Summary
여기, 선물이 3D 문화와 제 브라를 사용 하 여 항 암 제 coumarins의 전 임상 심사.
Abstract
생체 외에서 그리고 vivo에서 새로운 치료제의 전 임상 심사 암 약물 발견에 필수적인 도구입니다. 비록 인간의 암 세포 선 2 차원 (차원) 단층 세포 배양에서 치료 화합물에 대응, 더 순수 관련 모델에서 약물의 효능을 이해 하 3 차원 배양 시스템 개발 되었다. 최근 몇 년 동안, 패러다임의 변화는 3D 문화 시스템, 더 정확 하 게 종양 microenvironment를 흉내 낸 새로운 분자의 힘을 확인 하기 위해 전 임상 연구에서 관찰 되었다. 이러한 시스템 보다 생리 적으로 관련 된 방식으로 질병 상태를 특성화 하 고 더 나은 기계적 통찰력 및 주어진된 분자의 약리 효능을 이해 하는 데 도움이. 또한, 암 모델 vivo에서 개선 추세와 함께 zebrafish vivo에서 종양의 형성을 평가 하 고 치료제의 효과 연구 하는 중요 한 척추 모델로 떠오르고 있다. 여기, 우리 조사 hydroxycoumarin OT48의 치료 효능 하거나 폐 암 세포 라인 A549 BH3 mimetics와 함께 식민지 대형 분석 실험 (CFA), 회전 타원 체 형성 분석 결과 (SFA) 등 세 가지 다른 3D 문화 시스템을 사용 하 여 및 zebrafish xenografts vivo에서 .
Introduction
암은 세포 돌연변이 의해 발생 하 고 결과적으로 생 화 확 적인 신호 경로 통제 세포 분열 및 세포 죽음에 저항을 트리거링 혼란 된다. 종양 소화, 신경, 순환 시스템 및 이후에 이웃 조직1의 생리 기능을 방해합니다. 광범위 한 연구 노력에도 불구 하 고 암2세계 가장 널리 퍼진 생명이 질병에 남아 있다. 정밀 의학 미래 암 치료의 기초로 인식 하고있다. 임상 결과 개선 하기 위해 기존 약물과 함께에서 새로운 분자 엔티티를 정기적으로 테스트 합니다.
그러나, 새로운 효율적인 표적으로 한 치료의 개발과 관련 된 중요 한 제한 중 약물 노출3의 정확한 생물 학적 결과 시뮬레이션 하기 위해 일반적으로 사용 되는 분석의 실패 이다. 암 약물 발견 여전히 대부분 암 세포 선에서4임상 시험 확인 하기 어려운 차원 단층 문화에서 교양 치료제의 효능을 테스트에 의존 합니다. 따라서, 더 나은 종양 vivo에서5의 기본 기능을 모방 하는 더 나은 암 모델을 개발 하는 관심이 있다. 최근 몇 년 동안, 3D 문화 모델에 증가 관심 3D 종양 모델5생산 향상된 방법론의 개발에 결과.
여기, 우리는 깊이 비보에 분석 실험에 함께 더 전에 BH3 mimetics hydroxycoumarin OT486 의 힘의 이해를 향상 시킬 수 있도록 세 개의 다른 3D 셀 문화 기술로 접근을 제시. 우리의 방법은 식민지 및 SFAs는 vivo에서 종양 형성에 따라 검사 추가 폐 암 세포에서 OT48 및 BH3 mimetics의 조합의 효능을 확인 하 고 생활에서 암 진행 모니터링 zebrafish 모델에 결합의 구성 유기 체입니다.
식민지 대형 분석 실험 정기적으로 모두 고체 뿐만 아니라 조 혈 암에 대 한 항 암 제의 효능을 평가 하는 데 사용 됩니다. 분석 결과 무한정 증식 하 고 식민지7을 형성 하는 세포의 능력을 결정 합니다. 셀의 능력을 형성 하는 식민지에는 항 암 제의 효과 수의 감소 및 식민지의 크기에 의해 결정 됩니다.
Spheroids 종양 모델 생체 외에서 나타내고 제 에이전트는 저가 심사 플랫폼 역할. Spheroids는에 성장 하는 셀의 집계 또는 3D 매트릭스에 포함 된. 이 접근은 마약 검사 및 종양 성장, 확산 및 면역 상호 작용8의 연구에 널리 사용 됩니다.
완전히 새로운 약물의 속성 이해, vivo에서 실험 설치류에 필수적 이다. 그러나,이 전통적인 메서드는 비용과 시간이 소요 됩니다. 최근 몇 년 동안, zebrafish (Danio rerio) 널리 공부 실험실 유기 체를 저렴 하 고 빠르게 인상 되었다. 종양은 zebrafish 대표 3D 셀 문화 접근에서 하지만 척추9의 vivo에서 설정 내에서 개발.
전부, 사용 여기 CFAs, SFAs zebrafish vivo에서 종양 형성 등 3 가지 3D 문화 접근 BH3 mimetics 함께에서 폐 암 A549 세포 모델에서 hydroxycoumarin OT48의 항 암 제 용량을 설명 합니다.
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Protocol
1. 식민지 대형 분석 실험
- 20000 셀/cm2 RPMI1640의 15 ml에서의 농도에서 문화 A549 세포 세포 배양 10 보충 %FBS (태아 둔감 한 혈 청)과 37 ° C, 5% CO2CO2 배양 기에서 75 c m2 플라스 크에 1% 항생제.
- 실험의 날에는 hemocytometer를 사용 하 여 셀 농도 결정 합니다. 1.5 mL microcentrifuge 튜브에서 7 분 400 x g 에서 원심 분리 하 여 50, 000 셀을 수집 하 고 다시 1 x 살 균 PBS (인산 염 버퍼) 1.5 mL 튜브에의 100 µ L에서 세포를 일시 중단.
- multipipette와 함께 15 mL 튜브에서 반 고체 스 기반 매체 (MCBM)의 1.1 mL을 분배. 각 조건에 대 한 튜브를 준비 합니다.
- P200 micropipette를 사용 하 여 MCBM의 1.1 ml FBS의 110 µ L를 추가 합니다.
- 1, 000 셀/mL에서 씨앗 셀입니다. 재고 솔루션 (50000 셀 1 x PBS의 100 µ L)에서 2.4 µ L 세포 현 탁 액의 수집 P2 micropipette 사용 하 고 10% 보충 하는 MCBM의 1.1 mL에 추가 FBS.
- 셀, 추가한 후 소용돌이 MCBM와 셀을 잘 혼합 하 최고 속도로 그들을 수직으로 잡고 1 분에 대 한 관.
- 테스트 화합물 (OT48 혼자 또는 조합에서 A1210477으로)을 추가 합니다. 제어로 별도 튜브 준비 용 매 사용에 대 한 (여기 디 메 틸 sulfoxide (DMSO)). 각 조건에 대 한 추가 볼륨과 화합물의 농도 따라 용 컨트롤 용 매 화합물, 테스트의 희석에 대 한 사용 하는 용 매로 인 한 부작용에 대 한 평가의 가장 높은 농도 포함 됩니다.
- 1 분 동안 소용돌이 튜브.
- 각 분석 결과 대 한 12 음 셀 문화 접시의 센터 P1000 micropipette와 혼합물의 1 mL를 추가 합니다.
- 살 균 물의 1 mL와 함께 빈 우물 또는 습도 안정 시키기 위해 1 x PBS를 채우십시오.
- 37 ° C, 5% CO2배양 기에서 10 일 동안 배양 배지를 품 어.
- 10 일 후 부 화, 각 잘 1 mg/mL의 최종 농도 도달 하는 MTT (methylthiazolyldiphenyl tetrazolium 브 로마 이드) 재고 솔루션 (5 mg/mL)의 200 µ L를 추가 합니다.
- 37 ° C, 5% CO2배양 기에서 10 분을 품 어. 실행 가능한 식민지 바뀝니다 바이올렛.
- 흰색 배경 플레이트 (라스 화이트 디 아 트레이)를 사용 하 여 디지털 카메라를 사용 하 여 이미지를 캡처하십시오. 다음 설정을 사용 합니다: 방법, 디지털화; 노출 유형, 정밀; 노출 시간, 수동, 1 초; 감도/해상도, 높은 해상도입니다. Tiff 형식에 이미지를 저장 합니다.
- ImageJ 소프트웨어를 사용 하 여 가능한 식민지를 계량. 선택 메뉴 "이미지 | 유형 | 8 비트 "입니다. 선택 메뉴 "조정 | 임계값 "입니다. 제어 임계값을 설정 하 고 모든 조건;에 대 한 일정 하 게 유지 선택 메뉴 "분석 | 입자 분석 ". 데이터를 저장 하 고 그래픽 표현에 대 한 통계 소프트웨어와 분석.
2. 회전 타원 체 형성 분석 결과
- 10 %FBS 1% 항생제로 보충 RPMI 1640 매체의 15 mL와 75 c m2 플라스 크에 20000 셀/c m2 의 농도에 문화 A549 세포.
- 실험 당일 준비는 96 U-바닥판 잘.
- 이미 관심 (여기 50 µ M OT48) 및 A1210477의 20 µ M의 화합물을 포함 하는 우물으로 접시 10, 000 셀입니다. 세포 배양의 100 µ L 최종 볼륨을 조정 합니다. 그대로 외부 경계와 균일 한 spheroids를 형성 하는 세포의 수는 양식 spheroids에 적절 한 간주 됩니다.
- 37 ° C, 5% CO2에 인큐베이터에서 3 일 동안 품 어.
- 3 일 후 부 화, 4 x 확대와 함께 가벼운 현미경을 사용 하 여 spheroids의 이미지를 캡처하십시오.
3. 제 브라가 종이 식 분석 결과
참고:이 기술 접근 회로도 (그림 1)으로 시각 이다.
-
재고 시 약의 준비
- Danieau의 솔루션 x 30의 1 리터를 준비: 1740 mM NaCl, 21 m KCl m, 12 mM MgSO4∙7H2O, 18 m m Ca (3)2및 150 mM HEPES. 7.6 pH 미터를 사용 하 여 버퍼의 pH를 조정 합니다.
- 1% (50 x) tricaine 솔루션 준비: 20mg 에틸 3-aminobenzoate methanesulfonate (tricaine) 2 mL의 증류수에 녹.
- 1% 페 놀 레드-PBS 솔루션 준비: 198 µ L의 1.5 µ L 튜브의 소독된 PBS 솔루션 들을 페 놀 레드 나트륨 소금 솔루션의 추가 2 µ L.
- 3% 스 준비: Danieau의 솔루션 x 1의 100 mL에 스의 3 세대를 추가.
-
Zebrafish 계란 생산 및 부 화
- 별도 한 여성 및 파티션 탱크에 한 남성 zebrafish 어둠 속에서 28.5 ° C에서 UV 살 균 및 필터링 된 수돗물으로 가득합니다. 분리의 24 h 후 물고기 짝짓기를 시작 하는 두 남녀의 혼합. 짝짓기 탱크의 수정 된 난 자 신선한 Danieau 솔루션의 5 mL를 포함 하는 배양 접시에 전송.
- 세 번 Danieau의 솔루션의 5 mL와 함께 계란을 세척. 세척, 피 펫 및 신선한 솔루션의 5 mL에 계란을 발음 신중 하 게. 8 h 28.5 ° c.에 대 한 품 어
- Danieau의 솔루션에 외피의 8 h 후 0.03 %1-페 닐-2-thiourea 착 색을 억제 (PTU)를 포함 하는 Danieau의 솔루션을 변경 합니다. 오염을 방지 하기 위해 불투명 계란 (unfertilized 또는 포함 미 개발된 태아) 밖으로 정렬.
-
태아 dechorionation
- 24 시간 수정 (hpf), dechorionate zebrafish 태아 날카로운 집게를 사용 하 여 게시할 수 있습니다. 0.03 %Danieau 솔루션에서 해칭 태아를 품 어 48까지 28.5 ° C에서 통해 hpf.
-
복합 치료 세포 준비
- 20000 셀/cm2 25 cm2 문화 플라스 크 씨 A549 세포. 뿌리기의 24 h 후 추가 화합물 (50 µ M에서 여기 OT48 및 또는 20 µ M에서 A1210477) 37 ° C, 5% CO2배양 기에서 24 h에 대 한. 하지만 세포 죽음으로 그들을 저지 하는 세포의 생존 능력을 유지 하기 위해 각 화합물에 대 한 치료 시간을 설정 합니다. 이 시간은 개별적으로 설정 해야 포인트 기준 세포 생존 능력, 형태학 및 분자 마커.
- 치료의 끝 전에 2 h, 얼룩 세포 형광 셀 추적기의 4 µ M로 37 ° C, 5% CO2CM Dil 염료. 외피의 2 시간 후 0.05% 트립 신-EDTA, 셀 trypsinize 그리고 106 세포 주입 전에 페 놀 레드-PBS 솔루션의 50 µ L 희석.
-
이 종이 식 형성에 대 한 암 세포의 마이크로 주입
- 그들은 한 접시에 정착 될 때까지 5 분 0.02 %tricaine 솔루션에서 zebrafish를 anesthetize.
- (외부 직경 (OD) 유리 모 세관) 1.0 m m는 micropipette 끌어당기는 당겨 (설정 프로그램: p: 300, 열: 260, 당겨: 60, 벨: 50, 및 시간: 200). 주사기는 날카로운 가장자리를 생산 하는 microcapillary를 잘라. 로드 셀/페 놀 레드의 20 µ L 함께 microcapillaries-PBS 솔루션. 사출 압력을 설정 하 고 하는 걸 2 시간 주입 당 nL.
- 주사 6 ~ 10 여 른 골목에 100-200 셀 주사 3 ~ 5 주사 통해 nL. 주입 후 물고기를 통해 솔루션을 포함 하는 신선한 Danieau 솔루션의 5 mL에 10 ~ 30 분에 대 한 복구할 수 있습니다. 디스패치 통해 솔루션을 포함 하는 Danieau의 솔루션의 1 mL 24-잘 접시에는 생선과 28.5 ° c.에서 72 h에 대 한 품 어
- 외피의 72 h 후 물고기 0.02 %tricaine 솔루션에서 anesthetize 고 스 3%의 하락을 가진 유리 슬라이드에 고정. 620 750의 파장에서 형광 현미경 검사 법에 의해 5 x 사진을 찍어 nm.
- ImageJ 소프트웨어에 의해 형광 종양의 크기를 계량. 선택 메뉴 "분석 | 측정 "입니다. 형광 신호에 해당 하는 값을 저장 하 고 그래픽 표현에 대 한 통계 소프트웨어와 분석.
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Representative Results
그림 2, 폐암 A549 했다 시드 MCBM에서 식민지를 형성 하 OT48와 치료 후 또는 표시 농도에서 BH3 모방 A1210477와 선 세포. 결과 조합 크게 감소 번호, 크기 및 식민지의 총 면적 외피의 10 일 후에 나타났다.
그림 3에서는 A549 세포 BH3 모방 A1210477와 혼자 또는 조합에서 OT48로 치료 했다 고 양식 spheroids U-하단 플레이트 기술에 의해 허용 되었다. 3 일 후 부 화, spheroids의 이미지 촬영 했다. spheroids의 정량화 이루어졌다 이미지 J 및 3D를 사용 하 여 이미지 생성 된.
그림 4, A459 셀 하거나 BH3 24 h에 대 한 모방 A1210477와 함께 OT48로 치료 되었고 zebrafish 노른자위 낭에 주입. 72 h 후 형광 종양의 정량화는 화합물의 금지 잠재력을 연관 시킵니다.
그림 1: 제 브라가 종이 식 분석 결과의 전체 프로세스의 회로도. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2: hydroxycoumarin OT48 및 BH-3 A549 시너지 저해 식민지 형성 모방 A1210477. (A) A549 식민지 대형 분석 결과 50 µ M의 OT48 및 A1210477의 20 µ M로 치료의 이미지. (B-D) 평균 크기, 및 식민지의 총 면적의 정량화. 실험 3 중에 실현 되었다. 특별 포스트 분석 수행 했다. 통계 significances p-값이 0.05 이하로 평가 되었고 다음 범례 표시: * p 0.05 * * p ≤0.01 * * * p ≤0.001 * * * p ≤0.0001; 특별 포스트 분석 Dunnett; Sidak)입니다. 모든 히스토그램의 적어도 3 개의 독립적인 실험 평균 ±를 SD를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3: A549의 용량에 OT48 및 A1210477의 효과 셀 양식 spheroids에. 3 일 후 A549 종양 spheroids의 이미지입니다.
그림 4: 화합물에 의해 A549 종양 질량 형성의 저해. (A) 그림 CM Dil 스테인드 A549 세포의 능력을 형성 하는 종양에 OT48 A1210477의 억제 효과 보이고 있다. (B) 종양 형성의 정량화. 특별 포스트 분석 수행 했다. 통계 significances p-값이 0.05 이하로 평가 되었고 다음 범례 표시: * p 0.05 * * p ≤0.01 * * * p ≤0.001 * * * p ≤0.0001; 특별 포스트 분석 Dunnett; Sidak)입니다. 모든 히스토그램 적어도 10 개의 독립적인 실험의 평균 ±를 SD를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
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Discussion
MCBM으로 얻은 식민지 형성의 속도 셀 형식에 따라 달라 집니다. 일반적으로, 비 부착 한 세포에 대 한 식민지의 수는 부착 세포에 비해 훨씬 높은. 우리가 관찰 A549 세포 10 일 후 30 ~ 40 식민지를 형성 했다. 이전 우리 보고 다른 백혈병 세포에 대 한 식민지의 수 200 ~ 2509사이입니다. 우리의 결과 OT48 혼자 혼자 식민지의 수의 상당한 감소를 생성 하지 않았다 보여주었다. 그러나, BH3 함께에서 A549 세포의 모방 A1210477 식민지 형성 능력 synergistically 감소 되었다. 이전 우리는 다른 hydroxycoumarin 파생 A549 세포의 식민지 형성 능력을 억제 하기 위해 또한 BH3 mimetics와 synergized OT52 보고. 제안 된 시드 농도 1.5 x 10을 1 x 103 에서 다를 수 있습니다3. CFA MethoCult를 사용 하 여 정기적으로 측정 하는 tumorigenesis 다양 한 암 세포 라인에 사용 되는 귀중 한 기술 이지만, 몇 가지 한계가 있다. 종종 가능한 식민지 실험, 셀 한번 잘 성장 하지 않습니다 후의 복구 MCBM에서 분리 하 고 RPMI1640 매체에 시드. 그럼에도 불구 하 고, 그것은 더 나은 3D 환경에서 암 진행의 메커니즘을 이해 하는 잘 허용된 전 임상 기술입니다. 3D 성장 조건 정확 하 게 설정 비보에 종양 형성의 자연 환경을 나타냅니다. 그러나,이 방법은 느린, 집중 하 고 높은 처리량10상영에 적합 하지 않은 노동.
SFAs 부착 세포를 사용 하 여 수행 되며 그들은 전시는 vivo에서 상황 의 대표를 증가 세포 생존, 종양 형태 hypoxic 코어 등 생리 적 특성으로 암 약물 발견에서 넓은 인기를 얻고 11,12. 전체 크기, 질감, 그리고 U-하단 플레이트 기술에 의해 얻어진 spheroids의 무결성은 셀 라인 사이 달라질 수 있습니다. 또한, 양식 spheroids 하는 데 사용 하는 셀의 시작 농도 또한 그것의 전반적인 발달을 좌우할 지도 모른다. 우리의 결과 BH3 mimeticA1210477와 함께에서 OT48 회전 타원 체 무결성을 저해 하 고 회전 타원 체 형성 능력 A549 세포의 감소를 보여주었다. 이전 우리 BH3 mimetics9와 함께에서 또 다른 hydroxycoumarin 파생 A549 spheroids의 저해 보고. 이 기술의 주요 장점은 재현성 및 비용 효과입니다. 액체 오버레이 기술 등 다른 기술도 정기적으로 암 세포의 3D spheroids을 개발 하는 데 사용 됩니다. 이 기술은 세포 비 점착 세포 배양 접시에 성장. 셀 덩어리 수집 그리고 형태 spheroids 하 현 탁 액 문화에 배치 됩니다. 그러나,이 기술은와 관련 된 주요 제한 중 하나는 다양 한 셀 라인에 의해 잘 용납 되지 현 탁 액 문화에 세포 덩어리의 전송입니다. 복합 3D 문화 시스템 심사의 처리량을 늘리려면 일부 회사는 특정 기판, 낮은 첨부 파일 분석 결과 접시, 그리고 3D 구조13의 형성을 개선 하는 건설 기계 개발. 추가 기술 진보와 함께 더 대표적인 3D 종양 모델의 개발은 특정된 유형의 암에 대 한 새로운 화합물의 약리학의 더 나은 이해 수 있게 됩니다.
Zebrafish xenografts 정기적으로 항 암 약물 개발9,14사용 가장 비용 효율적인 동물 분석 실험으로 간주 됩니다. 우리가 최적화 시스템 vivo에서 zebrafish 환자 파생 셀 뿐만 아니라 다양 한 단단하고 혈액 암 종류. 약물 검사에 대 한 제 브라를 사용의 이점의 여러 가지가 있습니다. 원칙적으로 물에 직접 추가할 수 있습니다 마약과 주입 될 필요가 없습니다. 또한,이 방법은 또한 마약 후보자의 ADME (흡수, 분포, 대사 및 배설) 속성에 대 한 정보를 제공합니다. 그러나,이 방법의 주요 한계 중 하나는 일부 분자 수용 되지 않습니다 및 따라서이 방법에 의해 조사를 즉시 적합 하지 않습니다. 이 제한을 극복 하기 위해 암 세포 화합물 전 비보 셀 다하고 단계에서 zebrafish에 주입, 그럼에도 불구 하 고 생존 능력을 유지로 대우 되었다. 우리의 결과 A549 세포 나 OT-48 처리 BH3 모방 A1210477 혼자 않았다 하지 강력 하 게 줄일 수 OT48와 A1210477의 조합에 비해 A549 세포의 능력을 형성 하는 종양을 보여주었다. 이 관찰 더 우리의 생체 외에서 CFA 어디 조합을 보여 개별 치료에 비해 상당한 항 암 효과 검증. 모두,이 기술은 약물 전 임상 환경에서의 신속한 심사에 기여할 수 있다.
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Disclosures
저자는 공개 없다.
Acknowledgments
서울대에서 연구는 종양 Microenvironment 글로벌 핵심 연구 센터 (GCRC) 그랜트, [허가 번호 2011-0030001];에 대 한 한국 개 국립 연구 재단 (NRF)에 의해 지원 됩니다. 서울 국가 대학 연구 보조금 및 두뇌 한국 (BK21) 프로그램 플러스.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Materials required for colony formation assays | |||
| A549 | ATCC | CCL-185 | 37 C° |
| RPMI 1640 | Lonza | 30096 | 4 C° |
| FBS | Biowest | S1520-500 | -20 C° |
| Penicillin-Streptomycin | Lonza | 17-602E | -20 C° |
| Cell culture flask T75 | SPL | 70075 | RT |
| PBS solution | Hyclone | SH30256.02 | RT |
| 1.5ml tube | Extragene | Tube-170-C | RT |
| 15 ml tube | Hyundai Micro | H20015 | RT |
| 12 well plate | SPL | 30012 | RT |
| MethoCult | StemCell technologies | 4230 | -20 C° |
| Thiazolyl Blue Tetrazolium Bromide (MTT powder) | Sigma | M5622 | 4 C° |
| LAS4000 | GE Healthcare Technologies | RT | |
| Materials required for spheroid formation assay | |||
| A549 | ATCC | CCL-185 | 37 C° |
| RPMI 1640 | Lonza | 30096 | 4 C° |
| FBS | Biowest | S1520-500 | -20 C° |
| Penicillin-streptomycin | Lonza | 17-602E | -20 C° |
| Cell culture flask T75 | SPL | 70075 | RT |
| PBS solution | Hyclone | SH30256.02 | RT |
| Trypsin-EDTA | Gibco | 25-300-054 | 4 C° |
| Corning costar ultra low attachemnt 96 well plate | Corning | 3474 | RT |
| Microscopy | Nikon | Eclipse TS100 | RT |
| Materials required for zebrafish xenografts | |||
| A549 | ATCC | CCL-185 | 37 C° |
| RPMI 1640 | Lonza | 30096 | 4 C° |
| FBS | Biowest | S1520-500 | -20 C° |
| Penicillin-streptomycin | Lonza | 17-602E | -20 C° |
| Cell culture flask T25 | SPL | 70025 | RT |
| Cell culture flask T75 | SPL | 70075 | RT |
| Cell culture flask T175 | SPL | 71175 | RT |
| 1.5ml tube | Extragene | Tube-170-C | RT |
| 24 well plate | SPL | 30024 | RT |
| Petridish | SPL | 10100 | RT |
| PBS solution | Hyclone | SH30256.02 | RT |
| Trypsin-EDTA | Gibco | 25-300-054 | 4 C° |
| Sodium Chloride | Sigma-Aldrich | 71382 | RT |
| Potassium chloride (KCL) | Sigma-Aldrich | P9541 | RT |
| Magnesium sulfate heptahydrate (MgSO4.7H2O) | Sigma-Aldrich | M2773 | RT |
| Calcium nitrate tetrahydrate (Ca(NO3)2) | Sigma-Aldrich | C1396 | RT |
| HEPES solution | Sigma-Aldrich | H0887 | RT |
| Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate (Tricaine) | Sigma-Aldrich | E10521 | RT |
| Phenol Red solution | Sigma-Aldrich | P0290 | RT |
| Methylcellulose | Sigma-Aldrich | M0512 | RT |
| 1-phenyl-2-thiourea (PTU) | Sigma-Aldrich | P7629 | RT |
| CM-Dil dye | Invitrogen | C7001 | -20 C° |
| Glass capillary | World Precision Instruments | TW 100F-4 | RT |
| Micropipette puller | Shutter instrument, USA | P-97 | RT |
| Micro injector | World Precision Instruments | PV820 | RT |
| Syringe | KOVAX | 1ml | RT |
| Micro loader | Eppendorf | 5242956003 | RT |
| Glass slide | Marienfeld | HSU-1000612 | RT |
| Fluorescence microscopy | Leica | DE/DM 5000B | RT |
References
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