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Medicine

心动过速诱发的心肌病作为猪慢性心力衰竭模型的研究

Published: February 17, 2018 doi: 10.3791/57030

Summary

本文提出了一种在猪中产生心动过速诱发心肌病的方案。该模型是研究进展性慢性心力衰竭的血流动力学和应用治疗效果的有效方法。

Abstract

许多实验都需要一种稳定可靠的慢性心力衰竭模型来了解血流动力学或检测新治疗方法的效果。在此, 我们提出了这样一个模型的心动过速诱发心肌病, 可以产生的快速心脏起搏在猪。

一个单一的起搏铅被引入 transvenously 完全麻醉健康的猪, 到右心室的顶端, 并固定。它的另一端然后隧道背到旁地区。在那里, 它连接到一个内部的改良心脏起搏器单元, 然后植入皮下袋。

经过 4-8 周的快速心室起搏率为 200-240 节拍/分钟, 体格检查显示严重心力衰竭的迹象-呼吸急促, 自发性窦性心动过速, 和疲劳。超声心动图和 X 线显示所有心脏室、积液和严重收缩功能障碍的扩张。这些发现与失代偿性扩张型心肌病有很好的对应, 在停止起搏后也保留下来。

这种模型的心动过速诱发心肌病可用于研究进展性慢性心力衰竭的病理生理学, 尤其是血液动力学的变化所造成的新的治疗方式, 如机械循环支持。这种方法很容易执行, 结果是健壮和重现性的。

Introduction

新的心力衰竭治疗方法 (HF) 的多样性, 特别是在全球范围内使用的机械循环支持和体外膜氧合 (ECMO) 在临床实践中, 反映在前体实验试验。主要关注的是血液动力学的变化所造成的检查治疗方式, 即系统性血压1, 心肌收缩力, 压力和体积变化的心脏室和心脏工作2,3,动脉血流在全身和外周动脉, 以及代谢补偿4 -区域组织饱和度, 肺灌注和血气分析。其他研究是针对循环支持的长期影响5, 伴随炎症, 或发生溶血。所有这些类型的研究需要一个稳定的 biomodel 充血性 HF。

对于急性 HF2678的实验模型, 大多数已发表的左心室 (LV) 表现和机械循环支持的血流动力学实验进行了研究。,9,10, 甚至在完全完整的心脏上。另一方面, 在临床实践中, 机械循环支持经常被应用于一种在以前存在慢性心脏病的基础上发展的循环失代偿状态。在这种情况下, 适应机制得到充分发展, 并可发挥重要作用, 不一致的结果观察, 根据 "尖锐或慢性" 的潜在心脏病11。因此, 一个稳定的慢性 HF 模型可以为病理生理机制和血流动力学提供新的见解。虽然有理由使用慢性 HF 模型是稀缺的-时间消耗准备, 心律不稳, 伦理问题和死亡率-他们的优势是明确的, 因为他们提供长期神经体液激活的存在,全身适应, 心肌细胞功能改变, 心肌和瓣膜结构改变12,13

一般而言, 用于血流动力学研究的动物模型的可用性和多样性是广泛的, 为许多特定需求提供了选择。对于这些实验, 主要是猪, 犬, 绵羊, 或小鼠模型, 正在选择和提供一个良好的模拟预期的人体反应14。此外, 单器官实验的形式越来越频繁15。为了可靠地模仿 HF 的病理生理学, 循环正在被人为地恶化。对心脏的损伤可能是由各种方法造成的, 往往是由缺血、心律失常、压力超负荷或 cardiotoxic 作用引起的, 这些都导致了模型的血流动力学恶化。为了产生一个真正的慢性 HF 模型, 必须为发展整个生物体的长期适应提供时间。心动过速诱发的心肌病 (TIC) 是一种可靠稳定的模型, 可以通过实验动物快速心脏起搏产生。

结果表明, 在易感性的心脏, 长期持续不断的失常可能导致收缩功能障碍和扩张与减少的心脏输出。被称为 TIC 的条件首先在 1913年16中被描述, 在 1962年17的实验中被广泛使用, 现在已经是公认的紊乱。它的起源可能存在于各种类型的心律失常-室性和心室心动过速可导致收缩功能的渐进性恶化, 心室扩张, 以及包括腹水, 肿鼓, 嗜睡等症状的渐进性临床征象, 最终心脏失代偿导致晚期 HF, 如果不治疗, 死亡。

通过在动物模型中引入高速率心脏起搏, 观察了循环抑制的相似效应。在猪模型中, 心房或心室心率超过200次/分钟, 足以诱发末期 HF 在 3-5 周 (渐进期) 与 TIC 的特点, 虽然个体差异确实存在18, 19. 这些发现与失代偿性心肌病有很好的对应, 重要的是, 在停止起搏 (慢性相位)19,20,21,22,23

猪、犬或绵羊 TIC 模型反复准备研究 HF14的病理生理学, 因为对 LV 的改变模仿扩张型心肌病24的特点。血流动力学特征有很好的描述-心室终末期舒张压增高, 心输出量降低, 系统性血管阻力增加, 心室扩张。相比之下, 墙体肥大没有被一致观察, 甚至壁薄也被一些研究人员描述为25,26。随着心室尺寸的发展, 房室瓣膜的返流发展为26

在这份出版物中, 我们提出了一个协议, 以产生 TIC 长期快速心脏起搏在猪。本 biomodel 是研究失代偿性扩张型心肌病、慢性心力衰竭患者血流动力学及应用治疗效果的有力手段。

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Protocol

这项实验性议定书是由查尔斯大学第一医学院的机构动物专家委员会审查和批准的, 并在大学生理学系的实验实验室进行, 第一院医学, 查尔斯大学在布拉格捷克共和国根据246/1992 号法令, 关于保护动物免受虐待。根据2011《国家科学院出版社出版的第八版实验动物护理指南》, 对所有动物进行了治疗和照顾。所有的程序都是按照标准的兽医惯例进行的, 在每项研究完成后, 动物被牺牲, 尸检执行。由于解剖学的原因, 本实验包括五只健康的杂交雌性猪 (Sus 鲷家蝇), 其年龄可达6个月。他们的平均体重是 66, 20 公斤的数据收集当天。

1. 全身麻醉

  1. 禁食1天后, 通过肌肉注射咪达唑仑 (0.3 毫克/千克) 和盐酸氯胺酮 (15-20 毫克/千克) 对臀区域进行麻醉。
  2. 将外周套管插入边缘耳静脉, 用于静脉用药。
  3. 静脉 boluses 丙泊酚 (2 毫克/千克) 和吗啡 (0.1-0.2 毫克/千克)。
  4. 通过面膜向动物提供氧气, 并提前气管插管, 并带一个直径 6.5-7.5 毫米的袖口气管导管。
  5. 采用异丙酚 (6-12 毫克/千克/小时), 继续全身静脉麻醉, 咪达唑仑 (0.1-0.2 毫克/千克/小时), 吗啡 (0.1-0.2 毫克/千克/小时), 根据个别反应调整剂量-抑制自发性呼吸, 角膜反射, 和motoric 反应。用药膏保护动物的眼睛, 防止干燥。
  6. 通过闭环自动装置设置为自适应支持通风操作机械通气, 以维持目标潮汐 CO2的 38-42 mmHg 和充足的血红蛋白饱和度 95-99%。监测所有重要功能, 特别是心率和体温。
  7. 将其腿轻轻地固定在仰卧位的操作表上, 将动物附着在一起。
  8. 采用耳静脉插管法 (静脉注射1克头孢唑啉) 治疗广谱抗生素。

