Summary
Здесь мы представляем протокол экспериментально оценить плазменной коагуляции в ткани печени в естественных условиях. В модели свинину микроциркуляцию изучается лазера Doppler, глубины коагуляции измеряется гистологически, температура на сайте коагуляции инфракрасный термометр и тепловизора и проток уплотнения эффект подтверждается давление разрыва эксперименты.
Abstract
Плазменной коагуляции в виде электрокоагуляции используется в печени хирургии для Десятилетия для герметизации большой поверхности среза печени после крупных гепатектомии для предотвращения кровоизлияний на более позднем этапе. Точное воздействие плазменной коагуляции на ткани печени только плохо изучены. В нашей модели свинину коагуляции эффекты могут рассматриваться рядом клинического применения. Документы комбинированная лазерно доплеровского расходомера и спектрофотометрические микроциркуляции изменяется во время коагуляции в глубине тканей 8 мм неинвазивно, обеспечивая количественной информации о гемостаза за пределами субъективное впечатление клинических. Температура на сайте коагуляции оценивается с коагуляции предварительного и должность инфракрасный термометр и с помощью тепловизора во время свертывания крови, измерение температуры газа луч не представляется возможным из-за верхний порог устройств. Глубины коагуляции измеряется микроскопически гематоксилином/эозина окрашивали объект-микрометр разделы после калибровки и дает точную информацию о мощности параметр коагуляция глубина отношение. Уплотнительный эффект эффект рассматривается на желчных протоков, как это не возможно для плазменный коагулятор для уплотнения крупных кровеносных сосудов. Всплеск давления эксперименты проводятся, описаны органам исключать кровяного давления воздействия.
Introduction
Аргон плазменной коагуляции (APC) является широко используемым инструментом в абдоминальной хирургии для более чем трех десятилетий1,2. Это стандартный метод для достижения вторичного гемостаза после крупных гепатектомии запечатывая печени вырезать поверхность для предотвращения позднее кровоизлияния3. Плазменной коагуляции является специализированной формой радиочастотного электрокоагуляции, которая обеспечивает электрическую энергию через дугу ионизированного газа. Предоставление монополярной электротермических гемостаз, это бесконтактный метод обладает преимуществом предотвращения электрод прилипает к ткани4. Ионизированный газ луч автоматически направлены к области низких электрического сопротивления и отвернулся когда сопротивление поднимается из-за высыхания в другие районы, еще не сморщившимися. Это производит равномерное ограниченные глубины коагуляции5,6. Факторов, влияющих на свертываемость эффект являются активации время, параметра питания устройства коагуляции и расстояние от датчика до ткани. Гелий является другой газ-носитель, который может быть использован для плазменной коагуляции7. Последние клинические исследования сосредоточены на клинические исходы, вместо того, чтобы выводы гистологические и функциональных3,8,9, во время экспериментальных исследований было сосредоточено на в vitro исследования10 или эксперименты на изолированной перфузии органов11.
Основной протокол позволяет изучение последствий плазменной коагуляции в крупных животных модели недалеко от клинического применения, с использованием стандартного оборудования человека на свиней: микроциркуляции неинвазивно оценивается с помощью лазера доплеровского расходомера и Спектрофотометр, которая является стандартной клинической инструментом для этой индикации12,13. Изменения температуры во время свертывания контролируются с инфракрасный термометр и тепловизора. Глубины коагуляции измеряется на гистологических гематоксилином/эозина окрашенных разделы после сбора образцов ткани. Для сравнения с другими средствами для вторичного гемостаза всплеск давления являются эксперименты. В отличие от ранее описанных методов14, они проводятся на описаны органов исключить кровяного давления воздействия. Помимо описанных расследований на местном воздействии плазменной коагуляции Стандартные анализы крови также может осуществляться в свинину модели.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Соблюдались правила регулируются законодательством Германии для исследования на животных, а также принципы лабораторных животных ухода (национальные институты здравоохранения публикации издание 8, 2011). Официальное разрешение от действующего правительственных ухода за животными (шведским für натур, Umwelt und Verbraucherschutz Nordrhein-Westfalen, Реклингхаузен, Германия).
1. Животные
- Использование женского Немецкий ландрас свиней (весом 25-30 кг) размещается в открытых клетках.
- Используйте 5 животных на группы (аргон, гелий).
- Разрешить животных, чтобы акклиматизироваться к окрестности для по крайней мере за одну неделю до экспериментов. Быстрый животных за 24 ч до операции со свободным доступом к воде.
2. анестезия
- Premedicate животные с внутримышечной инъекции кетамин (15 мг/кг веса тела [Вт]), Ксилазина (10 мг/кг массы тела) и атропина (0,1 мг/кг массы тела) 10 мин до индукции анестезии.
- Периферического венозного доступа устанавливается путем размещения 22-го калибра катетер в Вену уха.
- Вызвать общий наркоз, и.в. введения пропофола 2 мг/кг веса тела.
- Поместите животное в лежачем положении и выполняют продольный разрез в шейных паз над длиной 2 см. найти вену через тупым подготовки подкожной клетчатки. Вставьте канюлю, затем Seldinger проволоки.
- Убрать канюли и вставьте 14 отец катетер через проволочный направитель. Убрать проволочный направитель. Подключите катетер для модуля и фиксировать катетер ремень или шва.
- Вытяните язык и вставьте прямо Ларингоскоп. Используйте кончик Ларингоскоп тянуть вниз надгортанник. Вставьте трубку через голосовые связки. Поместите манжету под глотки и надуть.
- Проветрите с 40% кислорода на 20-26 вдохов/мин и дыхательный объем 10 мл/кг держать конца Приливные частичной углерода диоксида напряженность между 36 и 42 мм ртутного столба.
- Поддержание анестезии с изофлюрановая в концентрации 1-1,5% и фентанила в концентрации 3-4 мкг/кг/ч.
- Поставка раствора рингера лактата с начальной скоростью 4 мл/кг/ч и увеличить после лапаротомии для скорости постоянной инфузии 8 мл/кг/ч.
3. хирургии и плазменной коагуляции
- Место животного в лежачем положении на стандартной хирургической таблицы.
- Дезинфекция кожи путем применения стандартных хирургических дезинфицирующего средства (2-пропанол 45 г/100 г, 1-Пропанол 10 г/100 г, дифенил-2-ол 0,2 г/100 г) хирургические тампоном 3 раза.
- Выполняют широкий срединная лапаротомия от мечевидного отростка до лобка с помощью скальпеля и установить Ретракторы хирургические.
- Включите устройство, плазменной коагуляции, открыть бутылку газ аргон или гелий, в зависимости от используемых перевозчик газ. Отрегулируйте поток газа до 3 Л/мин выберите коагуляции устройства выходной мощности по желанию.
Примечание: Оба благородные газы, аргона или гелия, может использоваться для плазменной коагуляции. Коагуляция эффекты являются сопоставимыми. Смотрите7 ссылка для деталей. - В ранее описанных7выполните плазменной коагуляции на левой доли печени. Используйте формы титана (квадратное отверстие 1 x 1 см2) для стандартизации зоне коагуляции. Коагулировать 5 s с расстоянием зонд 1 см. Коагуляции с различной мощности настройки могут быть выполнены параллельно короткое расстояние между коагуляции 5 мм (рис. 1).
- Для уборки в печени, разделите все связочного подключения к печени. Изолировать и разделить печеночная ножке выше Улучшенный изгиб двенадцатиперстной кишки, оставив длинные части воротной вены и общего желчного протока. Разделите caval Вену выше и ниже печени и получить орган.
- После сбора урожая в печени, свиней были умерщвлены и.в. администрацией Пентобарбитал 0,16 г/кг массы тела.
- Для экспериментов всплеск давления иссечения половины левой медиальной печени доли с острыми ножницами. Плазменной коагуляции разрез поверхности (Выходная мощность 100Вт) или уплотнением поверхности среза с фибринового герметика (рис. 2).
4. микроциркуляции измерения
Примечание: Лазерная доплеровская спектроскопия можно определить поток крови в ткани через измерения доплеровского сдвига, вызванных движением эритроцитов. Лазерный сигнал коррелирует с числом движущихся эритроцитов. Доплеровская спектроскопия лазера используется в клинических (например трансплантации медицины) и был проверен несколько раз15.
- Включите лазер доплеровского расходомера и спектрофотометра. Используйте плоский зонд.
- Возьмите базовые измерения потока и скорости. Сохраните или запишите значения.
- Выполняют коагуляцию как описано меньше 3.5 голов.
- Место плоский зонд на сайтах коагуляции и измерения расхода и скорости. Опять же сохранить или запишите значения.
- Повторите для всех параметров питания коагулятор устройства.
5. Измерение температуры
- Переключение системы на (тепловизора, ноутбук и инфракрасный термометр) и пусть он баллотироваться на по крайней мере 1 час перед выполнением измерений.
- Отрегулируйте фокус и просмотр кадра на тепловизора на сайте коагуляции. Инфракрасная последовательности могут быть обнаружены с пространственным разрешением 1024 x 768 пикселей с разрешением температура больше чем 20 МК. Принимать во внимание, что регион коагуляции и окружающие ткани — пострадавших от передачи тепла — расположен в центре представления.
Примечание: Она должна включать как много пикселей кадра как можно для оптимального пространственного разрешения. - Запись процесса коагуляции с плазменный коагулятор на поверхности печени с тепловизора в течение 2 мин.
- Анализ последовательности изображений с помощью программного обеспечения анализа термография: определение областей, представляющих интерес.
Примечание: Программное обеспечение вычисляет курс соответствующей температуры с течением времени.
6. измерения глубины коагуляции
- Урожай левой медиальной печени доли с острыми ножницами.
- Акцизный коагуляции сайты с толщиной 1 см. Разрежьте на 3 мм толщиной продольной сегментов для дальнейшей обработки.
- Образцы тканей исправить на 4 ° C на ночь с нейтральным 10% буферизации формалин. Тепла 2 ° C выше точки плавления парафина и вставлять фрагменты. Процесс на ночь.
- Выполните гематоксилином/эозином.
- Deparaffinize и гидрата ткани впоследствии окунания в 2 x ксилол, 100% этанола (EtOH), 95% EtOH, 70% EtOH, деионизированную H2O 2 мин.
- Пятно образца ткани раствором гематоксилином Мейера за 3 мин.
- Теперь промойте в проточной воде в течение 5 мин.
- Окрашивать ткани раствором эозина 3 мин.
- Промыть в 2 x EtOH 95%, а затем ксилол, 3 мин. Крепление с стандартной монтажной среды.
- Переключение системы на (микроскоп подключенной камеры, изображения программное обеспечение). Посмотреть все секции с 40 кратном.
- Возьмите изображения объекта микрометра с увеличением 40 X. Нажмите кнопку калибровки в окне цели. Выберите ручной калибровки. Нарисуйте линию на изображении микрометра 100 µm. Ввод 0,1 мм в диалоговом окне и нажмите кнопку ОК.
- Выберите длину в представлении > анализ управления > окно аннотации и измерения. Измерьте расстояние от поверхности печени для коагуляции разницы с помощью мыши. Экспорт или отметить результат. Повторите измерение в другом месте на тот же слайд.
Примечание: Глубины коагуляции легко может быть продифференцированным от нормальной ткани печени острый разницы между шнуры нормальных гепатоцитов и зоны некроза усохшие цитоплазмы, pyknotic ядер и кровоизлияние зон. - Вычислите среднее из двух измерений.
7. взрыв измерение давления
- Переключение системы на (автоматические насосы, измеритель давления). Подготовка пробы печени согласно шаг 3.7.
Примечание: Используйте две параллельные насосы, подключен через 3-способ краном. Максимальное давление 1500 мм Hg не могут быть получены с одним насосом. - Изолируйте воротной вены, общих печеночной артерии и желчных протоков с ножницами в тактильной ножке. Зажим воротной вены с щипцами overholt и перевязать с швом монофил 4-0. Зажим общих печеночная артерия overholt щипцами и перевязать с швом монофил 4-0.
- Вставить катетер Ch-16 в общего желчного протока и перевязать с шелковой швом 2-0. Подключите катетер к автоматические насосы, установки 3-ходовой кран с измеритель давления (рис. 3).
- Заполните шприц перфузии физиологического раствора.
- Запустите автоматические насосы с скорость доставки 99 мл/ч.
- Контролировать печени вырезать поверхность и давление метр для утечки и запись давления разрыва.
Примечание: Для легче признания утечки, патент голубой могут добавляться в солевой раствор (2 мл патентных синий + 18 мл физиологического раствора). Это проще соблюдать давление разрыва, заметив время потери давления на измеритель давления.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Микроциркуляции: Использованием диагностических устройств для гемостаза после плазменной коагуляции может быть продемонстрирована изменения микроциркуляции. Капиллярной крови уменьшается поток (отображается как условные единицы (AU)) из базового значения 142.7 ± 76.08 AU 57.78 ± 49,57 AU на 25 W устройства выходной мощности, 48,5 ± 7.26 AU на 50 Вт и 5.04 ± 1.31 AU на 100 W (рис. 4).
Температуры: Температура на участках коагуляции измерялась с помощью тепловизора (рис. 5). Изменения только незначительные температуры были задокументированы с инфракрасный термометр. Он показал базовой температуры 32.42 ± 2,27 ° C. После коагуляции с 25 Вт, температура была 33.33 ± 1,81 ° C. Коагуляцию лазером 50 W принесли температуре 31.17 ± 2.13 ° C. После коагуляции с параметром максимальная мощность 100 Вт Температура в основном неизменным с 30.17 ± 3.19 ° C (рис. 6).
Коагуляция глубина: Плазменной коагуляции создает зону поверхностного некроза с может быть легко отличить от обычных паренхимы печени (рис. 7). Глубины некроза может быть измерена в несколько разделов и показывает не полностью линейный рост с ростом уровня мощности плазменный коагулятор. После гелия плазменной коагуляции глубина свертывания крови является 230.2 ± 57.83µm на 25Вт, 314.6 ± 87.39 мкм на 50 Вт, 292,2 ± 45.65 мкм на 75W и 412.9 ± 160.9 мкм на устройство Выходная мощность 100 Ватт (рис. 8). Выходная мощность устройства может быть выбрано свободно и выбрал положительную корреляцию с глубины коагуляции7.
Разрывное внутреннее давление: Всплеск давления измерения проводились на поверхности среза описаны левой медиальной печени доли показывает никакой разницы после гелия (1254±578.7 мм.рт.ст.) или аргон (1003 ± 554.4 mmHg) плазменной коагуляции (рис. 9). Давление разрыва ниже по сравнению с фибрином герметики7 но кажется подходящим для клинического использования.
Рисунок 1: левой медиальной печени доли после аргон плазменной коагуляции. Восемь коагуляции сайты на левой медиальной печени доли (сверху слева внизу справа: 10 Вт, 15 Вт, 20 Вт, 25 Вт, 30 Вт, 50 Вт, 75 Вт, 100 Вт). Степень коагуляции, стандартизированных с плесенью. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: подготовка печени трансплантата для измерений давления разрыва. Половина из печени доли резецируется, и печени поверхности среза опечатаны с фибринового герметика. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3: Оборудование для измерения давления разрыва. Автоматический насос (шприц заполнены соленой) и измеритель давления подключен через 3-способ краном. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4: изменения микроциркуляции. Изменения в кровоток (отображается как условные единицы) до и после аргон плазменной коагуляции в 25 Вт, мощность 50 Вт и 100 Вт устройства (n = 3-6). * = P< 0,05, 1-полосная ANOVA. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 5: температура на участках коагуляции, измеренная с помощью тепловизора. Образцовое картина с тепловизора во время гелия плазменной коагуляции с выходной мощностью 40W устройства. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 6: температура на участках коагуляции, измеренная с инфракрасный термометр. Измеряемая температура на участках коагуляции с инфракрасный термометр до и после свертывания плазмы аргона (n = 3-6). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 7: зона поверхностный некроз, после гелия плазменной коагуляции. Гематоксилином/эозина витражи печени секции в 40 кратном. Зоны некроза показывает потерю гепатоцитов шнур архитектуры, клетки с усохшие цитоплазмы и кровоизлияние зон. Стрелки указывают глубины коагуляции в двух разных местах. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 8: глубина свертывания крови после гелия плазменной коагуляции. Глубины коагуляции на различных уровнях (25Вт, 50Вт, 75W и 100Вт, n = 6). * = P< 0,05, *** = P< 0,001, 1-полосная ANOVA. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 9: давление разрыва. Лопнул измерения давления на поверхности печени отрезока, после аргон или гелий плазменной коагуляции. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 10: результаты теста крови. Выбранные параметры клинической биохимии и крови газа, приведены результаты до и следующие аргон плазменной коагуляции. Не значительные изменения происходят, демонстрируя эффекты плазменной коагуляции, ограничиваясь локальных изменений на сайте коагуляции. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Для долгое время16устанавливаются грызунов модели для хирургии печени. Тем не менее, большие животные модели предлагают определенные преимущества: не микрохирургической техники требуется как стандартные постановляющей части оборудования для людей может быть применен, хирургические методы сопоставимы с клинического использования и методы стандартной клинической оценки может быть переведен в экспериментах. Например стандартные клинические анализы крови может осуществляться без необходимости в специальных лабораторных методов испытаний (Рисунок 10).
Свиней, соответствующих лабораторных животных для кардиореспираторной исследований их физиологии напоминает человека17. Из-за сходства в размер, сегментарный структуры и гистологии свиньи также являются одним из стандартных лабораторных животных для экспериментальной хирургии печени18. Плазменной коагуляции оценивалась в свинину модели из-за преимущества (сходство физиологии человека и оценки стандартных клинических оборудования)7. В отличие от хирургические методы нельзя легко экстраполировать anesthesiologic управления. Особенно дыхательных путей управления может быть трудно17. Расстояние от резцов до глотки очень длинный и анатомии разных людей, затрудняя orotracheal интубация для неопытных исследователь. Кроме того маска вентиляции практически невозможно в свиней, так что бабло стратегии (например, трахеостомические) должны присутствовать.
Для достижения сопоставимых результатов в плазменной коагуляции, исследователь строго следует принять внимание стандартизации зонд расстояние и продолжительность коагуляции. Хотя это относительно легко поддерживать расстояние зонд, секундомер может использоваться для подсчета 5 s коагуляции. Описан метод плазменной коагуляции на поверхности печени был использован в фундаментальных исследований на основные эффекты плазменной коагуляции в печени в vivo7. Описанные выше методы анестезии, хирургии и плазменной коагуляции свиней может использоваться также для изучения основных резекции печени и для сравнения различных методов резки поверхности, после запечатывания.
Лазер доплеровского расходомера и спектрофотометра для измерений микроциркуляции Стандартный клинический инструмент19 и оказалась весьма полезной для оценки обращения непосредственно в паренхиме органа. С преимуществом не invasivity вычисляются значения для потока крови и скорости кровотока. Микроциркуляции параметры являются только косвенные меры коагуляционного эффекта, поэтому доплеровского измерения должны быть соотнесены с объективных параметров для коагуляции. В наших экспериментах мы использовали гистологические коагуляции глубины для корреляции.
Недостатком измерения температуры является невозможность для измерения температуры плазмы луча во время свертывания крови, потому что температура плазмы луч выше верхнего порога обоих устройств. Инфракрасный термометр легко применять, в то время как установки термографические камеры является более сложным, но обеспечивает более точные данные. Базовой температуры до коагуляции ниже, чем ожидалось (свинину тела температуры ~38.5 ° C17), демонстрируя разрушительное воздействие лапаротомия на температуру тела. Измеренная температура не повышается во время и после свертывания, демонстрируя отличные перфузии печени. Этот тепловой эффект краже печени известен с радиочастотной абляции20. Всплеск давления управления были проведены в системе желчных протоков, а не на печени судов по одной простой причине: это невозможно для Плазменные Коагуляторы (как это для герметиков фибрина) для уплотнения более крупных судов. Оба средства вторичного гемостаза уплотнение поверхности среза резецированный органа, в то время как более крупные суда лигируют во время резекции. Наши эксперименты взрыв давления были слегка изменен по сравнению с сообщил технику14. Мы измерили давление разрыва на описаны органов по организационным причинам. Эти правила вне кровяного давления эффекты и гораздо проще применять, чем использовать увлажненную или органов в vivo . Значения давления, эксперименты могут таким образом, существенно отличаются от увлажненную /в vivo измерений из-за изменения печени структуры (обычно более высокое давление на органы описаны). Выше всплеск давления техника также может быть выполненной в vivo.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не имеют ничего сообщать.
Acknowledgments
Авторы имеют без подтверждений.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Xylazine 20 mg/mL | Vetoquinol GmbH | Xylapan | |
| Ketamine 100 mg/mL | Ceva GmbH | Ceva Ketamine Injection | |
| Atropine 100 mg / 10 mL | Dr. Franz Köhler Chemie GmbH | Atropinsulfat Köhler 100mg Amp. | |
| Propofol | Fresenius Kabi GmbH | Propofol 1% MCT Fresenius | |
| Fentanyl | KG Rotexmedica GmbH | Fentanyl 0,5mg Rotexmedica | |
| Isoflurane | Abbot GmbH | Forene 100% (V/V) 250 mL | |
| Ringer's lactate solution | Baxter Deutschland GmbH | sodium 131mmol/l, potassium 5 mmol/l, calcium 2 mmol/l, cloride 111 mmol/l, lactate 29 mmol/l | |
| Surgical disinfactant | Schülke & Mayr GmbH | Kodan Tinktur forte gefärbt 1l 104804 | |
| Motorized microscope | Nikon Instruments Europe | Eclipse TE2000-E | |
| Microscope camera | Nikon Instruments Europe | Digitalsight DS-Qi1Mc | |
| Imaging software | Nikon Instruments Europe | NIS elements Vers. 4.40 | |
| Plasma coagulator | Söring GmbH | CPC-1000 | |
| Argon gas | Linde AG | Argon 4.8 | |
| Helium gas | Linde AG | Helium 4.8 | |
| O2C | LEA Medizintechnik GmbH | O2C Version 1212 | with LF-2 or LF-3 probe |
| Infrared thermometer | Voltcraft | VOLTCRAFT IR 260-8S | |
| Thermographic camera | InfraTec GmbH | VarioCAM HD head 820 | |
| Thermographic analysis software | InfraTec GmbH | IRBIS 3 | |
| Mayer's Hematoxylin solution | Merck 1.09249 | ||
| Eosin solution | VWR International GmbH | Merck 1.09844 | |
| Rollerpump Masterflex L/S easy Load | Cole-Parmer Instrument Company | model 7518-10 | |
| Perfusorpump | B. Braun Melsungen AG | Perfusor secura FT | |
| Digital pressure meter | Greisinger electronic | GMH 3161 | |
| Perfusorsyringe, 50 mL | B. Braun Melsungen AG | REF 8728810 F | |
| Perfusor line, Type IV Standard, PVC Luer lock | B. Braun Melsungen AG | REF 8722960 | |
| 3-Way stopcock, Dicofix C35C | B. Braun Melsungen AG | REF 16494 C | |
| Silk 2-0. 3 metric | Resorba | REF H5F | |
| Vicryl 4-0 Sutupak | Ethicon | V1224H | |
| NaCl 0.9 % | B. Braun Melsungen AG |
References
- Link, W. J., Incropera, F. P., Glover, J. L. A plasma scalpel: comparison of tissue damage and wound healing with electrosurgical and steel scalpels. ArchSurg. 111, 392-397 (1976).
- Kwon, A. H., Inui, H., Kamiyama, Y. Successful laparoscopic haemostasis using an argon beam coagulator for blunt traumatic splenic injury. EurJSurg. 167, 316-318 (2001).
