Summary
在这里, 我们描述了一个协议的染色质沉淀的修饰组蛋白从萌芽酵母酿酒酵母。Immunoprecipitated DNA 随后用于定量 PCR 研究组蛋白修饰修饰的丰度和局部化。
Abstract
组蛋白修饰修饰 (PTMs), 如乙酰化, 甲基和磷酸, 是由一系列酶动态调节的, 它们可以添加或除去这些标记, 以响应细胞接收到的信号。这些 PTMS 是调控基因表达调控和 DNA 修复等过程的关键因素。染色质沉淀 (芯片) 一直是一个工具的方法, 以解剖的丰度和本地化的许多组蛋白 PTMs 整个染色体, 以响应对细胞的各种扰动。在这里, 一个多功能的方法来执行芯片的 post-translationally 修饰组蛋白从萌芽酵母酿酒酵母 (S. 酵母)描述。该方法依赖于用甲醛处理酵母培养物的蛋白质和 dna 的交联, 通过微珠打浆产生酵母裂解, micrococcal 核酸和组蛋白 DNA 的沉淀对染色质片段的增溶。配合.与组蛋白标记相关的 DNA 被纯化并进行定量 PCR 分析, 以评估其在多个基因座上的富集。对野生和突变酵母中组蛋白标记 H3K4me2 和 H4K16ac 定位的代表性实验进行了探讨, 以验证数据分析和解释。该方法适用于多种组蛋白 PTMs, 可与不同的突变菌株或在不同环境应力的情况下进行, 使其成为研究各种条件下染色质动力学变化的极好工具。
Introduction
组蛋白的动态修饰修饰 (PTM) 是许多 dna 模板化过程的关键调控机制, 包括转录、复制和 dna 修复1,2。因此, 确定修饰组蛋白的丰度和精确定位与这些过程相伴的能力, 对于了解它们在细胞不同条件下的调节是至关重要的。染色质沉淀 (芯片) 的发展主要来源于生物化学研究的蛋白质与 DNA 的相互作用, 特别是体外方法使用化学交, 再加上需要评估蛋白质-DNA 相互作用的动态性质在体内和在基因组的特定区域3,4,5。定量 PCR (qPCR) 和测序技术的进步也扩大了进行芯片实验的能力, 以定量比较和整个基因组, 使之成为解剖 DNA-蛋白质相互作用的有力工具多个级别。
目前, 芯片是一个必要的方法, 任何研究组感兴趣的染色质介导的基因组的调节, 因为有没有可比的方法直接询问的物理联系的修饰组蛋白和特定的基因座的轨迹在体内。尽管此方法的变体使用下一代测序来映射组蛋白修饰, 在整个染色体6,7中可用, 但这些方法可以解决不同的科学问题及其规模、成本和技术资源可能限制一些研究组。此外, 有针对性的芯片 qPCR 是必要的, 以补充这些方法, 提供的方式, 以优化的芯片协议之前, 排序和验证的结果, 从表数据集。质谱法的方法, 以确定完整补充的组蛋白标记相关的基因区域也出现了8,9,10,11, 但是, 这些方法有一些限制, 关于哪些区域的基因组可以被探测, 他们需要的技术专长和仪器, 将无法提供给所有研究组。因此, 芯片仍然是分析组蛋白修饰在不同条件下的丰度和分布的基础方法, 对所有感兴趣的研究小组的遗传学, 染色质和基因组功能的调节。
在这里, 我们描述了一个方法的芯片使用萌芽酵母模型酿酒酵母 (S.) , 以研究组蛋白 PTMs 在染色质上的分布。这种方法依赖于在酵母中开发的一些芯片协议的核心组件, 也适用于不同的模型系统12,13。修饰组蛋白与 DNA 在细胞内的相互作用与甲醛交联保存。在裂解制备后, 染色质碎片通过消化 micrococcal 核酸溶解成 uniformly-sized 片段。修饰组蛋白的沉淀是用商业或实验室生成的抗体进行的, 任何相关的 DNA 都是用 qPCR (图 1) 分离和分析的, 以便在特定的染色体区域富集。对于许多组蛋白修饰, 从这个协议获得的 DNA 的数量是足够的测试超过25不同的基因座的 qPCR。
这种芯片方法是高度通用的监测在多个突变株或环境条件下的单一组蛋白修饰的分布, 或测试多组蛋白修饰在野生细胞的多个基因座基因座。此外, 该协议的许多组成部分很容易调整, 以优化检测无论是高或低丰富的组蛋白标记。最后, 在芽酵母中修饰组蛋白的执行芯片提供了使用关键的控制抗体特异性的机会, 在其他系统中基本上是不可用的。即, 酵母菌株可以产生, 携带点突变的组蛋白残留的目标是修改, 在某些情况下, 只有一个单一的酶, 催化修饰特定的组蛋白残留 (e. g. 组蛋白赖氨酸甲基)。因此, 芯片可以在组蛋白突变体或酶缺失菌株中进行, 以测定抗体的非特异性结合程度, 并产生假阳性结果。这种控制是特别有价值的新发展的抗体, 甚至可以用来验证抗体特异性的保守组蛋白修饰之前, 其使用的其他系统。这种方法补充了其他方法来测试抗体特异性, 区分不同的修饰状态 (如单, di 和三甲基化), 包括探针阵列的修饰肽和执行西方印迹的组蛋白或核具有定义的修改。总的来说, 芽酵母的芯片是一种强有力的方法来评估组蛋白 PTMs 的动态, 在整个染色体和解剖的机制控制他们的调节。
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Protocol
1. 磁珠预绑定抗体
- 混合蛋白 A/G 磁性珠井和转移20µL 磁珠每一个沉淀 (IP) 样品到1.5 毫升管。
注: 当移珠, 使用宽口径, low-retention 提示。 - 把管子与珠子放在一个磁性的立场, 并允许珠子收集在一侧的管。除去上清液。
- 用1毫升的冷三缓冲盐水 (TBS) 洗涤珠子3次 (50 毫米三盐酸 pH 7.5, 150 毫米氯化钠)。
- 添加200µL 的 TBS 到珠子和适当数量的抗体。在4° c 的夜间旋转 8 rpm。
注: 对于许多组蛋白 PTM 抗体, 每 IP 1-3 µg 抗体就足够了。然而, 建议的滴定实验, 以确定适当的浓度。推荐浓度的良好, 商业组蛋白 PTM 抗体往往是准确的, 可以在发表的报告或产品文献中找到。 - 将珠子放在磁性的支架上, 除去上清液。用1毫升的 TBS 洗涤。
- 重在20µL 的 tbs 每 IP 样品加一个额外的5µL (万一移错误) 的 tbs。
注: 珠子可在4° c 的短期贮存, 直到使用。
2. 培养酵母细胞
- 接种10毫升的 YPD (10% 酵母提取物, 20% 蛋白胨和20% 葡萄糖) 与适当的菌株的单一菌落和生长在30° c 隔夜在震动孵化器在 220 rpm。
- 用分光光度计测量酵母培养物 600 nm (OD600) 的光学密度。将区域性稀释到 OD600 = 0.2 在100毫升 YPD 中的新烧瓶中。
- 在30° c 的振动孵化室中, 在 220 rpm 处生长细胞, 直至达到 mid-log 阶段 (OD600 = 0.6-0.8)。
3.体内蛋白质与 DNA 的交联
- 当培养物达到 mid-log 阶段时, 将2.7 毫升的37% 甲醛直接添加到培养基中, 最终浓度为1% 的甲醛。将烧瓶转到25° c (或室温) 的振动器, 并在 50 rpm 处摇动15分钟。
- 将5毫升的2.5 米甘氨酸添加到培养基中, 在室温下连续晃动50分钟, 使甲醛淬火5分钟。
- 转移细胞到离心瓶和旋转细胞在 5800 x g 为5分钟在4° c。醒酒上清。
- 通过溶液45毫升的冷 TBS 将细胞洗净, 并将悬浮液转化为50毫升的锥形管。旋转管在 2800 x g 为3分钟在4° c。除去上清液。
- 在10毫升的冷芯片裂解缓冲液中洗涤细胞 (50 毫米三盐酸 pH 7.5, 150 毫米氯化钠, 1 毫米乙酸酸 (EDTA), 1% nonidet 辛基 phenoxypolyethoxylethanol (NP-40), 贮存在4° c)。
- 旋转细胞在 2800 x g 为3分钟在4° c。除去上清液。
注: 细胞可以用液氮冷冻, 贮存在-80 ° c, 直至进一步加工。
4. 制作酵母裂解
- 重1毫升的冷芯片裂解缓冲液中的1毫米磺氟化物 (PMSF) 和 1:1, 000 稀释酵母蛋白酶抑制剂鸡尾酒。将悬浮液转移至2.0 毫升的螺旋帽管, 内含200µL 的玻璃珠。
- 将电池转移到4° c 的高速搅拌的微珠跳动装置, 每三十年代6次。保持在冰上的细胞至少1分钟之间的每个珠殴打。
- 使用凝胶加载技巧将裂解液转化为1.5 毫升的管子。离心裂解液在 15500 x g 为20分钟在4° c。
- 丢弃上清和重250µL 的 MNase 消化缓冲剂 (10 毫米三盐酸 pH 7.5, 10 毫米氯化钠, 3 毫米氯化镁2, 21 mm CaCl2, 1% NP-40, 存储在4° c) 轻轻移向上和向下。
- 在反应中加入2.5 µL 的 MNase。将它们轻轻地搅拌4-6 次, 并立即在37° c 水浴中孵育20分钟。
注意: 当使用新的 MNase 时, 应优化消化条件。请参见协议的步骤10。 - 立即放置在冰上的管停止反应, 并增加5µL 0.5 米 edta 最后浓度10毫米 edta。用倒装法轻轻地混合。
- 离心反应在 15500 x g 为15分钟在4° c 和转移上清到一个新的1.5 毫升管子。
注: 可溶性 (消化) 染色质将在上清。颗粒含有任何未消化和不溶的细胞碎片。
5. Immunoprecipitate (IP) 修饰组蛋白
- 使用布拉德福德法测定每 MNase 释放的染色质分数的蛋白质浓度。添加1毫升布拉德福德试剂每8一次性试管加1额外试管的每一个蛋白质样品要测试。
- 准备一个2毫克/毫升牛血清白蛋白 (BSA) 的库存溶液。
- 添加适当的体积以达到以下浓度的 BSA 在1毫升布拉德福德试剂: 0 微克/毫升, 0.5 微克/毫升, 1 微克/毫升, 2 微克/毫升, 4 微克/毫升, 6 微克/毫升, 8 微克/毫升和10微克/毫升。添加2μ l MNase 释放的染色质分数的额外的试管。
- 覆盖每个试管的顶部与一小块膜和反转的试管4-6 倍, 以混合解决方案好。室温下孵育试管15分钟。
- 使用可见光分光光度计测量标准曲线和实验样品的 595 nm 的吸光度。
注: 在进行第一次测量之前, 使用无 BSA (0 微克/毫升) 的试管空白分光光度计。 - 使用与分光光度计或电子表格软件相关的软件的不同浓度的 BSA 的吸光度值绘制标准曲线。根据标准曲线和所使用的稀释因子 (1:500), 使用吸光度值计算每个染色质分数样品的蛋白质浓度。
- 对于每个 IP, 添加50µg 的总蛋白从 MNase 释放染色质分数到芯片裂解缓冲, 达到最后的体积1毫升。
注: 如果每个裂解装置设置多个 ip, 则将裂解剂和芯片裂解缓冲液的主混合, 并分1毫升用于 ip 的单个管。 - 从 IP 混合中删除100µL 作为输入示例进行处理。将输入样本冻结在-20 ° c 直到步骤7.1。
注: 任何剩余的染色质样品也可在-20 ° c 冻结, 如果需要, 可用于后续的 IP。 - 添加20µL 磁性蛋白 A/G 珠 pre-bound 与抗体的每个 IP 样本。
6. 洗涤 IPs 和洗组蛋白-DNA 复合物
- 把管子放在磁性的支架上, 让珠子在管子的侧面收集。用吸管取出上清液。在下面的每个缓冲器上依次洗涤1毫升的珠子。
- 在4° c 的5分钟旋转 8 rpm, 将珠子放在磁性支架上, 除去上清, 并加入下一个缓冲器: 2x-片状裂解缓冲液, 2x-高盐洗涤缓冲器 (50 毫米三盐酸 pH 7.5, 500 毫米氯化钠, 1 毫米 EDTA, 1% NP-40, 储存在4° c), 1x-氯化/洗涤剂洗涤缓冲 (10 毫米三盐酸盐 pH 8.0, 250 毫米氯化, 1 毫米 edta, 1% NP-40, 1% 钠胆酸, 存储在4° c), 1x te (10 毫米三盐酸 pH 8.0, 1 毫米 edta, 存储在4° c), 和 1x te。
- 用最后的 te 洗涤, 转移珠子到一个新的管使用0.5 毫升 te 转移大部分的珠子, 然后再0.5 毫升的 te 清洗管和转移剩余的珠子。
- 添加250µL 新制作的芯片洗脱缓冲器 (1% SDS, 1 mM NaHCO3)。简要地漩涡解答。在室温下旋转 8 rpm 的样品15分钟。
- 把管子放在磁性的支架上, 收集珠子。小心地将上清液转移到新的管子上, 避免珠子。
注: 洗含有 immunoprecipitated 蛋白和相关的 DNA。 - 再添加250µL 的芯片洗脱缓冲珠。在室温下旋转 8 rpm 的样品15分钟。
- 小心地将上清液转移到含有第一洗脱的管子。如有必要, 卸下所有 IPs 的较小音量 (240 µL) 以避免干扰珠子。
7. 反向蛋白质-DNA 通道
- 解冻输入样本, 并在每个输入中添加400µL 的芯片洗脱缓冲器。
- 对输入和 IP 样本, 添加20µL 5 米氯化钠, 5 µL 20 毫克/毫升糖原, 12.5 毫克/毫升蛋白酶 k µL 的混合好, 通过倒置或弹管。在一夜间65° c 水浴中孵育样品。
8. 纯化和浓缩 DNA
- 添加10µL 10 毫克/毫升核糖核酸 A 到输入和 IP 样本。在37° c 水浴中孵育样品30分钟。
- 在水溶液中加入600µL phenol:chlorofrom:isoamyl 醇 (25:24:1 PCI), 并将它们混合均匀。在室温下旋转 15500 x g 5 分钟。
- 将水层移至新管。加入600µL 的 PCI, 并将它们混合均匀。在室温下旋转 15500 x g 的管子5分钟。将水层转移到新的管中。
警告: 在使用 PCI 时, 应在通风橱中工作并佩戴适当的个人防护设备。按照机构指导方针的指示处理液体和固体废物。
- 将水层移至新管。加入600µL 的 PCI, 并将它们混合均匀。在室温下旋转 15500 x g 的管子5分钟。将水层转移到新的管中。
- 添加0.1x 体积的3M 醋酸钠和1毫升的冷100% 乙醇沉淀的 DNA。倒置管4-6 次, 以混合解决方案好。在晚上-20 ° c 孵育。
- 旋转管在 15500 x g 为20分钟在4° c。小心地用吸管把上清液取出。
- 用1毫升的冷70% 乙醇清洗颗粒。旋转它在 15500 x g 为10分钟在4° c。小心地用吸管把上清液取出。
- 空气烘干药丸在敞篷为大约20分钟 (直到完全地干燥)。重 IP 样品在50µL 核酸水和重输入样品在100µL 无核酸水。将 DNA 样本储存在-20 ° c 直到执行 qPCR。
9. 定量 PCR (qPCR) 检测富集基因组区域
- 为每一组底漆制作一个 qPCR 的主组合。一个反应包含5µL 的 2x qPCR 混合, 0.25 µL 20 µM 前引物, 和0.25 µL 20 µM 反向底漆。
注: qPCR 实验的适当入门设计和测试在其他地方描述14,15,16。 - 为每个 dna 样本制作 dna 主混合。一个反应包含0.5 µL 的 DNA 和4.0 µL 的核酸水。
- 添加5.5 µL 适当的底漆主混合和4.5 µL 适当的 DNA 主混合每井在一个384井 qPCR 板。
注: 开始添加5.5 µL 的底漆混合到每一个井。在室温下在 200 x g 旋转1分钟, 然后再加入4.5 µL 的 DNA 混合。 - 在室温下, 将密封粘附到板上, 在 200 x g 处旋转1分钟。
- 使用具有以下条件的 real-time qPCR 系统执行 qPCR:95 ° c 为3分钟;40周期95° c 为十年代, 55 ° c 为三十年代;熔化曲线65° c 到95° c 以0.5 ° c 增量, 5 s。
- 对于每个入门对, 计算 IP 样本相对于 qPCR 中使用的5% 输入样本的百分比输入。利用技术 PCR triplicates 的方法进行计算。
注意: 如果在 PCR triplicates 中观察到大量的变异, 最好是在384孔板中, qPCR 注意主成分组合、移误差和井间交叉污染。- 通过从原始的值中减去代表稀释因子的周期数, 将输入的值调整为100%。
注: 5% 输入表示20倍的稀释因子, 等于4.32 循环 (日志2 20 = 4.32)。 - 将输入百分比计算为 2 ^ (重庆输入-重庆IP) 乘以100。
- 通过从原始的值中减去代表稀释因子的周期数, 将输入的值调整为100%。
10. 确定 MNase 消化条件 (在第一次全芯片试验之前推荐)
- 按照上述协议的步骤2.1 到4.4。扩大协议, 以产生足够的裂解物的多个样品的 MNase 消化的染色质含有颗粒。在步骤 4.4, 重在1.25 毫升的 MNase 消化缓冲颗粒。将样品分到5根管子, 使每一个都含有250µL 的染色质颗粒悬浮在 MNase 消化缓冲液中。
- 每管加0、1.5、2.5 或5µL MNase。将它们轻轻地搅拌4-6 次, 然后立即在37° c 水浴中孵育20分钟的管子。
- 停止反应, 立即放置在冰上的管和增加5µL 0.5 米 EDTA 为10毫米最终浓度。
- 将水层移至新管。添加300µL 的 PCI 和混合好。在室温下旋转 15500 x g 5 分钟。将水层转移到新的管中。
- 旋转管在 15500 x g 20 分钟, 在4° c。小心地用吸管除去上清液。
- 在1毫升的冷70% 乙醇中清洗颗粒。旋转在 15500 x g 为10分钟在4° c。
- 让小球在引擎盖风干大约20分钟 (或直到完全地干燥)。重30µL 的核酸水中的小球。
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Representative Results
该协议的一个关键组成部分是优化 micrococcal 核酸 (MNase) 的浓度, 用于消化染色质到可溶性片段, 如步骤10所述。这对于获得关于组蛋白修饰在感兴趣的染色体区域分布的高分辨率数据至关重要。应进行 MNase 滴定, 以确定最合适的浓度, 以实现主要单核与少量的 di 核在可溶性染色质分数。这可以通过提取的 DNA 后 MNase 消化的染色质含有颗粒和执行琼脂糖凝胶电泳 (图 2)。在这里使用的 MNase 的准备, 2.5 µL 酵素在20个单位或µL 生产了主要地单核, 因此这个数额为芯片使用了。
为这个芯片过程显示了两组代表性的结果 (图 3)。在第一个例子中, 一个组蛋白甲基标记被评价在野生细胞或缺乏甲基的细胞, 从而催化这个标记。具体地说, 在野生和set1Δ单元格中, 使用抗 H3K4me2 的抗体以及对组蛋白 H3 作为控件执行芯片。H3K4me2 主要本地化在转录起始点的下游在编码区域的末端5和, 在缺乏 Set1, H3K4me2 不能被检测在细胞17,18,19。因此, set1Δ应变作为一种控制来指示可能归因于其他组蛋白标记或 DNA 与抗体的非特异性结合的背景信号量。在这种情况下, 野生菌株显示清楚丰富的 H3K4me2 在 5 ' 结束的两个基因已知的直接目标的 Set1, PMA1和ERG1120,21, 而没有信号在set1Δ观察到单元格 (图 3A)。正如所料, 在端粒 (TEL) 07L中没有丰富的 H3K4me2 标记。中产基因SPR3的表达也被报告为 Set12223, 但是 H3K4me2 在SPR3的5端的丰富性与观察到的级别非常相似在TEL07L中, 与PMA1或ERG11进行比较。评估此甲基标记的本地化表明, SPR3的 Set1-mediated 调节可能会发生在PMA1或ERG11,与以前观察到的22不同的机制。
在第二个例子中, 乙酰 H4K16 的芯片相对于组蛋白 H4 在野生细胞和细胞缺乏组蛋白乙酰 Sir2, 这消除 H4K16ac 标记。H4K16ac 是在异状染色质接近端粒, 并丰富染色质更远端从端粒24,25, 如演示的TEL07L和TEL15L (图3B). 此外, Sir2 的损失导致 H4K16ac 在特定的端和亚地区的增加, 虽然在控制基因PMA1没有观察到, 在那里 Sir2 不知道本地化。虽然这些数据显示sir2δ单元格中的 H4K16ac 级别明显增加, 但在 H4K16ac 中检测到的更改 (不应像野生与set1δ单元格中的 H3K4me2 更改那样重要) 可能会被遮蔽, 如果芯片参数未正确优化。讨论中介绍了优化的建议。
图 1:芯片过程的时间线.给出了芯片协议的典型调度。可能的变异在文本被表明。请单击此处查看此图的较大版本.
图 2:MNase 消化法测定单核的溶出度.琼脂糖凝胶电泳的 DNA 分离后, 消化的染色质颗粒与不同数量的 MNase (20 单位/µL)。从 mononucleosomes 的 dna 迁移大约 150 bp, 从 dinucleosomes 在大约 300 bp 和脱氧核糖核酸从 polynucleosomes 被发现在越来越高分子重量。请单击此处查看此图的较大版本.
图 3: H3K4me2 和 H4K16ac 的芯片在野生和突变酵母菌株中.使用抗 H3K4me2 和 H3 抗体的 ( A) 芯片在野生和set1Δ单元格中执行。为 H3K4me2 和 H3 IPs 的每一个引物对计算百分比输入, 并以图表的比例表示相对丰富的 H3K4me2 在指定的座位。PMA1、 ERG11和SPR3的引物在每个编码的5末端生成增, 而TEL07L底漆对位于7号染色体左边的端粒附近。证明了三生物复制的平均值, 误差条表示平均值的标准误差。(B) 芯片是在野生和sir2Δ单元格中识别 H4K16ac 和 H4 的抗体进行的, 并按照图 3A的描述进行绘制。底漆对对端粒 (TEL07L和TEL15L) 相邻的序列进行放大, 并在每个 subtelomere 的先前定义的 euchromatic 区域 (分别在 21 kb 和 5 kb 远端从端粒中) 向下扩展。请点击这里查看更大版本的这个数字。
| 应变数 | 基因 | 参考 |
| yEG230 | MATα his3Δ1 leu2Δ0 met15Δ0 ura3Δ0 | 23 |
| yEG223 | MATα sir2Δ::NATMX | 本研究 |
| yEG232 | set1Δ::KANMX | 23 |
表 1: 本研究中使用的酵母菌。
| 寡数 | 位置 | 序列 |
| oEG141 | TELVIIL F | AGCCCGAGCCTGTACTAAAT |
| oEG142 | TELVIIL 河 | CAAAAGAAACTTTTCATGGCA |
| oEG153 | 5 ' PMA1 F | TCAGCTCATCAGCCAACTCAAG |
| oEG154 | 5 ' PMA1 R | CGTCGACACCGTGATTAGATTG |
| oEG220 | TELVIIL + 21KB F | AAACAATGGGACCCTTCTGA |
| oEG221 | TELVIIL + 21KB R | AACACCTTGCAAAACACAGG |
| oEG280 | TELXVL F | ATCCTGCAATTGGGCCACTAT |
| oEG281 | TELXVL 河 | AGCGGAAGGCATATTAACGT |
| oEG282 | TELXVL + 5KB F | AGGCGATGTAATCTCACCAA |
| oEG283 | TELXVL + 5KB R | CATTCACACATCCTGCTACCA |
| oEG568 | ERG11 F | CCTCTTATTCCGTCGGTGAA |
| oEG569 | ERG11 河 | TGTGTCTACCACCACCGAAA |
| oEG963 | SPR3 F | TCTGGATTCGCTGAGGAAGT |
| oEG964 | SPR3 河 | TTTCAGTTCAGGGCTTTTCG |
表 2: 本研究中使用的底漆。
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Discussion
这里描述的过程允许有效地恢复 DNA 与修饰组蛋白相关的酵母细胞中的沉淀。随后, qPCR 使用引物放大感兴趣的区域, 以确定局部富集或特定组蛋白修饰的损耗。尽管在近20年前被开发成为一种方法, 但芯片仍然是研究组蛋白修饰状态在不同的染色体区域和在各种条件下的决定性的检测。尽管芯片耦合到下一代测序技术可以在全基因组范围内对蛋白修饰进行审问6,7, 但这些方法的成本和所需的数据分析可能会限制它们在某些实验室设置中的使用。此外, 这些表的实验, 往往其次是芯片耦合到 qPCR, 以验证组蛋白修饰的状态在某些基因座的观察。很少有可比较的方法, 提供芯片的效用, 在物理上连接一个组蛋白标记 (或其他蛋白质) 到一个特定的位置, 在不同的环境或生物条件下, 分析这种相互作用的动力学.虽然最近成功地分离染色质从定义的基因组区域和辨认地方蛋白标记用质谱学8,9,10,11, 这些方法构成技术挑战及其在不同实验室类型中的效用可能受到充分利用质谱仪仪器和数据分析资源的限制。这里描述的协议在技术上和经济上都可以访问到不同的实验室设置, 主要可能的障碍是访问 qPCR 机器。芯片仍然是定义在酵母和其他系统中修饰组蛋白的基因定位的金标准。
这是一个多才多艺的协议与一些步骤, 可以优化, 以适应不同的实验条件, 包括同时测试多个突变体或环境条件。或者, 足够的染色质通常是由一个裂解产物来执行多个 IPs 与多达至少四不同的抗体。该协议也可用于 non-histone 染色质蛋白芯片的表位标记, 或已产生抗体。如果该协议是要适应 non-histone 蛋白芯片, 参数包括固定时间, 染色质浓度在 IP 和抗体浓度往往是关键, 以获得丰富的目标蛋白的背景。最常见的是, 它是有用的增加与甲醛的固定时间在45和60分钟之间, 并增加在 IP 使用的染色质数量 (高达200µg 总蛋白)。
有许多潜在的变数, 有助于质量和重复性的组蛋白修饰芯片实验。虽然次优实验在比较斯塔克的差异时通常会产生积极的结果 (例如, 在野生或set1Δ单元格中的 H3K4me2 级别, 如图 3A所示), 但更细微的差异很可能在不正确地执行实验 (如图 3B中所示的野生或sir2Δ单元格中TEL07L的不同级别的 H4K16ac)。要考虑的实验参数包括酵母细胞的数量, 固定时间, 在 IP 中使用的染色质分数的浓度, 被消化的 DNA 蛋白复合物的片段大小和抗体的质量和浓度。这种方法的一个限制是, 对实验参数的优化通常需要对每个组蛋白修饰进行测试和突变株和/或条件的调查。在不同的条件下, 组蛋白标记水平或局部化可能存在细微差异, 而检测这些差异的能力取决于上述参数。我们讨论了开发最敏感的实验方法的一些关键因素。
如协议中所述, 建议在进行全芯片试验之前, 测试多个浓度的 MNase 以确定最佳浓度。确保 IP 内的 DNA 足够分散是获得高分辨率芯片结果的关键。即使 qPCR 产品的增大小可能很小 (一般少于 100 bp), 如果 DNA 的片段大小大得多, qPCR 可能在特定的轨迹上错误地表明富集, 当, 在实际上, 组蛋白标记可能被本地化数以百计的 basepairs 离开。虽然这个协议依赖于 MNase 溶解染色质成单和 di 核, 其他芯片协议也通常使用超声剪切染色质6,7。超声也是一个可靠的方法, 磷染色质片段, 虽然剪切大小趋于不均匀, 它可以更难以取得一致的结果之间的实验。虽然超声可能是最好的一些 non-histone 蛋白芯片, 使用 MNase 消化染色质的主要单核可以提高组蛋白修饰芯片实验的分辨率。
一个成功的芯片实验的要求是一种抗体, 唯一和高亲和力承认组蛋白修饰的兴趣。芯片作为组蛋白修饰检测方法的主要局限性在于它依赖于一种高质量的、经过验证的抗体;如果没有这样的试剂, 从芯片获得的结果不太可能与生物学有关。虽然抗体的质量和有效性是可变的, 但在萌芽的酵母中发现了一些针对组蛋白修饰的抗病毒抗体。努力验证这些抗体已经产生了有用的资源, 以确定最有效的抗体为给定的实验26。建议用于芯片的抗体通过多种不同的特异性方法进行验证, 包括通过对修饰和未改变的组蛋白肽进行探测, 对整个细胞提取物和纯化的蛋白质组进行西部印迹, 并在芯片实验与适当的控制, 如菌株与修改酶删除或携带点突变的修饰组蛋白残留物。对于新的抗体, 识别 uncharacterized 标记或实验室产生的抗体, 这些特异性实验是关键的, 以确定是否抗体可能是一个有效的试剂芯片。除了验证抗体的特异性外, 对野生菌株的 IP 进行抗体滴定和负控制应变通常对确定所需的抗体量 (相对于一组染色质浓度) 很有用检测基因组中的菌株或区域的富集的准确差异。此外, 如果一些数据的基因组分布模式的标记是已知的, 积极和消极的控制底漆应包括在所有的 qPCR 实验, 以验证任何单独的实验和简化比较之间的实验。
总的来说, 这项工作描述了一个基本的方法, 研究人员有兴趣在任何基因组的修饰状态在萌芽酵母中进行审问。该协议的通用性及其对各种实验问题的适用性使得它成为在分子水平上解剖染色质动力学的非常有用的工具。
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Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
作者想感谢格林实验室的成员进行有益的讨论。这项工作得到了部分由 NIH 赠款 R03AG052018 和 R01GM124342 E.M.G。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Yeast Extract | Research Products International (RPI) | Y20025-1000.0 | |
| Peptone | Research Products International (RPI) | P20250-1000.0 | |
| Dextrose | ThermoScientific | BP350-1 | |
| Formaldehyde | Sigma-Aldrich | F8775 | |
| Glycine | Fisher Scientific | AC12007-0050 | |
| Tris | Amresco | 0497-5KG | |
| EDTA | Sigma-Aldrich | E6758-500G | |
| NaCl | ThermoScientific | BP358-10 | |
| 4-Nonylphenyl-polyethylene glycol | Sigma-Aldrich | 74385 | Equivalent to NP-40 |
| MgCl | ThermoScientific | S25533 | |
| CaCl2 | Sigma-Aldrich | 20899-25G-F | |
| LiCl | ThermoScientific | AC413271000 | |
| Sodium Dodecyl Sulfate | Amresco | M107-1KG | |
| Sodium Deoxycholate | Sigma-Aldrich | 30970-100G | |
| Sodium Acetate | Sigma-Aldrich | S2889 | |
| NaHCO3 | ThermoScientific | S25533 | |
| PMSF | Sigma-Aldrich | P7626-5G | |
| Yeast protease inhibitor cocktail | VWR | 10190-076 | |
| 25 Phenol:24 Chloroform:1 Isoamyl Alcohol | VWR Life Science | 97064-824 | |
| Ethanol | Sigma-Aldrich | E7023 | |
| Nuclease-Free Water | VWR | 100720-992 | |
| Micrococcal Nuclease | Worthington Biochemical | LS004797 | |
| Glycogen | ThermoScientific | R0561 | |
| Proteinase K | Research Products International (RPI) | P50220-0.1 | |
| RNase A | Sigma-Aldrich | R6513-50MG | |
| Bradford Assay Reagent | ThermoScientific | 23238 | |
| BSA Standard 2 mg/mL | ThermoScientific | 23210 | |
| α H4 | EMD Millipore | 04-858 | |
| α H4K16ac | EMD Millipore | ABE532 | |
| α H3 | Abcam | ab1791 | |
| α H3K4me2 | Active Motif | 39142 | |
| High Rox qPCR Mix | Accuris qMax Green, Low Rox qPCR Mix | ACC-PR2000-L-1000 | |
| Protein A/G Magnetic Beads | ThermoScientific | 88803 | |
| magnetic stand for 1.5mL tubes | Fisher Scientific | PI-21359 | |
| Acid-Washed Glass Beads | Sigma-Aldrich | G8772 | |
| Microtube Homogenizer | Benchmark | D1030 | |
| 2.0 mL screw-cap tubes with sealing rings | Sigma-Aldrich | Z763837-1000EA | |
| Gel loading tips | Fisher Scientific | 07-200-288 | |
| Cuvettes | Fisher Scientific | 50-476-476 | |
| Parafilm | Fisher Scientific | 13-374-10 | |
| 50 mL conical tubes | Fisher Scientific | 14-432-22 | |
| 384-Well PCR Plate | Fisher Scientific | AB-1384W | |
| Gyratory Floor Shaker | New Brunswick Scientific | Model G10 | |
| Spectrophotometer | ThermoScientific | ND-2000c | |
| Real-Time PCR Detection System | Bio-Rad | 1855485 |
References
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