Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Vurdering av Plasma koagulering på leveren vev i en stor dyremodell i Vivo

Published: August 4, 2018 doi: 10.3791/57355

Summary

Her presenterer vi en protokoll for å vurdere eksperimentelt plasma koagulering i leveren vev i vivo. I en porcine modell mikrosirkulasjonen undersøkes av laser Doppler, koagulering dybde måles histologisk, temperaturen koagulering området av infrarød termometer Termografiske kamera og rør tetting effekt er dokumentert av burst press eksperimenter.

Abstract

Plasma koagulering som en form for electrocautery brukes i leveren kirurgi i flere tiår for å forsegle store leveren kuttet overflaten etter store hepatectomy å hindre blødninger på et senere tidspunkt. Eksakt effekten av plasma koagulering på leveren vev er bare dårlig undersøkt. I vår porcine modell, kan koagulering effektene undersøkes nær klinisk anvendelse. En kombinert laser Doppler flowmeter og spektrofotometer dokumenter mikrosirkulasjonen endres under koagulering på 8 mm vev dyp noninvasively, å gi kvantifiserbare informasjon om hemostasen utover subjektive klinisk inntrykk. Temperaturen på koagulering området vurderes med en infrarød termometer før og etter koagulering og en Termografiske kamera under koagulasjon, en måling av gass strålen temperaturen er ikke mulig på grunn av øvre terskelen til enhetene. Dybden av koagulering måles mikroskopisk på hematoxylin/eosin farget deler etter kalibrering med et objekt mikrometer og gir en nøyaktig informasjon om makt innstillingen-coagulation dybde-forholdet. Tetting effekten undersøkes på galle kanaler er det ikke mulig for en plasma coagulator å forsegle større blodkar. Burst press eksperimenter er gjennomført ut på explanted organer å utelukke blodtrykk relaterte effektene.

Introduction

Argon plasma koagulering (APC) er en mye brukt instrument i abdominal kirurgi for mer enn tre tiår1,2. Det er en standard teknikk for oppnåelse av sekundær hemostasen etter store hepatectomy forsegle leveren kutte overflate for å hindre senere hemorrhages3. Plasma koagulering er en spesialisert form for radiofrekvens electrocautery, som gir elektrisk energi gjennom en bue ionisert gass. Gir monopolar elektrotermiske hemostasen, har denne noncontact teknikken fordelen av hindre elektroden å stikke til vev4. Ionisert gass strålen sendes automatisk til området i den laveste motstanden og vendt bort når motstand stiger skyldes uttørking til andre områder ikke desiccated. Dette gir en ensartet begrenset dybdeskarphet koagulering5,6. Faktorer som påvirker koagulering effekten er aktiviseringen tid, strøminnstillingen koagulering enheten og avstanden fra sonden til vev. Helium er en annen transportør gass, som kan brukes for plasma koagulering7. Nylig kliniske studier konsentrert om kliniske utfall i stedet for histologiske og funksjonelle funn3,8,9, mens eksperimentelle studier fokuserte på i vitro undersøkelser10 eller eksperimenter på isolerte perfused organer11.

Den underliggende protokollen tillater studier av effekten av plasma koagulering i en stor dyremodell nær klinisk programmet bruker standard menneskelige utstyr på griser: mikrosirkulasjonen vurderes noninvasively av en laser Doppler flowmeter og spektrofotometer, som er en klinisk standardverktøy for dette indikasjon12,13. Temperaturendringer under koagulasjon overvåkes med en infrarød termometer og en Termografiske kamera. Dybden av koagulering måles på histologiske hematoxylin/eosin farget deler etter høsting av vevsprøver. For sammenligning med andre former for sekundær hemostasen utføres burst press eksperimenter. I motsetning til tidligere beskrevet teknikker14, dette er gjennomført på explanted organer å ekskludere blodtrykk relaterte effektene. I tillegg til beskrevet undersøkelser på lokale effekter av plasma koagulering, kan standard blodprøver også foretas i porcine modell.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Regler underlagt tysk lovgivning for dyrestudier samt prinsipper av laboratoriet Animal Care (National Institutes of Health publikasjonen ed. 8, 2011) ble fulgt. Offisiell tillatelse fra statlige dyr omsorg office (Landesamt für Natur, Umwelt und Verbraucherschutz Nordrhein-Westfalen, Recklinghausen, Tyskland).

