Summary
Suprahepatic 베 나 정 맥 (SHVC)의 재건 쥐 orthotopic 간 이식에 어려운 단계에 남아 있다. 이 문서에서 우리는 소설 자석 문 합 기술을 사용 하 여 쥐에서 SHVC 재건에 대 한 단계별 프로토콜을 보여줍니다.
Abstract
Orthotopic 간 이식 (OLT)의 쥐 모델 이식 연구를 위해 필수적 이다. 그것은 매우 정교한 동물 모델 하 고 가파른 학습 곡선을 필요로 합니다. 문맥 (PV) 및 infrahepatic 베 나 정 맥 (IHVC)의 문 합에 대 한 갑 기술 도입 방식이 크게 쥐에 이식 절차 간소화. 그러나, 받는 사람의 suprahepatic 베 나 정 맥 (SHVC)의 짧은 앞쪽 벽으로 인해 갑 기술은 매우 어렵습니다는 SHVC의 재건을 위해 사용 하. 이 분야에서 대부분 연구에서는 여전히 손을 봉합 기술을 사용 하 여 SHVC 재건, 그것에 게 쥐 orthotopic 간 이식에서 병목 단계에 대 한. 마그네틱 문 합 기술 (즉, magnamosis) 두 배 두 자석 사이 매력적인 힘을 사용 하 여 연결 하는 방법 이다. 우리의 최근 연구 자석 문 합 기술은 이다 우수한 쥐에 SHVC 재건에 대 한 손 봉합 기술을 보이고 있다. 이 문서에서 우리는 소설 자석 문 합 기술을 사용 하 여 쥐에서 SHVC 재건에 대 한 단계별 프로토콜을 보여줍니다. 이 모델에 PV와 IHVC의 개조는 담 즙 덕트 (BD)의 재건 텐트 기술에 의해 수행 하는 동안 표준 팔목 기술에 의해 수행 되었다. 간장 재 arterialization은 수행 되지 않습니다. 마그네틱 문 합 기술 SHVC 재건 훨씬 쉽게 하 고 anphepatic 단계를 크게 단축. 합리적인 학습 곡선 후 고급 microsurgical 기술 없이 연구자는 OLT의이 쥐 모델을 사용 하 여 안정적이 고 재현 가능한 결과 생성할 수 있습니다.
Introduction
Orthotopic 간 이식 (OLT)의 쥐 모델 이식 연구1,2에 대 한 필수적입니다. 첫 번째 쥐 OLT 리 외. 19733에 의해 설명 되었다. 그 모델에 모든 선박 손 봉합 기술에 의해 재건 되었다. 손 봉합 기술을는 크게 그것의 이용을 제한 하는 고급 microsurgical 기술을 필요로 한다. 그 이후, 쥐 OLT의 원래 프로토콜에 대 한 다양 한 수정 보고 되었습니다. 그것은 크게4 재건축 절차 간소화 그들 가운데, 포털 정 맥 (PV) 및 infrahepatic 베 나 정 맥 (IHVC) 지금도 외. 1979 년에 보고의 문 합에 대 한 갑 기술이이 모델에 대 한 개선 간주 됩니다. . 그러나, 받는 사람의 suprahepatic 베 나 정 맥 (SHVC)의 짧은 앞쪽 벽으로 인해 갑 기술은 매우 어렵습니다는 SHVC의 재건을 위해 사용 하. 이 분야에서 대부분 연구에서는 여전히 손 봉합 기술을 사용 하 여 병목 단계 게 쥐 OLT5,6,7에서 SHVC 재건에 대 한.
마그네틱 문 합 기술 (즉, magnamosis) 두 배 또는 2 개의 자석8,9,,1011사이 매력적인 힘을 사용 하 여 다른 관 구조를 연결 하는 방법 이다. 자기 힘은 점차적으로 압축 하 고 강한, sutureless 문 합12,13으로 개장 하는 조직. 이 압축 문 합 인간14,15에 효과가 입증 되었습니다. 우리는 한 쌍의 쥐에서 SHVC의 문 합에 맞게 자기 반지 디자인. 우리의 최근 연구 자석 문 합 기술은 이다 우수한 쥐 OLT16SHVC 재건에 대 한 손 봉합 기술을 보이고 있다. 이 문서의 목적은 소설 자석 문 합 기술을 사용 하 여 쥐에서 SHVC 재건에 대 한 상세한 단계별 프로토콜을 제공 하는 것입니다.
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Protocol
프로토콜 관리 및 실험 동물의 사용에 대 한 지침에 따라 실시 하 고 윤리의 동물 실험의 서 안 교통 대학, 서 안, 산시 성, 중국에 위원회에 의해 승인 되었다.
참고:이 프로토콜의 절차의 수술 현미경 아래에서 수행 되었다.
1. 수술 전 준비
- 디자인과 모양 자석 링 (그림 1)의
- 네오디뮴-철-붕 소 자석 링의 쌍을 일치 하 여 자기 문 합 장치를 조립.
- 주요 축 직경와 부 축 직경, 두께 8 m m, 5.5 m m, 1 mm, 0.5 g의 무게 쥐 SHVC의 매개 변수에 따라 반지를 각각 디자인 합니다.
- 와이어 전극 가공 기술에 의해 원하는 모양에 고리를 곡선 다음 티타늄 산화물 에어브러쉬와 얻은 반지 코트 하 고 6 h 55-60 ° C에서 500 mg/L 에틸렌 산화물과 소독.
- (그림 2) 수 갑
- 팔목을 폴 리 에틸렌 튜브를 절단 하 여 IHVC와 PV의 문 합에 대비 합니다. 팔목 바디 5 m m 인지 확인 2 mm 갑 확장명이 오래.
참고: 태양광 팔목의 내부 및 외부 직경은 1.8 및 2.1 m m, 그 동안 IHVC 팔목의 2.6 및 2.8 m m, 각각.
- 팔목을 폴 리 에틸렌 튜브를 절단 하 여 IHVC와 PV의 문 합에 대비 합니다. 팔목 바디 5 m m 인지 확인 2 mm 갑 확장명이 오래.
- 텐트 (그림 2)
- 양쪽 끝에 경사를 생산 하는 BD의 문 합 5 mm의 길이 절단 24 G 정 맥 정 맥에 의해는 텐트 준비.
- 실험 동물
- 기증자로 250과 280 g와 수신자 사이 무게 남성 Sprague Dawley 쥐를 사용 합니다. 기증자 보다 받는 사람이 동일한 무게 또는 약간 무거운 (< 10 g) 인지를 확인 합니다.
- 음식과 수술 전에 물에 기후 제어 객실에서 쥐를 유지.
2. 기증자 작업
- 주입 buprenorphine (0.05 mg/kg) 피하는 진통제로 작업 하기 전에 1 시간 있습니다.
- Isoflurane 흡입에 의해 기증자 쥐를 anesthetize. 마 취 및 유량 0.6-0.8에서 2 vol %isoflurane 유도 유리 상자에 1.5 L/분의 유량에 사용 5 vol % isoflurane L/원뿔에 분 마 취의 유지 관리를 위해 마스크. 발가락 핀치와 피부 핀치를 수행 하 여 마 취의 깊이 확인 합니다.
- 청소기 노출에 대 한 허용 하는 전기 면도기를 사용 하 여 쥐의 전체 복 부 피부를 면도. Povidone-요오드 솔루션 해당 피부 소독.
- 따라 xiphisternum 위에 1 ㎝를 확장 하는 성 기의 뿌리에서 수술가 위를 사용 하 여 십자형 절 개를 통해 복 부 구멍을 열고 교육 알바, midaxillary 라인 세로 절 개의 중간점에서 연장. Exteriorize 왼쪽에 위장 하 고 젖은 거 즈로 그것을 커버.
- 클램프 및 xiphisternum hemostatic 집게를 사용 하 여 머리 쪽으로 당겨. Falciform 인 대와 간 주위 결합 조직 해 부. 분리 하 고 6-0 비단 봉합으로 왼쪽된 열 등 한 인할지 정 맥 선.
- 담 관에는 스 텐트를 삽입 합니다.
- Gastroduodenal 정 맥은 문맥을 조인 지점 바로 위에 BD 클램프 하 고는 microforceps를 사용 하 여 약간 긴장을 유지 하기 위해 그것을 당겨. 다음 마이크로 위 여 약 5mm 담 즙 합류에 인접 앞쪽 벽에 길이 1 m m의 절 개를 "V"를 수행 합니다.
- 곡선된 microforceps를 사용 하 여 담 즙 덕트의 루멘으로는 스 텐트를 삽입 합니다. 담 즙 덕트 외부 텐트 거짓말의 반 이상 있는지 확인 합니다.
- 6-0 비단 봉합으로 텐트를 보호 합니다. 봉합의 한쪽 끝을 잘라. 나중에 문 합 중 다른 하나를 유지. 텐트 아래 담 즙 덕트 transect 고 담 즙은 텐트에서 올 수 있는지 확인 하십시오.
- 왼쪽된 신장 정 맥 수준 IHVC를 격리 합니다. IHVC skeletonized 때까지 면 뇌 해 부에 의해 전방 및 측면 주위 조직에서 IHVC를 무료. 바로 suprarenal 정 맥 및 6-0 비단 봉합으로 오른쪽 신장 정 맥 선 고 합니다.
- 헤 파 린 음 경의 등 쪽 정 맥을 통해 정상적인 염 분 해결책의 2 mL에 희석의 주입 50 U 쥐를 heparinize.
- 간 perfuse
- 왼쪽된 신장 정 맥 아래 복 부 대동맥을 격리 합니다. 대동맥에 22-G 카 테 터를 삽입 합니다.
- thoracotomy 수행, 클램프는 microforceps를 사용 하 여 흉부 대동맥.
- 3 mL/min의 속도로 주입 펌프와 헤 파 린 (4 ° C)의 U 25를 포함 하는 정상적인 염 분 솔루션의 20 mL와 대동맥에서 카 테 터를 통해 기증자 간을 perfuse. 한편, 관류 솔루션 간에서 흐름 수 있도록 오른쪽 신장 정 맥 아래 베 나 정 맥을 잘라.
- Transect 횡 경 막의 일부와 함께 SHVC 및 IHVC 왼쪽된 신장 정 맥의 수준에서 기증자 간 되었다 pallid.
- 두 개의 마이크로 포 셉으로 PV를 둘러싼 결합 조직 해 부. 선 고는 8-0 prolene 봉합으로 pyloric 혈관을 나눕니다. 비장 정 맥의 수준에서 PV transect 기증자 간 소비 세 고 차가운 정상적인 염 분 해결책으로 그것을 씻어. 차가운 식 염 수에 4 ° c.를 목욕 하는 곳
3. 이식 준비
참고: 4 ° c.에 차가운 식 염 수 목욕에서 간 이식 준비를 위한 모든 절차 수행
- 기증자의 IHVC (그림 3)에 팔목을 연결 합니다.
- 간 쪽으로 향하고 팔목 확장명이 팔목에는 IHVC를 삽입 합니다. IHVC의 후부 벽에 팔목 확장을 배치 합니다. 팔목 확장과 IHVC 곡선된 microforceps 목욕 컨테이너 파일 클립을 사용 하 여 연결 자체를 해결할.
- 두 개의 마이크로 집게를 사용 하 여 팔목 몸에 IHVC의 선단부를 evert.
- 6-0 비단 봉합으로 가장자리를 보호 합니다. IHVC 과정에서 왜곡 하지는 다는 것을 확인 하십시오.
- 기증자의 PV에는 팔목을 연결할 PV에 3.1 단계를 반복 합니다.
- 마그네틱 링 기증자의 SHVC (그림 4)에 연결 합니다.
