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Medicine

Valutazione della coagulazione del Plasma il tessuto del fegato in un modello animale di grandi dimensioni In Vivo

Published: August 4, 2018 doi: 10.3791/57355

Summary

Qui presentiamo un protocollo per valutare sperimentalmente la coagulazione del plasma nel tessuto del fegato in vivo. In un modello porcino, microcircolazione viene esaminato dal laser Doppler, profondità di coagulazione è misurato istologicamente, temperatura al sito di coagulazione di effetto di tenuta del tubo e macchina fotografica termografica e termometro a infrarossi è documentata dalla pressione di scoppio esperimenti.

Abstract

Coagulazione del plasma come una forma di elettrocauterio è usata nella chirurgia epatica per decenni per sigillare la grande superficie di taglio del fegato dopo hepatectomy principale per prevenire le emorragie in una fase successiva. Gli effetti esatti di coagulazione del plasma il tessuto del fegato solo male sono esaminati. Nel nostro modello porcino, gli effetti di coagulazione possono essere esaminati vicino all'applicazione clinica. Una microcircolazione combinato laser Doppler flussimetro e spettrofotometro documenti cambia durante la coagulazione a 8 mm di profondità del tessuto non invadente, che fornisce informazioni quantificabili di emostasi oltre l'impressione clinica soggettiva. La temperatura nel sito di coagulazione è valutata con una coagulazione di Priore e post del termometro a infrarossi e con una macchina fotografica termografica durante la coagulazione, una misura della temperatura del fascio di gas non è possibile dovuto la soglia superiore dei dispositivi. La profondità della coagulazione è misurata microscopicamente il ematossilina/eosina sezioni macchiata dopo la calibrazione con un micrometro oggetto e dà un informazioni esatte sulla potenza impostazione-coagulazione profondità-relazione. L'effetto di tenuta viene esaminato il dotti biliari, come non è possibile per un Coagulatore del plasma sigillare i vasi sanguigni più grandi. Esperimenti di pressione scoppio fuori relativi effetti sugli organi espiantati per eliminare la pressione sanguigna.

Introduction

La coagulazione del plasma dell'argon (APC) è uno strumento ampiamente usato nella chirurgia addominale per più di tre decenni1,2. È una tecnica standard per il raggiungimento del hemostasis secondario dopo hepatectomy principale sigillando il fegato tagliato superficie per impedire successive emorragie3. La coagulazione del plasma è una forma specializzata di radiofrequenza elettrocauterio, che trasporta l'energia elettrica attraverso un arco di gas ionizzato. Emostasi elettrotermico monopolare, questa tecnica senza contatto ha il vantaggio di evitare l'elettrodo ad attaccarsi al tessuto4. Il fascio di gas ionizzato viene automaticamente indirizzato alla zona della più bassa resistenza elettrica e si è allontanato quando aumenti di resistenza dovuto essiccamento ad altre aree non ancora essiccate. Questo produce una limitata profondità uniforme di coagulazione5,6. Fattori che influenzano l'effetto di coagulazione sono l'attivazione del tempo, l'impostazione di potenza del dispositivo della coagulazione e la distanza tra la sonda e il tessuto. L'elio è un altro gas di trasporto, che può essere utilizzato per plasma coagulazione7. Studi clinici di recente concentrati solo sugli esiti clinici piuttosto che8,3,risultati istologici e funzionali9, mentre studi sperimentali incentrato sulle indagini in vitro 10 o esperimenti su organi irrorato isolato11.

Il protocollo sottostante permette lo studio degli effetti di coagulazione del plasma in un modello animale grande vicino all'applicazione clinica utilizzando attrezzatura standard umano sui suini: microcircolazione viene valutata non invadente di un flussometro Doppler laser e spettrofotometro, che è uno strumento clinico standard per questa indicazione12,13. Cambiamenti di temperatura durante la coagulazione sono controllati con un termometro a infrarossi e una macchina fotografica termografica. La profondità di coagulazione è misurata su istologico ematossilina/eosina sezioni macchiata dopo la raccolta dei campioni di tessuto. Per il confronto con altri mezzi per il hemostasis secondario, vengono eseguiti esperimenti di pressione di scoppio. In contrasto con tecniche precedentemente descritte14, questi sono condotti sugli organi espiantati per escludere la pressione sanguigna effetti correlati. Oltre alle indagini descritte sugli effetti locali di coagulazione del plasma, le analisi del sangue standard può essere intrapreso anche nel modello porcino.

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Protocol

Sono state seguite regole disciplinate dalla legislazione tedesca per gli studi sugli animali, nonché i principi di laboratorio Animal Care (National Institutes of Health pubblicazione ed. 8, 2011). Ufficiale è permesso dall'ufficio governativo cura degli animali (Landesamt für Natur, Umwelt und Verbraucherschutz Nordrhein-Westfalen, Recklinghausen, Germania).

1. gli animali

  1. Utilizzare suini landrace tedesco femminile (25-30 kg di peso) alloggiati in gabbie aperte.
  2. Utilizzare 5 animali per gruppo (argon ed elio).
  3. Consentire agli animali di acclimatarsi all'ambiente circostante per almeno una settimana prima degli esperimenti. Animali veloci per 24 h prima dell'intervento chirurgico con libero accesso all'acqua.

2. anestesia

  1. Wow gli animali con un'iniezione intramuscolare di ketamina (15 mg/kg di peso corporeo [BW]), xilazina (10 mg/kg BW) e atropina (0,1 mg/kg BW) 10 min prima dell'induzione dell'anestesia.
  2. Accesso venoso periferico è stabilito dal posizionamento di una cannula di calibro 22 in una vena di orecchio.
  3. Indurre l'anestesia generale da i.v. iniezione di propofol 2 mg/kg di peso corporeo.
  4. Posizionare l'animale in posizione supina ed effettuare un'incisione longitudinale della pelle nella scanalatura giugulare sopra una lunghezza di 2 cm. Locate vena attraverso la preparazione smussata del tessuto sottocutaneo. Inserire la cannula, poi filo di Seldinger.
  5. Ritrarre la cannula e inserire 14 p. catetere sul filo guida. Ritirare il filo guida. Collegare il catetere per l'estensione e fissare il catetere di una cinghia o una sutura.
  6. Tirare fuori la linguetta e inserire laringoscopio diritta. Usare la punta del laringoscopio per tirare giù l'epiglottide. Inserire il tubo attraverso le corde vocali. Posizionare il bracciale sotto la glottide e gonfiare.
  7. Ventilare con 40% di ossigeno a 20-26 respiri/min e un volume corrente di 10 ml/kg per mantenere la tensione di biossido di carbonio parziale fine-di marea tra 36 e 42 mm Hg.
  8. Mantenere l'anestesia con isoflurano ad una concentrazione di 1-1,5% e fentanil ad una concentrazione di 3-4 µ g/kg/h.
  9. Fornire la soluzione di Ringer lattato a una velocità iniziale di 4 mL/kg/h e aumentare dopo la laparotomia per una velocità di infusione costante di 8 mL/kg/h.

3. chirurgia e coagulazione del Plasma

  1. Metti l'animale in posizione supina su un tavolo chirurgico standard.
  2. Disinfettare la pelle applicando un disinfettante chirurgico standard (2-propanolo 45 g/100 g, 1-Propanol 10 g / 100g, bifenil-2-olo 0,2 g/100 g) con un tampone chirurgico per ben 3 volte.
  3. Eseguire una laparotomia mediana ampia dal processo xifoideo al pube con un bisturi e installare Divaricatori chirurgici.
  4. Accendere il dispositivo di coagulazione del plasma, aprire la bottiglia di gas argon o elio, a seconda del gas usato motrice. Regolare il flusso del gas a 3 L/min potenza di uscita dispositivo selezionare coagulazione come desiderato.
    Nota: Entrambi i gas nobili, Argon o elio, può essere utilizzati per la coagulazione del plasma. Effetti di coagulazione sono paragonabili. Vedere riferimento7 per i dettagli.
  5. Eseguire la coagulazione del plasma sul lobo sinistro del fegato come descritto in precedenza7. Utilizzare uno stampo di titanio (apertura quadrata 1 x 1 cm2) per standardizzare la zona di coagulazione. Coagulare per 5 s con una distanza della sonda di 1 cm. La pinza di coagulo con impostazioni di risparmio energia diverso può essere eseguita fianco a fianco con una distanza breve tra la pinza di coagulo di 5 mm (Figura 1).
  6. Per la raccolta del fegato, dividere tutti i collegamenti ligamentous al fegato. Isolare e dividere il pedicle epatico sopra la flessura duodenale superiore lasciando porzioni lunghe della vena portale e del dotto biliare comune. Dividere la vena cava sopra e sotto il fegato e recuperare l'organo.
  7. Dopo la raccolta il fegato, i maiali sono stati eutanasizzati dalla somministrazione i.v. di 0,16 g/kg BW pentobarbital.
  8. Per gli esperimenti di pressione di scoppio, resecare metà del lobo sinistro del fegato mediale con forbici affilate. Il taglio al plasma-coagulare (potenza di uscita 100W) di superficie o sigillare la superficie di taglio con fibrina (Figura 2).

4. microcircolazione misura

Nota: Spettroscopia Doppler Laser può determinare il flusso di sangue nel tessuto attraverso misurando lo spostamento Doppler causato dal movimento degli eritrociti. Il segnale Laser correla con il numero di eritrociti commoventi. Spettroscopia Doppler laser è in uso clinico (ad es. medicina dei trapianti) ed è stato convalidato più volte15.

  1. Accendere il laser Doppler flussimetro e spettrofotometro. Utilizzare una sonda piatta.
  2. Prendere le misure della linea di base per il flusso e velocità. Salvare o prendere nota dei valori.
  3. Eseguire la coagulazione come descritta al punto 3.5.
  4. Posizionare la sonda piatta su siti di coagulazione e misura di flusso e velocità. Ancora una volta, salvare o Nota valori.
  5. Ripetere per tutte le impostazioni di alimentazione del dispositivo coagulatore.

5. misurazione della temperatura

  1. Il passaggio del sistema (macchina fotografica termografica, notebook e termometro a infrarossi) e lasciar correre per almeno 1 h prima di eseguire le misurazioni.
  2. Regolare messa a fuoco e visualizzare frame su macchina fotografica termografica sul sito della coagulazione. Sequenze a infrarossi possono essere rilevati con la risoluzione spaziale di 1024 x 768 pixel con una risoluzione di temperatura più grande di 20 mK. Prendere in considerazione, che la regione di coagulazione e il tessuto circostante — interessate dal trasferimento di calore — si trova nel centro della vista.
    Nota: Dovrebbe includere come numero di pixel del fotogramma possibile per un'ottimale risoluzione spaziale.
  3. Registrare il processo di coagulazione con il coagulatore del plasma sulla superficie del fegato con la macchina fotografica termografica su un periodo di 2 min.
  4. Analizzare le sequenze di immagini con il software di analisi di termografia: definire le aree di interesse.
    Nota: Il Software calcola il corso della corrispondente temperatura media nel corso del tempo.

6. misurazione della profondità coagulazione

  1. Raccogliere il lobo di sinistra del fegato mediale con forbici affilate.
  2. Asportare i siti di coagulazione con 1 cm di spessore. Tagliato in segmenti longitudinali spesse 3 mm per l'ulteriore elaborazione.
  3. Campioni di tessuto di correzione a 4 ° C durante la notte con neutro 10% tamponata formalina. Calore 2 ° C sopra il punto di fusione della paraffina e incorporare fette. Processo durante la notte.
  4. Eseguire ematossilina/eosina.
    1. Deparaffinizzare e idratare il tessuto immergendo successivamente in 2 x xilene, 100% di etanolo (EtOH), 95% EtOH, 70% EtOH, deionizzata di H2O per 2 minuti ciascuno.
    2. Macchia il campione di tessuto con soluzione di ematossilina di Meyer per 3 min.
    3. Ora sciacquare in acqua corrente per 5 min.
    4. Macchiare il tessuto con soluzione di eosina per 3 min.
    5. Sciacquare in 2 x EtOH 95% e quindi in xilene per 3 minuti ciascuno. Montare con il mezzo di montaggio standard.
  5. Accendere il sistema (microscopio fotocamera collegata, software di imaging). Mostra tutte le sezioni con ingrandimento 40x.
  6. Acquisire l'immagine di un micrometro oggetto ad un ingrandimento di 40x. Ricalibrare il tasto nella finestra di obiettivi. Selezionare Calibrazione manuale. Tracciare una linea sull'immagine micrometro di 100 µm. invio 0,1 mm di nella finestra di dialogo e premere OK.
  7. Seleziona lunghezza nella visualizzazione > analisi controlli > finestra annotazioni e misure. Misurare dalla superficie del fegato per il margine di coagulazione con il mouse. Esportare o annotarsi il risultato. Ripetere la misurazione su un'altra posizione nella stessa diapositiva.
    Nota: La profondità di coagulazione possono essere differenziati facilmente dal tessuto normale del fegato dal margine tagliente tra le corde dell'epatocita normale e la zona di necrosi con rattrappito citoplasma, nuclei picnotici e zone di emorragia.
  8. Calcolare la media di due misurazioni.

7. misurazione della pressione burst

  1. Accendere il sistema (pompe automatiche, misuratore di pressione). Preparare i campioni del fegato secondo il punto 3.7.
    Nota: Utilizzare due pompe funzionanti in parallelo collegati tramite un rubinetto a 3 vie. La pressione massima di 1.500 mm Hg non può essere ottenuta con una sola pompa.
  2. Isolare la vena, arteria epatica comune e del dotto biliare con le forbici nel pedicle aptica. Morsetto della vena portale con un forcipe overholt e legare con una sutura monofilo 4-0. Bloccare l'arteria epatica comune un forcipe overholt e legare con una sutura monofilo 4-0.
  3. Inserire il catetere Ch-16 nel dotto biliare comune e legare con una sutura seta 2-0. Collegare il catetere alla pompe automatiche, installare il rubinetto a 3 vie con misuratore di pressione (Figura 3).
  4. Riempire la siringa di perfusione con soluzione fisiologica.
  5. Avviare pompe automatiche con un tasso di consegna di 99 mL/h.
  6. Monitoraggio del fegato taglio superficie e pressione tester per perdite e record di pressione di scoppio.
    Nota: Per un più facile riconoscimento delle perdite, brevetto blu possono essere aggiunti alla soluzione fisiologica (2 mL brevetto blu + 18 mL di soluzione fisiologica). È più facile osservare la pressione di scoppio da notare il periodo di perdita di pressione sul manometro.

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Representative Results

Microcircolazione: Utilizzando il dispositivo diagnostico per l'emostasi dopo coagulazione del plasma può essere dimostrata dai cambiamenti di microcircolazione. Sangue capillare flusso (visualizzato come unità arbitrarie (AU)) diminuisce da un valore basale di 142,7 ± 76,08 AU a ± 57.78 49.57 AU 25 W dispositivo potenza di uscita a 48,5 ± 7,26 AU a 50 W e a 5,04 ± 1.31 AU a 100 W (Figura 4).

Temperatura: Temperatura presso i siti di coagulazione è stata misurata con una macchina fotografica termografica (Figura 5). I cambiamenti di temperatura solo insignificante sono stati documentati con un termometro a infrarossi. Ha mostrato una temperatura basale di 32.42 ± 2,27 ° C. Dopo la coagulazione con 25 W, la temperatura era 33.33 ± 1,81 ° C. Coagulazione con un 50 W laser ha prodotto una temperatura di ± 31.17 2,13 ° C. Dopo la coagulazione con l'impostazione di massima potenza di 100 W, la temperatura era per lo più invariata con 30.17 ± 3,19 ° C (Figura 6).

Profondità di coagulazione: La coagulazione del plasma crea una zona superficiale di necrosi con può essere facilmente distinto dal parenchima del fegato normale (Figura 7). La profondità della necrosi può essere misurata a più sezioni e Mostra un aumento non completamente lineare con crescenti livelli di potenza del coagulatore del plasma. A seguito di coagulazione del plasma dell'elio, la profondità di coagulazione è 230.2 ± 57.83µm a 25W, 314.6 ± 87,39 µm a 50 W, 292,2 ± 45.65 µm a 75W e 412.9 ± 160,9 µm a 100 W dispositivo di potenza (Figura 8). La potenza di uscita del dispositivo possa essere scelti liberamente e ha scelto una correlazione positiva con coagulazione profondità7.

Pressione di scoppio: Misure di pressione di scoppio non effettuato sulla superficie di taglio degli spettacoli explanted sinistra lobo mediale del fegato alcuna differenza dopo Elio (1254±578.7 mmHg) o di coagulazione del plasma di argon (1003 ± 554.4 mmHg) (Figura 9). Pressioni di scoppio sono inferiori rispetto a fibrina sigillanti7 ma mi sembra appropriate per uso clinico.

Figure 1
Figura 1: sinistra mediale del lobo del fegato dopo la coagulazione del plasma dell'argon. Otto siti di coagulazione il lobo del fegato mediale di sinistra (dall'alto a sinistra a in basso a destra: 10 W, 15 W, 20 W, 25 W, 30 W, 50 W, 75 W, 100 W). La misura di coagulazione standardizzata con la muffa. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 2
Figura 2: preparazione dell'innesto del fegato per misure di pressione di scoppio. Metà del lobo del fegato è resecato e superficie di taglio del fegato è sigillata con fibrina. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 3
Figura 3: apparecchiature per misure di pressione di scoppio. Pompa automatica (siringa riempita con soluzione fisiologica) e misuratore di pressione collegato tramite un rubinetto a 3 vie. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 4
Figura 4: modifiche di microcircolazione. Cambiamenti nel flusso (visualizzato come unità arbitrarie) di sangue prima e dopo la coagulazione del plasma dell'argon a 25 W, 50 W e dispositivo di 100 W potenza di uscita (n = 3-6). * = P< 0,05, 1-way ANOVA. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 5
Figura 5: temperatura in siti di coagulazione misurata con una macchina fotografica termografica. L'immagine esemplare con una macchina fotografica termografica durante la coagulazione del plasma dell'elio con potenza di uscita di 40W dispositivo. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 6
Figura 6: temperatura in siti di coagulazione misurata con un termometro a infrarossi. La temperatura presso i siti di coagulazione misurata con un termometro a infrarossi prima e dopo la coagulazione del plasma dell'argon (n = 3-6). Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 7
Figura 7: zona di necrosi superficiale dopo coagulazione del plasma dell'elio. Ematossilina/eosina macchiato del fegato sezione 40 ingrandimenti. La zona di necrosi evidenzia una perdita dell'architettura di cavo dell'epatocita, cellule con citoplasma rattrappito e zone di emorragia. Le frecce indicano la profondità di coagulazione in due sedi diverse. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 8
Figura 8: profondità di coagulazione dopo coagulazione del plasma dell'elio. Profondità di coagulazione a diversi livelli di potenza (25W, 50W, 75W e 100W, n = 6). * = P< 0,05, * * * = P< 0,001, 1-way ANOVA. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 9
Figura 9: pressione di scoppio. Scoppiare le misurazioni della pressione sulla superficie di taglio del fegato dopo coagulazione del plasma dell'argon o elio. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 10
Figura 10: Risultati esami del sangue. Selezionate i parametri di clinica biochimica e sangue gas risultati sono mostrati prima e seguenti la coagulazione del plasma dell'argon. Nessun cambiamento significativo si verifica, dimostrazione degli effetti di coagulazione del plasma limitato ai cambiamenti locali presso il sito di coagulazione. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Discussion

Modelli del roditore per chirurgia epatica sono stabiliti per un lungo periodo di tempo16. Tuttavia, modelli animali di grandi dimensioni offrono alcuni vantaggi: nessuna apparecchiatura microsurgical è necessaria come equipaggiamento standard operativo per gli esseri umani possa essere applicato, tecniche chirurgiche sono paragonabili per uso clinico e metodi di valutazione clinica standard possono essere trasferito agli esperimenti. Ad esempio, test clinici standard del sangue può avvenire senza la necessità di metodi di test di laboratorio speciale (Figura 10).

Suina è animali da laboratorio adatto per la ricerca cardiorespiratorio come loro fisiologia umana17assomiglia. A causa della somiglianza nel formato, struttura segmentale e l'istologia, i maiali sono anche uno degli animali da laboratorio standard per chirurgia epatica sperimentale18. La coagulazione del plasma è stata valutata nel modello porcino a causa i benefici (somiglianza alla fisiologia umana e alla valutazione di equipaggiamento standard clinico)7. In contrasto con le tecniche chirurgiche, anestesiologiche gestione non può essere facilmente estrapolati. Soprattutto la gestione delle vie aeree può essere difficile17. La distanza tra gli incisivi e la glottide è molto lunga e l'anatomia è differente agli esseri umani rendendo difficile l'intubazione orotracheal per il ricercatore inesperto. Inoltre, la ventilazione in maschera è quasi impossibile nei suini, quindi strategie di salvataggio (ad es. tracheostomia) dovrebbero essere presente.

Per ottenere risultati comparabili in coagulazione del plasma, il ricercatore dovrebbe prendere rigorosamente attenzione per standardizzare la distanza della sonda e la durata della coagulazione. Mentre è relativamente facile da mantenere la distanza di sonda, un cronometro può essere utilizzato per contare i 5 s di coagulazione. La tecnica descritta di coagulazione del plasma sulla superficie del fegato è stata utilizzata nella ricerca di base sugli effetti sottostanti di coagulazione del plasma sul fegato in vivo7. Le tecniche sopra descritte di coagulazione di anestesia, chirurgia e plasma suina possono essere utilizzate anche per esaminare la resezione epatica principale e per confrontare le diverse tecniche di superficie di taglio di tenuta da allora in poi.

Il laser Doppler flussimetro e lo spettrofotometro per misure di microcircolazione è un attrezzo clinico standard19 e ha dimostrato di essere altamente utile per la valutazione della circolazione direttamente il parenchima dell'organo. I valori di flusso sanguigno e velocità del flusso sanguigno sono calcolati con il vantaggio di non invasività. Parametri di microcircolazione sono solo misure indirette dell'effetto di coagulazione, quindi misure Doppler dovrebbero essere correlate con un parametro oggettivo per coagulazione. Nei nostri esperimenti, abbiamo usato profondità istologica della coagulazione per la correlazione.

Un difetto della misurazione della temperatura è l'impossibilità di misurare la temperatura del fascio del plasma durante la coagulazione, perché la temperatura del fascio del plasma è sopra la soglia superiore di entrambi i dispositivi. Il termometro a infrarossi è facile da applicare, considerando che la configurazione di macchina fotografica termografica è più complessa, ma fornisce dati più precisi. La temperatura basale prima di coagulazione è inferiore al previsto (porcina corpo temperatura ~38.5 ° C17), che dimostrano gli effetti dirompenti della laparotomia sulla temperatura corporea. La temperatura misurata non aumenta durante e dopo la coagulazione, dimostrando la perfusione eccellente del fegato. Questo effetto termico ruba del fegato è noto da ablazione di radiofrequenza20. Gestioni di pressione di scoppio sono state condotte sul sistema dei dotti biliari, piuttosto che su vasi epatici per un semplice motivo: è impossibile per COAGULATORI del plasma (come lo è per la fibrina) per sigillare i vasi più grandi. Entrambi i mezzi di hemostasis secondario sigillare la superficie di taglio dell'organo resecato, mentre più grandi vasi sono legati durante la resezione. I nostri esperimenti di pressione di scoppio sono stati leggermente modificati rispetto al tecnica segnalati14. Abbiamo misurato la pressione di scoppio sugli organi espiantati per motivi organizzativi. Queste regole fuori pressione sanguigna effetti legati e sono molto più facili da applicare rispetto a uso irrorato o organi in vivo . I valori della pressione esperimenti potrebbero, pertanto, differire da irrorato / misurazioniin vivo a causa di fegato alterata struttura (solitamente più alte pressioni sugli organi espiantati). La tecnica di pressione di scoppio sopra può anche essere eseguita in vivo.

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Disclosures

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Acknowledgments

Gli autori non hanno nessun ringraziamenti.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Xylazine 20 mg/mL Vetoquinol GmbH Xylapan
Ketamine 100 mg/mL Ceva GmbH Ceva Ketamine Injection
Atropine 100 mg / 10 mL Dr. Franz Köhler Chemie GmbH Atropinsulfat Köhler 100mg Amp.
Propofol Fresenius Kabi GmbH Propofol 1% MCT Fresenius
Fentanyl KG Rotexmedica GmbH Fentanyl 0,5mg Rotexmedica
Isoflurane Abbot GmbH Forene 100% (V/V) 250 mL
Ringer's lactate solution Baxter Deutschland GmbH sodium 131mmol/l, potassium 5 mmol/l, calcium 2 mmol/l, cloride 111 mmol/l, lactate 29 mmol/l
Surgical disinfactant Schülke & Mayr GmbH Kodan Tinktur forte gefärbt 1l 104804
Motorized microscope Nikon Instruments Europe Eclipse TE2000-E
Microscope camera Nikon Instruments Europe Digitalsight DS-Qi1Mc
Imaging software Nikon Instruments Europe NIS elements Vers. 4.40
Plasma coagulator Söring GmbH CPC-1000
Argon gas Linde AG Argon 4.8 
Helium gas Linde AG Helium 4.8
O2C LEA Medizintechnik GmbH O2C Version 1212 with LF-2 or LF-3 probe
Infrared thermometer Voltcraft VOLTCRAFT IR 260-8S
Thermographic camera InfraTec GmbH VarioCAM HD head 820
Thermographic analysis software InfraTec GmbH IRBIS 3
Mayer's Hematoxylin solution Merck 1.09249
Eosin solution VWR International GmbH Merck 1.09844
Rollerpump Masterflex L/S easy Load Cole-Parmer Instrument Company model 7518-10
Perfusorpump B. Braun Melsungen AG Perfusor secura FT
Digital pressure meter Greisinger electronic GMH 3161
Perfusorsyringe, 50 mL B. Braun Melsungen AG REF 8728810 F
Perfusor line, Type IV Standard, PVC Luer lock B. Braun Melsungen AG REF 8722960
3-Way stopcock, Dicofix C35C B. Braun Melsungen AG REF 16494 C
Silk 2-0. 3 metric Resorba REF H5F
Vicryl 4-0 Sutupak Ethicon V1224H
NaCl 0.9 % B. Braun Melsungen AG

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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Medicina problema 138 Argon plasma coagulazione APC Elio al plasma coagulazione coagulazione del plasma chirurgia del fegato suino maiale suina
Valutazione della coagulazione del Plasma il tessuto del fegato in un modello animale di grandi dimensioni <em>In Vivo</em>
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Glowka, T. R., Paschenda, P.,More

Glowka, T. R., Paschenda, P., Czaplik, M., Kalff, J. C., Tolba, R. H. Assessment of Plasma Coagulation on Liver Tissue in a Large Animal Model In Vivo. J. Vis. Exp. (138), e57355, doi:10.3791/57355 (2018).

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