1. dyr

  1. Bruk kvinnelige tyske landrace griser (på 25-30 kg) i åpne burene.
  2. Bruk 5 dyr per gruppe (argon og helium).
  3. Tillat dyr til acclimatize omgivelsene i minst en uke før eksperimenter. Rask dyr for 24 timer før operasjonen med fri tilgang til vann.

2. anestesi

  1. Premedicate dyr med en intramuskulær injeksjon av ketamin (15 mg/kg kroppsvekt [BW]), xylazine (10 mg/kg BW) og atropin (0,1 mg/kg BW) 10 min før induksjon av anestesi.
  2. Eksterne venøs tilgang er etablert av plasseringen av en 22-gauge kanyle i en øre venen.
  3. Indusere narkose ved IV injeksjon av propofol 2 mg/kg kroppsvekt.
  4. Plasser dyret i supine posisjon og utføre en langsgående huden snitt i jugulare sporet over en lengde på 2 cm. Finn blodåre gjennom sløv utarbeidelse av subkutan vev. Sett inn kanyle, deretter Seldinger wire.
  5. Trekke kanyle og sette inn 14 Fr. kateter over guidekabelen. Trekke guidekabel. Koble kateter til filtypen og fixate kateter av en stropp eller en Sutur.
  6. Trekke ut tungen og sett rett laryngoskop. Bruk spissen av laryngoskop for å trekke ned at epiglottis. Sett røret gjennom stemmebåndene. Plasser mansjett under glottis og blåse.
  7. Ventiler med 40% oksygen på 20-26 åndedrag/min og en Tidalvolum 10 ml/kg for å holde slutten-tidevanns delvis carbon dioxide spenningen mellom 36 og 42 mm Hg.
  8. Opprettholde anestesi og isoflurane i en konsentrasjon av 1-1,5% fentanyl i en konsentrasjon av 3-4 µg/kg/h.
  9. Angi Ringer i laktat løsning på en første 4 mL/kg/t, og øke etter laparotomy til en konstant tilførsel av 8 mL/kg/t.

3. kirurgi og Plasma koagulering

  1. Plassere dyret i supine posisjon på en kirurgisk standardtabell.
  2. Rense huden ved å bruke standard kirurgisk desinfeksjonsmiddel (2-Propanol 45 g/100 g, 1-Propanol 10 g / 100g, Biphenyl-2-ol 0.2 g/100 g) med en kirurgisk swab for 3 timene.
  3. Utføre et bredt midtlinjen laparotomy fra xiphoid prosessen til skambeinet med skalpell og installere kirurgisk retractors.
  4. Slå på plasma koagulering enheten, åpne argon eller helium gassflaske, avhengig av brukte carrier gassen. Justere gasstrømmen til 3 L/min. Velg koagulering enheten utgangseffekt som ønsket.
    Merk: Begge edelgassene, Argon eller Helium, kan brukes til plasma koagulering. Koagulering effekter er sammenlignbare. Se referanse7 for detaljer.
  5. Utføre plasma koagulering på den venstre leveren lobe som beskrevet tidligere7. Bruk en Titan mold (kvadrat blenderåpning 1 x 1 cm2) for å standardisere sonen koagulering. Koagulere 5 s med sonde avstand på 1 cm. Coagulations med forskjellige innstillinger kan utføres ved siden av kort avstand mellom coagulations på 5 mm (figur 1).
  6. For høsting av leveren, dele alle ligamentous tilkoblinger til leveren. Isolere og dele den hepatic pedicle over den overlegne duodenalsår flexure forlate lange deler av portalen blodåre og felles galle duct. Del caval venen over og under leveren og hente orgel.
  7. Etter høsting leveren, ble griser euthanized av IV administrasjonen av 0,16 g/kg BW pentobarbital.
  8. For burst press eksperimentene, resect halvparten av den venstre mediale leveren flik med skarp saks. Plasma-koagulere kuttet overflaten (100W utgangseffekt) eller forsegle kuttet overflaten med fibrin tetningsmasse (figur 2).

4. mikrosirkulasjonen måling

Merk: Laser Doppler spektroskopi kan bestemme blodstrøm i vev gjennom måling Doppler skiftet forårsaket av bevegelse av erytrocytter. Laser signalet samsvarer med antall bevegelige erytrocytter. Laser Doppler spektroskopi i klinisk bruk (f.eks transplantasjon medisin) og har vært godkjent flere ganger15.

  1. Slå på laser Doppler flowmeter og spektrofotometeret. Bruke en flat sonde.
  2. Ta opprinnelige mål for flyt og hastighet. Lagre eller Merk verdiene.
  3. Utfør koagulering som beskrevet under 3,5.
  4. Plass flat sonden koagulering steder, måle flyt og hastighet. Igjen, lagre eller Merk verdier.
  5. Gjenta for alle strøminnstillinger coagulator enheten.

5. temperaturmåling

  1. Slå systemet på (Termografiske kamera, bærbar PC og infrarød termometer) og la den kjøre minst 1 time før mål.
  2. Justere fokus og Vis ramme på Termografiske kameraet på webområdet koagulering. Infrarød sekvenser kan oppdages med romlig oppløsning på 1024 x 768 piksler med en temperatur oppløsning som er større enn 20 mK. Hensyn, som regionen koagulering og de omkringliggende vev-påvirket av varmeoverføring, ligger midt i visningen.
    Merk: Det bør inkludere så mange piksler på rammen som mulig for en optimal romlig oppløsning.
  3. Registrere koagulering prosessen med plasma-coagulator på leveren overflaten med Termografiske kameraet over en 2 minutters periode.
  4. Analysere bildesekvenser med termografi analyseprogramvare: definere områder av interesse.
    Merk: Programvaren beregner løpet av tilsvarende middeltemperaturen over tid.

6. koagulering dybde måling

  1. Høste den venstre mediale leveren flik med skarp saks.
  2. Avgiftsdirektoratet koagulering nettsteder med 1 cm tykkelse. Skjær i 3 mm tykk langsgående segmenter for videre behandling.
  3. Fastsette vevsprøver på 4 ° C over natten med nøytral 10% bufret formalin. Varme parafinen 2 ° C over Smeltepunkt og legge skiver. Prosess over natten.
  4. Utføre Hematoxylin/Eosin flekker.
    1. Deparaffinize og hydrat vev av senere dipping i 2 x xylen, 100% etanol (EtOH), 95% EtOH, 70% EtOH, deionisert H2O i 2 minutter.
    2. Stain Vevsprøve Meyers Hematoxylin løsning for 3 min.
    3. Nå skyll i vann fra springen i 5 min.
    4. Stain vevet med Eosin løsning for 3 min.
    5. Skyll i 2 x EtOH 95% og deretter xylen for 3 min. Montere med standard montering mediet.
  5. Slå systemet på (mikroskop tilkoblet kamera, tenkelig programvare). Vis alle deler med 40 X forstørrelse.
  6. Ta et bilde av et objekt mikrometer på en forstørrelse på 40 X. Trykk Kalibrer i vinduet mål. Velg Manuell kalibrering. Tegne en linje på mikrometer bildet av 100 µm. Enter 0,1 mm i dialogboksen og trykk OK.
  7. Velg lengden i visningen > analyse Kontroller > merknader og målinger. Mål fra lever overflaten til koagulering marg med musen. Eksportere eller Merk resultatet. Gjenta måling på et annet sted i samme lysbilde.
    Merk: Koagulering dybde kan lett være differensiert fra den normale leveren vev av skarpe margen mellom normal hepatocyte ledningene og sonen av nekrose krympet cytoplasma, pyknotic kjerner og blødning soner.
  8. Beregn gjennomsnittet av to målinger.

7. burst press måling

  1. Slå systemet på (automatisk pumper, blodtrykksmåler). Forberede leveren prøvene ifølge trinn 3.7.
    Merk: Bruk to parallelle pumper koblet via en 3-vei-stopcock. Maksimal trykket på 1500 mm Hg kan ikke hente med en enkelt pumpe.
  2. Isolere portalen blodåre, felles hepatic arterien og galle duct med saks i det haptic pedicle. Klemme portalen blodåre med en overholt tang og ligate med en monofil Sutur 4-0. Klemme felles hepatic arterien et overholt tang og ligate med en monofil Sutur 4-0.
  3. Ch-16 kateter inn i felles galle duct og ligate med en 2-0 silke Sutur. Koble kateter til automatiske pumper, installere 3-veis stopcock med blodtrykksmåler (Figur 3).
  4. Fyll sprøyten perfusjon med saltvann.
  5. Start automatisk pumper med en leveransetakt 99 mL/t.
  6. Overvåke leveren kuttet overflaten og press meter for lekkasje og posten burst trykk.
    Merk: For lettere gjenkjennelse av lekkasje, patent blå kan legges til saltvann (2 mL patent blå + 18 mL saltvann). Det er lettere å observere burst press ved å merke tidspunktet for tapet av press på press meter.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Mikrosirkulasjonen: Utnytte diagnostiske enheten etter plasma koagulering hemostasen kan påvises av mikrosirkulasjonen endringer. Kapillær blodet flyt (vises som vilkårlig enheter (AU)) reduseres fra planlagte verdien 142.7 ± 76.08 AU 57.78 ± 49.57 AU på 25 W enheten utgangseffekt, til 48.5 ± 7.26 AU på 50 M og ca 5,04 ± 1,31 AU 100 W (Figur 4).

Temperatur: Temperaturen på webområdene koagulering ble målt med et Termografiske kamera (figur 5). Bare ubetydelige temperaturendringer ble dokumentert med en infrarød termometer. Det viste en planlagt temperatur på 32.42 ± 2.27 ° C. Etter koagulering med 25 M, temperaturen var 33.33 ± 1,81 ° C. Koagulering med en 50 W laser gitt en temperatur på 31.17 ± 2,13 ° C. Etter koagulering med innstillingen Maksimal power 100 W var temperaturen stort sett uendret med 30.17 ± 3.19 ° C (figur 6).

Koagulering dybde: Plasma koagulering skaper en overfladisk sone av nekrose med kan lett skilles fra den normale leveren parenchyma (figur 7). Dybden av nekrose kan måles på flere inndelinger og viser en ikke helt lineær økning med stigende strømnivåene for plasma-coagulator. Etter helium plasma koagulering er koagulering dybden 230.2 ± 57.83µm på 25W, 314.6 ± 87.39 µm ved 50 M, 292.2 ± 45.65 µm på 75W og 412.9 ± 160.9 µm med 100 W enheten utgangseffekt (Figur 8). Utgangseffekten på enheten kan velges fritt og valgte en positiv korrelasjon med koagulering dybde7.

Sprakk Press: Burst press målinger utført på kutt overflaten av explanted venstre mediale leveren lobe viser ingen forskjell etter helium (1254±578.7 mmHg) eller argon (1003 ± 554.4 mmHg) plasma koagulering (figur 9). Burst press er lavere enn fibrin tetningsmasse7 men passer for klinisk bruk.

Figure 1
Figur 1: venstre mediale leveren lobe etter argon plasma koagulering. Åtte koagulering områder på den venstre mediale leveren lobe (fra øverst til nederst høyre: 10 W, 15 W, 20 W, 25 W, 30 W, 50 M, 75 W, 100 M). Omfanget av koagulering standardisert med mold. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 2
Figur 2: utarbeidelse av leveren pode for burst automatiske blodtrykksmålinger. Halvparten av leveren lobe resected og leveren kuttet overflaten er forseglet med fibrin fugemasse. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 3
Figur 3: utstyr for burst automatiske blodtrykksmålinger. Automatiske lensepumpen (sprøyte fylt med saltvann) og blodtrykksmåler koblet via en 3-vei-stopcock. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 4
Figur 4: mikrosirkulasjonen endringer. Endringer i blodstrøm (vises som vilkårlig enheter) før og etter argon plasma koagulering i 25 M, 50 M og 100 W enhet utgang makt (n = 3-6). * = P< 0,05, 1-veis VARIANSANALYSE. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 5
Figur 5: temperatur på koagulering nettsteder målt med et Termografiske kamera. Eksemplarisk bildet med en Termografiske kameraet under helium plasma koagulering med 40W enheten utgangseffekt. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 6
Figur 6: temperatur på koagulering nettsteder målt med en infrarød termometer. Temperaturen på webområdene koagulering målt med en infrarød termometer før og etter argon plasma koagulering (n = 3-6). Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 7
Figur 7: sone av overfladiske nekrose etter helium plasma koagulering. Hematoxylin/Eosin farget leveren delen på 40 X forstørrelse. Sonen for nekrose viser tap av hepatocyte ledningen arkitektur, celler med krympet cytoplasma og blødning soner. Pilene angir dybden av koagulering på to ulike steder. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 8
Figur 8: koagulering dybde etter helium plasma koagulering. Koagulering dybde på forskjellige nivåer (25W, 50W, 75W og 100W, n = 6). * = P< 0,05, *** = P< 0,001, 1-veis VARIANSANALYSE. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 9
Figur 9: Burst press. Burst press målinger på leveren kuttet overflaten etter argon eller helium plasma koagulering. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 10
Figur 10: blod-testresultater. Valgt parametere av klinisk biokjemi og blod gass resultatene vises før og følgende argon plasma koagulering. Ingen vesentlige endringer oppstår, demonstrerer effektene av plasma koagulering begrenset til lokale endringer på webområdet koagulering. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Gnager modeller for leveren kirurgi er etablert for en lang tid16. Likevel store dyr modeller har visse fordeler: ingen Mikrokirurgiske utstyr er nødvendig som operative standardutstyr for mennesker kan brukes og kirurgiske teknikker kan sammenlignes med klinisk bruk standard klinisk evaluering kan være overført til eksperimenter. Standard klinisk blodprøver kan for eksempel utføres uten behov for spesielle laboratorium testmetoder (Figur 10).

Svin er riktig forsøksdyr for cardiorespiratory forskning fysiologi ligner de menneskelige17. På grunn av likheten i størrelse, Segmentinformasjon struktur og histology er griser også en av de standard forsøksdyr eksperimentelle hepatic kirurgi18. Plasma koagulering ble evaluert i porcine modell på grunn av fordeler (likheten til menneskelige fysiologi og evaluering av klinisk standardutstyr)7. I motsetning til kirurgiske teknikker, kan ikke anesthesiologic ledelse være lett ekstrapolert. Spesielt ledelsen luftveier kan være vanskelig17. Avstanden fra fortenner til glottis er svært lang og anatomi er annerledes enn mennesker gjør orotracheal intubasjon vanskelig for uerfarne forskeren. I tillegg er maske ventilasjon nesten umulig i gris, så berging strategier (f.eks tracheostomi) som skal vises.

For å oppnå sammenlignbare resultater i plasma koagulering, ta forskeren strengt oppmerksomheten å standardisere sonde avstand og varigheten av koagulering. Mens det er relativt enkle å sonde avstanden, en stoppeklokke kan brukes til å telle til 5 s av koagulering. Beskrevet teknikken av plasma koagulering på leveren overflaten ble brukt i grunnforskning på underliggende effekter av plasma koagulering på leveren i vivo7. Ovenfor beskrevet teknikker av svin anestesi, kirurgi og plasma koagulering benyttes også undersøke store hepatic resection og sammenligne ulike teknikker av kuttet overflate tetting etterpå.

Laser Doppler flowmeter og spektrofotometer for mikrosirkulasjonen målinger er en klinisk standardverktøy19 og viste seg for å være svært nyttig for vurdering av sirkulasjon direkte på orgel parenchyma. Verdier for blodstrøm og blod flyten hastighet beregnes med fordelen av ikke-invasivity. Mikrosirkulasjonen parametere er bare indirekte tiltak av koagulering effekten, så Doppler mål bør være korrelert med en objektiv parameter for koagulering. I vårt forsøk brukte vi histologiske koagulering dybde sammenheng.

En svakhet for temperaturmåling er manglende evne til å måle temperaturen på plasma strålen under koagulasjon fordi temperaturen i plasma strålen er over øvre terskelen på begge enhetene. Det infrarød termometeret er enkel å bruke, mens Termografiske kameraet setup er mer komplisert, men gir mer nøyaktige data. Grunnlinjetemperatur før koagulering er lavere enn forventet (svin kropp temperatur ~38.5 ° C17), demonstrere nedbrytende effekten av laparotomy på kroppstemperatur. Målt temperaturen øker ikke under og etter koagulering, demonstrere den utmerkede perfusjonen i leveren. Termisk stjele effekten av leveren er kjent fra radiofrekvens ablasjon20. Burst press ledelsen ble utført på galle duct systemet i stedet for hepatic fartøy av en enkel grunn: det er umulig for plasma coagulators (som det er for fibrin tetningsmidler) å forsegle større fartøy. Begge typer sekundære hemostasen forsegle kuttet overflaten av resected orgel, mens større fartøy er samskrevet under resection. Vår burst press eksperimenter var litt endret i forhold til de rapporterte teknikk14. Vi målt burst press på explanted organer for organisatoriske grunner. Disse reglene ut blodtrykk relaterte effektene og er mye lettere å bruke enn å bruke parfyme eller i vivo organer. Verdiene av presset eksperimenter kan derfor avvike fra perfused /i vivo målinger på grunn av endrede leveren struktur (vanligvis høyere press på explanted organer). Ovenfor beskrevet burst press teknikken også kan utføres i vivo.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Forfatterne ikke avsløre.

Acknowledgments

Forfatterne har ingen takk.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Xylazine 20 mg/mL Vetoquinol GmbH Xylapan
Ketamine 100 mg/mL Ceva GmbH Ceva Ketamine Injection
Atropine 100 mg / 10 mL Dr. Franz Köhler Chemie GmbH Atropinsulfat Köhler 100mg Amp.
Propofol Fresenius Kabi GmbH Propofol 1% MCT Fresenius
Fentanyl KG Rotexmedica GmbH Fentanyl 0,5mg Rotexmedica
Isoflurane Abbot GmbH Forene 100% (V/V) 250 mL
Ringer's lactate solution Baxter Deutschland GmbH sodium 131mmol/l, potassium 5 mmol/l, calcium 2 mmol/l, cloride 111 mmol/l, lactate 29 mmol/l
Surgical disinfactant Schülke & Mayr GmbH Kodan Tinktur forte gefärbt 1l 104804
Motorized microscope Nikon Instruments Europe Eclipse TE2000-E
Microscope camera Nikon Instruments Europe Digitalsight DS-Qi1Mc
Imaging software Nikon Instruments Europe NIS elements Vers. 4.40
Plasma coagulator Söring GmbH CPC-1000
Argon gas Linde AG Argon 4.8 
Helium gas Linde AG Helium 4.8
O2C LEA Medizintechnik GmbH O2C Version 1212 with LF-2 or LF-3 probe
Infrared thermometer Voltcraft VOLTCRAFT IR 260-8S
Thermographic camera InfraTec GmbH VarioCAM HD head 820
Thermographic analysis software InfraTec GmbH IRBIS 3
Mayer's Hematoxylin solution Merck 1.09249
Eosin solution VWR International GmbH Merck 1.09844
Rollerpump Masterflex L/S easy Load Cole-Parmer Instrument Company model 7518-10
Perfusorpump B. Braun Melsungen AG Perfusor secura FT
Digital pressure meter Greisinger electronic GMH 3161
Perfusorsyringe, 50 mL B. Braun Melsungen AG REF 8728810 F
Perfusor line, Type IV Standard, PVC Luer lock B. Braun Melsungen AG REF 8722960
3-Way stopcock, Dicofix C35C B. Braun Melsungen AG REF 16494 C
Silk 2-0. 3 metric Resorba REF H5F
Vicryl 4-0 Sutupak Ethicon V1224H
NaCl 0.9 % B. Braun Melsungen AG