- 4 개의 집게를 통해 횡 경 막을 당겨 하 고 트림은 SHVC.
- 티타늄 합금 마이크로 집게를 사용 하 여 자기 반지를 통해 SHVC를 전달 합니다.
- 반지에는 SHVC의 선단부를 evert.
- 6-0 비단 봉합으로 반지를 보안 합니다. SHVC 과정에서 왜곡 하지는 다는 것을 확인 하십시오.
- 간 주위 초과 다이어 프 램을 제거 합니다.
- 감기 정상적인 염 분 목욕에 기증자 간 담가 그리고 4 ° c.에 저장
4. 받는 사람 작업
참고: 받는 사람 쥐에 이식 이식의 스키마는 그림 5에 표시 됩니다.
- 주입 buprenorphine (0.05 mg/kg) 피하는 진통제로 작업 하기 전에 1 시간 있습니다. Isoflurane 흡입에 의해 기증자 쥐를 anesthetize. 마 취 및 유량 0.6-0.8에서 2 vol %isoflurane 유도 유리 상자에 1.5 L/분의 유량에 사용 5 vol % isoflurane L/원뿔에 분 마 취의 유지 관리를 위해 마스크.
- 쥐의 전체 복 부 피부를 면도. Povidone-요오드 솔루션 해당 피부 소독.
- 4 cm 중간 절 개를 통해 복 부 구멍을 엽니다. 복 부 견인 기를 놓습니다. 갈비는 중간에서 가능한 멀리 떨어져 당겨.
- 클램프 및 xiphisternum hemostatic 집게를 사용 하 여 머리 쪽으로 당겨. 결합 조직 그리고 간 주위 인 대 해 부. 선 하 고 간을 식도 인 대를 나눕니다. 선 고는 8-0 prolene 봉합으로 간 동맥을 나눕니다.
- 첫 번째 간 포털에서 일반적인 담 관을 격리 합니다. 그것의 부분 바로 아래 일반적인 담 관 주위 6-0 비단 봉합 사 놓고 선 일반적인 담 관.
- 오른쪽 신장 정 맥으로 IHVC 해 부. 선 고 바로 부 신 정 맥을 나눕니다. 장소 간 SHVC에 스트랩.
- Microvessel 클립 오른쪽 신장 정 맥 바로 위에 IHVC 클램프. Microvessel 클립 pyloric 정 맥의 수준에서 태양광을 클램프.
- 간에서 피를, PV 통해 정상적인 염 분의 2 개 mL를 주사 천천히. 이전 배치 끈을 잡아 당겨 간 아래로 끕니다. Satinsky 클램프와 SHVC와 횡 경 막의 일부를 클램프.
- 실질 가까운 IHVC와 porta hepatis에 PV transect. 간 바로 위에 SHVC transecting에 의해 간 소비 세. 받는 사람 간에 신속 하 게 제거 합니다.
- 마그네틱 링 받는 사람의 SHVC에 연결 합니다.
- 자기 반지에 받는 사람의 나머지 SHVC를 삽입 합니다.
- 자기 매력에 의해 Satinsky 클램프에 자기 반지를 수정.
- 그릇의 가장자리를 커버까지 자석 반지에는 SHVC evert.
- 기증자 간 이식 orthotopically 놓고 차가운 젖은 거 즈로 그것을 커버 합니다.
- 정상적인 염 분 해결책에는 기증자와 받는 사람의 SHVCs의 루멘을 채우십시오. 공기 색 전 증을 방지 하기 위해 철저 하 게 공기 방울을 제거 합니다. 자기 힘을 통해 함께 기증자의와 받는 사람의 SHVC에 포함 된 자석 반지 커플링 여 SHVC 재건을 마무리.
- PV를 재구성 합니다.
- 요로 PV의 긴장을 유지 하는 8-0 prolene 봉합을 당겨 받는 사람의 PV의 오른쪽과 왼쪽 지점.
- 정 맥을 완전히 노출 하려면 pylorus 정 맥 비장 정 맥을 내려 받는 사람의 PV의 클램프를 이동 합니다.
