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Immunology and Infection

Lambda 选择cII突变检测系统

Published: April 26, 2018 doi: 10.3791/57510
Automatic Translation
1, 1
1Department of Preventive Medicine, USC Keck School of Medicine, University of Southern California

Summary

我们描述了一个详细的协议, 为 Lambda 选择cII突变试验的培养细胞的转基因啮齿动物或相应的动物处理的化学/物理剂的利益。该方法已广泛用于哺乳动物细胞致癌物质的诱变检测。

Abstract

开发了多种转基因动物模型和突变检测系统, 用于哺乳动物细胞致癌物质的诱变检测。其中, 转基因小鼠和 Lambda (λ) 选择cII突变检测系统已被全球许多研究团体用于致突变实验。在这里, 我们描述了 Lambda 选择cII突变检测的详细协议, 该方法可应用于转基因小鼠/大鼠的培养细胞或与化学/物理制剂相关的动物。该协议包括以下步骤: (1) 从转基因动物的细胞或器官/组织中分离出基因组 DNA, 分别处理体外或体内, 并用一个测试化合物;(2) 从基因组 DNA 中回收携带突变报告基因 (即、 cII转基因) 的 lambda 梭载体;(3) 将获救的载体包装成传染性噬菌体;(4) 感染宿主细菌并在选择性条件下培养, 以允许传播诱导的cII突变;(5) 评分的cII突变体和 DNA 序列分析, 以确定cII突变频率和变异谱, 分别。

Introduction

开发了多种转基因动物模型和突变检测系统, 用于哺乳动物细胞致癌物质的诱变检测。其中, 转基因大蓝 (简称 BB) 小鼠和λ选择cII突变检测系统是由该组和许多其他研究组在世界范围内的致突变实验所使用的1,2, 3,4,5,6,7,8,9。在过去的16年中, 我们研究了各种化学和/或物理剂的诱变效应, 这些转基因动物或其相应的胚胎成纤维细胞培养的试验化合物处理, 并随后分析了cII转基因的表型和基因型由λ选择cII化验和 DNA 测序, 分别为10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24. 这些转基因动物的基因组含有噬菌体λ梭向量 (λLIZ), 它集成在4号染色体上, 作为多拷贝头到尾 concatemer1,2,25。λLIZ 梭向量携带两个突变的报告基因, 即lacI和cII转基因1,2,25,26,27, 28,29,30,31,32,33,34,35,36, 37,38,39,40,41,42,43,44,45,46,47. λ选择cII检测是基于从转基因动物器官/组织的细胞基因组 DNA 中恢复λLIZ 梭向量的方法1,2,25.回收的λLIZ 梭载体然后被包装成λ噬菌体头, 能够感染指标宿主大肠杆菌. 随后, 受感染的细菌在选择性条件下生长, 以便在cII转基因1、3中对突变进行评分和分析。

在这里, 我们描述了λ选择cII分析的详细协议, 该方法包括从转基因动物细胞/器官中分离出的基因组 DNA, 从体外处理体内/与一个测试化合物, 检索λLIZ 梭向量从基因组 DNA, 载体的包装到传染性的λ噬菌体, 感染的宿主大肠杆菌与噬菌体, 鉴定的cII突变体在选择性条件下确定cII突变频率, 并DNA 序列分析建立了cII突变谱。该协议可应用于转基因鼠/大鼠细胞培养处理体外与化学/物理剂的兴趣, 或组织/器官的相应动物处理体内与测试化学/代理1, 2,4,48,49,50,51,52。λ选择cII分析的示意图演示显示在图 1中。

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Protocol

1. 小鼠胚胎成纤维细胞的基因组 DNA 分离

注意: 根据发布的协议53, 原代小鼠胚胎成纤维细胞与 C57BL/6 遗传背景的 BB 转基因小鼠胚胎分离。此协议的起始材料由 1 x 106到 1 x 107胚胎成纤维细胞, 由测试复合与控制处理。使用标准方法收集和计数这些单元格在引用10、54、55中描述。

  1. 准备缓冲 A (0.3 米蔗糖, 60 毫米氯化钾, 15 毫米氯化钠, 60 毫米三盐酸, ph 值 8.0, 0.5 毫米胺, 0.15 毫米胺, 和2毫米 edta), 缓冲 B (150 毫米氯化钠和5毫米 edta, ph 7.8) 和缓冲 C (20 毫米三盐酸, ph 8。0, 20 毫米氯化钠, 20 毫米 EDTA, 1% SDS), 并保持室温 (RT), 长达一年54,55。
  2. 并用重悬细胞在2–4毫升缓冲区 a 在15毫升锥形离心管通过反复吹打上和下使用宽口径1000µL 吸管提示。
  3. 使用玻璃血清吸管添加一个包含 1% octylphenoxypolyethoxyethanol (例如、Nonidet P40) 的卷 (2–4 mL) 缓冲区。
  4. 将管子在冰上孵化5分钟。
  5. 离心管在 1000 x g在 RT 5 分钟。
  6. 使用玻璃血清学吸管, 用10–15毫升缓冲液将上清, 并清洗颗粒。
  7. 并用重悬2–4毫升缓冲 B 中的颗粒。
  8. 添加一个体积 (2–4毫升) 缓冲 C, 含有600µg/毫升蛋白酶 K。
  9. 在37摄氏度孵育3小时的管子。
  10. 添加 RNase a 到最终浓度为100µg/毫升。
  11. 在37摄氏度的1小时内孵化试管。
  12. 添加一个体积 (2–4毫升) 苯酚 (饱和在0.1 米三盐酸, pH 值 8.0): 氯仿: 异戊醇 (25:24:1 卷/卷)。
    注: 苯酚可能造成严重的健康危害, 必须极其谨慎地处理。苯酚对皮肤具有高度腐蚀性, 易于吸收, 并具有其他功效。处理苯酚时, 要经常使用双手套, 戴上防护眼镜, 在化学油烟机上工作。
  13. 在4摄氏度的管转子上反转管5分钟, 混合良好。
  14. 离心管在 1000 x g 5 分钟在4摄氏度。
  15. 使用玻璃血清学吸管将水相 (顶层) 移到新管上。
  16. 重复 phenol:chloroform:isoamyl 乙醇萃取1至3次, 直到水相清晰, 界面不再混浊。
  17. 添加1/10 体积 (200–400µL) 3M 醋酸钠, pH 5.2。
  18. 添加2.5 体积 (5–10毫升) 100% 乙醇 (冷), 并通过手轻轻地翻转管2–3分钟。
  19. 将 DNA 与玻璃挂钩, 将其转移到含有1–5毫升70% 乙醇的新管, 并彻底清洗。或者, 离心管在高速 (3500 x g) 在4°c, 以颗粒的 DNA 和彻底清洗它与1–5毫升70% 乙醇。
  20. 在 RT 上离心管高速 (3500 x g), 取出上清, 并将 DNA 风干10-15 分钟。
  21. 将 DNA 溶解在10–100µL TE 缓冲器 (10 毫米三盐酸, 1 毫米 EDTA, pH 7.5), 并贮存在4摄氏度 (用于短储存一个月) 或在-20 摄氏度 (更长的贮存期)。λ DNA 的最佳浓度选择cII检测0.5–1.0 µg/µL (在 TE 缓冲区中)56。

2.体外包装反应

  1. 每一个包装反应, 添加〜5µg 基因组 dna (最终体积: 8–12µL, 基因组 dna 被隔离在1 节从小鼠胚胎成纤维细胞治疗体外与测试化合物或控制) 到一个离心管, 其中包含第一个反应组合 (~ 10 µL)。
    注: 内部准备或商业可用的λ包装提取物用于不同的实验室。在这里使用的商用包装提取套件中56 (参见材料表), 红色管包含第一反应组合 (~ 10 µL) 和蓝色管包含第二反应组合 (~ 70 µL 为至少5反应)。
  2. 在30摄氏度孵化管90分钟。
  3. 将第二反应混合物所需的体积 (~ 12 µL) 添加到管中。
  4. 在30摄氏度的90分钟内孵化试管。
  5. 将1.1 毫升的 SM 缓冲器添加到管中。
    注: 本解决方案的1毫升 (即, 包装反应混合物) 将用于筛选λ cII突变体。其余的将用于 titering。
    1. 通过混合5.8 克氯化钠、2.0 克 MgSO47H2O、50毫升 1 M 三盐酸 (pH 7.5) 和5毫升 2% (w/v) 明胶, 准备SM 缓冲。将 dH2O 添加到最终体积为1升的蒸压釜, 其温度为30分钟, 在室温下保存达1年。
  6. 涡流管包含包装的 DNA 样本十年代在 RT (有力的涡流)。
  7. 脉冲旋转管在离心和储存在冰上, 直到准备使用。如果样品不将在同一天内使用的包装, 添加50µL 氯仿每毫升的包装 DNA 样本, 涡旋轻轻, 并存储在4°c 长达2周。

3. 制备大肠杆菌G1250 细菌培养

  1. 在电镀前至少两天, 在 TB1-kanamycin 琼脂板上制作一些从大肠杆菌 ( 大肠杆菌) G1250 的细菌条纹板。
    1. 准备 TB1-kanamycin 琼脂板如下。混合5.0 克氯化钠, 10.0 克酪蛋白蛋白胨, 12.0 克琼脂。添加800毫升 dH2o 添加1毫升0.1% 硫胺盐酸盐。用氢氧化钠或 HCl 将 pH 值调整为 7.0. 将 dH2O 添加到最终卷1公升。
    2. 搅拌好, 蒸压釜30分钟, 使冷却到55摄氏度。添加50.0 毫克卡那霉素和混合。倒入无菌的100毫米培养皿 (每道20–25毫升)。贮存盘在摄氏4摄氏度, 长达两周。
  2. 在固定的30°c 孵化器中孵化细菌条纹板, 至少24小时。
  3. 在电镀前一天, 将10毫升的 TB1 液体介质与100µL 20% (瓦特/v) maltose-1 M MgSO4溶液结合在一个无菌的50毫升螺帽锥管中。
    1. 准备 TB1 液体培养基如下。混合5.0 克氯化钠和10.0 克酪蛋白蛋白胨, 然后添加800毫升 dH2O, 1 ml 0.1% 毫升盐酸硫胺, 并调整 pH 值为7.0 与氢氧化钠或 HCl。然后, 将 dH2O 添加到最终卷1升, 混合好, 和高压釜30分钟. 将培养基在 RT 中储存多达三月。
    2. 准备 20% (w/v) Maltose-1 M MgSO4 , 如下所示。混合20.0 克麦芽糖和24.6 克 MgSO4。7H2o, 然后将 dH2o 添加到最终卷100毫升。过滤消毒和贮存在4摄氏度, 长达6月。
  4. 使用无菌接种循环56从细菌条纹板上接种多个菌落的液体培养基。
  5. 在30摄氏度摇晃的孵化器中一夜之间孵化液体培养 (250–300 rpm)。
  6. 在电镀当天, 离心机的圆锥管含有 G1250 液体培养在 1500 x g 10 分钟的 RT, 以颗粒的细菌细胞。
  7. 丢弃上清, 并并用重悬10毫升10毫米MgSO4 中的细胞颗粒。
  8. 使用紫外-可见光分光光度计 (例如、100µL 细胞悬浮 + 900 µL 10 mM MgSO4)56, 测量1:10 波长 600 nm 的细胞悬浮液稀释的吸光度。
  9. 将电池悬浮液稀释至最终 OD600 , 以10毫米 MgSO4为0.5。G1250大肠杆菌的准备悬浮与 OD600 = 0.5 被称为 ' G1250 电镀文化 '。
  10. 将 G1250 电镀文化储存在冰上, 并在1-2 小时内使用。

