하지 않는다와 IVC 결 찰 사이트에 1.5 m m 보다 더 사이드 지점의 위치는 극적으로 혈전 개발25손상 나타났습니다. 측면 지점 폐쇄 그들에 내 피 손상을 유발 하 고 또한 수술26시간을 증가 수 있습니다. 우리의 손에서 측면 지점 폐쇄의 부족 실질적으로 혈전 증 발병 률 (최저 48 h 협; 후 10-30% 감소 가자 미, 미 출판) 따라서 우리는 모든 보이는 측면 지점 선 고.

이상적으로, 마우스 같은 배경에 하지만 서로 다른 소스에서 약간 다른 혈전 증 유행 있을 수 있습니다 littermate 컨트롤을 사용 해야 합니다. (예, 생화학) 매개 변수에 DVT 자체의 효과 공부 하는 경우 가짜 운영 하는 동물을 사용 해야 합니다. 운영 하는 가짜 쥐 같은 절차를 거쳐야 하지만 IVC 주위 합자 느슨하게 폐쇄와 협 착 증을 생산 하지 않고 거기 왼쪽.

이 프로토콜에서 가장 빈번한 실수 (중요 한 단계) 대동맥과 일반적으로 출혈 귀착되는 약간 낮은 하지만 혈관 사이의 각도로 정확 하지 IVC 분리 하는 노력 이다. 경우는 출혈, 마우스의 좋은 복구 가능성 되 고 실험을 중지 하 고 동물을 안락사 하는 것이 좋습니다. 일반적으로, 쥐 잘 복구, 안에 이동한 실질적으로 무게를 잃지 않습니다. 우리 둘 다 남성과 여성 20 g 위의 쥐를 사용 하는 것이 좋습니다 하 고 싸움 하 고 부상을 피하기 위해 실험의 끝까지 수술 후 개별 장에 동물 (특히 남성)를 유지. 그것은 남성 쥐 암컷27보다 더 큰 혈전 생성 DVT의 또 다른 (전해) 모델에 보고 되었습니다. 데이터의 분석 하지 상당한 차이 혈전 증 유행 남성 및 여성 쥐 (가자 미, 미 출판)을 공개 했다. 따라서, 연구원은 두 남녀의 쥐에 IVC 협 모델을 사용 하 여 실험을 수행 하는 것이 좋습니다.

스테이플 봉합의 몇몇 수 수 배제 하지 특히 긴 실험 (주 그리고 더 이상). 따라서, 마우스 봉합 무결성을 위해 특별히 하루에 적어도 두 번 확인 해야 하 고 케이지 침구에 혈액 자취의 외관에 특별 한 주의 주어져야 한다.

그것은, 다른 동물 모델 처럼는 IVC의 협 인간으로 번역 면에서 한계가 있다 주목 해야한다. 예를 들어 murine IVCs 필요가 없습니다 밸브, 반면 인간의 DVT 정 맥 밸브 내부 개발. 또한, 인간은 혈관에는 중요 한 메커니즘 가속 혈 되 고 근육 펌프와 수직 척추 방향이 있다. 반면, 쥐 혈액 심장에 반환을 지 원하는 근육 펌프의 척추 방향 수평 역할 있다. 이러한 한계는 인간의 질병에 마우스 데이터를 변환할 때 고려 되어야 한다.

Disclosures

저자는 공개 없다.

Acknowledgments

이 작품은 영국 심장 재단 (PG/13/60/30406) 및 버밍엄의 대학에 의해 지원 되었다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
C57BL/6 mice Charles River 8 - 10 weeks old, bothe genders
Scissors WPI 15922
Scissors WPI 14003
Dumont 5/45 forceps FST 11251-35
7-0 Prolene suture Ethicon W8725
6-0 Vicryl suture Ethicon W9981
Cotton buds Spar
Millswabs sterile  Millpledge veterinary  611950
Drapes Kruuse 141765
Glucose Saline-Aqupharm3 Animal Care XVD589
Clear H20 HydroGel 98% sterile water  Clearh2o
Buprenorphine National Veterinary Supplies
Isoflurane vaporizer General Anaesthetic Services
IsoFlo 100% W/W inhalation vapour, liquid National Veterinary Supplies
Sterilizer Steri350 Inotech
Microscope Olympus SZX10 Olympus

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Heit, J. A. The epidemiology of venous thromboembolism in the community. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 28 (3), 370-372 (2008).
  2. Huang, W., Goldberg, R. J., Anderson, F. A., Kiefe, C. I., Spencer, F. A. Secular trends in occurrence of acute venous thromboembolism: the Worcester VTE study (1985-2009). Am J Med. 127 (9), 829-839 (2014).
  3. House of Commons Health Care Committee. The Prevention of Venous Thromboembolism in Hospitalised patients. The House of Commons. , (2005).
  4. Kuipers, S., et al. Travel and venous thrombosis: a systematic review. J Intern Med. 262 (6), 615-634 (2007).
  5. Lopez, J. A., Chen, J. Pathophysiology of venous thrombosis. Thromb Res. 123, Suppl 4 30-34 (2009).
  6. Brill, A., et al. von Willebrand factor-mediated platelet adhesion is critical for deep vein thrombosis in mouse models. Blood. 117 (4), 1400-1407 (2011).
  7. Payne, H., Ponomaryov, T., Watson, S. P., Brill, A. Mice with a deficiency in CLEC-2 are protected against deep vein thrombosis. Blood. 129 (14), 2013-2020 (2017).
  8. Brill, A., et al. Neutrophil extracellular traps promote deep vein thrombosis in mice. J Thromb Haemost. 10 (1), 136-144 (2012).
  9. von Bruhl, M. L., et al. Monocytes, neutrophils, and platelets cooperate to initiate and propagate venous thrombosis in mice in vivo. J Exp Med. 209 (4), 819-835 (2012).
  10. Sevitt, S. The structure and growth of valve-pocket thrombi in femoral veins. J Clin Pathol. 27 (7), 517-528 (1974).
  11. Witsch, T., et al. A novel hollow and perforated flexible wire allows the safe and effective local application of thrombolytic therapy in a mouse model of deep vein thrombosis. J Thromb Thrombolysis. 37 (4), 450-454 (2014).
  12. Shaya, S. A., et al. Comparison of the effect of dabigatran and dalteparin on thrombus stability in a murine model of venous thromboembolism. J Thromb Haemost. 14 (1), 143-152 (2016).
  13. Ni, H., et al. Persistence of platelet thrombus formation in arterioles of mice lacking both von Willebrand factor and fibrinogen. J Clin Invest. 106 (3), 385-392 (2000).
  14. Wrobleski, S. K., Farris, D. M., Diaz, J. A., Myers, D. D., Wakefield, T. W. Mouse complete stasis model of inferior vena cava thrombosis. J Vis Exp. (52), (2011).
  15. Diaz, J. A., Farris, D. M., Wrobleski, S. K., Myers, D. D., Wakefield, T. W. Inferior vena cava branch variations in C57BL/6 mice have an impact on thrombus size in an IVC ligation (stasis) model. J Thromb Haemost. 13 (4), 660-664 (2015).
  16. Siefert, S. A., et al. Enhanced venous thrombus resolution in plasminogen activator inhibitor type-2 deficient mice. J Thromb Haemost. 12 (10), 1706-1716 (2014).
  17. Schulz, C., Engelmann, B., Massberg, S. Crossroads of coagulation and innate immunity: the case of deep vein thrombosis. J Thromb Haemost. 11, Suppl 1 233-241 (2013).
  18. Day, S. M., et al. Macrovascular thrombosis is driven by tissue factor derived primarily from the blood vessel wall. Blood. 105 (1), 192-198 (2005).
  19. Diaz, J. A., et al. Impaired fibrinolytic system in ApoE gene-deleted mice with hyperlipidemia augments deep vein thrombosis. J Vasc Surg. 55 (3), 815-822 (2012).
  20. Zhou, J., May, L., Liao, P., Gross, P. L., Weitz, J. I. Inferior vena cava ligation rapidly induces tissue factor expression and venous thrombosis in rats. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 29 (6), 863-869 (2009).
  21. Diaz, J. A., et al. Electrolytic inferior vena cava model (EIM) of venous thrombosis. J Vis Exp. (53), e2737 (2011).
  22. Diaz, J. A., et al. The electrolytic inferior vena cava model (EIM) to study thrombogenesis and thrombus resolution with continuous blood flow in the mouse. Thromb Haemost. 109 (6), 1158-1169 (2013).
  23. Brill, A., et al. Extrahepatic high-density lipoprotein receptor SR-BI and apoA-I protect against deep vein thrombosis in mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 32 (8), 1841-1847 (2012).
  24. Diaz, J. A., et al. Critical review of mouse models of venous thrombosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 32 (3), 556-562 (2012).
  25. Brandt, M., et al. Deep vein thrombus formation induced by flow reduction in mice is determined by venous side branches. Clin Hemorheol Microcirc. 56 (2), 145-152 (2014).
  26. Geddings, J., et al. Strengths and weaknesses of a new mouse model of thrombosis induced by inferior vena cava stenosis: communication from the SSC of the ISTH. J Thromb Haemost. 12 (4), 571-573 (2014).
  27. Alvarado, C. M., et al. Male mice have increased thrombotic potential: sex differences in a mouse model of venous thrombosis. Thromb Res. 127 (5), 478-486 (2011).

Tags

면역학 문제 130 깊은 정 맥 혈전 증 murine 모델 열 등 한 베 나 정 맥 협 착 증
열 등 한 베 나 정 맥의 협 착 증: 깊은 정 맥 혈전 증의 Murine 모델
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Payne, H., Brill, A. Stenosis of the More

Payne, H., Brill, A. Stenosis of the Inferior Vena Cava: A Murine Model of Deep Vein Thrombosis. J. Vis. Exp. (130), e56697, doi:10.3791/56697 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter