Summary
单核细胞衍生的 DC (MoDC) 可以感觉到少量的危险相关分子, 因此很容易被引。我们提供了一个详细的协议, 以隔离 MoDC 从血液和肿瘤和他们的活化与免疫复合体, 同时强调应考虑的关键预防措施, 以避免其过早激活。
Abstract
树突状细胞 (DC) 是不同的细胞群, 它们的细胞膜标记物, 迁移模式和分布, 并在其抗原表示和 T 细胞活化能力。由于大多数实验性肿瘤模型的接种都需要数以百万计的 DC, 所以它们被广泛地从骨髓或脾脏中分离出来。然而, 这些 dc 明显不同于血液和肿瘤 DC 在他们的反应免疫复合物 (IC), 大概是其他 Syk 耦合凝集素受体。重要的是, 鉴于 dc 对危险相关分子的敏感性, 在隔离步骤之一中交联激活受体的内毒素或抗体的存在可能导致 DC 的启动, 从而影响参数, 或者至少剂量, 需要激活他们。因此, 我们在这里描述一个详细的协议, 以隔离 MoDC 从血液和肿瘤, 同时避免其过早活化。此外, 还提供了一种用于肿瘤 IC 的 MoDC 活化的协议及其后续分析。
Introduction
自发现以来, 树突状细胞 (DC) 一直是广泛研究的焦点, 由于其独特的能力, 扭曲 T 细胞分化1。在过去几十年中, 广泛的研究工作试图定义各种 DC 子集及其在肿瘤进展和免疫中的作用2。DCs 由不同的细胞群组成, 它们在模式识别受体、组织分布和迁移和抗原表示能力方面各不相同,3,4,5。与其他 DC 子集相比, 单核细胞衍生 DC (MoDC) 在肿瘤中的丰富程度更大, 可以很容易地从循环或肿瘤浸润的单核细胞6,7中生成。因此, 许多试图利用其相对患病率的临床试验都是基于体内和体内操作自体 MoDC, 以诱导 T 细胞免疫89。
同样, 以 DC 为基础的实验性肿瘤模型接种需要2-3 系列注射, 5-7 天间隔, 1-2 x 106激活 DC 脉冲与肿瘤抗原。因此, 为了实现这一大数目的 DC, 大多数老鼠的研究主要使用 MoDC 培养的骨髓 (BM) 前体在 GM-CSF 7-9 天 (IL-4 是不需要在鼠标设置)10,11。尽管如此, 鉴于 GM-CSF 挖空小鼠有整体正常 DC 隔间12,13, 并考虑到从该区域性获得的混合种群,14这些 DC 的生理相关性已被质疑。
或者, DC 可能经常被隔离从脾脏细胞。然而, DC 只包含大约 0.3-0.8% 的总脾脏细胞 (导致大约 7 x 105 dc 或脾脏) 和这些细胞, 只有 CD103+ DC 和 MoDC 可以迁移回到淋巴器官。由于 MoDCs 包括大约10-15% 的脾脏 DC 人口15,16, 大多数隔离协议产生大约 1 x 105 MoDC 每脾脏。MoDC 的扩张可以通过注射转染 B16 细胞分泌 GM-脑脊液来实现, 导致脾脏 MoDC17增加100倍。然而, 使用 MoDC 开发 DC 疫苗是有限的, 因为这个程序不能在人类和获得的 MoDC 已经高度激活。
除了获得足够数量的 dc, 开发有效的 dc 疫苗抗自体癌细胞的另一个挑战是缺乏足够的危险信号在肿瘤的设置, 以充分激活 dc。诱导的共同刺激信号通常是通过激活模式识别受体 (PRR), 或 c 型凝集素信号通路18,19,20,21。另外一种激活 DC 的方法利用它们通过与表面 Fcγ受体 (FcγR) 的相互作用来处理抗原的能力。事实上, 一些重要的手稿表明, 注射 MoDC 的 BM 前体激活的肿瘤 IgG 芯片可以防止肿瘤生长的预防性设置, 并可导致根除已建立的肿瘤22,23.