4. 电镀包装的 DNA 样品

  1. 每一个包装的 DNA 样本, 准备十六无菌 14 x 100 毫米2圆底管和十六 TB1 琼脂板。十从每套将用于筛选和六 titering (三的效价20和三的效价 100)。
    1. 准备 TB1 琼脂板如下。混合5.0 克氯化钠, 10.0 克酪蛋白蛋白胨和12.0 克琼脂, 然后添加800毫升 dH2O 和1毫升0.1% 硫胺盐酸盐。用氢氧化钠或 HCl 将 pH 值调整为 7.0, 并将 dH2O 添加到最终卷1升。
    2. 搅拌好, 蒸气釜30分钟, 使混合物冷却到55摄氏度, 然后倒入无菌100毫米培养皿 (每道20–25毫升)。将盘子存放在4摄氏度, 最多两周。
      注: TB1 琼脂板应在使用前至少准备24小时。
  2. 整除200µL 的 G1250 电镀培养成每一个圆底管。
  3. 对于 titering, 对已打包的 dna 样本进行1:100 稀释, 并通过涡流 (即、10µL 封装的 dna 样本 + 990 µL SM 缓冲器) 进行混合。
  4. 添加20µL 的1:100 稀释到每一个三滴度20管。
  5. 添加100µL 的1:100 稀释到每一个三滴度100管。
  6. 用于筛选, 将100µL 的 "未稀释的"打包的 DNA 样本添加到十筛选管中的每一个。
  7. 处理所有 titering 和筛选管 (2 x 3 + 10 = 16 管), 如下所示: 混合涡流大约十年代, 然后在室温下孵化30分钟, 以允许宿主大肠杆菌吸附噬菌体。
  8. 加入2.5 毫升微波熔融 TB1 顶琼脂 (冷却到55°c) 到每个滴度或筛选管, 立即混合涡流 (轻轻), 并倒入适当的效价或筛选 TB1 琼脂板。
    1. 准备 TB1 顶琼脂如下。混合5.0 克氯化钠, 10.0 克酪蛋白蛋白胨和7.0 克琼脂, 然后添加800毫升 dH2o 添加1毫升0.1% 硫胺盐酸盐, 然后用氢氧化钠或 HCl 将 pH 值调整为7.0。最后, 将 dH2O 添加到最终卷1升。
    2. 在室温下存放三个月的20–25和高压釜。
    3. 在使用之前, 将准备好的 TB1 琼脂在微波炉中熔化, 混合均匀, 并允许在水浴中冷却到55摄氏度。
      注: 熔融和冷却 TB1 顶部添加到每个滴度或筛选管的内容, 并在混合后, 倒入适当的效价或筛选 TB1 琼脂板。
  9. 在室温下, 让盘子代表15–30分钟, 盖子半开以防止凝结。
  10. 反转板, 并将十筛板放置在固定的24°c 孵化器和孵化为 46–48 h (即, 选择性条件) 和六滴度板在固定37°c 孵化器和孵化为24小时/隔夜 (即,非选择性条件)。
    注: 为了质量保证和标准化的结果, 商业上可用的控制噬菌体解决方案含有混合的 wildtype 和突变体cII与已知突变频率被镀在包装的 DNA 样本和包括在所有检测运行56。

