Summary
Мы разработали сухого типа 16-канальный ЭЭГ датчик, который является неинвазивным, деформируемых и многоразового использования. Этот документ описывает весь процесс от производства, предлагаемой электрода ЭЭГ для обработки визуальных вызванных потенциалов (VEP) сигнала сигналы, измеренная на волосистой части головы мыши, с помощью сухой неинвазивные многоканальной ЭЭГ датчика.
Abstract
Для скальпа ЭЭГ исследования сред с лабораторных мышей мы разработали сухого типа 16-канальный ЭЭГ датчик, который является неинвазивным, деформируемого и многоразового использования из-за структурных аспектов поршень Весна ствол и механических сильные, вытекающие из металла материалы. Весь процесс приобретения ВЭП ответы в естественных условиях от мыши состоит из четырех этапов: Ассамблеи (1) датчик, (2) животных подготовки, (3) ВЭП измерение и обработка сигналов (4). Этот документ представляет представителя измерения ВЭП ответов от нескольких мышей с разрешением субмикро напряжения сигнала и югу сотен миллисекунд временного разрешения. Хотя предложенный метод является более безопасным и более удобным по сравнению с ранее сообщалось животных ЭЭГ эквайринга методы, остаются вопросы, включая как повысить соотношение сигнал шум и как применить этот метод с свободно перемещающихся животных. Предложенный метод использует легко доступных ресурсов и показывает повторяющиеся ВЭП ответ с удовлетворительным сигнала. Таким образом этот метод может использоваться для продольной экспериментальных исследований и надежной трансляционного исследования, использования неинвазивной парадигмы.
Introduction
Как количество больных старческого дегенеративных мозга таких, как деменция, болезнь Альцгеймера, Паркинсона синдромы и инсульта увеличились с старение населения и увеличение продолжительности жизни, имеет долгосрочные социальные бремя этих заболеваний также увеличено1,2,3. Кроме того большинство психомоторного развития болезней, таких как шизофрения и аутизмом, сопровождаются когнитивных и поведенческих расстройств, влияющих на пациента всю жизнь2,3,4. По этой причине исследователи стремились улучшить диагностики, профилактики, патологических понимания, долгосрочное наблюдение и лечение заболеваний головного мозга. Однако проблемы остаются вытекающие из сложности и нераскрытой болезни патологий мозга. Трансляционного исследования может быть перспективным инструментом для выявления решений, поскольку он позволяет передачу фундаментальных исследований клинических приложений в более короткие сроки, при более низких затратах и с более высоким показателем успеха в неврологии поля5 ,6,7. Еще одна цель трансляционного исследования — изучить применимость в человеке, который требует неинвазивные экспериментальных подходов в животных, которые позволяют сравнения на тот же метод для людей. Эти условия привели к несколько значительных потребностей для разработки методов неинвазивной животных подготовки. Один метод — электроэнцефалография (ЭЭГ), который показывает коры мозга подключения и активность координате с высоким временным разрешением, и что выгоды от неинвазивные протокола. События, связанные с потенциальным запись (ERP) является одним из типичных экспериментальных парадигм, которые используют ЭЭГ.
Были использованы многочисленные предыдущие исследования занятых неинвазивные ЭЭГ методы для ориентации людей вопросов, тогда как инвазивные методы, такие как имплантата винты и полюс Тип электродов, в исследованиях на животных8,9,10 , 11 , 12. качество сигнала и характеристик этих методов значительно зависят от инвазии размещение сенсора. Для успешного трансляционного исследования, Гарнер подчеркнул, используя одинаковые условия для исследования животных, которые используются для исследований человеческого13. Для фундаментальных исследований с использованием животных однако, неинвазивные методики ЭЭГ не распространены. Новаторский подход с использованием неинвазивные скальпа ЭЭГ датчик системы упором на лабораторных мышах бы надежным и эффективным инструментом для трансляционного исследования, которые могут быть применены к неинвазивной парадигмы для людей, а также.
Многочисленные исследования мыши ЭЭГ повел по коммерциализации ПХД (печатная плата) на основе многоканальные электроды14,,1516. Хотя они приняли инвазивный метод, они имеют ограниченное количество каналов (3-8), которые сделали это труднее наблюдать динамику крупномасштабных мозга. Кроме того приложения могут ограничиваться их инвазии и высокой стоимости. В другом исследовании KIST (Корейский институт науки и технологии) разработал 40 каналов на основе полиимидных тонкопленочных электрода и прикрепить его к мыши череп17,18,19,20 . Эта работа получила наибольшее количество каналов мыши ЭЭГ. Было, однако, механически слабы и не легко для повторного использования; Поэтому неуместно для долгосрочных наблюдений, ведущих к ослабленной сигнал, возможно вызванной иммунной реакции. Тем временем Тронкосо Межеван приобретено и сенсорные вызванный потенциал (SEP) на грызунов черепа электродами тридцать два из нержавеющей стали, обеспеченные перфорированные21,Poly(Methyl methacrylate) (ПММА, акриловое стекло) сетка22 , 23. Несмотря на их высокий сигнал качества, электроды были механически гибкими и нежная; Таким образом они столкнулись с трудностями, применяется несколько экспериментов. Кроме того этот метод был по-прежнему минимально инвазивные. Хотя эти методы обеспечивают качество хороший сигнал, площадь поверхности мыши черепа ограничен, поэтому количество электродов ограниченным использованием нержавеющей мачтового типа электрода. Ряд предыдущих исследований ЭЭГ для мышей показало ряд ограничений. В этом исследовании мы будем показывать новый метод измерения ЭЭГ, применимых в доклинических трансляционного исследования с использованием неинвазивные датчик многоканальный сухого типа.
Для того, чтобы преодолеть ограничения предыдущих животных ЭЭГ методологий, которые включают внутреннюю сложность подготовки животных, инвазивность, высокой стоимости, расточительности и слабая механическая прочность, мы стремились разработать новый электрод, которая exhibits гибкость, статус сухого типа, многоканальный возможностей, без инвазии и многократному. В протоколе ниже мы опишем процесс измерения визуальные вызвала потенциальных (VEP) записей на волосистой части головы мыши, с помощью сухой, неинвазивный, многоканальной ЭЭГ датчик. Этот метод использует легко доступных ресурсов, поэтому снижение барьер для вступления в животных экспериментов в области биомедицинской инженерии.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Уход за животными и обработки после институционального руководства Кванджу институт науки и технологии (ГИСТ).
Примечание: Процедура получения ВЭП сигнал от мыши в vivo состоит из четырех этапов: Ассамблеи (1) датчик, (2) животных подготовки, (3) ВЭП измерение и обработка сигналов (4).
1. датчик Ассамблея
- Подготовьте шестнадцать булавки для одного неинвазивные электрода.
Примечание: Каждый электрод pin типа состоит из трех частей: зонд головы поршень, внутренней весной и ствола, как показано на рисунке 1a. Длина каждого ПИН-13 мм, и регулируемый весной предварительной нагрузки составляет 1 мм. - Вырезать двух кусков стекла волокна субстратов (толщина: 1,5 мм) с размером 15 × 17 мм (ширина × высота).
Примечание:-Проведение стекловолокна субстрат функции как изолятор, который отделяет несколько сигналов одновременно приобрела от мыши волосистой части головы. - Сделать шестнадцать отверстий диаметром 1,2 мм с помощью машины гравировки точности, как показано на рисунке 1 c.
- Разложить зонд координации равномерно с интервалом 2 мм на плоской подложке: + 7 0, + 2 + 2 /-2, 0, + 2 / + 2, 0/4, 0 /-2, 0/0 (bregma), 0 / + 2, 0 / + 4, -2-3, -2 /-1, -2 / + 1, -2 / + 3, -4 /-2, -4/0 , -4 / + 2 (переднезаднем/боковое с основы bregma, в мм)24,25,26.
- Стек две субстратов и нанесите одну каплю быстродействующий клей клей между слоями субстрата, производит двойной слой толщиной 3 мм, поддерживая шестнадцать стабильной и параллельных электроды во время приобретения сигнала.
- Соберите шестнадцать электродов на подложку по одному вручную.
Примечание: Меньший диаметр отверстия останавливается каждый электрод на той же длины. Каждое отверстие диаметром немного меньше, чем толстые диаметр ствола в рамках единого pin (1,3 мм), который позволяет жесткой фиксации электродов без каких-либо ослабление. - Припой и связать каждый электрод окончания припой Кубок часть к разъему доказательство касания.
- Обложка и скрыть голые развязок с Термоусадочные трубки для электрической изоляции.
2. животных подготовка
- Анестезировать мыши с инъекции внутрибрюшинного (и.п.) ketamine:xylazine объему (100 мг / mL:10 мг/мл) смесь с количеством 10 мкл/г веса тела.
Примечание: Проверьте животного анестезии адекватного потянув ногу или настройки хвост перед началом подготовки. - Примените Глазную мазь для держать мышь роговицы влажным ватным тампоном.
- Удаление волос вокруг головы и плечи с клипер волос и затем распространять коммерчески доступных депиляционный крем и держать его в этой области для 3-4 мин.
- Удаление прикладной для депиляции с шпателем, а затем протрите вверх остальные с влажных салфеток, применением воды несколько раз.
3. ВЭП измерения
Примечание: Вся ВЭП измерения процесса состоялась в темные клетки Фарадея (ширина × глубина × высота: 61 × 61 × 60 см).
- Подключите мышь голову на Стереотаксическая рама, поместив уха баров в мыши каналов уха и ужесточения их именно в месте.
- Установите датчик в заказных Электрододержатель (рис. 1b) и исправить держателя датчика на Стереотаксическая рама, как показано на рис. 1 d.
- Найдите гибкий датчик ЭЭГ, учитывая исходное положение электрода и bregma позиция27. После этого очень осторожно опустите датчик в вертикальном направлении так что выстроились электрод плунжеров связаться с головы мыши равномерно на изогнутые разницы.
Примечание: Опустил расстояние меньше чем 1 мм, что регулируемая длина плунжера. - Проверьте, что сопротивления находятся в пределах надлежащего от 100 kΩ до 2 MΩ. Изменить положение электрода, когда любое значение импеданса ПИН находится вне диапазона28.
- Разместите фото стимулятор 20 см от глаз мыши.
- Перед началом эксперимента, адаптировать мышь для 10 минут в темных клетке для темных зрительная адаптация.
- Установите параметры экспериментальных устройств следующим образом: частота дискретизации: 500 Гц; Вырезка фильтрации: 60 Гц; Интервал между стимул: 10 s; Флэш-продолжительность: 10 мс; количество флэш-раздражители: 100 испытания/тема.
Примечание: Флеш свет, белый свет Светодиодная подсветка, которая имеет 550 ± 20% lx с расстояния 20 см.
- Установите параметры экспериментальных устройств следующим образом: частота дискретизации: 500 Гц; Вырезка фильтрации: 60 Гц; Интервал между стимул: 10 s; Флэш-продолжительность: 10 мс; количество флэш-раздражители: 100 испытания/тема.
4. ВЭП процедуры обработки сигнала ответы
-
Epoching
- Для постоянного измерения последовательных данных, извлечения каждой эпохи для создания сингл Судебная ВЭП сегментов из периода до стимул (ms-300) для периода после стимул (600 мс), основанные на Flash-стимул начала.
Примечание: Поскольку мы неоднократно флэш-стимуляция более 100 испытания для каждого предмета, в общей сложности 100 ВЭП эпох для каждой мыши извлекаются в этом шаге. ЭЭГ epoching представляет собой процесс, в котором конкретные время windows извлекаются из непрерывно измеренного сигнала данных ЭЭГ.
- Для постоянного измерения последовательных данных, извлечения каждой эпохи для создания сингл Судебная ВЭП сегментов из периода до стимул (ms-300) для периода после стимул (600 мс), основанные на Flash-стимул начала.
-
Повторно ссылки (средняя справочник)
- Вычислите среднее ЭЭГ сигналы через все четырнадцать электрод каналов на каждый раз точку и затем вычесть среднее значение из каждого канала. Повторите эту процедуру для всех эпох VEP.
- Выполнять полосовая фильтрация сигнала от ~ 1-100 Гц с помощью конечной импульсной (РПИ) фильтр.
-
Коррекция базовой линии
- Вычислить среднее ЭЭГ сигналы в период предварительное стимулом (базовый период, -300 ~ 0 мс) для каждого канала, затем вычесть этот средний из каждой точки в сигнала (-300 ~ 600 мс). Это регулирует оси амплитуда ВЭП ответов для облегчения наблюдения изменений мозга волны после стимуляции. Повторите этот шаг для всех эпох VEP.
-
Гранд ВЭП ответы
- Средняя эпох ВЭП сингл-судебного разбирательства для создания одного субъекта в среднем ВЭП сигналов для каждого канала. Затем вычислить среднее грандиозный ансамбль ВЭП ответов для каждого канала в отношении всех субъектов.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Мы подсчитали среднее ансамбль ВЭП ответов от одиннадцать мышей, как показано на рисунке 2. Этот результат показывает ВЭП ответы, полученные через этот эксперимент от периода предварительной стимуляции (ms-300) для периода после стимуляции (600 мс), как стимулирование дается на время 0 s. Это заметно, что сигнал меняется только на время (менее 300 мс) после стимуляции, в то время как сигнал постепенно стабилизируется со временем в период после стимуляции. Кроме того четырнадцать каналы можно подразделить на несколько групп, основанный на ответах ВЕП, показывая аналогичные морфологии и шаблоны29. Этот метод обеспечивает понимание понимания мозга волны динамика с уважает временных и пространственных качествам.
Рисунок 1 : Датчик мыши ЭЭГ описание и инструкции по использованию датчик мыши ЭЭГ. () электрода ЭЭГ 16 PIN-код (b индивидуальные Электрододержатель (c) шестнадцать электроды массив ПИН карта; электрод Земля (GND) и электрод сравнения (Ref) выделяется в черный (d), в естественных условиях мыши ЭЭГ измерения с помощью предлагаемых датчик и заказной держателя на Стереотаксическая рама. Этот рисунок был изменен с 29. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2 : Представитель visual вызывали потенциальных экспериментальных результатов от 14 каналов. Гранд среднем визуальные сигналы вызвала потенциал всех одиннадцати предметов и все испытания от периода предварительной стимуляции (ms-300) для периода после стимуляции (600 мс). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Во-первых мы сосредоточились на дизайн датчика, приоритизация практичность путем минимизации сложных хирургических процедур. Деформируемый ЭЭГ датчик состоит из шестнадцати контакты: четырнадцать для записи, один для земли и последний для ссылки электродов. Каждый электрод имеет структуру поршень Весна ствол, который применяется деформируемости Контактная поверхность электрода, поэтому они облегчить приобретение единый и стабильный сигнал от мыши изогнутые и нежная кожа головы. Принимая во внимание благосостояние животных мы старались свести к минимуму боль, понесенные усилием пружины облегчить давление на кожу, расширяя площадь контакта кожи электрод интерфейс29.
Отдельных булавки, состоящий из всей многоканальный электрода может иметь различные характеристики для толщины, длины, поршень типы и весной прочность. Эти различные варианты следует предусмотреть для разработки электрода для облегчения его страданий. Кроме того map-массив PIN-код и количество электродов могут быть изменены согласно цели эксперимента. Электрод держателя и стекловолокна субстрата могут быть сделаны другие методологии и различных конструкций, таких как 3D печать метод30,31.
В общем импеданс сухого электрода показал высокий импеданс и причиняя пониженной сигнала по сравнению с мокрой электрода32,33. Мы могли бы подтвердить соответствующие места шестнадцать электродов под силу даже на голове через проверку сопротивления в необходимом диапазоне от 100 kΩ до 2 MΩ: диапазон был сопоставим с коммерциализированной сухого типа электрода ЭЭГ для человека33 . Импеданс значения в диапазоне от 296.2 KΩ для 1,522.6 KΩ (означает ± SD: 825.2 ± 443.2 KΩ). Тем временем механическое давление на кожу головы, вызванные внутренней пружины возможно опустил электрода импеданс, таким образом, это может повлиять на улучшение сигнала34. Хотя это позволяет повысить качество сигнала путем применения проведение гель на поверхность ПИН головы, это может вызвать сигнал помехи между смежными булавки из-за головы области замкнутых мыши.
Для того чтобы доказать полезность недавно разработан датчик ЭЭГ в естественных условиях , мы внедрили потенциальных события связанные записи парадигмы ВЕП, который является одним из типичных пассивной ЭЭГ парадигм. Хотя мы измерили ВЭП сигналов на мыши головы без каких-либо проведение влажной гель, сигнал был сопоставим с предыдущим результатом ВЕП надчерепное ЭЭГ же видов мыши27. Во время измерения процесса ВЕП заземление всех отдельных частей, таких как Стереотаксическая рама и держатель электрода, является важным процессом для сведения к минимуму электрические помехи от снаружи. Мы также поддерживали мышей за 10 мин до начала ВЭП эксперимента, для темных зрительная адаптация и первичного сенсорной адаптации35,36.
В заключение мы демонстрируем повторяемые экспериментальный протокол для обеспечения визуального вызванный потенциал, используя датчик скальпа ЭЭГ неинвазивные сухой многоканальный мыши. Неинвазивный метод, описанный здесь, поэтому она не требует каких-либо дополнительных хирургических подготовки, а также сокращает время подготовки проведения гель, если используется сухой тип электродов. Кроме того датчик, обладающие несколькими электродов позволяет нам измерить мозг волны от разных головы районов одновременно. Предложенный метод для датчика ЭЭГ-неинвазивный волосистой части головы может способствовать трансляционного исследования в области соединения основные научные результаты исследования человека с сопоставимых, надежных и эффективных результатов. В конечном счете подход с этих существенных характеристик обеспечивает удобство и безопасность как для пользователей и предметов. Тем не менее есть дальнейшего исследования вопросов, таких, как повышение качества сигнала, сравнивая качество сигнала с другими методологиями мозг волна приобретения и применения этих методов в свободно двигаться мышь. Кроме того, представленные метод имеет дальнейшие возможности для приложения доклинические зверек ЭЭГ исследования в естественных условиях, крупных масштабах мозг сетевой анализ, сенсорные вызывали потенциальных записей и комбинации с мозга стимуляции или поверхность глубокие электрофизиологических запись методы.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не имеют ничего сообщать.
Acknowledgments
Эта работа частично поддержали ГИСТ исследовательский институт (GRI), ГИСТ-Калифорнийский технологический исследовательский проект сотрудничества через субсидии, предоставляемые ГИСТ в 2017 году. Также поддерживается исследовательский грант (СР 2016R1A2B4015381) национальной исследовательский фонд (СРН), финансируемой правительством Кореи (MEST) и KBRI программы фундаментальных исследований через Корея мозга научно-исследовательский Институт финансируется министерством науки, ИКТ и будущее Планирование (17-BR-04).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Ketamine 50 Inj. (Vial) | Yuhan | - | Ketamine HCl 57.68 mg |
| Zoletil 50 Inj. | Virbac | - | Tiletamina 125 mg/ Zolazepam 125 mg |
| Rompun 2% Inj. | BAYER | - | Xylazine hydrochloride 23.32mg/mL |
| Hycell solution 2% | Samil | - | Hydroxypropylmethylcellulose 20 mg |
| Puralube Vet Ointment 3.5 mg | Pharmaderm | - | |
| Saline solution Inj. | JW Pharmaceutical | - | NaCl 9 g/1000 mL |
| Veet Hair Removal Cream – Legs & Body - Sensitive Skin | Reckitt Benckiser | - | depilatory |
| Skins - Surgical Skin Marker | Surgmed | S-3000 | STERILE - Multi-Tip Fine Marker with ruler and label set |
| Stainless Steel Micro Spatulas | HEATHROW SCIENTIFIC | HS15907 | One Round Flat End, 2L x 5/16W" |
| cotton swap | |||
| Stereotaxic, Desktop Digi Single | RWD Life Science | 68025 | |
| Mouse Adapter | RWD Life Science | 68010 | |
| Ear Bar for Mouse Non-Rupture | RWD Life Science | 68306 | |
| Mitsar-EEG 202-24 | MITSAR | amplifier | |
| EEGStudio EEG acquisition software | MITSAR | ||
| White flash stimulator | MITSAR | MITSAR Flash stimulator | |
| BCI2000 software | Schalk lab | ||
| g.USBamp | g.tec | 0216 | |
| g.Power-g.USBamp | g.tec | 0247 | |
| 441 style straight body Touch Proof connector | PlasticsOne | 441000PSW080001 | 441 - 000 PSW 80" (BLACK) |
| Standard probe | LEENO | SK100CSW | http://www.globalinterpark.com/detail/detail?prdNo=2114277241&dispNo=001851006012 |
| Precision engraving machine tools | TINYROBO | TinyCNC-6060C | |
| Heat shirink | 3M | FP301 |
References
- Alzheimer's Association. Alzheimer's disease facts and figures. Alzheimers Dement. 12 (4), 459-509 (2016).
- Birbeck, G. L., Meyer, A. C., Ogunniyi, A. Nervous system disorders across the life course in resource-limited settings. Nature. 527 (7578), S167-S171 (2015).
- World Health Organization. Neurological disorders: public health challenges. , World Health Organization. (2006).
- Meyer, U., Feldon, J., Dammann, O. Schizophrenia and Autism: Both Shared and Disorder-Specific Pathogenesis Via Perinatal Inflammation? Pediatr Res. 69 (5), 26r-33r (2011).
- Freedman, L. P., Cockburn, I. M., Simcoe, T. S. The Economics of Reproducibility in Preclinical Research. PLoS Biol. 13 (6), e1002165 (2015).
- Cummings, J. L., et al. Alzheimer's disease drug development: translational neuroscience strategies. CNS Spectr. 18 (3), 128-138 (2013).
- Roelfsema, P. R., Treue, S. Basic neuroscience research with nonhuman primates: a small but indispensable component of biomedical research. Neuron. 82 (6), 1200-1204 (2014).
- Wu, C., Wais, M., Sheppy, E., del Campo, M., Zhang, L. A glue-based, screw-free method for implantation of intra-cranial electrodes in young mice. J Neurosci Methods. 171 (1), 126-131 (2008).
- Yu, F. H., et al. Reduced sodium current in GABAergic interneurons in a mouse model of severe myoclonic epilepsy in infancy. Nat Neurosci. 9 (9), 1142-1149 (2006).
- Parmentier, R., et al. Anatomical, physiological, and pharmacological characteristics of histidine decarboxylase knock-out mice: evidence for the role of brain histamine in behavioral and sleep-wake control. J Neurosci. 22 (17), 7695-7711 (2002).
- Handforth, A., Delorey, T. M., Homanics, G. E., Olsen, R. W. Pharmacologic evidence for abnormal thalamocortical functioning in GABA receptor beta3 subunit-deficient mice, a model of Angelman syndrome. Epilepsia. 46 (12), 1860-1870 (2005).
- Wu, C., Wais, M., Zahid, T., Wan, Q., Zhang, L. An improved screw-free method for electrode implantation and intracranial electroencephalographic recordings in mice. Behav Res Methods. 41 (3), 736-741 (2009).
- Garner, J. P. The Significance of Meaning: Why Do Over 90% of Behavioral Neuroscience Results Fail to Translate to Humans, and What Can We Do to Fix It? Ilar Journal. 55 (3), 438-456 (2014).
- Naylor, E., Harmon, H., Gabbert, S., Johnson, D. Automated sleep deprivation: simulated gentle handling using a yoked control. Sleep. 12 (1), 5-12 (2010).
- Naylor, E., et al. Simultaneous real-time measurement of EEG/EMG and L-glutamate in mice: A biosensor study of neuronal activity during sleep. J Electroanal Chem (Lausanne). 656 (1-2), 106-113 (2011).
- Naylor, E., et al. Molecules in Neuroscience. Proceedings of the 13th International Conference on In Vivo Methods, , 12-16 (2010).
- Choi, J. H., et al. A flexible microelectrode for mouse EEG. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc, , 1600-1603 (2009).
- Choi, J. H., Koch, K. P., Poppendieck, W., Lee, M., Shin, H. S. High resolution electroencephalography in freely moving mice. J Neurophysiol. 104 (3), 1825-1834 (2010).
- Lee, M., Shin, H. S., Choi, J. H. Simultaneous recording of brain activity and functional connectivity in the mouse brain. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc, , 2934-2936 (2009).
- Lee, M., Kim, D., Shin, H. S., Sung, H. G., Choi, J. H. High-density EEG recordings of the freely moving mice using polyimide-based microelectrode. JoVE-J Vis Exp. (47), e2562 (2011).
- Mégevand, P., Quairiaux, C., Lascano, A. M., Kiss, J. Z., Michel, C. M. A mouse model for studying large-scale neuronal networks using EEG mapping techniques. Neuroimage. 42 (2), 591-602 (2008).
- Megevand, P., et al. Long-term plasticity in mouse sensorimotor circuits after rhythmic whisker stimulation. J Neurosci. 29 (16), 5326-5335 (2009).
- Troncoso, E., Muller, D., Czellar, S., Zoltan Kiss, J. Epicranial sensory evoked potential recordings for repeated assessment of cortical functions in mice. J Neurosci Methods. 97 (1), 51-58 (2000).
- Bauschatz, J. D., Guido, V. E., Marden, C. C., Davisson, M. T., Donahue, L. R. Preliminary skull characterization and comparison of C57BL/6J, C3H/heSnJ, BALB/cByJ and DBA/2J inbred mice. , http://craniofacial.jax.org/characteristics.html (2014).
- Keith, B., Franklin, G. P., Paxinos, G. The mouse brain in stereotaxic coordinates. , Academic. California. (2008).
- Kawakami, M., Yamamura, K. I. Cranial bone morphometric study among mouse strains. Bmc Evol Biol. 8, (2008).
- Strain, G. M., Tedford, B. L. Flash and pattern reversal visual evoked potentials in C57BL/6J and B6CBAF1/J mice. Brain Res Bull. 32 (1), 57-63 (1993).
- Schalk, G., McFarland, D. J., Hinterberger, T., Birbaumer, N., Wolpaw, J. R. BCI2000: A general-purpose, brain-computer interface (BCI) system. Ieee Transactions on Biomedical Engineering. 51 (6), 1034-1043 (2004).
- Kim, D., Yeon, C., Kim, K. Development and Experimental Validation of a Dry Non-Invasive Multi-Channel Mouse Scalp EEG Sensor through Visual Evoked Potential Recordings. Sensors. 17 (2), 326 (2017).
- Yeon, C., Kim, D., Kim, K., Chung, E. SENSORS, 2014 IEEE. , IEEE. 519-522 (2014).
- Kim, D., Yeon, C., Chung, E., Kim, K. SENSORS, 2015 IEEE. , IEEE. 1-4 (2015).
- Lin, C. T., et al. Novel dry polymer foam electrodes for long-term EEG measurement. IEEE Trans Biomed Eng. 58 (5), 1200-1207 (2011).
- Lopez-Gordo, M. A., Sanchez-Morillo, D., Pelayo Valle, F. Dry EEG electrodes. Sensors (Basel). 14 (7), 12847-12870 (2014).
- Fang, Q., Bedi, R., Ahmed, B., Cosic, I. Engineering in Medicine and Biology Society, 2004. IEMBS'04. 26th Annual International Conference of the IEEE. 2995-2998 IEEE, , 2995-2998 (2004).
- Maffei, L., Fiorentini, A., Bisti, S. Neural correlate of perceptual adaptation to gratings. Science. 182 (4116), 1036-1038 (1973).
- Ernst, M., Lee, M. H., Dworkin, B., Zaretsky, H. H. Pain perception decrement produced through repeated stimulation. Pain. 26 (2), 221-231 (1986).