在最近的两篇论文中,卡米等发现, 与 BMDC 和脾 DC 相反, MoDC 从血液和肿瘤不能反应的 IgG IC 没有额外的刺激。发现这是由于存在高胞内水平的酪氨酸磷酸调节 FcγR 信号24,25。通过在 dc 中定义一个关键的检查点, 这项工作提供了对成功的基于 dc 的疫苗接种要求的重要洞察力。需要额外的刺激, 以使 FcγR 信号, 并推测信号从其他凝集素受体使用类似的磷酸化级联, 从而强调了避免在其孤立的 DC 启动的必要性。
因此, 本议定书描述了从血液和肿瘤 MoDC 的分离, 这与 BM 和脾脏 DC 明显不同, 并强调了在这一过程中值得考虑的预防措施。
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Protocol
下面的协议指的是鼠标 MoDC 的隔离, 但总体原则可能也适用于其他 DC 子集单元。12-16 周大的 C57Bl/6j 小鼠被维持在美国的实验室动物 Care–accredited 动物设施认证协会。所有议定书均经斯坦福大学和特拉维夫大学机构动物护理和使用委员会批准。
1. 肿瘤相关单核细胞源性 DC 的分离
- 在层流罩中, 从 CO2安乐死小鼠中取出肿瘤, 并将肿瘤放置在没有胎牛血清的 RPMI 培养基中。
注意: 强烈建议在切除肿瘤之前, 用70% 乙醇喷出老鼠, 并将其喷洒, 以尽量减少毛皮的潜在污染物。确定肿瘤不超过 25-40 毫米2 , 因为较大的肿瘤有更少的 DC, 往往是脆弱的, 容易遭受细胞死亡。如果需要更多的 DC, 每只老鼠都可以在多个地点注射肿瘤细胞。 - 在无菌层流罩下, 用手术剪刀将肿瘤劈成小块 (大约 1 x 1 毫米2)。
- 将所有肿瘤片段从一只老鼠添加到一个30毫升无菌的扁平底管与磁性搅拌棒, 其中包含5毫升的汉克的平衡盐溶液 (HBSS), 2 毫克/毫升胶原酶 IV, 0.01 毫克/毫升 DNase i。
注意: 髓细胞通过糖基化产生能量, 即使在稳定状态下也是如此。因此, 只使用含有葡萄糖的培养基 (如 HBSS、RPMI 和 DMEM), 因为葡萄糖饥饿的量只有 10-15 分钟, 在24小时内会导致细胞死亡和凋亡. 只使用低内毒素胶原酶 IV, 胶原酶是由革兰氏阳性产生的细菌 (histolyticum 梭菌)。
- 将所有肿瘤片段从一只老鼠添加到一个30毫升无菌的扁平底管与磁性搅拌棒, 其中包含5毫升的汉克的平衡盐溶液 (HBSS), 2 毫克/毫升胶原酶 IV, 0.01 毫克/毫升 DNase i。
- 在37个oC 孵化器中搅拌约 200-400 rpm, 用磁力搅拌器进行20-30 分钟。
- 添加5毫升完整的介质, 并大力重新悬浮。
- 过滤细胞通过一个70µm 细胞过滤器。离心机位于 4 oC 400 区域合作框架内, 5-10 分钟颗粒状细胞。
注意: 不要试图在酶消化后直接分离细胞, 因为有些肿瘤是坏死的, 含有相对较多的细胞碎片或细胞外基质。在15% 密度梯度介质上应用细胞, 只获得细胞。 - 悬浮9毫升密度梯度介质与1毫升 10x PBS 调整渗透压, 并获得 100% Percoll 的库存解决方案。将1.5 毫升密度梯度介质溶液与8.5 毫升 HBSS 混合, 并与肿瘤衍生细胞颗粒混合。在室温下, 在15% 密度梯度介质的顶部轻轻地层2毫升的 DMEM, 在400个区域合作框架内离心机为20分钟。丢弃上清液, 因为细胞会在管子的底部形成一个小球。
- 两次清洗颗粒细胞, 重新悬浮在10毫升 HBSS 含有2% 的血清, 1% 青霉素/链霉素, 10 毫米 EDTA (隔离缓冲), 离心机在4个oC 400 区域合作框架为5-10 分钟颗粒细胞。
- 在光镜下用台盼蓝计数 hemocytometer 上的细胞。
- 在 1 mL 隔离缓冲区中重新挂起 1 x 108单元格, 并在4个oC 处孵化它们, 并将 CD11b+共轭磁性珠的 30 ul 作为15分钟。
注意: 避免使用 CD11c-conjugated 珠, 因为这会激活 DC 并诱发细胞死亡。不要试图阻止 FcγRII 和 FcγRIII 与 anti-CD16/32 抗体。阻断抗体结扎 FcγR, 诱导强磷酸化的 MAP 激酶和素数的 DC。- 在 4oC 中, 在400区域合作框架中添加9毫升的隔离缓冲和离心细胞, 以消除多余的未绑定珠子。
- 在1毫升隔离缓冲器中吸入上清并重新悬浮细胞。将单元格应用于水洗磁柱上。用3毫升的隔离缓冲器将柱面清洗两次。
- 从磁铁中移除该列。将6毫升的隔离缓冲器放到柱上, 通过推柱塞将磁性标记的细胞冲出无菌的收集管中。在 4 oC 上, 400 个区域合作框架内的离心细胞为 5-10 分钟。
- 在 100 ul 每 1 x 107单元格中重新暂停单元格, 并使用以下荧光共轭抗体进行染色: 宗族阴性 (TCRb、Siglec F、B220、CD19、FceRI 和 Ly6G)、MHCII、Ly-6C。
- 通过浇小细胞, 使用侧向散射 (SSC) 和前向散射 (FSC) 和完全培养基中的培养基来对细胞进行排序, 并辅以 5 ng/毫升的 GM-脑脊液。孵育细胞1小时在 3 7 oC 为了允许巨噬细胞黏附板材。然后, 将松散的和非黏附的细胞转移到新的培养皿中。
注意:鼠标 MoDC 被定义为 CD11b+/CD11c+/MHCIIhi/Ly6C/int 7, 26, 27.Ly6C 的表达可能在肿瘤模型之间有显著差异, 在某些模型中 (如 LMP) MoDCs 完全缺乏 Ly6C 表达。总的来说, 一个100毫米3 B16F10 肿瘤通常包含 5 x 104 DC, 导致大约 4-5 x 106总细胞。在这些细胞中, 10-15% 是免疫细胞, 8-10% 是 MoDC。增加 DC 数可以通过在多个地点注射肿瘤小鼠来实现。只对小的 SSC/FCS 细胞进行排序, 因为其他髓细胞可以表达诸如 CD11c 和 Ly6C 等标记。
可选: 将肿瘤浸润单核细胞分类为小 SSC/FSC 单元, 表达 Ly6Chi , 对 MHCII 是阴性的。之后, 培养的单核细胞体外与 50 ng/毫升 GM 脑脊液获得 DC。
2. 从外周血中分离单核细胞源 DC
注意: 由于成熟的 MoDCs 在小鼠血液中比较少见, 下面的协议是指它们从排列的单核细胞中的体外派生。
- 为了增加血液中单核细胞的水平, 麻醉小鼠与4% 异氟醚, 并注射他们皮下 (南卡罗来纳州) 与1微克的 GM 脑脊液在 50 ul PBS。
- 1-2 小时后, 使用 CO2来牺牲鼠标。
注意: 不要因为宫颈脱位而牺牲老鼠, 因为这会导致内出血。 - euthanization 后立即用70% 乙醇喷雾鼠标, 用手术剪刀将覆盖心脏的皮肤取出, 在无菌层流罩下。用乙醇清洁剪刀, 并切断心脏的右心房。慢慢地, 用20毫米 EDTA HBSS 用10毫升注射器和25克针将心脏通过右心室冲洗。
- 用无菌注射器从胸腔内收集血液, 将其注入含有硫酸硫酸和 EDTA 的无菌管。继续冲洗心脏, 直到肝脏和肺部变成粉红色或白色。
- 将血液应用到密度梯度 mediumand 离心机在400个区域合作框架在室温下的15分钟低刹车。
注意: 使用无内毒素密度梯度培养基 (通常小于0.12 的欧盟每毫升)。- 将单个核细胞收集到新的试管中。在10毫升 HBSS 中重新悬浮, 其中含有2% 的血清, 1% 青霉素/链霉素和10毫米 EDTA (隔离缓冲器), 然后离心在 4 oC 400 区域合作框架内以5-10 分钟的粒细胞。
警告: 仅使用含有葡萄糖至少1克/升的介质。
- 将单个核细胞收集到新的试管中。在10毫升 HBSS 中重新悬浮, 其中含有2% 的血清, 1% 青霉素/链霉素和10毫米 EDTA (隔离缓冲器), 然后离心在 4 oC 400 区域合作框架内以5-10 分钟的粒细胞。
- 对于 CD11b 正选择, 请在1毫升隔离缓冲区中重新挂起 1 x 108单元格, 并在 15 oC 上将其孵化为50分钟, CD11b-conjugated 磁性珠子的 4 ul。
- 在 4 oc 中, 通过在400区域合作框架中添加9毫升的隔离缓冲和离心来清洗多余的珠子, 使其吸入上清液并在1毫升隔离缓冲区中重新挂起单元格。根据制造商的说明, 在水洗磁柱上应用单元格。
- 将该列从磁铁中取出, 将6毫升的隔离缓冲液移到柱上, 然后通过推柱塞将磁性标记的细胞冲出无菌的收集管中。400个区域合作框架内的离心细胞为5-10 分钟, 4 oc. 用3毫升隔离缓冲器清洗该列两次。
- 在 1 x 107 cells/100 ul 隔离缓冲区中重新挂起单元格, 并使用以下荧光共轭抗体进行着色: 0.1 微克 CD115、0.25 微克 MHCII 和0.1 微克 Ly-6C/1 x 106细胞。
- 通过在小的侧向散射 (SSC) 和小正散射 (FSC) 单元格上的浇口对单元格进行排序。
注: 鼠炎症单核细胞一般定义为 CD115+/MHCIIlo/阴性/Ly6Chi, 而巡逻单核细胞则定义为 CD115+/MHCIIlo/阴性/Ly6C阴性 45。如果不需要两个子集之间的分离, 则可以排序总的 SSClo/FCSlo/CD115+/MHCII劳单元格。无论是天真的还是含肿瘤的小鼠, 都含有大约 5-8 x 104 MoDC 每1毫升的血液和多达 4-5 x 105 MoDC 注射了 GM-CSF 后。其中, 大约70% 个是炎症单核细胞, 30% 个在单核细胞内巡逻。 - 在完全介质中, 将细胞集中在 1 x 106细胞/ml 上, 辅以 20 ng/毫升 GM-CSF。1天后, 将不粘附的和松散黏附的细胞转移到新的板块和文化中, 再增加4-5 天。
注意: 直流介质不应辅以丙酮酸。
3. 肿瘤 IgG 免疫复合物的制备
- 培养肿瘤细胞在 75 cm2培养瓶到70% 汇合在完全 DMEM 媒介。
- 添加2毫升0.25% 胰蛋白酶/EDTA 分离细胞从培养瓶和监测细胞形态学下的光显微镜, 以避免过度 trypsinization。
- 添加8毫升完整培养基 (每2毫升胰蛋白酶), 以抑制胰蛋白酶消化, 离心机在4个oC, 400 区域合作框架, 以5-10 分钟的颗粒细胞。
注意: 请确保使用商业 PCR 试剂盒检查支原体的肿瘤细胞。使用鲎鲎裂解法 (拉尔) 化验28) 检测革兰阴性菌和真菌内毒素的存在。血清必须经过0.22 微米的过滤和测试9联邦法规病毒代码。此外, 通过在 LB 琼脂或肉汤上滴下 100-200 ul, 并在 37 oC 中培养2天, 测试培养基和血清。 - 再次将细胞从胰蛋白酶和血清中重新悬浮在10毫升 PBS 和离心机中, 在400个区域合作框架内, 5-10 分钟. 吸出上清, 再重复洗涤2次。
- 在室温下将1.8% 缓冲多聚甲醛中的细胞固定为10分钟。
- 用10毫升 PBS 和离心机在4个oC 400 区域合作框架中重新悬浮以 5-10 分钟来清洗细胞。
- 吸上清液和重复洗两次。
可选: 对于肿瘤摄取化验, 细胞可以标记为5分钟, 在 37 oC 在 PBS 含有1微米羧基琥珀酰亚胺酯 (CFSE)。CFSE, 然后用完整的介质淬火10分钟冰。在含有2% 血清的 PBS 中, 应广泛冲洗细胞以去除残留染料。
- 重新悬浮细胞 (PBS) 缓冲 (公共广播辅助与 2% FCS + 5 毫米 EDTA) 和0.5 微克/毫升的 anti-CD16/32, 以阻止潜在的非特异蛋白蛋白相互作用。在 U 形96井/盘中的板材, 浓度为每 100 ul 1 x 105单元格。
- 添加不同稀释的肿瘤结合抗体, 范围从5微克-5 ng/1 x 105细胞不等。把盘子在冰上孵化15-20 分钟。
注: IgG 抗体从天真的20-24 周大的雌性小鼠血清中分离出来的蛋白质 A 列, 如24所述。
- 添加不同稀释的肿瘤结合抗体, 范围从5微克-5 ng/1 x 105细胞不等。把盘子在冰上孵化15-20 分钟。
- 通过添加 150 ul 的 PBS 和离心 4 oC 400 区域合作框架中的板以 5-10 分钟来洗涤细胞。
- 扔掉上清液, 重复洗两次。在含有荧光共轭二次抗体的 ul 100。在冰上孵化20分钟。
- 通过增加 200 ul 的离心, 在400个区域合作框架中添加 5-10 分钟, 以洗涤细胞. 丢弃上清液并重复清洗。
- 用流式细胞仪分析肿瘤的结合度, 确定细胞所需的最小浓度。
注意: 不应在随后的功能检测中使用不增加染色瘤细胞平均荧光强度 (同种) 的抗体。
4. 用肿瘤 IgG 芯片活化 MoDC
- 涂层肿瘤细胞的 IgG 浓度最低, 如3.1 节所述, 通过3.4。3
- 在激活 MoDC 与肿瘤 IC 的前一天, 取代 MoDC 培养基, 其中含有 GM-脑脊液。要做到这一点, 轻轻地吸入介质和洗涤细胞一次与预热完整的文化媒体。
注: 分离成熟的肿瘤相关 MoDC 应培养至少 2-3 小时 (甚至一夜之间) 后, 在完全的媒体排序, 没有 GM 脑脊液, 并在激活他们与 IC。 - 对于肿瘤摄取分析, 将 CFSE 标记的肿瘤 IC 添加到 MoDC 中, 比例为 1:5 (IC: MoDC), 并在每 1 x 106 DC 的1毫升完整介质中, 隔夜孵化 12-16 小时。
- 对于 MoDC 活化实验的血管化分析, 增加肿瘤 IC 在 1:1 (ic: MoDC) 比和孵化过夜 12-16 小时。
注意: 强烈建议包括一个积极的控制好, 其中 MoDC 刺激与1微克/毫升的 LPS 或其他 TLR 激动剂。 - 在夜间激活后, 用隔离缓冲剂轻轻地吸入上清液和洗涤细胞三次, 或10毫米 EDTA HBSS。
- 分离 DC 从板, 孵化细胞为 2-3 分钟在1毫升 HBSS 包含10毫米 EDTA, 并且分离细胞由剧烈的吹打。
- 400个区域合作框架的离心细胞和 1 x 106 DC 在 90 ul PBS 补充了2% 个 FCS, 5 毫米 EDTA (资产管制署缓冲区) 和0.5 微克的阻断抗体。在冰上孵化 5-10 分钟。
- 添加 10 ul 的染色抗体混合物的细胞和孵化在冰上15分钟。
- 在4个oC 400 区域合作框架中, 向单元格和离心机中添加2毫升的流式缓冲区, 以 5-10 分钟。
- 在激活 MoDC 与肿瘤 IC 的前一天, 取代 MoDC 培养基, 其中含有 GM-脑脊液。要做到这一点, 轻轻地吸入介质和洗涤细胞一次与预热完整的文化媒体。
- 重新挂起 200 ul 资产管制器缓冲区中的单元格。
- 在运行样品之前, 添加 0.5-1 微克/毫升 DAPI 1-2 分钟, 以排除死细胞的分析。不要过度孵化 DAPI, 因为 MoDC 会在 10-15 分钟内把它拿起来。
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Representative Results
我们最初比较了来自天真自体和同种异体小鼠的抗体与肿瘤细胞的结合能力。为此, B16F10 和 LMP 肿瘤细胞系固定在多聚甲醛和广泛洗涤。B16F10 是黑色素瘤细胞系, 最初是从 C57Bl/6 小鼠的肺转移中分离出来的。LMP 是从 KrasG12D/+、LSL-Trp53R172H/+ 和 Pdx-1-Cre 小鼠中分离出来的胰腺肿瘤细胞, 在129F1 小鼠体内生长稳定。为了获得 IC, 肿瘤细胞在冰上孵化20分钟, 每 1 x 105肿瘤细胞中有2微克的自体或异基因 IgG。IgG 和 IgM 抗体是从20-24 周大的小鼠在蛋白质 A 的循环中分离出来的, 其次是大小排除色谱, 如所描述的24。用 PE 共轭大鼠抗小鼠 IgG 二次抗体对细胞进行冲洗染色, 并对其平均荧光强度进行分析。如图 1A所示, C57Bl/6 异基因小鼠的 IgG 抗体与129S1 自体小鼠的抗体相比, LMP 肿瘤细胞ex体内更有效。同样, 129S1 异基因 igg 的固定 B16F10 染色比单纯 C57Bl/6 小鼠的自体 IgG 染色更高。有趣的是, 即使在肿瘤进展期间 (图 1B), B16 肿瘤的小鼠也无法产生与同种异体小鼠具有相似的结合能力的抗体。
我们接下来试图比较 MoDC 从血液和肿瘤的 IC 反应, 从脾脏和 BM 的 DC。为了分离肿瘤相关的 MoDC, B16F10 肿瘤酶离解, 获得单细胞悬浮液。免疫细胞被丰富使用 CD45-magnetic 珠, 和 MoDC 进一步排序为 SSClo/FSC劳/CD11c+/MHCII+/Ly6C lo 由外地资产管制系统 (图 2A)。值得注意的是, 不同的肿瘤 DC 可能有不同的标记, 定义他们。为了将 MoDC 从血液中分离出来, 循环单核细胞由 CD11b-conjugated 磁性珠子丰富, 进一步归类为 SSClo/FSClo/CD115+/MHCII阴性/lo。细胞在 GM-脑脊液中培养1天, 而非黏附和松散黏附细胞转移到一个新的板块, 并培养了额外的4-5 天, 以获得 MoDC (图 2B)。作为参考点, 我们使用 BMDC, 作为 "金标准" DC 的许多功能性化验, 以及脾脏 MoDC, 这反映了一个更生理的 DC 子集。BMDC 是通过对 BM 单核细胞 (CD11b+/Ly6Chi/CD115hi/MHCII阴性) 进行排序而获得的, 其次是它们与 GM CSF 进行7天的培养, 如所述24。脾 MoDC 从单细胞悬浮液中分离出来, 通过细胞过滤器将脾脏糖化 (在脾 MoDC 中不需要胶原酶的预孵化), 其次是 CD11b-conjugated 磁性珠子的浓缩。然后将细胞归类为 SSClo/B220阴性/NKp46阴性/CD3阴性/Gr1阴性/F4/80阴性/MHCIIhi/CD11c喜和培养1小时完整 RPMI 在 37oC 到还原基线活动。
为了研究 IgG IC 对 MoDC 活性的影响, 我们用固定的肿瘤细胞或固定的肿瘤细胞预先涂上同种异体 IgG, 在夜间孵化出孤立的 DC 子集。BMDC 或脾 DC 与 IC 的活化导致 CD86 和 MHCII 表达的增加, 不同于 MoDC, 或与肿瘤相关的 MoDC (图 3A)。此外, 还比较了有无异基因 IgG 的 CFSE 染色的肿瘤衍生蛋白的摄取能力。经共聚焦显微镜观察, 脾 DC 显示肿瘤衍生蛋白的内在化能力 (图 3B)。
这些结果表明, 肿瘤 dc 和 MoDC 反应不同于脾 dc 和 BMDC 激活与 alloIgG IC。因此, 希望激活肿瘤 DC 的疫苗接种策略不能仅仅基于 BMDC 的活化模式。
图 1: 同种异体小鼠在循环中有自然发生的肿瘤结合 IgG 抗体:A.平均荧光强度 (LMP), 其染色的免疫球蛋白抗体与自体 (129S1) 和同种异体 (C57Bl/6) 天真小鼠的血液隔离。B.指 B16F10 肿瘤细胞的荧光强度 (多边组织), 其免疫球蛋白抗体与自体瘤小鼠 (C57Bl/6) 或同种异体 (129S1) 天真小鼠的血液循环分离。此数字已从扩展数据2A 和2B 卡米 Y et中进行了修改。自然521 7550:99-104, 201524。
图 2: 从血液和 B16 肿瘤中 MoDC 小鼠的分类方案.A.从小鼠单核细胞培养的 MoDC 的分离和分类方案。共焦显微图像的炎症和巡逻单核细胞后4天的文化 (x400)。B. B16 肿瘤相关 MoDC 的分离和分类方案。B16 肿瘤 (x400) 后 MoDC 分离的典型共焦显微图像。此图已从辅助图1卡米 Y et. 商会洞察1:18: e89020, 201625进行了修改。请单击此处查看此图的较大版本.
图 3: MoDC 从脾脏和 BM 显示不同的激活模式比肿瘤和血液 MoDC 后孵化与 IC.A.流细胞 MHCII 和 CD86 表达式的 DC 在一夜之间用肿瘤 IgG 芯片进行分析。B.用 CFSE 标记的肿瘤芯片在夜间孵化的肿瘤吸收 (绿色) 和 MHCII 表达 (红色) 的共聚焦免疫组化。此数字已从图3A 和 3DCarmi Y et中修改。Akt 和 SHP-1 是肿瘤免疫的 DC 内在检查点。商会洞察1:18: e89020, 201625。请单击此处查看此图的较大版本.
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Discussion
鉴于接种疫苗的小鼠所需的 dc 数量很大 (大约 2-4 x 106 dc 每一只老鼠), 大多数小鼠的疫苗接种策略都是基于从 BM 和脾脏中分离出的 dc 和他们的前体激活。然而, 试图激活肿瘤 DC在体内, 使用相同的条件, 激活脾脏和 BM DC, 往往是不成功的产生有效的免疫力。在随后的两个出版物中, 卡米et al。发现, 血液和肿瘤 MoDC 有明显的差异, 从脾脏和 BM DC, 鉴于他们承担自然高的内在水平的酪氨酸磷酸酶, 并要求启动之前, 与 IC24,25。此外, 这些结果进一步强调需要采取额外的预防措施, 以保持 DC 的活化状态, 更好地反映其生理状况。因此, 本议定书力求详细说明 MoDC 从肿瘤和循环中分离的过程, 并强调可能导致其过早活化的步骤。
首先, 为了获得足够数量的 DC 从血液和肿瘤, 有需要更多的老鼠相比, 隔离 BMDC 的协议。为了提高 DC 的产量, 我们使用16周大的老鼠, 它有较大的血容量和整体细胞计数。我们通常得到 5-8 x 104 MoDC 每1毫升血液不注射 GM 脑脊液, 4-5 x 105 MoDC 跟随注射。对于肿瘤 DC, 我们获得约 6-8 x 104 MoDC 从100毫米3肿瘤, 虽然数量可能不同的小鼠和肿瘤模型之间。肿瘤大小的增加会导致 dc 产量降低, 因为1000毫米3肿瘤只有大约 5000 dc。相反, 我们在多个站点 (通常为 4-6) 向小鼠注射肿瘤细胞, 从而每只老鼠获得多达 4 x 105 MoDC。
此外, 我们建议, 在他们的实验使用之前, 抗体, 细胞线, 管和一般实验室试剂应检查内毒素的拉尔化验, 并通过电镀培养基上的交流细菌琼脂。肿瘤细胞系经常感染支原体, 因此, 应在其孵化前用 DC 进行 PCR 检测。使用粗胶原酶制剂, 如类型1和 4, 是主要的内毒素来源, 由于隔离胶原酶从histolyticum梭菌。胶原酶的标准制剂可能含有多达10的欧盟/毫克内毒素, 每毫升消化合剂中的内毒素约为1-2。雅尔et 。发现, 含有 2.7-6.7 毫升内毒素的胶原酶制剂, 在 PBMC29的培养后, 会诱发1,415-3、967 IL-1β/毫升。事实上, DC 的启动是例行的每毫升介质 1 ng, 但只有 100 picograms/毫升足以素数他们30,31,32。另一个潜在的内毒素来源是血清, 其中可能含有25欧盟/毫升或更多的内毒素, 或少于10欧盟/毫升。假设培养基中含有10% 的血清, 内毒素负荷可以达到0.5 毫升, 这对主要 DC 是足够的。
此外, 许多协议使用 anti-CD16/32 抗体阻断 Fc 受体作为一种手段, 以增加其特异性的抗体面板排序之前。尽管如此, FcγRIII (CD16) 的交叉链接导致了 Syk/ZAP-70 和 PLC γ的磷酸化, 胞内 Ca2 + 33的释放, 以及 P38 和 ERK1/2in 人类34和鼠单核细胞35的磷酸化。在我们的手中, 添加 anti-CD16/32 到 MoDC 的文化持续诱导在一分钟的暴露在 DC 的 P38 和 ERK1/2 激酶的强大磷酸化。因此, 我们强烈建议避免使用 anti-CD16/32 时, 隔离 MoDC 的体外功能化验。
另一种常见的协议是利用 CD11c 磁珠在其排序之前使用 DC 富集。CD11c 是一种 i. 型跨膜糖蛋白, 它能识别各种配体, 包括纤维蛋白原、LPS、i 型胶原和灭活 C3b 亚基。雷佐尼et . 表明, CD11c 与抗体结扎可诱发趋化因子36的有效 NFκB 活化和分泌。在我们的经验中, 固定化的 anti-CD11c 抗体诱导细胞活化和细胞凋亡, 而使用其可溶性形式在外地分类不诱导磷酸 P38 或 ERK1/2。
总的来说, 此协议的设计目的是为了尽可能少地激活 MoDC, 从而使其随后的激活在体外反映其激活在体内所需的条件。
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Disclosures
所有的作者都宣称他们没有利益冲突, 也没有什么可透露的。
Acknowledgments
没有
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Ficoll-Paque PREMIUM | GE-Healthcare | 17-5442-02 | |
| OptiPrep | StemCell Technologies | 07820 | |
| CD45 MicroBeads | Miltenyi | 130-052-301 | |
| EasySep Monocyte Isolation Kit | StemCell Technologies | 19861 | |
| Collagenase IV | Sigma | C9697-50MG | Test each lot for endotoxin |
| DNase I | Sigma | DN25-10MG | |
| HBSS | ThermoFisher | 14025092 | |
| FBS | ThermoFisher | 16140071 | Test each lot for endotoxin |
| PE-CD11c | Biolegend | 117307 | |
| APC-CD11b | Biolegend | 101211 | |
| Brilliant Violet 650 MHCII | Biolegend | 107641 | |
| AF48- CD86 | Biolegend | 105017 | |
| APC/Cy7-Ly-C6 | Biolegend | 108423 | |
| PE/Cy7-CD15 | Biolegend | 135523 |
References
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