- 받는 사람의 앞쪽 벽 incise 정상적인 염 분 해결책으로 PV의 루멘을 채우십시오.
- 기증자의 PV의 팔목 확장을 곡선된 집게로 잡으십시오.
- 일반적인 염 분으로 PV 루멘 홍 조 유지 하면서 받는 사람의 PV에 기증자의 PV의 팔목 본문을 삽입 합니다.
- 안전한 그것을 완곡으로 6-0 실크 합자. PV와 SHVC에 클램프를 발표 함으로써 이식 간 혈액 흐름을 다시 설정 합니다.
- 4.11 재구성은 IHVC IHVC에 단계를 반복 합니다.
- 텐트 기술에 의해 담 즙 덕트를 재구성 합니다.
- 받는 사람 일반적인 담 관의 앞쪽 벽에 "V" incise
- 받는 사람 BD의 루멘으로 기증자 텐트를 삽입 하 고 6-0 실크 원주 봉합으로 해결. 함께 두 개의 담 즙 덕트에는 봉합을 당겨 하 고 넥타이를 서로 가까이 BD 봉합.
- 담 즙 누출을 방지 하기 위해 anastomotic 사이트 omentum 조직 포장.
- 따뜻한 정상적인 염 분 해결책으로 복 강의 관개 복 부 절 개를 연속으로 2 층에서 3-0 비 흡수 되기 쉬운 외과 봉합을 닫습니다.
- 관리 16 mg/kg 세 (항생제)와 0.05 mg/kg buprenorphine (진통제) 작업 후 피하 주입에 의해 즉시.
- 쥐 깨끗 한 장에 음식 허용 놓고 광고 libitum물.
- 주사 세 (16 mg/kg) 및 buprenorphine (0.05 mg/kg) 복 부 구멍으로 3 일 동안 매일 12 시간.
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Representative Results
약 10 번의 시도 후 SHVC 재건을 위한 마그네틱 문 합 기술은 성공적으로 이전 microsurgical 훈련 했다 연구원에 의해 마스터 했다. SHVC의 개조는 2 분 미만 했다. 받는 사람 쥐에 대 한 anhepatic 단계는 약 10 분 했다. 아니 혈전 증, 출혈 또는 angiostegnosis SHVC anastomotic 사이트에서 reperfusion 후 1, 5, 30 일에 관찰 되었다. 열 등 한 베 나 cavography는 이식 후 2 주에 수행 되었다. 그림 6에서 같이, 자석 반지 그대로, 그리고 혈액의 흐름은 SHVC 문 합을 통해 특허. 포스트 이식 생존 율은 95% 하루 1, 3, 일에서 90%에서 85% 일 7 ~ 30 (그림 7).
그림 1 : 디자인 (A) 및 (B)는 SHVC의 문 합에 대 한 자석 링의 사진.
SHVC: suprahepatic 베 나 카바 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2 : 수 갑과 IHVC (A), PV (B)의 문 합에 대 한 텐트와 BD (C).
IHVC: infrahepatic 베 나 정 맥; PV: 문맥; BD: 담 관입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3 : IHVC 및 PV의 갑 문 합의 스키마입니다. 팔목 (A);에 IHVC 또는 PV를 삽입 2 개의 microforceps (B);를 사용 하 여 팔목 몸에 IHVC 또는 PV의 선단부 evert 6-0 비단 봉합 (C)와 가장자리를 보호 받는 사람의 IHVC 또는 PV (D)에 기증자의 IHVC 또는 PV의 팔목 본문을 삽입 합니다.
IHVC: infrahepatic 베 나 정 맥; PV: 문맥 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 4 : 스키마는 SHVC의 자석 문 합입니다. 티타늄 합금 microforceps (A);를 사용 하 여 자기 반지를 통해 SHVC를 통과 버트 링 (B);를 통해 SHVC의 원심 끝 6-0 비단 봉합 (C)와 반지를 보안 합니다. 쌍 자석 반지 자기 힘 (D)을 통해 함께 기증자의와 받는 사람의 SHVC에 포함 된.
SHVC: suprahepatic 베 나 카바 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 5 : 받는 사람 쥐에 이식 이식의 스키마입니다. SHVC의 개조: 자석 문 합; IHVC 및 PV의 재건: 팔목 문 합; BD의 재건: 텐트 문 합. 하의 재건: 수행 되지 않습니다.
SHVC: suprahepatic 베 나 정 맥; IHVC: infrahepatic 베 나 정 맥; PV: 문맥; BD: 담 즙 덕트; 하: 간 동맥입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 6 : 이식 후 2 주에 쥐의 열 등 한 베 나 cavography. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 7 : 이식 후 대표 생존 치료입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
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Discussion
많은 임상 진행 간 이식 동물 연구를 지정할 수 있습니다. 쥐 OLT 장기 보존, 이식 면역학, 생리학과 병리학의 연구에서 널리 사용 되 고 잘 허용 모델 이다. 그러나, 그것은 또한 매우 복잡 한 절차 이며 고급 microsurgical 기술. 쥐 OLT의 절차에 많은 개선에도 불구 하 고 SHVC 문 합 도전 단계에 남아 있었다. 이 문서에서 우리는 쥐 OLT에서에서 SHVC 재건을 위한 새로운 자석 문 합 기술을 설명합니다. 이 기술의 응용 프로그램 SHVC 재건 2 분 미만 그리고 약 10 분을 쥐 OLT의 anhepatic 단계를 위한 시간 감소. 우리는이 기술을 이식 연구에 큰 의미를가지고 믿습니다.
SHVC의 재건을 위해이 자기 문 합 기법을 사용 하 여 중요 한 단계는 기증자와 받는 사람의 SHVC 자석 링 연결할 것입니다. 모든 주의 SHVC 왜곡을 피하기 위해 사용 되어야 한다. 또한, 두 개의 자석 링을 연결할 때 기포는 SHVC에서 제거 되어야 합니다 철저 하 게.
이 기술을 사용 하 여에 몇 가지 제한이 있습니다. Fischer 344 쥐와 버팔로 쥐 같은 쥐의 일부 종자는 매우 짧은 SHVC 있다. 그들의 SHVC를 마그네틱 링 부착 불가능 합니다. 따라서, 그들은이 기술에 대 한 적합 하지 않습니다. 그러나,이 기술을 적용할 수 있습니다 쉽게 OLT에 대 한 Sprague Dawley 쥐를 포함 하 여 쥐, 루이스 쥐와 갈색 노르웨이 쥐의 대부분 변종에. 마그네틱 링 자기 공명 영상 (MRI) 검사를 방해할 수 있습니다. 따라서,이 자기 문 합 기술 MRI 시험 실험에 필요한 경우 사용할 수 없습니다.
요약 하자면, 자기 문 합 기술을 가능 하 게 간단 하 고 빠른 SHVC 재건 쥐에. 합리적인 학습 곡선 후 고급 microsurgical 기술 없이 연구자는 OLT의이 쥐 모델을 사용 하 여 안정적이 고 재현 가능한 결과 생성할 수 있습니다.
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Disclosures
저자는 공개 없다.