2. 心室铅植入术

  1. 用剃刀在 (1) 胸锁乳突肌上方的颈静脉区, (2) 在动物颈部的后侧一侧旁区域, 定位外科部位并正确剃须皮肤。
  2. 采用超声血管探针, 可视化颈外静脉, 并标记其在皮肤上的位置。定位颈动脉并预防其损伤。
  3. 经广泛的皮肤消毒使用聚维酮碘, 覆盖与无菌手术悬垂与孔在明显的颈动脉区域。
  4. 准备所有必要的工具, 为起搏器植入和保持他们不育。在整个过程中保持一个不育的环境是至关重要的。
  5. 切开皮肤平行于颈外静脉, 形成浅皮下袋, 软组织不超过10毫米深。不要暴露任何大型船只。
  6. 从预制袋的底部, 使用标准的 Seldinger 技术, 将鞘插入颈外静脉。首先, 插入一个软尖端导丝通过12G 穿刺针, 然后在导丝介绍一个7法国塑料撕裂介绍人鞘与扩张。
  7. 在透视指导下, 引入一个58厘米起搏铅通过这个鞘和位置它的尖端到右心室的顶端。然后, 去掉鞘并将电极的主动尖端紧盯着它的螺旋状的心肌。
  8. 测试起搏参数-心室心电图和阻抗的导感信号必须稳定, 起搏阈值应低于 1 V 的振幅和0.4 毫秒的脉宽。
  9. 在起搏导线上拉一个橡胶套管, 并用两条不可吸收的缝线编织线缝合, 将两个固定在颈动脉皮下袋的底。重要的是, 考虑到动物未来可能的生长, 必须插入足够长的起搏铅。

3. 皮下铅隧道

  1. 把动物放在它的一侧, 对以前剃过的皮肤区域进行消毒, 然后用一个空洞的无菌的手术悬垂盖住。确保颈静脉皮袋和铅保持不育。
  2. 切开的皮肤侧向骨干和形成一个深, 宽敞, 皮下口袋。使用枯燥的准备, 并停止任何可能的出血。
  3. 从无菌输液器中取一个软橡胶延伸管, 并切断两端。使用隧道工具, 预制一个直接皮下隧道连接颈动脉和背部皮下口袋与这个延长管。
  4. 将管的游离端连接到心室引线上, 将其拉到其 IS-1 连接器上, 并通过拔管背将引导穿过预制的隧道插入背部皮下口袋。这可能是有用的, 以确保连接与丝绸领带。
  5. 移除隧道工具和延伸管, 从背部皮下口袋露出心室铅。

4. 起搏器植入术

  1. 用 "Y" 连接部分建立植入式双腔心脏起搏器装置。"Y" 连接允许两个起搏器输出的收敛连接与单个起搏引线 (图 1图 2) 连接在一起。此设置稍后将提供一系列的起搏频率。
  2. 连接起搏引线后, 将所有 IS-1 连接螺钉固定在起搏器头单元和 "Y" 引线连接上。
  3. 隐藏整个起搏系统在深背口袋。必须有足够的空间来舒适地容纳起搏器单元和任何多余的铅。
  4. 检查最后的起搏参数。确保心脏心室起搏是可能的两个起搏器输出。
  5. 冲洗与聚维酮碘和关闭两个皮下口袋。使用可吸收的编织线缝合纤维组织层和不可吸收的缝合为皮肤适应。

5. 术后护理

  1. 仔细观察动物, 直到它恢复足够的意识。
  2. 继续在广泛的静脉抗生素治疗方案, 直到伤口愈合-头孢唑啉1克每12小时管理镇痛药在适当的剂量, 例如,吗啡0.2 毫克/千克每 6-12 h 3 天通过皮下注射。如有必要, 进行剂量调整, 以充分预防疼痛。
  3. 在室温下, 将动物放在舒适、平静的设施中。允许自由进入水和适当的营养。
  4. 定期用无菌磨砂包扎伤口, 以保持清洁愈合。
  5. 在手术后提供休息, 保持起搏器受原生心律抑制至少3天。
  6. 清除不可吸收的皮肤缝合时, 完全愈合, 大约 10-14 天后的程序。

6. 起搏协议

  1. 在适当的休息期后启动起搏协议。最初, 通过将双腔起搏器设置为模式 D00, 100 节拍/分钟, 并同时调整 AV 延迟为300毫秒 (与速度间隔完全匹配, 请参阅表 1), 将节奏心室心率提高到200次/分钟。选择两个输出中的单极起搏。
  2. 在2周 (图 3) 之后, 将节奏心率逐步提高到220次/分钟, 1 周后240次跳动/分钟。保持连续起搏在这个频率, 除非它不是血流动力学容忍。如果 HF 进展得太快, 在再增加一周之后, 降低心跳速度。
  3. 每日使用心脏跳动、心电图和起搏器审讯的听诊来验证心率和恒定的起搏参数, 包括电池寿命。

7. 心力衰竭的诱导和监测

  1. 确保由专业兽医定期护理, 并监测动物的一般健康状况。临床观察增加本机心脏和呼吸率, 评估周围脉搏氧, 减少自发的体力活动或食欲提供有关 HF 进展的信息。
  2. 利用无线经皮起搏器审讯的优势, 如果可能的话, 持续心电图记录-频繁的非持续性心室心动 (VT) 是严重 HF 进展的标志。
  3. 使用超声心动图评估, 以揭示结构和功能的心脏变化。注意找到一个最佳的图像窗口根据猪的解剖和心脏扩张-对于一个典型的4室视图, 将传感器放置在右侧的剑突和角度, 以指向颈部或左肩。对于短轴视图, 请使用肋间窗口。在几周后, 在原生心律和房室 regurgitations 中降低心室射血分数是值得注意的。
    注意: 高速率心室起搏耐受存在显著的个体差异。因此, 经常监测和个别适应调整的起搏协议是必要的。

Figure 1
图 1: 心脏起搏单元示意图.双腔起搏器 (1), 一个 "Y" 形适配器 (2) 传导 convergently 两个起搏器输出一起到一个单一的起搏铅 (3)。铅的尖端被固定在 RV 腔 (4) 的顶端部分。此设置提供了一系列高起搏频率。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2: 心脏起搏单元.X 射线 (A) 和摄影 (B) 的双腔起搏器 (1), 一个 "Y" 形适配器 (2) 和心室起搏铅 (3)。请单击此处查看此图的较大版本.

期望 HR 设置起搏器率 速度与速度间隔
节拍/分钟 节拍/分钟 女士
200 100 300
220 110 270
240 120 250
250 125 240

表 1: 起搏器参数.为了允许高心率的心脏起搏与植入室内改良双腔起搏器单元, 该表显示预期的节奏心率 (HR) 和匹配速度的速度间隔值。起搏器必须设置为 D00 操作模式, 速度为所需 HR 的一半, 而 AV 延迟设置为相应的速度, 以毫秒为单位的速度间隔。

Figure 3
图 3: 起搏协议.TIC 诱导的进步阶段在休息的时期以后开始3天。然后, 起搏器设置为 D00 模式, 其起搏频率为所需的节奏频率的 50%, 而 AV 延迟设置为与速度间隔的匹配速度 (见表 1)。多亏了 "Y" 形适配器, 两个起搏器输出都进行一个单一的起搏引线。bpm = 节拍/分钟。请单击此处查看此图的较大版本.

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Representative Results

测试模型:在失代偿性慢性 HF 症状出现后, 麻醉和人工通气再次按照上述原则进行, 但由于心脏输出量降低27, 剂量调整。由于麻醉药可能 cardiodepressive 的影响, 需要对重要功能进行仔细的密集监测。

动物被附着在仰卧位, 所有侵入的方法开始。采用标准经皮腔内鞘, 对股静脉、动脉和颈静脉进行穿刺, 并保证血管内途径。对右颈动脉和锁骨下动脉进行手术暴露, 并附上适当大小的周边超声流量探头, 使连续血流量测量的获取量为28

中心静脉压力 (CVP) 是通过颈静脉的标准侵入法测量的液体填充压力传感器, 但一个高灵敏度压力传感器配备导管在胸主动脉被用于系统性动脉压力测量.通过近红外光谱监测区域组织氧合情况, 并将传感器放置在头部和右侧前臂, 代表大脑和周围组织氧饱和度 (rSO2)29。采用经胸超声心动图探头进行2D、彩色多普勒成像。从心电图, 心率, 脉搏氧, 血压, capnometry, 直肠温度的数据集中在床边显示器, 以立即控制。通过股静脉鞘向肺动脉引入气囊天鹅甘兹导管, 允许 thermodilution 源性连续心脏输出 (CO)30和混合静脉血红蛋白饱和度 (SvO2) 读数。通过主动脉瓣, 将压力容积 (PV) 导管引入 retrogradely 腔内。这种 PV 电导导管在 LV 室31,32,33,34中实现了瞬时体积和压力的登记, 并通过透视和超声心动图指导其稳定位置。获取最佳 PV 环路形态学 (图 4 图 5)。测量的 lv 参数包括端舒张压和容积 (EDP 和 EDV), 终收缩容积 (ESV), 低压峰值压力 (lv PP) 和最大正变化的 lv 压力, 定义为第一次的低压导数的 lv 压力正常化为 EDV (dP/dt最大/EDV), 然后表示 LV 收缩性的预加载独立索引35,36。额外的计算参数是中风体积 (SV = EDV-ESV), 左心室射出分数 (EF = SV/EDV) 和平均动脉流的颈动脉和锁骨下动脉。透视指导和 X 射线成像在整个协议中由一个 C 臂进行。实验测量结束后, 进行了静脉注射钾过量和尸检的安乐死。心脏被暴露, 从胸口切开, 被清空的血液, 称重, 并且调查为结构异常。

在快速心室起搏突然停止后, 所有数据均以本机窦节律获得, 并为稳定状态提供了时间。然后记录参数, 并从三个端呼气时间点平均数据集。如果存在, 从分析中省略了过早跳动。所有值都表示为平均值 "标准偏差"。

测量结果:体检显示, 4-8 周的起搏协议后, 所有动物的慢性 HF 有严重的临床症状。在表 2中总结了详细的结果。

窦节律的初始平均心率为 100, 38 节拍/分钟, 平均主动脉血压达到 47, 38 mmHg, CVP 14, 4 mmHg。胸部 X 光显示心脏的阴影扩张, 心胸的比例为 0.64, 0.04 (图 5A)。这与经胸超声心动图的结果一致。超声心动图显示全心腔扩张、心室严重收缩功能障碍、二尖瓣和三尖瓣 regurgitations 明显。在所有动物中, 左心室平均射出分数低于 30%, lv 壁被判定为不肥厚, 厚度为 7-10 毫米, 不同步收缩明显 (6)。

Thermodilution 测定的静息状态下的心脏输出为 2.9, 0.8 升/分, 混合静脉血饱和 62, 18% 对应于本模型的组织氧不足。颈动脉平均动脉血流量为 211, 144 毫升/分, 锁骨下动脉 103, 108 毫升/分钟。同样, 在头部记录 transcutaneously 的区域组织饱和度只有57到 13%, 右前臂甚至更低, 在 37 @ 13%。

从 PV 导管获得的压力容积回路说明了在每个心脏循环期间, 左心室的机械活动所产生的详细的血流动力学措施和工作 (图 4)。最大 LV 峰值压力降低到 49 @ 32 mmHg, 但 EDP 保持在 7 @ 4 mmHg 低。左心室腔容积测量反映其扩张和收缩功能障碍。EDV 增加到 189 @ 59 毫升和 ESV 到 139 @ 37 毫升。平均 SV 为 51 45 毫升, 平均 LV 射出分数为 25 @ 16%。此外, 低压收缩力的独立指数可以用 dP/dtmax /EDV 比表示, 平均为 2.2 1.7 mmHg/秒/毫升。

尸检证实 cardiomegaly (图 7) 的平均心脏重量为 471, 127 克, 形成0.7% 的体重。对全心腔扩张和低压壁变薄进行了说明, 并在心包和腹膜腔内进行了流体采集。在任何动物中均未发现分流或其他心脏异常。

Figure 4
图 4:压力体积测量.直接左心室 pv 环路 (A D) 和所有 TIC 主体的示意图平均 pv 环路的样本 (E)。lv PP = lv 峰值压力, EDP = 末端舒张压, EDV = 末端舒张容量和 SV = 冲程容量。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 5
图 5: 胸部 X 光.扩大的心脏阴影 (红色箭头) 和增加心胸比率 (A)。注意在右心室 (1), 天鹅甘兹导管放置在肺动脉 (2) 的顶端, 和5电极在左心室室 (3) 的 PV 导管。比较而言, 从起搏器植入之日起, 正常心脏的胸部 X 线 (B)。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 6
图 6: 经胸超声心动图.典型的心动过速诱发心肌病严重扩张的所有心脏室 (A) 和一个类似的观点, 在起搏器植入之前获得 (B), 进行比较。这两项收购都是在最终舒张期进行的。注意在 (A) RV 顶点中的起搏引线的可见尖端。RV = 右心室和 LV = 左心室。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 7
图 7: 暴露心脏的照片.Cardiomegaly (A) 在 TIC 感应之后。正常的猪心样本进行大小比较 (B) (以厘米为刻度)。请单击此处查看此图的较大版本.

参数 TIC 值 单位
成像
中心 0.64 ± 0.04
LV 英孚 < 30 %
LV EDD 66 ± 3 毫米
RV EDD 40 ± 6 毫米
AV regurgitations 严重
循环参数
人力资源 100 ± 38 节拍/分钟
地图 47 ± 38 mmhg
有限公司 2。9 ± 0。8 升/分
SvO2 62 ± 18 %
rSO2 57 ± 13 %
rSO2右前臂 37 ± 13 %
颈动脉流量 211 ± 144 毫升/分
锁骨 103 ± 108 毫升/分
cvp 14 ± 4 mmhg
压力-容量承购
低压 PP 49 ± 32 mmhg
LV EDP 7 ± 4 mmhg
LV EDV 189 ± 59 毫升
LV ESV 139 ± 37 毫升
sv 51 ± 45 毫升
LV 英孚 25 ± 16 %
dP/dtmax /EDV 比率 2。2 ± 1。7 mmHg/秒/毫升
验尸
平均心脏重量 471 ± 127 g
cardiomegaly, 心腔扩张, 低压壁疏变, 心包液收集

表 2: 在起搏协议停止后 TIC 模型的数值结果.所有值都表示为平均值 "标准偏差"。中心 = 心胸比, lv = lv 射出分数, lv EDD/rv EDD = lv 或 rv 末端舒张直径, AV regurgitations = 房室瓣膜 regurgitations, HR = 心率, 地图 = 平均主动脉压, CO = 心脏输出, SvO2 = 混合静脉血红蛋白饱和度, rSO2 = 区域组织饱和度, CVP = 中心静脉压力, lv PP = lv 峰值压力, lv EDP/lv EDV = lv 末端舒张压或容量, lv ESV = lv 末端收缩容量和 SV = 冲程容量。

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Discussion

慢性 HF 是严重的健康问题, 对发病率和死亡率有很大的贡献。HF 在人类中的发病机制和进展是复杂的, 因此适当的动物模型对于研究其潜在的机制和测试旨在干预本病严重疾病进展的新疗法是至关重要的。为了研究其发病机理, 大型动物模型被用于实验测试。

一般来说, 慢性 HF 的外科模型密切模仿这种疾病。与急性 hf 模型相比, 慢性 hf 模型可以更深入地了解病理生理学, 但代价是耗时的实验准备或较高的死亡率。从已知的慢性 hf 模型的不同, 我们是指一个合适的和易于管理的模型, 这里代表的失代偿性慢性 hf 由节奏性心动过速引起。

心动过速诱发心肌病是扩张型心肌病的一种诱导性的快速心脏起搏。起搏电极可以位于心室或心房19,24。我们省略了室上起搏部位, 以防止在高起搏频率时房室阻滞可能引起的问题。心室位置也改善了在心室顶部固定的起搏铅与心房位置的稳定性, 并减少了其脱位的发生。所提出的方法是专门设计, 以方便的性能, 使用广泛可用的设备, 并预防并发症。该方法的另一个目的是通过滴定法来方便地控制慢性 HF 的进展。

细菌感染并发症是植入物在实验环境中的一个主要问题。发电机口袋感染和感染性心内膜炎都与不良预测有关, 并将使实验无效。由于猪的解剖, 颈静脉区域暴露, 如果起搏器发生器被放置在这里, 愈合和预防污染将是一个艰巨的任务, 长期生存实验。皮下隧道的使用, 使起搏器发生器口袋的位置到背部区域, 这是可访问的, 可以保持在一个卫生的状态。起搏器也不在动物的范围内, 这大大改善了愈合。另一种方法可能是使用附着在皮肤表面上的体外起搏器发生器, 但是如果长期动物生存是有意的, 这种策略被证明是机械上易受伤害的。

所述协议所需的所有设备均可广泛使用, 该方法具有基本的外科和导尿技术。"Y" 形连接单元的目的是使用常规的双腔起搏器, 因为它将两个输出 (心房和心室) 聚合到单个起搏引线的尖端。这些设置允许多种高速率起搏频率 (200-300 节拍/分钟、图 1表 1)。

最关键的步骤是起搏频率的滴定。太高从开始将导致急性失代偿没有时间为适应机制开发;相反, 滴定的起搏过低将是良好的耐受性, 并将延长 HF 感应。

根据以前的出版物222537和作者的经验, 对起搏协议进行了定义, 并启动了200节拍/分钟的起搏率, 高于健康猪的生理率锻炼或压力。随后, 频率在200和240的节拍/分钟之间升级, 并与单个 HF 进程1319滴定。由于对快速起搏反应的个体差异, 产生慢性 HF 的时间有很深的失代偿体征, 从4周到8星期不等。这里的问题可以成为电池寿命, 因为这样的高速率起搏增加了能源需求。特别是当起搏门槛升高时, 定期审讯是很重要的。

在起搏协议后, 慢性 HF 的症状在所有动物中持续突出-呼吸急促, 疲劳, 自发性心动过速 > 150 节拍/分钟, 和收缩杂音。在进一步的临床调查后, 描述了腹水、心包积液、胸腔积液、非持续性心室心动、全心室扩张、二尖瓣和三尖瓣 regurgitations 显著。动脉低血压、心肌收缩力低、中风体积小、心脏输出减少到大约50% 的健康动物预期正常值38。该模型的心动过速诱发心肌病匹配良好的低补偿扩张型心肌病, 并在停止起搏后,21,39,40

在停止起搏后收缩功能继续严重恶化的事实使该模型成为检查本机窦节律 HF 的绝佳选择。此前已经表明, 心动过速导致的收缩功能障碍至少部分可逆的所谓恢复阶段, 但它的改善或正常化所需的时间差异很大的个人之间。速率滴定的起搏协议持续时间和攻击性也可能是一个重要的贡献者, 因为永久性缺血性和纤维化变化产生于心肌22,39,40,41.在12小时内, 在起搏停止后, 对严重收缩功能不全的持续性进行了试验, 至少为4 , 神经体液动力学、周围血管异常和心脏的制备模型的质量功能障碍反映人慢性 HF14

结果表明, 血流动力学严重恶化, 临床调查和测量值均显示 HF 综合征的诱导。Cardiomegaly 通过临床检查、影像学和尸检得到持续观察。快速起搏停止后窦节律的心率从正常静止频率升高, 但我们认为麻醉药 cardiodepressive 效应的影响会限制自发性心动过速。主动脉压显示深低血压42 , CVP 升高。

功能反射然后是失败的循环和组织灌注。这主要是由心肌收缩受损引起的, 如左心室的低射血分数所示。两脑室均扩张, 壁厚无延长, 心脏重塑是进展性房室 regurgitations, 从而降低心脏输出的依据。由于无解剖分流术后发现, 心脏输出同样低的系统性和肺循环, 因此, thermodilution 导出心脏输出测量的肺动脉被用来校准 PV 线圈体积特征.

肱和脑区域组织氧饱和度以及锁骨下和颈动脉区域血流表明血液循环集中。它们的低值显示严重减少了外周和重要器官的组织灌注, 而在与至少 65%42的预期正常值相比, SvO2被证实为低的。一般低组织灌注与低心输出量的测量一致。

从 pv 导管瞬时测量中获得的 pv 图证明了左心室每个心脏循环的血流动力学和机械工作。收缩期最大 lv 峰值压力和 dP/dtmax /EDV 比是低压收缩力的预紧独立指数, 其心肌强度较差。低压室容积在整个周期内扩大, 从而形成扩张型心肌病的影像。在心源性休克时, 舒张后低压压力没有增加。lv 充填压力仍然很低, 很可能是由于高依从性的 lv 薄壁心肌壁43

在以往的大多数 TIC 研究中, 猪和犬模型被使用了19。然而, 快速起搏可用于诱发其他物种的心肌病, 即使在小动物。很少有研究表明急性抽动在大鼠的代谢作用44或心肌收缩力损伤后长期快速起搏家兔45

虽然这个模型是足够可靠的, 它有几个限制。非持续性心室心动是成功的高频诱导的标志, 但长期持续的, 可产生心脏猝死的风险。在麻醉期间, 其中一个动物需要复苏和除颤。结果的广泛分散部分是由于动物体重的不同。同时, 在报告结果时必须考虑麻醉的必要性, 特别是对心率和血压的影响。猪特异标记物的血水平对心脏重塑程度的评估是有益的, 但在这方面的证据仍然缺乏。由于这些测量方法大多是侵入性的, 因此空前绝后, 我们没有提供基线或假的主题测量。

提出的方法可以产生渐进性慢性心力衰竭的模型。该技术使用广泛的设备, 操作简单, 结果可靠, 重现性好。这种心动过速诱发的心肌病为进一步的实验研究提供了一个宝贵的目标, 对血液动力学, 疾病机制的调查和应用治疗的效果。

底片
系统性适应慢性心力衰竭综合征 耗时模型准备
易于控制疾病进展 需要密切监视
铅隧道预防感染性并发症 铅脱位风险
做基本的手术和 cathetrization 技能 恶性心律失常的风险
可能转移到不同的动物种类

表 3: 概述了作为慢性心力衰竭模型的猪心动过速诱发心肌病的研究方法的正面和负面性。

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Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

这项工作得到了查尔斯大学研究资助 GA 英国538216号和 ga 英国1114213号的支持。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Medication
midazolam Roche Dormicum anesthetic
ketamine hydrochloride Richter Gedeon Calypsol anesthetic
propofol B.Braun Propofol anesthetic
cefazolin Medochemie Azepo antibiotic
Silver Aluminium Aerosol Henry Schein 9003273 tincture
povidone iodine Egis Praha Betadine disinfection
morphine Biotika Bohemia Morphin 1% inj analgetic
Tools
Metzenbaum scissors, lancet with #22 blade, DeBakey forceps, needle driver basic surgical equipment
cauterizer
2-0 Vicryl Ethicon V323H absorbable braided suture
2-0 Perma-Hand Silk Ethicon A185H silk tie suture
2-0 Prolene Ethicon 8433H non-absorbable suture
Diagnostic devices
ESP C-arm GE Healthcare ESP X-ray fluoro C-arm
Acuson x300 Siemens Healthcare ultrasound system
Acuson P5-1 Siemens Healthcare echocardiographic probe
Acuson VF10-5 Siemens Healthcare sonographic vascular probe
3PSB, 4PSB and 6PSB Transonic Systems perivascular flow probes
TS420 Transonic Systems perivascular flow module
TruWave  Edwards Lifesciences T001660A fluid-filled pressure transducer
7.0F VSL Pigtail Transonic Systems pressure sensor catheter
INVOS 5100C Cerebral/Somatic Oximeter Somanetics/Medtronic near infrared spectroscopy
CCO Combo Catheter Edwards Lifesciences 744F75 Swan-Ganz pulmonary artery catheter
Vigillace II Edwards Lifesciences VIG2E cardiac output monitor
7.0F VSL Pigtail Transonic Systems pressure-volume catheter
ADV500 Transonic Systems pressure-volume system
LabChart and PowerLab ADInstruments data acquisition and analysis system
Prism 6 GraphPad statistical analysis software
Pacing devices
ICS 3000 Biotronic 349528 pacemaker programmer
ERA 3000 Biotronic 128828 external pacemaker
Effecta DR Biotronic 371199 dual-chamber pacemaker
Tendril STS St. Jude Medical 2088TC/58 ventricular pacing lead
Lead permanent adapter Osypka Article 53422 convergent "Y" connecting part
Lead permanent adapter Osypka Article 53904 convergent "Y" connecting part
Tear-Away Introducer 7F B.Braun 5210593 tear away introducer sheath 
Split Cath Tunneler medComp AST-L tunneling tool
infusion line MPH Medical Devices 2200045 connecting line

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医学 问题 132 动物模型 慢性心力衰竭 心肌病 体外生命支持 心动过速
心动过速诱发的心肌病作为猪慢性心力衰竭模型的研究
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Hála, P., Mlček, M.,More

Hála, P., Mlček, M., Ošťádal, P., Janák, D., Popková, M., Bouček, T., Lacko, S., Kudlička, J., Neužil, P., Kittnar, O. Tachycardia-Induced Cardiomyopathy As a Chronic Heart Failure Model in Swine. J. Vis. Exp. (132), e57030, doi:10.3791/57030 (2018).

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