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Link, W. J., Incropera, F. P., Glover, J. L. A plasma scalpel: comparison of tissue damage and wound healing with electrosurgical and steel scalpels. ArchSurg. 111, 392-397 (1976).
  2. Kwon, A. H., Inui, H., Kamiyama, Y. Successful laparoscopic haemostasis using an argon beam coagulator for blunt traumatic splenic injury. EurJSurg. 167, 316-318 (2001).
  3. Frilling, A., et al. Effectiveness of a new carrier-bound fibrin sealant versus argon beamer as haemostatic agent during liver resection: a randomised prospective trial. Langenbecks ArchSurg. 390, 114-120 (2005).
  4. Raiser, J., Zenker, M. Argon plasma coagulation for open surgical and endoscopic applications: state of the art. J Phys Appl Phys. 39 (16), 3520-3523 (2006).
  5. Farin, G., Grund, K. E. Technology of argon plasma coagulation with particular regard to endoscopic applications. EndoscSurgAllied Technol. 2, 71-77 (1994).
  6. Grund, K. E. Argon plasma coagulation (APC): ballyhoo or breakthrough? Endoscopy. 29, 196-198 (1997).
  7. Glowka, T. R., Standop, J., Paschenda, P., Czaplik, M., Kalff, J. C., Tolba, R. H. Argon and helium plasma coagulation of porcine liver tissue. J Int Med Res. , (2017).
  8. Dowling, R. D., Ochoa, J., Yousem, S. A., Peitzman, A., Udekwu, A. O. Argon beam coagulation is superior to conventional techniques in repair of experimental splenic injury. JTrauma. 31, 717-720 (1991).
  9. Go, P. M., Goodman, G. R., Bruhn, E. W., Hunter, J. G. The argon beam coagulator provides rapid hemostasis of experimental hepatic and splenic hemorrhage in anticoagulated dogs. JTrauma. 31, 1294-1300 (1991).
  10. Brand, C. U., Blum, A., Schlegel, A., Farin, G., Garbe, C. Application of argon plasma coagulation in skin surgery. Dermatology. 197, 152-157 (1998).
  11. Carus, T., Rackebrandt, K. Collateral tissue damage by several types of coagulation (monopolar, bipolar, cold plasma and ultrasonic) in a minimally invasive, perfused liver model. ISRNSurg. , 518924 (2011).
  12. Bludau, M., Vallbohmer, D., Gutschow, C., Holscher, A. H., Schroder, W. Quantitative measurement of gastric mucosal microcirculation using a combined laser Doppler flowmeter and spectrophotometer. DisEsophagus. , (2008).
  13. Beckert, S., Witte, M. B., Konigsrainer, A., Coerper, S. The impact of the Micro-Lightguide O2C for the quantification of tissue ischemia in diabetic foot ulcers. Diabetes Care. 27, 2863-2867 (2004).
  14. Erdogan, D., de Graaf, W., van Gulik, T. M. Adhesive strength of fibrinogen-coated collagen patch or liquid fibrin sealant in an experimental liver resection model in pigs. Eur Surg Res Eur Chir Forsch Rech Chir Eur. 41 (3), 298-302 (2008).
  15. Knobloch, K., et al. Microcirculation of the sternum following harvesting of the left internal mammary artery. ThoracCardiovascSurg. 51, 255-259 (2003).
  16. Kanzler, S., et al. Recommendation for severity assessment following liver resection and liver transplantation in rats: Part I. Lab Anim. 50 (6), 459-467 (2016).
  17. Pehböck, D., Dietrich, H., Klima, G., Paal, P., Lindner, K. H., Wenzel, V. Anesthesia in swine optimizing a laboratory model to optimize translational research. Anaesthesist. 64 (1), 65-70 (2015).
  18. Nykonenko, A., Vávra, P., Zonča, P. Anatomic Peculiarities of Pig and Human Liver. Exp Clin Transplant Off J Middle East Soc Organ Transplant. 15 (1), 21-26 (2017).
  19. Fechner, G., von Pezold, J., Luzar, O., Hauser, S., Tolba, R. H., Müller, S. C. Modified spectrometry (O2C device) of intraoperative microperfusion predicts organ function after kidney transplantation: a pilot study. Transplant Proc. 41 (9), 3575-3579 (2009).
  20. Patterson, E. J., Scudamore, C. H., Owen, D. A., Nagy, A. G., Buczkowski, A. K. Radiofrequency ablation of porcine liver in vivo: effects of blood flow and treatment time on lesion size. AnnSurg. 227, 559-565 (1998).

Tags

Medisin problemet 138 Argon plasma koagulering APC helium plasma koagulering plasma koagulering lever kirurgi svin gris svin
Vurdering av Plasma koagulering på leveren vev i en stor dyremodell <em>i Vivo</em>
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Glowka, T. R., Paschenda, P.,More

Glowka, T. R., Paschenda, P., Czaplik, M., Kalff, J. C., Tolba, R. H. Assessment of Plasma Coagulation on Liver Tissue in a Large Animal Model In Vivo. J. Vis. Exp. (138), e57355, doi:10.3791/57355 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter