Summary
在这项工作中, 提出了一种基于 nanoprobe 的生物传感信号增强协议。该协议的基础是减少四氯金酸的表面上的现有 nanoprobes, 包括金, 银, 二氧化硅或氧化铁纳米粒子。
Abstract
使用 nanoprobes, 如金, 银, 二氧化硅或氧化铁纳米粒子作为检测试剂在生物化验可以使高灵敏度和方便的色度读数。然而, 高密度的纳米粒子通常需要检测。现有的基于合成的增强协议要么限于金和银纳米粒子, 要么依赖于精确的酶控制和优化。在这里, 我们提出了一个协议, 以提高比色读数的黄金, 银, 二氧化硅, 氧化铁 nanoprobes。据观察, 比色信号可以提高高达10000倍的因素。此类信号增强策略的基础是将 au3 +的化学还原为 au0。有几种化学反应可以使 au3 +减少到 au0。在协议中, 使用了好的缓冲区和 H2O2 , 并且可以支持将 Au0沉积到现有 nanoprobes 的表面上, 这有损于新的金纳米粒子的形成。该协议包括了微阵列的孵化, 其解决方案由四氯金酸和H2O 2 在 2-(n--吗啉代) 磺酸 pH 6 缓冲器中组成, nanoprobe 的检测方法之后。该增强方案可应用于纸张和玻璃基传感器。此外, 它可以用于商业上可用的免疫, 证明了该方法应用到一个商业化的过敏原微阵列。信号的发展需要少于5分钟的孵化与增强解决方案和读数可以评估的肉眼或低端图像采集设备, 如台式扫描仪或数码相机。
Introduction
使用纳米材料, 如金纳米粒子 (AuNPs) 或氧化铁纳米粒子 (IONPs), 使其在生物传感中的应用具有改进的灵敏度和通用性。1对于各种配体的纳米粒子表面的装饰, 为了充分利用它们的高表面体积比, 设计了大量的方法, 使传感器能够提高灵敏度。2然而, 生物传感工具依赖于实现可检测信号所需的 nanoprobes 数。例如, 在 40 nm AuNPs 的情况下, 通过紫外可见光谱获取信号, 需要大约 90 x 106 nanoprobes, 以便有效地检测出感兴趣的目标。3通过使用信号放大, 可以规避此 nanoprobe 密度限制。此类策略4可以基于粒子间聚合或聚集, 其中初始 nanoprobes 的密度通过在第一个集合中累积第二组 nanoprobes 来增加。5在传感器表面的给定位置增加纳米粒子的数量, 允许视觉或紫外-可见光信号采集。然而, 这种检测的敏感性将与第二套纳米粒子对初始 nanoprobes 的靶向能力有内在的联系。其他的策略依赖于黄金和银 nanoprobes 的染色。6,7染色是通过将银离子还原到纳米粒子表面, 从而实现视觉或紫外可见光检测。8这些方法通过 potentiating 表面共振等离子体信号来增强现有金或银 nanoprobes 的信号, 而不依赖于粒子间聚类方法中的次级靶向事件。然而, 银染色方法只被报道使用金或银 nanoprobes。8,9
在 2005年, Zayats et al。10报告将 Au 离子还原到金 nanoprobes 表面, 以增加表面等离子体共振信号。在这种依赖于酶的工作中, 过氧化氢是由葡萄糖氧化酶催化产生的, 与铵氯化物一起允许四氯金酸的还原。
最近, 王et。报告了一种增强方法, 在现有 nanoprobes 表面上产生金层。11这些扩大的 nanoprobes 显示过氧化物酶样的催化活性对基板 3′, 5,5′-tetramethylbenzidine (TMB), 使明亮的蓝色的可视化肉眼。
史蒂文斯et 。报告了等离子 ELISA 检测的发展情况。12在通过传统的 ELISA 策略检测到前列腺特异抗原 (PSA) 后, 用传感器将传感器浸入含有过氧化氢的溶液中, 并将其标记为过氧化氢酶的二级抗体, 并四氯金酸。二次过氧化氢酶修饰抗体 (阳性结果) 的存在将促进过氧化氢的消耗, 减缓四氯金酸的降低, 并产生具有红色颜色的准球形分散 AuNPs。过氧化氢酶修饰抗体 (阴性结果) 的缺乏, 使过氧化氢浓度保持不变, 从而促进快速四氯金减少, 并产生 AuNPs 与病态的形态负责蓝/紫颜色.过氧化氢的浓度, 由过氧化氢酶的活性决定, 被证明是与感兴趣的分析物的浓度相关。对过氧化氢酶修饰的二级抗体的需要和催化活性条件的控制是阻碍这种方法普遍性的两个因素。此外, 金簇的形成, 独立于现有的 AuNPs, 可能会引入背景噪声问题的放大策略。
上述技术以及其他几个13、14、15, 使得基于 nanoprobe 的生物传感器能够达到与传统技术同等的检测限制。
在这里, 我们展示了一种新的金增强方法, 即通过 potentiating 或引入表面等离子体共振信号来放大现有 nanoprobe 的信号。在使用金、银、二氧化硅或氧化铁纳米粒子进行检测后, 该传感器被允许在 2-(n-吗啉代) 磺酸 (MES) pH 6 缓冲液中以过氧化氢和四氯金酸混合物的溶液孵化。增强溶液中各组分的浓度经过优化, 有利于在现有 nanoprobes 表面沉积 Au0 。对于所有研究过的 nanoprobe 类型, i. e。AuNPs, 银纳米粒子 (AgNPs), 二氧化硅纳米粒子 (SiNPs) 和 IONPs, 形成一个病态定义的层产生或增强散射的光, 导致可检测或增加可见信号。在纸和玻璃微阵列中, nanoprobes 实现了100倍放大因子的信号增加, 该过程需要少于5分钟来获取信号。信号采集可以通过肉眼、紫外可见光谱或成像低端工具 (如数码相机或台式扫描仪) 来完成。此外, 据证明, 这种增强协议可以很容易地应用于商业上可用的过敏诊断化验, 而不需要具体的优化。
Protocol
根据收集国的法律和伦理要求, 获得了人体血清样本, i. e。经过伦理委员会 (或类似) 的批准, 并得到捐助者的书面同意。
1. 增强解决方案准备:
- 在去离子水中悬浮 mes 钠盐, 制备10毫米 mes pH 6 缓冲液。使用4米氢氧化钠溶液将 pH 值调整为6。
- 在10毫米 MES pH 值6缓冲器 (解决方案 1) 中准备一个 5 mm HAuCl4解决方案。
- 在10毫米 MES pH 值6缓冲区 (解决方案 2) 中准备一个1.027 米 H2O2解决方案。
注意: 两个解决方案1和解决方案2的卷取决于要增强的微阵列的数量和大小。例如, 10 x 10 毫米的微阵列需要 100 ul 总容量 (解决方案 1 + 解决方案 2), 以确保微阵列区域与增强解决方案保持联系。稀释后, 应在大约30-45 天内使用 H2O2 。
2. 纳米微粒的制备:
- 按照 Bastús et al的描述, 准备 40 nm AuNPs。16简要地, 将1毫升水中25毫米 HAuCl4前驱体注入2.2 毫米柠檬酸钠 (149 毫升) 的沸腾溶液中。等到红葡萄酒的颜色被观察到。将纳米微粒的溶液作为种子生长步骤的种子。
- 在90摄氏度, 注入1毫升的60毫米柠檬酸钠后, 1 毫升25毫米 HAuCl4进入含有溶液的种子。30分钟后, 反应完成。重复种子生长步骤五次, 直到得到40纳米纳米粒子, 如 Bastús et al所述。16
- 测量纳米粒子最终溶液的紫外可见光吸收量, 以确定纳米粒子的大小。17或者, 透射电子显微照片 (TEM) 可以获得并用于确定纳米粒子的大小。
- 按照 Rivero et al的描述, 准备 90 nm AgNPs。18简要地, 将 dimethylaminoborane (DMAB) 添加到聚合 (丙烯酸、钠盐) (临机) 和 AgNO3的强力搅拌溶液中。解决方案的最终体积为50毫升, DMAB、临机局和 AgNO3的最终浓度分别为1.6 毫米、10毫米和3.33 毫米。
注: 100 纳米 IONPs 改性羧基组和 50 nm SiNPs 改性羧基组购买。 - Functionalize 使用 Puertas et描述的协议后的抗体 AuNPs。19简要地, 将1毫克的 COOH (5000 g·mol−1) 添加到 1.2x10-9 M AuNPs (10 光密度、OD) 的解决方案中。用4米氢氧化钠溶液将 pH 值调整为12。
- 在温和的搅拌条件下, 让溶液在室温下 (22 摄氏度) 孵化一夜。
- 通过将溶液离心 13800 x g 以15分钟的方式除去多余的 PEG。
- 用 500 ul 的去离子水并用重悬颗粒。
- 用5μmol n-(3-Dimethylaminopropyl)-n '-ethylcarbodiimide 盐酸盐 (AuNPs) 和7.5 μmol 的 n-hydroxysulfosuccinimide 钠盐 (磺-NHS) 在10毫米 MES 中孵化出 PEG 修饰的, 6 摄氏度为30分钟。
- 通过离心 13800 x g 的溶液, 以5分钟的方式去除磺和亚胺酰胺的过量。
- 并用重悬颗粒在500µL 10 毫米 MES pH 6 缓冲和添加 100g·mL -1 抗体。让溶液孵育2小时, 在37摄氏度。
- 去除抗体的过量通过离心溶液在 13800 x g 10 分钟两次和并用重悬颗粒在 500 ul 10 毫米磷酸磷酸钠 pH 值 7.5, 0.3 M NaCl 缓冲。让溶液孵育30分钟, 在37摄氏度。
- 去除不特异的绑定抗体通过离心溶液在 13800 x g 10 分钟两次, 并并用重悬在 500 ul 1% 牛血清白蛋白 (BSA) 在10毫米 MES pH 值6缓冲区的颗粒。在4摄氏度一夜之间孵化样品。
- 通过离心溶液在 13800 x g 10 分钟两次清洗 BSA 的过量, 并在 500 ul 10 毫米 MES pH 值6缓冲器中 resuspending 颗粒。
- 遵循步骤2.5.1 通过2.5.9 的修改5米 AgNPs, 0.5 毫克 IONPS 和0.5 毫克 SiNPs 与抗体, 调整的数量和磺-NHS 相应。
3. 垂直流纸的化验方法:
- 用机器人打印机将蛋白质 G 的梯度浓度沉积在硝化棉纸膜上, 制备微阵列。打印后, 让微阵列在室温下过夜 (摄氏22摄氏度)。
- 用过滤器内所附膜进行垂直流动试验。使用超注射器泵, 以 1 mL·min−1的速率, 以8米的 AuNPs 溶液进行 IgG 修饰。重复此步骤, 解决方案为 17 M IgG 修饰 AgNPs, 0.1 mg·mL−1 IgG 修饰 SiNPs 和 0.1 mg·mL−1 igg 修饰 IONPs。
- 让微阵列在室温下干燥 (约22°c) 30 分钟, 然后在平板扫描仪中扫描 4800 dpi 分辨率。将图像另存为24位彩色 TIFF 文件。
4. 参照商用玻璃的化验方法:
- 在室温下孵化两张120分钟的玻璃滑梯, 用于检测4种不同人体血清样品的过敏原成分。
- 用去离子水冲洗微阵列。
- 用荧光共轭抗人 ige 抗体在室温下孵化一张幻灯片 (~ 22°C) 30 分钟. 用抗人 IgE 抗体修饰 AuNPs 在室温下孵化第二张幻灯片。
- 用去离子水冲洗微阵列。
- 用激光扫描仪测定用荧光抗人 IgE 抗体孵化的微阵列的荧光强度。数字化的基因芯片, 与抗人 IgE 抗体修改 AuNPs 与一个桌面扫描仪的比色信号采集。
- 数字化后, 在室温下 (~ 22°C) 用增强溶液孵育微阵列5分钟。
- 用去离子水冲洗传感器, 使其在室温下干燥10分钟 (摄氏22摄氏度)。
- 数字化在 4800 dpi 的分辨率下, 用桌面扫描仪将微阵列用于色度信号采集。将图像另存为16位灰度 TIFF 文件。
5. 采用增强解决方案的微阵列孵化:
- 预混合相同数量的解决方案1和解决方案2或直接混合在传感器的表面上, 并确保芯片上感兴趣的领域涵盖了解决方案的混合物。
- 让传感器在室温下孵育5分钟以上的增强溶液, 可提高灵敏度和较高的噪声/信号比, 尤其是纸基微阵列。
- 在5秒内将微阵列浸入去离子水中, 将其洗净. 在室温下保持干燥。
注意: 干燥步骤的时间取决于芯片的材料。对于基于纸张的微阵列, 干燥步骤需要大约30分钟。对于基于玻璃的微阵列, 干燥步骤需要大约5-10 分钟。
6. 成像分析:
- 用软件工具分析荧光强度。根据传感器制造商的使用说明 (DfU), 考虑所有相等或大于 0.3 Isac 标准化单元的结果。
- 使用软件工具分析色度强度。反转图像文件, 测量每个光斑的强度, 计算平均像素强度。使用三个点的值计算最终信号值作为三平均光斑像素强度的平均值。
Representative Results
进行检测后, 使用 nanoprobes 作为检测代理, 传感器检测区域可能使用 nanoprobes (图 1a) 填充。如果 nanoprobes 的数量低于视觉检测的限制, 则对分析物的检测最初将被认为是阴性的。使用此处提供的协议 (图 1b), 通过引入不确定的 Au 层 (图 1c), nanoprobes 的信号增强。
为了展示增强协议 (图 2) 的有效性, 设计了一种用于检测蛋白质 G 的基于纸张的免疫分析方法。AuNPs、AgNPs、SiNPs 和 IONPs 用 IgG 抗体和使用和检测剂进行了修改。编写了纸微阵列, 以获得每点蛋白质 G 分子的梯度。
化验完成后, 据观察, igg 修饰 AuNPs (igg-AuNPs) 能够检测到 2 x 105分子每当场 (图 2a), igg 修饰 AgNPs (igg-AgNPs) 能够检测到低至 2 x 104每个点的分子 (图 2c), igg 修饰 IONPs (igg-IONPs) 能够检测到每点 2 x 107分子 (图 2e) 和 igg 修饰 SiNPs (igg-SiNPs) 无法提供视觉信号 (图 2g)。
通过用增强溶液孵化微阵列, 可以在使用的所有类型的纳米粒子上增加100倍的信号。在 SiNPs 的情况下, 增强解决方案使人们有可能观察到没有增强解决方案 (图 2b、2 d、2 f 和 2h) 时没有看到任何可视信号的信号。
评价了该方法在现有商业免疫分析中的应用可能性。对一种基于玻璃的过敏原组分微阵列免疫检测进行了改进。用微阵列 (样本被指定为 a、b、c 和 d) 对一组4例过敏患者的血清标本进行了评价。将该方法的标准荧光检测与抗 IgE 标记 AuNPs 的染色法进行比较, 然后再增强信号 (图 3)。在增强之前, 在用反 IgE 标记 AuNPs 进行检测的微阵列上没有发现斑点。增强后, 肉眼可见多个斑点, 其强度由图像数字化 (图 3) 进行注册。通过荧光检测, 检测到了各种斑点 (图 3)。
图 1.microspot 从分析物检测到增强信号所经历的步骤的说明。() 两个抗体修饰 nanoprobes 在检测到固定在 microspot 上的分析分析后 (b), 利用增强协议和随后的抗体修饰 nanoprobes 的种子生长来孵化微阵列, (c) microspot 在通过增强解决方案孵化5分钟后, nanoprobes 的大小增加。此数字已从 Dias et aldapted。20请单击此处查看此图的较大版本.
图 2.蛋白质 G. 检测用微阵列的数字化图像在每个微阵列的左侧是观察到的 microspots 在增强的检测之前进行 (a) igg-AuNPs, (c) igg-AgNPs, (e) igg-IONPs 和 (g) igg-SiNPs。在每个微阵列的右侧是增强后的 microspots (b) igg-AuNPs, (d) igg-AgNPS, (f) igg-IONPs 和 (h) igg-SiNPs。蛋白质 G 的每一个浓度都在微阵列上沉积。根据每个 microspot 中所印蛋白质的浓度, 对蛋白质 G 的数量进行了计算。此数字已从 Dias et中进行了调整。20请单击此处查看此图的较大版本.
图 3.用商用过敏诊断法测定荧光强度与比色强度的相关性.测定样品 a、b、c 和 d 中的过敏原的平均荧光强度 (多边基金会) 和平均比色强度 (MCI). 镶嵌是记录10在两种方法之间的线性相关性的区间内转换的数据。根据荧光修饰抗体 (荧光) 检测的 microspots 强度为荧光发射。在对微阵列进行数字化后, 用成像软件对图像进行反转, 得到了基于 Ab AuNPs 检测的 microspots 的亮度。微阵列的设计是有垂直 triplicates 与积极的控制, 荧光检测在极右的底部。其他三个角用于软件评估。用16位灰度分析图像。此数字已从 Dias et中进行了调整。20请单击此处查看此图的较大版本.
| R2以前的增强 | R2增强后 | |
| IgG-AuNPs | 8.70E-01 | 7.80E-01 |
| IgG-AgNPs | 9.10E-01 | 9.60E-01 |
| IgG-IONPs | 9.17E-01 | 9.30E-01 |
| IgG-SiNPs | - | 8.50E-01 |
表1。R2 值, 用于检测蛋白质 G、之前和之后的增强, 使用不同的纳米粒子.R2值是在将斑点的强度与所测量的分析物的浓度关联后获得的。
Discussion
目前, 以 nanoprobe 为基础的检测的信号增强技术是基于酶的12, 需要第二组纳米粒子来瞄准检测 nanoprobes21 , 或者, 在染色技术的情况下, 仅限于使用 AuNPs 或 AgNPs 作为检测探头。22这里描述了一种简单、快速、无酶的方法, 用于 nanoprobe 检测的信号增强。利用这种方法, 可以提高4种 nanoprobes 的色度信号: AuNPs、AgNPs、IONPs 和 SiNPs。
所观察到的每组 nanoprobes 的放大系数为100倍, 但 SiNPs 由于缺乏预增强信号而无法量化增强因子。这种增强因素表明, 协议的效率在所有类型的 nanoprobes 中都是相似的。此外, 当增强协议是在一个纸支持上进行的, 其中一个稀释系列的股票 AuNPs 悬浮被打印, 它被观察到10000倍放大系数。在增强之前, AuNPs 数量最少的可见斑点被印在大约10000粒纳米粒子上, 在增强了少于10纳米粒子的斑点后, 可见。20
在这里提出的增强协议的条件允许利用将 au3 +减少到 au0以改善信号, 同时将背景噪音保持在最低限度。这种增强可以在进行化验后进行, 以及在化验完成后储存了数月的微阵列进行。增强解决方案由1:1 混合解决方案1和解决方案2组成。两种解决方案在 pipetted 到微阵列时都可以混合或直接混合。预混合或直接混合的区别只影响增强溶液的保质期。当预混合的货架寿命是5-7 天增加到30-45 天, 如果不预先混合。
进一步分析结果表明, 这种增强方法不会干扰生物传感器的定量分析。维持观察到的强度与分析物浓度之间的线性相关性 (表 1)。采用基于玻璃的过敏原组分微阵列免疫分析法, 用标准荧光检测和比色法检测4例临床样品, 显示了两种检测方法之间的良好一致性。比较平均荧光强度 (多边基金会) 和平均比色强度 (MCI), 当数据在两个轴上记录10时, 就得到了平均值 R2 = 0.79 +/-0.08。实验表明, 这种增强方法可以应用于商用套件, 如果它使用 nanoprobes 进行检测, 或者可以适应 nanoprobe 的检测。
增强方法的有效性依赖于两个关键方面。必须保证溶液1和溶液2的混合物是均匀的。如果没有均匀混合, 传感器将与增强解决方案的分数相联系, 其中解决方案1或2相对于另一种优势。这将降低 au3 +到 au0的降低效率, 从而损害增强的效率。同样重要的是, 在潜伏期内, 在与增强溶液接触时, 芯片的整个感兴趣区域都有。
为了达到超灵敏增强的信号, 需要更长的潜伏期 (约5分钟) 与增强解决方案将是必要的。为了避免开发可能干扰信号采集的背景噪声, 应事先阻止微阵列表面 (例如BSA、PEG), 以防止 Au0的快速不特异沉积, 并由此形成一个金层.
对增强方法的限制是检测的内在功效。该化验要求有消极和积极的控制, 以确保所观察到的信号增强可以归因于真正的积极结果。如果 nanoprobes 与目标的非特定交互作用, 则在增强后获取的信号将无效。
其他增强技术是基于纳米粒子的聚合或纳米微粒的染色, 这种材料允许改进信号的采集。通过促进在检测现场收集纳米微粒的数量, 信号的采集将可能是视觉上的或紫外的测量。5这些信号增强技术依赖于两步检测系统, 初始检测感兴趣的分析物, 第二步是要求记者绑定到初始检测构造。由于对每种检测方法的特定增强协议优化要求, 这种策略缺乏通用性。
染色增强技术, 如银染色, 很像在这里提出的协议, 允许直接增强信号检测结构。然而, 与此处显示的协议不同, 银染色仅被证明适用于 AuNPs 或 AgNPs。6,7,8,9
这种方法的适用性可能跨越任何使用 AuNPs、AgNPs、IONPs 或 SiNPs 作为检测剂的化验。目前正在开展进一步的工作, 研究该方法在其他材料组成的传感器中的应用。
Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
欧洲研究理事会根据欧洲联盟第七框架方案提供的资金 (FP/2007-2013)/紧急救济委员会赠款协议 615458, 瑞典研究理事会和 Pronova 卓越蛋白质技术中心 (VINNOVA-瑞典语政府机构的创新系统) 是感激地承认。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Chloroauric acid | Sigma-Aldrich | 254169 ALDRICH | |
| Sodium citrate | Sigma-Aldrich | S4641 SIGMA-ALDRICH | |
| Dimethylaminoborane | Sigma-Aldrich | 476668 ALDRICH | |
| Poly(acrylic acid, sodium salt) | Sigma-Aldrich | 416037 ALDRICH | |
| Silver nitrate | Sigma-Aldrich | 204390 ALDRICH | |
| 100 nm magnetic nanoparticles | Ademtech | 021111 | |
| 50 nm silica nanoparticles | Corposcular | 140510-10 | |
| COOH-PEG-SH | RAPP Polymere | 135000-4-32 | |
| Sodium hydroxide | Sigma-Aldrich | 1.06462 EMD MILLIPORE | |
| N-(3-Dimethylaminopropyl)-N’-ethylcarbodiimide hydrochloride | Sigma-Aldrich | 03449 SIGMA | |
| N-Hydroxysulfosuccinimide sodium salt | Sigma-Aldrich | 56485 ALDRICH | |
| Hydrogen peroxide solution | Sigma-Aldrich | 95313 SIGMA-ALDRICH | |
| 2-(N-Morpholino)ethanesulfonic acid hydrate | Sigma-Aldrich | M8250 SIGMA | |
| IgG antibody | Abcam | ||
| Sodium phosphate | Sigma-Aldrich | 342483 ALDRICH | |
| Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S7653 SIGMA-ALDRICH | |
| Bovine serum albumin | VWR | 422351S | |
| Protein G | Thermo Scientific | 21193 | |
| Nitrocellulose paper membrane | Whatman | 10402096 | |
| Nanoplotter 2.1 robotic printer | GeSIM | ||
| Filter holder | Merck | XX3001200 | |
| PhD2000 Ultrasyring pump | Harvard | ||
| Flatbed scanner CannonScan 9000F Mark II | Cannon | ||
| Anti-human IgE antibody-modified AuNPs | Thermofisher | ||
| Laser scanning LuxScan 10/K | Capital Bio | ||
| Table-top scanner Image Scanner Epson Expression 1600 pro | Epson | ||
| Glass slide ImmunoCAP ISAC sIgE 112 | Thermofisher | 81-1011-01 | |
| Fluorescent-conjugated anti-human IgE antibody | Thermofisher | 81-1011-01 | |
| Phadia Microarray Image Analyzer MIA 1.2.4 | Thermofisher |
References
- Holzinger, M., Le Goff, A., Cosnier, S. Nanomaterials for biosensing applications: a review. Front. Chem. 2, 1 (2014).
- Conde, J., Dias, J. T., Grazú, V., Moros, M., Baptista, P. V., de la Fuente, J. M. Revisiting 30 years of biofunctionalization and surface chemistry of inorganic nanoparticles for nanomedicine. Front. Chem. 2, 48 (2014).
- Sato, K., Onoguchi, M., Sato, Y., Hosokawa, K., Maeda, M. Non-cross-linking gold nanoparticle aggregation for sensitive detection of single-nucleotide polymorphisms: Optimization of the particle diameter. Anal. Biochem. 350 (1), 162-164 (2006).
- Cao, X., Ye, Y., Liu, S. Gold nanoparticle-based signal amplification for biosensing. Anal. Biochem. 417 (1), 1-16 (2011).
- Fraire, J. C., Motrich, R. D., Coronado, E. A. Design of a novel plasmonic nanoconjugated analytical tool for ultrasensitive antigen quantification. Nanoscale. 8 (39), 17169-17180 (2016).
- Taton, T. A. Scanometric DNA Array Detection with Nanoparticle Probes. Science. 289 (5485), 1757-1760 (2000).
- Cao, C., Gontard, L. C., Thuy Tram, L. L., Wolff, A., Bang, D. D. Dual Enlargement of Gold Nanoparticles: From Mechanism to Scanometric Detection of Pathogenic Bacteria. Small. 7 (12), 1701-1708 (2011).
- Lu, Y., Shi, W., Qin, J., Lin, B. Low cost, portable detection of gold nanoparticle-labeled microfluidic immunoassay with camera cell phone. Electrophoresis. 30 (4), 579-582 (2009).
- Zhang, M., Wittstock, G., Shao, Y., Girault, H. H. Scanning electrochemical microscopy as a readout tool for protein electrophoresis. Anal. Chem. 79 (13), 4833-4839 (2007).
- Zayats, M., Baron, R., Popov, I., Willner, I. Biocatalytic Growth of Au Nanoparticles: From Mechanistic Aspects to Biosensors Design. Nano Lett. 5 (1), 21-25 (2005).
- Wang, S., Chen, Z., Choo, J., Chen, L. Naked-eye sensitive ELISA-like assay based on gold-enhanced peroxidase-like immunogold activity. Anal. Bioanal. Chem. 408 (4), 1015-1022 (2016).
- de la Rica, R., Stevens, M. M. Plasmonic ELISA for the ultrasensitive detection of disease biomarkers with the naked eye. Nat. Nanotechnol. 7 (12), 821-824 (2012).
- Liu, D., Yang, J., et al. Glucose Oxidase-Catalyzed Growth of Gold Nanoparticles Enables Quantitative Detection of Attomolar Cancer Biomarkers. Anal. Chem. 86 (12), 5800-5806 (2014).
- Qu, W., Liu, Y., Liu, D., Wang, Z., Jiang, X. Copper-mediated amplification allows readout of immunoassays by the naked eye. Angew. Chem. Int. Edit. 50 (15), 3442-3445 (2011).
- Wang, X., Niessner, R., Knopp, D. Controlled growth of immunogold for amplified optical detection of aflatoxin B1. Analyst. 140 (5), 1453-1458 (2015).
- Bastús, N. G. N., Comenge, J. J., Puntes, V. V. Kinetically controlled seeded growth synthesis of citrate-stabilized gold nanoparticles of up to 200 nm: size focusing versus Ostwald ripening. Langmuir. 27 (17), 11098-11105 (2011).
- Haiss, W., Thanh, N. T. K., Aveyard, J., Fernig, D. G. Determination of Size and Concentration of Gold Nanoparticles from UV-Vis Spectra. Anal. Chem. 79 (11), 4215-4221 (2007).
- Rivero, P. J., Goicoechea, J., Urrutia, A., Arregui, F. J. Effect of both protective and reducing agents in the synthesis of multicolor silver nanoparticles. Nanoscale Res. Lett. 8 (1), 101 (2013).
- Puertas, S., Batalla, P., et al. Taking Advantage of Unspecific Interactions to Produce Highly Active Magnetic Nanoparticle-Antibody Conjugates. ACS Nano. 5 (6), 1-8 (2011).
- Dias, J. T., Svedberg, G., Nystrand, M., Andersson-Svahn, H., Gantelius, J. Rapid signal enhancement method for nanoprobe-based biosensing. Sci. Rep. 7 (1), 6837 (2017).
- Shen, G., Zhang, S., Hu, X. Signal enhancement in a lateral flow immunoassay based on dual gold nanoparticle conjugates. Clin. Biochem. 46 (16-17), 1734-1738 (2013).
- Gupta, S., Huda, S., Kilpatrick, P. K., Velev, O. D. Characterization and optimization of gold nanoparticle-based silver-enhanced immunoassays. Anal. Chem. 79 (10), 3810-3820 (2007).
