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Behavior

定量的食物摂取の試金を組み合わせると強制的にショウジョウバエの食欲を勉強するニューロンを活性化

doi: 10.3791/56900 Published: April 24, 2018
* These authors contributed equally

Summary

着色食品と定量的食物摂取の試金を提供、高スループット意味摂食意欲を評価します。Thermogenetic と食料消費分析を組み合わせて光の画面は大人で食欲の神経回路を調査するための強力なアプローチとキイロショウジョウバエ

Abstract

食糧消費は、生理学的状態、嗜好、食品、および開始または給餌を停止するコマンドを発行の栄養の内容を統合する脳の厳格な管理下です。タイムリーかつ適度な送り制御に関連する生理学的な心理的な障害の理解に運ぶ主要な含意を餌の意思決定の基礎となるプロセスを解読します。単純な定量的、かつ堅牢な方法特定のターゲットのニューロンの活動を強制的に増やすなどの実験操作の後動物の食物摂取を測定する必要があります。大人のショウジョウバエの送り制御の遺伝研究を促進する色素ラベルに基づく摂食アッセイを紹介しました。利用可能な供給アッセイを確認して、thermogenetic を組み合わせて分析し、色素ラベル食品摂取量試金の摂食刺激を制御する神経細胞の光遺伝学的操作のセットアップから順を追って手法を述べる。利点と読者適切な試金を選択するために、他の餌アッセイと比較して, 本手法の限界についても述べる。

Introduction

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食品摂取量の定量化は餌 (飢餓状態) などで必要な内部および外部要因 (食品の品質および食味) など1,への応答では、脳によるコントロールのさまざまな側面を評価するために重要です2,3,4,5,6,7,8,9. 近年、ショウジョウバエの送り制御の神経基盤を解読の努力は直接摂取食品の量を定量化したりモチベーションを餌の指標として複数のアッセイの開発につながる10,11,12,13,14,15,16

キャピラリー フィーダー (カフェ) アッセイ12,13ガラス マイクロキャピ ラリーで液状の食品の消費量を測定するため開発されました。カフェ アッセイで高感度・再現性の高い17食品の消費、特に長期的な供給18を定量化するための測定が簡単になります。ただし、このアッセイは、マイクロキャピ ラリーの先端に登るとフィード逆さまにすべての株に適しているないハエを必要です。さらに、カフェ アッセイを用いたテストするハエは、流動食に飼育する必要がある、ために、これら代謝状態または潜在的な栄養失調の飼育の効果は決定するのまま。

テング拡張応答 (PER) アッセイ11,14食品滴の優しいタッチに向けたテング拡張機能の応答回数をカウントします。評価するための優れた方法として証明されるアッセイごと食味の影響や食品18,19のコンテンツ個々 のフライとロバの動機を供給します。しかし、摂取量の直接定量ではないです。

最近では、半自動式方法、餌アッセイ (アジア パシフィック)15マニュアルが開発されました。アジア パシフィック、1 つの固定されたフライは食品を含むマイクロキャピ ラリーを手動で供給されます。テング拡張応答と食物摂取を同時に監視できる、アジア パシフィックは栄養価と薬理学的操作の影響の評価に適しています。ただし、フライを固定可能性がありますパフォーマンスに悪影響その行動、摂食を含みます。

さらに、テングを飛ぶ、アクティビティ検出器 (FlyPAD)10が自動的に摂食行動を定量化する開発されました。マシン ビジョン メソッドを使用して、FlyPAD はフライと動機を餌の指標として頻度とテングの拡張の期間を定量化する食品の物理的な相互作用を記録します。感度とこのシステムの頑健性はより確認されてさらに残っているが、可動式のハエの摂食を監視する高スループット方法研究12FlyPAD を提供します。

ラベリング戦略は、ハエの食物摂取を推定するよく使用されます。化学トレーサーを食品にラベルを付けるし、授乳後摂取したトレーサーの食物摂取量を計算するの量を測定するが一般的です。放射性トレーサー16,17,20,21,22,23,24,25キューティクルによる検出を可能にします。なく、ハエの均質化。このメソッドは、著しく低い変動と高感度18を提供し、食品の摂取量の長期調査の実行可能なです。ただし、使用可能な放射性同位元素の可用性と吸光度と排泄量必要があります考慮するこのアッセイを操作するとき。