Acknowledgments
이 작품은 교육부의 교육 혁신 팀 개발 프로그램의 중국 (번호에서에서 교부 금에 의해 지원 되었다 IRT16R57), 중국 (No. 81470896), 그리고 연구의 국립 자연 과학 재단 기금에 대 한 젊은 인재 모집 계획의 서 안 교통 대학 (RW).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anesthesia Machine | Harvard | tabletop | Animal anaesthesia |
| PLX7000B HF Mobile Digital C-arm System | Perlong Medical | PLX7000B | It is mainly used for the angiography and photography of various operations |
| Syringe Pump | Mindray | BeneFusion SP5 | intravenous infusion |
| Isoflurane | RWD life Science Co. | anesthetic:for the induction and maintenanceof anesthesia | |
| iohexol | Shanghai General Pharmaceutical Co | intravascular contrast media | |
| heparin sodium injection | SPH No.1 Biochemical & Pharmaceutical Co., LTD | prevent the formation of thrombosis | |
| cefuroxime | Glaxo Operations UK Limited | an antibiotic | |
| buprenorphine | TIPR Pharmaceutical Responsible Co.,Ltd | an analgesic | |
| curved microforceps | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | W40350 | surgical tool |
| hemostatic forceps(straight) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J31010 | surgical tool |
| hemostatic forceps(curved) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J31020 | surgical tool |
| Satinsky clamp | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | XEC050 | surgical tool |
| needle holder | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J32010 | surgical tool |
| microneedle holder | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | WBA040 | surgical tool |
| notched forceps | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J42010 | surgical tool |
| tissue forceps(with hook) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | J41010 | surgical tool |
| tissue scissor | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | Y00040 | surgical tool |
| surgical scissors | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | Y00030 | surgical tool |
| micro scissors | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | MR-S121T | surgical tool |
| microvessel clips | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | XEC240 | surgical tool |
| straight microforceps(titanium alloy) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | WCC010 | surgical tool |
| curved microforceps (titanium alloy) | Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. | WCC020 | surgical tool |
References
- Aller, M. A., et al. A half century (1961-2011) of applying microsurgery to experimental liver research. World journal of hepatology. 4, 199-208 (2012).
- Aller, M. A., et al. The value of microsurgery in liver research. Liver international : official journal of the International Association for the Study of the Liver. 29, 1132-1140 (2009).
- Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. J. A technique for orthotopic liver transplantation in the rat. Transplantation. 16, 664-669 (1973).
- Kamada, N., Calne, R. Y. Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage. Transplantation. 28, 47-50 (1979).
- Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. Orthotopic liver transplantation in rats. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).
- Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction. Journal of visualized experiments : JoVE. , e4376 (2013).
- Liu, X., He, C., Huang, T., Gu, J. Development of a New Technique for Reconstruction of Hepatic Artery during Liver Transplantation in Sprague-Dawley Rat. PloS one. 10, e0145662 (2015).
- Jamshidi, R., Stephenson, J. T., Clay, J. G., Pichakron, K. O., Harrison, M. R. Magnamosis: magnetic compression anastomosis with comparison to suture and staple techniques. Journal of pediatric surgery. 44, 222-228 (2009).
- Pichakron, K. O., et al. Magnamosis II: Magnetic compression anastomosis for minimally invasive gastrojejunostomy and jejunojejunostomy. Journal of the American College of Surgeons. 212, 42-49 (2011).
- Gonzales, K. D., et al. Magnamosis III: delivery of a magnetic compression anastomosis device using minimally invasive endoscopic techniques. Journal of pediatric surgery. 47, 1291-1295 (2012).
- Wall, J., et al. MAGNAMOSIS IV: magnetic compression anastomosis for minimally invasive colorectal surgery. Endoscopy. 45, 643-648 (2013).
- Xue, F., et al. Choledochojejunostomy with an innovative magnetic compressive anastomosis: How to determine optimal pressure? World journal of gastroenterology. 22, 2326-2335 (2016).
- Yan, X., et al. Portacaval shunt established in six dogs using magnetic compression technique. PloS one. 8, e76873 (2013).
- Dorman, R. M., Vali, K., Harmon, C. M., Zaritzky, M., Bass, K. D. Repair of esophageal atresia with proximal fistula using endoscopic magnetic compression anastomosis (magnamosis) after staged lengthening. Pediatric surgery international. 32, 525-528 (2016).
- Russell, K. W., Rollins, M. D., Feola, G. P., Scaife, E. R. Magnamosis: a novel technique for the management of rectal atresia. BMJ case reports. , (2014).
- Shi, Y., et al. Magnetic ring anastomosis of suprahepatic vena cava: novel technique for liver transplantation in rat. Transplant international : official journal of the European Society for Organ Transplantation. 28, 89-94 (2015).