- Frilling, A., et al. Effectiveness of a new carrier-bound fibrin sealant versus argon beamer as haemostatic agent during liver resection: a randomised prospective trial. Langenbecks ArchSurg. 390, 114-120 (2005).
- Raiser, J., Zenker, M. Argon plasma coagulation for open surgical and endoscopic applications: state of the art. J Phys Appl Phys. 39 (16), 3520-3523 (2006).
- Farin, G., Grund, K. E. Technology of argon plasma coagulation with particular regard to endoscopic applications. EndoscSurgAllied Technol. 2, 71-77 (1994).
- Grund, K. E. Argon plasma coagulation (APC): ballyhoo or breakthrough? Endoscopy. 29, 196-198 (1997).
- Glowka, T. R., Standop, J., Paschenda, P., Czaplik, M., Kalff, J. C., Tolba, R. H. Argon and helium plasma coagulation of porcine liver tissue. J Int Med Res. , (2017).
- Dowling, R. D., Ochoa, J., Yousem, S. A., Peitzman, A., Udekwu, A. O. Argon beam coagulation is superior to conventional techniques in repair of experimental splenic injury. JTrauma. 31, 717-720 (1991).
- Go, P. M., Goodman, G. R., Bruhn, E. W., Hunter, J. G. The argon beam coagulator provides rapid hemostasis of experimental hepatic and splenic hemorrhage in anticoagulated dogs. JTrauma. 31, 1294-1300 (1991).
- Brand, C. U., Blum, A., Schlegel, A., Farin, G., Garbe, C. Application of argon plasma coagulation in skin surgery. Dermatology. 197, 152-157 (1998).
- Carus, T., Rackebrandt, K. Collateral tissue damage by several types of coagulation (monopolar, bipolar, cold plasma and ultrasonic) in a minimally invasive, perfused liver model. ISRNSurg. , 518924 (2011).
- Bludau, M., Vallbohmer, D., Gutschow, C., Holscher, A. H., Schroder, W. Quantitative measurement of gastric mucosal microcirculation using a combined laser Doppler flowmeter and spectrophotometer. DisEsophagus. , (2008).
- Beckert, S., Witte, M. B., Konigsrainer, A., Coerper, S. The impact of the Micro-Lightguide O2C for the quantification of tissue ischemia in diabetic foot ulcers. Diabetes Care. 27, 2863-2867 (2004).
- Erdogan, D., de Graaf, W., van Gulik, T. M. Adhesive strength of fibrinogen-coated collagen patch or liquid fibrin sealant in an experimental liver resection model in pigs. Eur Surg Res Eur Chir Forsch Rech Chir Eur. 41 (3), 298-302 (2008).
- Knobloch, K., et al. Microcirculation of the sternum following harvesting of the left internal mammary artery. ThoracCardiovascSurg. 51, 255-259 (2003).
- Kanzler, S., et al. Recommendation for severity assessment following liver resection and liver transplantation in rats: Part I. Lab Anim. 50 (6), 459-467 (2016).
- Pehböck, D., Dietrich, H., Klima, G., Paal, P., Lindner, K. H., Wenzel, V. Anesthesia in swine optimizing a laboratory model to optimize translational research. Anaesthesist. 64 (1), 65-70 (2015).
- Nykonenko, A., Vávra, P., Zonča, P. Anatomic Peculiarities of Pig and Human Liver. Exp Clin Transplant Off J Middle East Soc Organ Transplant. 15 (1), 21-26 (2017).
- Fechner, G., von Pezold, J., Luzar, O., Hauser, S., Tolba, R. H., Müller, S. C. Modified spectrometry (O2C device) of intraoperative microperfusion predicts organ function after kidney transplantation: a pilot study. Transplant Proc. 41 (9), 3575-3579 (2009).
- Patterson, E. J., Scudamore, C. H., Owen, D. A., Nagy, A. G., Buczkowski, A. K. Radiofrequency ablation of porcine liver in vivo: effects of blood flow and treatment time on lesion size. AnnSurg. 227, 559-565 (1998).