ラベリングと非毒性食品の色と食品摂取量をトレースは、安全でシンプルな代替の2,3,26,27,28です。ハエは水溶性と非吸収性の染料を含む食物と一緒に授乳後均質化し、摂取の色素の量は、分光光度計3,24,28,29 を用いて定量化は後.ラベリングの戦略を実行するはたやすいし、高効率を提供しますが、注意。摂取の色素から推定した食物摂取量が排泄開始 15 分早ければハエ17に送り込むので実際の量よりも小さい。さらに、アッセイは、短期的な摂食行動24,28の調査のためにだけ適している 60 分期間内通常食品を摂取を評価します。さらに、遺伝子型17、男女17など、複数の内部および外部要因交配状態17, 飼育密度30、概日リズム31,32、および食品の品質の3,8,16、影響食品の摂取量。したがって、給餌期間は、特定実験条件に応じて調整する必要があります。食品の色は食物摂取量の定量化を容易にするほか、食品の選択肢2,19,27を評価し、カフェ アッセイ12マイクロキャピ ラリーのメニスカスを視覚化するも使用されます。

色素標識による神経活動の結合のプロトコル操作を紹介します。この戦略は、大人の果実ハエ24の送り制御に関する私たちの遺伝研究に有用な証明されています。得点方法は、食品消費量の簡易推定したがって、タイムリーに系統の数が多いを通じて検診に便利です。画面からの候補者は、目的と追加調査で正確な定量を提供する比色法を用いて詳細に分析しています。

餌の試金のほか thermogenetic27,33,34,35と光36メソッドを強制的にターゲットショウジョウバエのニューロンを活性化について述べる。Thermogenetic、ニューロンをアクティブ化する操作が簡単・便利にショウジョウバエ過渡受容体潜在的アンキリン 1 (dTRPA1)、神経の興奮性を増加、温度と電位依存性陽イオン チャネルであるとき周囲23 ° C33,37; 上記の温度上昇します。しかし、高温動物をテスト動作に悪影響を及ぼすを生成可能性があります。ショウジョウバエのニューロンをアクティブにする別の効果的なアプローチが使っている光遺伝学 CsChrimson36ライトに露出されたときのニューロンの興奮性を増加チャネルロドプシンのレッドシフト バリアントであります。研究では、高い時間分解能と thermogenetics よりも動作にあまり障害を提供しています。神経活動の操作と食物摂取の定量的測定を組み合わせること供給の神経機構を研究するための効果的な方法を表します。

テストする授乳室とハエの準備について詳細に述べる。餮 Gal4ハエを使用すると、モデル24thermogenetics、光遺伝学による活性化ニューロンをについて説明します。染め分類された食糧と食糧消費の数量の 2 つの試金はプロトコルでも説明されます。

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Protocol

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1. 供給区域を準備し

注:染料ラベル供給の試金のため餌の商工会議所は、2 部構成: (カバー) と外のコンテナーと内側 (食物) としてコンテナー。

  1. (31.8 mm の内部の直径) と 80 mm の高さを持つショウジョウバエを培養するためガラスの瓶から外のコンテナーを変更 (図 1 a, 1 C)。餌のセットアップを正しく保つために 1% の agarose (5 mL) の層で容器の底加湿歩く (図 1 b) 時にハエの柔らかい基質として機能でカバー。コンテナーはそれにより最小限のストレスやハエに外乱を運ぶ制御するが、自然主義的な設定を提供します。
    1. 外の容器を準備します。頻繁に撹拌、熱、二重蒸留水を 50 mL の agarose の 0.5 g を中断し、沸騰熱板取付けマグネチックスターラーで完全に溶解します。
    2. とき約 60 ° C に 1% のアガロース冷却 5 mL の 1% の agarose を空のコンテナー (図 1 b) の外部に転送し、コンテナーは、アガロース パッドを生成するための部屋の温度に冷却するまで開いたまま。
  2. 食品の色素標識を準備します。染料ラベル食品の組成は、異なった実験目的によって異なります。ショ糖のみを含む色素ラベル食品を準備する例です。
    1. 頻繁に撹拌、熱、二重蒸留水を 50 mL に agarose の 0.5 g を追加し、沸騰熱板取付けマグネチックスターラーで完全に溶解します。
    2. 上記の 1% の agarose を約 60 ° C に冷却、ショ糖の 1.71 g を 100 mM ショ糖を取得するアガロースに追加します。
    3. アガロース溶液 0.5% (w/v) 色素標識食べ物を得るために青い色素 (erioglaucine ナトリウム) の 0.25 g を追加します。
  3. 内部を準備コンテナー。平坦な水平サーフェス上のコンテナー内空を置くし、追加 750 μ L の個々 の食品コンテナーに青い色素ラベル食品では、少なくとも 5 分を固めるせて。
    注:内部コンテナーは 13.6 mm の内部の直径と高さ 7.5 mm (図 1 a 1 C) 小さなプラスチックの皿。染料ラベル食品でいっぱいですしては外のコンテナーの agarose パッドの中心に配置されています。
  4. 準備された外のコンテナーにコンテナー内に転送、アガロース パッドのセンターに配置。外容器の壁が結露の無料になるまで 40 分間室温で開いたまま授乳室ができます。
    注:乾式壁は、ハエが水滴に連絡して壁に立ち往生しているを防ぐために必要です。
  5. 色素フリー食品と授乳室を準備 (同じ組成なくて染料) バック グラウンド減算。

2. ハエの準備

注:大人の女性は、5 に 10 日後、羽化は通常使用の試金を餌に飛ぶ。遺伝的コントロールを含む、異なる遺伝子型のハエを準備して並列でテストすることをお勧めします。(1 つの餌箱) から 20 ハエは、1 つのデータ ポイントを生成します。

  1. 成虫を飼育の人口密度を検討してください。通常、緊張によると親のハエの数と培養ボトルの寸法を変化させることにより人口密度を制御します。例として、(31.8 mm の直径)、80 mm の高さを持つ文化ボトル 15 男女カントン-S の 30 名に転送させ 1 日それから大人のハエの卵を産む女性。
  2. Thermogenetic の活性化のためには、ハエを準備します。
    1. UA dTrpA1 飛ぶ異なる GAL4 ドライバー行 (図 2 b) との交雑による様々 なニューロンの dTRPA133を表現する Gal4/UAS システム38を使用します。
    2. 22 ° C、相対湿度を 60%、12 時間/12 時間の明暗周期で標準的な食品の成虫を維持します。
    3. アッセイの 2 日前の給餌、並べ替えと生鮮食品のバイアルにステレオ顕微鏡下で CO2フライ パッドのハエを収集およびバイアルあたり 20 ハエの密度を保ちます。
  3. 光活性化のためには、ハエを準備します。
    1. 別の GAL4 ドライバー行を横断 UA CsChrimson ハエによって CsChrimson36異なるニューロンを表現する Gal4/UAS システム38を使用します。
    2. 新しく (24 h) 内でこのハエを収集し、400 μ M のすべて-トランス-レチナールを含む標準的な食品のバイアルにそれらを転送します。
    3. 早期活性化を防ぐためには、アルミ箔と飼育容器をラップし、不要な光の刺激からハエを保護するために暗いボックスに入れます。25 ° C、4-6 日の暗闇の中で湿度を 60% にハエを保ちます。
    4. 2 日前の給餌試験種女性ステレオ顕微鏡下で CO2フライ パッドの上飛ぶ。1 つの食品のバイアルに 20 ハエを収集し、テストが給餌前に暗闇の中でそれらを保ちます。
    5. 周囲の光による影響を避けるためにできるだけ早く薄明かりの下ですべての操作を行います。作業領域から遠くに置かれた LED ランプを使用して、作業領域での強度は 5 μ/cm2
      注:飢えた使用カントン S 飛ぶ餌の試金のための肯定的な制御として。食品のこれらのハエを奪うし、給餌テスト前に 24 h の 1% アガロースゲルの維持します。これらのはえの食糧消費のレベル日常的な変動を評価するのに役立ちます。

3. thermogenetic の活性化

  1. 概日リズムによる変化を最小限に抑えるため同調因子時間 4-631,32、周りの日の同じ時間ですべての給餌実験を行います。
  2. 暖房環境としてインキュベーター (または温度制御ヒーターの小部屋) を準備します。
  3. 行動実験の前に (30 ° C) 実験的温準備供給室を平衡させ、温度が授乳室で相対的な制服を確認する 2 時間。
  4. 供給プロセスを開始するには、慎重に転送 20 ハエの家バイアルから予熱した授乳室に穏やかな軽くたたくことによって。60 分. (図 3 a) 30 ° C で給餌を続行します。
    注:頻繁に扇動、摂食行動に悪影響をインキュベーターのドアの開閉のようこうしては最小限で済みます。
  5. 30 分間、60 分-80 ° C (または-20 ° C) で授乳室を凍結による栄養補給を停止します。
    注:凍結は、同時にすべての部屋で授乳を停止するのに役立ちます。凍結-80 ° C で飛ぶハエを安楽死させると 1 週間均質化までのストレージの 2 つの目的を提供しています。
  6. 温度コントロール グループの染料色食品 22 ° C, 60 分で餌のプロセスを開始するとチャンバーを供給部屋の温度に 20 ハエを転送します。
  7. 30 分間凍結室-80 ° C (または-20 ° C) の温度コントロール グループの供給を停止します。

4. 光の活性化

  1. 概日リズムによる変化を最小限に抑えるため同調因子時間 4-631,32、周りの日の同じ時間ですべての給餌実験を行います。
  2. 1 バイアルから穏やかな軽くたたくことによって餌室に 20 ハエを慎重に転送し、照明のセットアップ (図 4 a, 4 b) 商工会議所横にします。
    1. 光遺伝学的操作、オレンジの Led の配列を使用 (607 nm) 光刺激と餌をサポートする Led 上水平プレキシ ガラス プレート室照明の中に修正のソースとして。インキュベーターに湿度 60% (図 4 a, 4 b) 25 ° C でのセットアップをしてください。
    2. 並行して遺伝的制御ハエを刺激、餮 > CsChrimson 、ハエが、別に授乳室。
  3. オレンジ色の光によってバックの照明と 60 分のための供給プロセスを続行します。
    1. 実験的研究のための最適な照明強度を決定する36餮 > CsChrimson 餮を刺激するために 0.1 mW/mm2の中間強度を使用して、ハエ、2.2 mW/mm2の強度したがって麻痺 (歩行の停止) と姿勢制御の損失を誘発します。> CsChrimson給餌テスト中に飛ぶ。
  4. 30 分間凍結-80 ° C (または-20 ° C) で授乳室で授乳を中止します。

5 食品消費の視覚的評価

注:得点方法は、視覚は、食品消費の半定量的推定を提供します。光法、客観的である、タイムリーに適して最初のそれ以上のテストのための候補者のリストをすばやく絞り込むに遺伝学的スクリーニングのラウンドに飛ぶ系統の数が多いを介して行くためこのメソッドができます。

  1. 供給プロセスの後麻酔し、得点は CO に乗って飛ぶ2ステレオの顕微鏡の下で飛ぶパッド。ボリュームと (図 2 a) 腹部の色素着色された食品の強さに基づいて各フライに個々 のスコアを与えます。
    注: 視覚的評価基準: スコア システムが別のボリュームと腹部に着色した食品の強度に対応する食品の摂取量の 4 つのレベル。
    1. スコアが 0 のスコア検出の染料色の食べ物がなくても飛ぶこれらのかすかな (かろうじて検出可能) 青い色素や腹部の容積の 3 分の 1 未満を占める色素着色された食品に 1 のスコアを与えます。
    2. 腹部の半分を占める強烈な色素着色された食品とハエのスコア 2 のスコア。
    3. 腹部の半分を超える強烈な染めコンテンツ占領とのそれらはスコア 3 (図 2 a) のスコアです。
  2. 各実験条件 (図 2 b) で異なるスコアとハエの割合を計算します。

6 食料消費の比色定量

  1. 給餌停止を注ぐ授乳からすべての 20 ハエ部屋の一枚紙の重量を量るにし、柔らかいブラシを使って 1.5 mL チューブにそれらを転送します。
    注:冷たい部屋に結露のため商工会議所壁に付着してハエを避けるために同時に-80 ° C のストレージの部屋のすべてをしないでください。
  2. チューブに PBST の 500 μ L を追加し、60 Hz で 5 の粉砕機を使用してハエを均質化 s。
    1. 体の部分の検出可能なフラグメントがないとき観測による十分な均質化を確認します。
  3. がれき 13,000 rpm で 30 分間乳剤チューブをスピンします。
  4. 遠心分離の後 96 ウェル プレートのウェルに清の 100 μ L を転送します。
  5. すべてのサンプルをロードした後は、630 でサンプルの吸光度を測定するプレート リーダーに皿を置く nm。
  6. バック グラウンドの吸光度を取り外すには、青い食品供給ハエから上清の吸光度から色素なし食品供給のハエから培養上清の吸光度を引きます。
    注:この手順は省略可能、使用食品の組成に応じて。(染料) なしはえの食糧が 630 で吸光度を生成するとき nm、バック グラウンドを除去するためにこの手順を実行する必要があります。

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Representative Results

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Thermogenetic 画面。

食欲異常増加が高い食物摂取、生理的欲求に関係なく発生します。高スループットを設計するこの方式を利用神経細胞の遺伝的ハンドルを取得行動画面飢餓に関連、飽食状態 (図 1)。画面には、餮 Gal424が得られました。餮 Gal4ニューロンが 30 ° C で強制的にアクティブ化されたとき、餮 > TrpA1 (図 2図 3) コントロールよりも食品の摂取のより多くの数量を飛ぶ。

食品消費量を視覚的に得点。

我々 は NPF20, sNPF39, オクトパミン21、ドーパミン27,を含む対応する GAL4 ラインをテストしているため、いくつかの神経伝達物質や神経ペプチドを摂食行動の調節に指示すると、40、セロトニン41,42、AKH35、および Dilp27,8,35。摂食応答を定量化するには、視覚検査し、腸内 (図 2 a) で検出可能な染料の様々 な量のハエを獲得します。ニューロンの約 58% の活性化後餮 > dTrpA1ハエ強い摂食、これら示した穏やかな摂食行動 (図 2 b) の 23% を展示しました。対照的に、のみ限界摂食は他のニューロンを介して活性化とハエで観察されたdTrpA1 (図 2 b)。

食物摂取量の比色定量。

高精度と客観性と食品摂取量を定量化するには、フライ食品2,27,28に追加された色素をエクストラクション特定波長の吸光度を測定しました。食物摂取量吸光度値に関連付ける、標準曲線サンプル ソリューション (ハエ、PBST を均質化のため同じバッファー) の吸光度を測定することにより得られた染料の量が異なると混合)。我々 の結果が示すよう急性餮 GAL4ニューロンによってアクティブ示唆 TRPA1 劇的に向上した食物の摂取が同じテスト期間 (図 3 b) の間に遺伝的制御、温度制御と比較して、 餮 GAL4標識細胞は大人のショウジョウバエの食物摂取の規制に参加します。

ショウジョウバエの食物摂取を促進する光活性化。

UA-CsChrimsonを使って、オレンジ光36 (図 4 a, 4 b) 照射による餮ニューロンをアクティブ化です。とき餮 > CsChrimsonハエが 607 で LED ライトによって刺激された nm、彼らはコントロール (図 4) よりもはるかに多くの食品を摂取しました。さらに、摂取した食物の量は刺激光 (図 4) の強度とよく相関します。したがって、dTrpA1 と thermogenetics、ほか餮ニューロンにおける CsChrimson と光活性化も飽き飽きしハエの摂食意欲を促進します。

Figure 1
図 1.成虫の食欲を分析するための餌パラダイム。(A) 授乳室を含む内部色素着色された食品と 1% の agarose で埋められます外コンテナーの入った容器。左から右へ、内側からコンテナー、外側のコンテナー、および完全な授乳室。(B) 内部コンテナーは外の容器の底に agarose パッドの上に座っています。(C) 授乳室の平面図です。(D) A 図「食欲スクリーン」実験。正常な飽食はえほとんど食べ (左バイアル)、強制的にアクティブ化中給電制御細胞の発火原因飽食ハエ従って腹部 (右バイアル) の染料色の食品を展示、追加で食料を摂取します。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 2
図 2.食品摂取の視覚的評価します。(A) 手本画像腹部に食品の含有量をスコアの条件を表示します。(B) 30 ° C で dTrpA1 によって作動する示されたニューロン ハエのスコアの分布いいえ Gal4: UA dTrpA1 (遺伝的コントロール);NPF GAL4: ニューロペプチド F 陽性ニューロン;sNPF GAL4: ニューロペプチド F 肯定的なニューロンをショートTDC1 GAL4 と TDC2 GAL4: オクトパミン ニューロン;TH GAL4: ドーパミン ニューロン;5 HT: セロトニン ニューロン;AKH: adipokinetic ホルモン陽性ニューロン;dip2: インスリン様ペプチド 2 肯定的なニューロン;餮 GAL4: 餮 GAL4 ラベル ニューロン (n = 条件あたり 120 ハエ)。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 3
図 3.Thermogenetic の活性化餮ニューロン成虫の食物消費量が増加します。(A) イメージは、thermogenetic の活性化実験のセットアップを示しています。30 ° C の定温器で給餌試験を行った(B) 30 ° C 以上 22 ° C、1 h.で飽き飽きしハエの比色定量による食品消費テスト1 つのフライの食品消費量を算出した 1 餌槽 20 ハエの (n = 6)。n. s. が重要ではないことを示します (p > 0.05);p < 0.001。テューキー投稿アドホックテストに続いて一方向の分散分析は、多重比較を分析に使用されました。誤差範囲を示す平均 ± SEM.この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 4
図 4.餮ニューロンの活性化の光強度に依存した方法で食品の摂取量の増える。(A, B)光活性化のためのセットアップの 2 つのビュー。授乳室は、オレンジの Led の配列によって支え板の横と下からライトアップを解雇されました。照明ボックスの前面を内外に示す削除された Led。行動実験は、25 ° C、相対湿度 60% でインキュベーターの中行われました。(C) 示された遺伝子型または 1 時間暗闇の中で光照射下でテストしたときの飽き飽きしハエの食品消費量 (n = 6)。(D) 食品摂取で飽きた餮 > CsChrimsonハエは照度との相関 (n = 6)。n. s. が重要ではないことを示します (p > 0.05);p < 0.001、テューキー投稿アドホックテストに続いて一方向の分散分析は複数の比較、スチューデントのtを分析に使用された-の 2 つのグループの比較テストします。誤差範囲を示す平均 ± SEM.この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

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Discussion

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このレポートは、thermogenetic のコンテキストにおける食料消費の染料ラベル供給の試金の技術的なプロセスに焦点を当てと神経細胞を操作する光遺伝学的活性化制御を供給します。このシンプルで信頼性の高いプロトコルは、候補送り制御、ハエ、嗜好を測定し、供給ベース遺伝的画面24を介して給電制御回路の新規プレーヤーを識別するニューロンの働きを解明するのに役立ちます。

戦略を標識色素は、短期的な摂食行動を調査不可能です。染料、erioglaucine ナトリウムに溶解し、食物と一緒に摂取は、食生活の重要な指標です。デシュパンデらを示した青い色素自体がカフェ アッセイと分類の食品摂取量の試金17放射性同位体の両方で測定したときの供給に及ぼす影響を示さなかった。同様に、ハエが色素標識または色素フリーの食品に対する彼らの反応に大きな違いを起こしません (色素標識または色素フリーの 100 mM ショ糖液とハエの脚を刺激) あたり結果が示されます。ただし、染料がショウジョウバエの味かどうかについて明確なデータはまだありません。

その上、重要なステップは、テストするハエの状態のプロトコルは、一般に特に注意で示されます。飼育され、非密集密度で維持、ほかハエは慎重に処理する必要があり、餌の一貫性のある結果を生成するために不要なショックやストレスを避けてください。

紹介餌パラダイムには、特定の制限があります。最初に、私たちの方法は、60 分にわたって食糧消費を定量化します。など、日の長い期間にわたって食品摂取量を評価するには、カフェなどの別の方法が必要になります。第二に、放射性同位元素を用いた定量化法と比較して、比色法です少ない敏感な食糧消費量が低い場合の相違を解決することは困難第三に、いくつかのハエ給餌開始後 15 分早ければ放電を始めることを考慮して、このプロトコル実際に測定食物摂取と排泄人口17の最終的な結果。第四に、ここで説明した食物摂取量の比色定量だったフライのグループ、1 つのフライの食物摂取の推定によって異なります他餌の試金は、放射性同位元素標識など、アジア パシフィックの試金、または FlyPAD。それにもかかわらず、いくつかの単純な安定した、表示、および高スループット方法などの食品の摂取量の比色定量の利点のため株の大量の定量化のための第一選択特に供給ベース遺伝的画面およびフォロー アップの調査。

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Disclosures

著者は競合する金銭的な利益を宣言しません。

Acknowledgments

この仕事は基本的な研究プログラムの中国国家 (2012CB825504)、国家自然科学基金、中国の (91232720 および 9163210042)、中国アカデミー科学 (CAS) の (GJHZ201302 および QYZDY SSW SMC015) 部分で支えられましたビルとメリンダ ・ ゲイツY. 朱の ca 財団 (OPP1119434)、および 100 の才能プログラム。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
UAS-CsChrimson Bloomintoon 55135
UAS-dTrpA1 Bloomintoon 26263
TDC1-GAL4  Bloomintoon 9312
TDC2-GAL4 Bloomintoon 9313
sNPF-GAL4 Provided by Z. Zhao
NPF-GAL4 Provided by Y. Rao
TH-GAL4 Provided by Y. Rao
5-HT-GAL4 Provided by Y. Rao
AKH-GAL4 Provided by Y. Rao
dip2-GAL4 Provided by Y. Rao
Taotie-GAL4 Provided by J. Carlson
Agarose Biowest G-10
Sucrose Sigma S7903
Erioglaucine disodium salt Sigma 861146
all-trans-retinal  Sigma  R2500 stored in darkness
Triton X-100 Amresco 9002-93-01
Fly food 1 L food contains: 77.7 g corn meal, 32.19 g yeast, 5 g agar, 0.726 g CaCl2, 31.62 g sucrose, 63.2 g glucose, 2 g potassium sorbate, pH   
 1x PBS buffer  1 L 1X PBS contains: 8 g Nacl, 0.2 g Kcl, 1.44 g Na2HPO4, 0.24 g KH2PO4, pH 7.4
PBST buffer 1X PBS with 1% Triton X-100
 Grinding mill Shang Hai Jing Xin Tissuelyser-24
Incubator Ning Bo Jiang Nan HWS-80
Magnetic stirrer with a heat plate Chang Zhou Bo Yuan CJJ 78-1
Spectrometer Thorlabs CCS200/M
Microplate Spectrophotometer Thermo Scientific  Multiskan GO Type: 1510, REF 51119200
Fluorescence stereo microscope  Leica  M205FA
Stereo microscope Leica  S6E
Outside container Jiang Su Hai Men glass vial with a diameter of 31.8 mm and a height of 80 mm (inside dimension)
Inside container  Beijing Yi Ran machinery factory plastic dish with a diameter of 13.6 mm and a height of 7.5 mm (inside dimension)
1.5 mL Eppendorf tubes Hai Men Ning Mong
 96 well plate Corning Incorporated  Costar 3599
LEDs Xin Xing Yuan Guangdian 607 nm, 3W  https://item.taobao.com/item.htm?id=20158878058

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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定量的食物摂取の試金を組み合わせると強制的に<em>ショウジョウバエ</em>の食欲を勉強するニューロンを活性化
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Jiang, L., Zhan, Y., Zhu, Y. Combining Quantitative Food-intake Assays and Forcibly Activating Neurons to Study Appetite in Drosophila. J. Vis. Exp. (134), e56900, doi:10.3791/56900 (2018).More

Jiang, L., Zhan, Y., Zhu, Y. Combining Quantitative Food-intake Assays and Forcibly Activating Neurons to Study Appetite in Drosophila. J. Vis. Exp. (134), e56900, doi:10.3791/56900 (2018).

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