5. 检查的效价和筛板确定cII突变频率

  1. 在24小时/隔夜孵化在37°c, 计数形成的斑块的数量在三滴度20板材和效价100板材。要更容易地识别斑块, 请将盘子放在白色灯箱旁边, 并在黑色背景上取下盖子 (参见图 2)。
  2. 平均 (平均) 计数的斑块数量在每组的效价20板和滴度100板 (每三个)。
  3. 从最接近每片50–200斑块范围的滴度板中选择平均数。
  4. 计算十筛板上筛查的斑块总数, 如下所示:
    筛查的总斑块 = (在所选的滴度板上的平均斑块数÷µL 的稀释系数) x 稀释因子 x. 每筛板上的包装 DNA 样品µL 数量 [100 µL/盘] x 筛板的编号 [10]。
    注: 例如, 如果每板的平均斑块数量在20版的128和相应的数量在一组的效价100板块是 478, 数字128将用于计算斑块的总数量被筛如下：
    (128 ÷ 20) x 100 [稀释因子] x 100 [µL/盘] x 10 [板材] = 64万
    这相当于将平均斑块的数量乘以5000或 1000, 如果平均值是基于计数从滴度20板或滴度100板, 分别。
  5. 以下 46–48 h 孵化24摄氏度, 计算十筛板形成的斑块总数 (按照5.1 节中提供的说明)。
    注意: cII突变频率是通过将筛板中形成的斑块的总数除以所筛选的斑块总数来计算的。使用上面的示例, 如果在十筛选板中计数的斑块总数为 112, 则此 DNA 样本的cII突变频率为112÷ 64万 = 17.5 x 10-5。

6. 验证假定的λ cII突变体、PCR 扩增和 DNA 测序

  1. 核心的问题与无菌, 宽孔吸管尖端的牌匾, 并驱逐它 (通过吹打上下) 成一个不育的离心管, 含有500µL 的无菌 SM 缓冲。
  2. 在室温下孵化至少2小时, 或在4摄氏度过夜, 使噬菌体微粒从琼脂插头洗脱。
  3. 在不育的 14 x 100 毫米2圆底管, 混合200µL 的 G1250 电镀文化与1µL 的药芯噬菌体溶液, 并孵化为30分钟在 RT。
  4. 该样品使用2.5 毫升55°c 熔融 TB1 顶琼脂和孵化板在24°c 为 46–48 h (选择性条件), 如4.8–4.10 节所述。
  5. 一旦次生斑块形成, 使用吸管尖端仔细挑选一个独立的经验证的λ cII突变斑块 (避免接触下琼脂)。
    注: Replating 假定的cII突变斑块有两个用途: (一) 电镀工艺品有时可能被误认为是小尺寸的斑块;(ii) 从筛板上取出的琼脂糖芯可能含有非突变噬菌体和变种噬菌体。低密度 replating 的次生斑块将为 PCR 和后续 DNA 序列分析提供无污染的突变模板。
  6. 将牌匾转移到含有25µL 双蒸馏水的离心管上, 吹打上下。
  7. 把管子放在沸水中5分钟。
  8. 离心机以最大速度 (1.8万 x g) 在 RT 上3分钟。
  9. 将上清的10µL 立即转移到一个新的离心管, 其中含有40µL 的 pcr mastermix, 其中试剂的最终浓度为 1 x Taq PCR 缓冲器, 10 pmol 每个向前和反向底漆, 12.5 nmol 每 dNTP和 2.5 U 的 Taq DNA 聚合酶。
    注: 正向和反向引物如下: 5 '-CCACACCTATGGTGTATG-3 ' (相对于cII启动密码子) 和 5 '-CCTCTGCCGAAGTTGAGTAT-3 ' (位置 +345 到 +365 相对于cII起始密码子), 分别是-68 到-50。
  10. 使用以下循环参数放大模板: 3 分钟变性在95°c, 其次是30周期三十年代在95°c, 1 分钟在60°c, 并且1分钟在72°c, 与最后的延长10分钟在72°c。
  11. 根据制造商的说明, 使用商业上可用的 pcr 纯化试剂盒纯化含有cII基因和侧翼区域的 432 bp pcr 产品。
  12. 使用适当的测序平台进行 dna 测序, 并分析生成的 dna 序列, 以检测cII转基因中的突变 (见下面的说明)。
    注意: 最好通过使用软件 (如基于 web 的 T-咖啡序列对齐服务器) 与引用cII序列对齐来实现这一点。有关如何使用程序的说明, 请访问: http://tcoffee.crg.cat/

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Representative Results

根据数据分布情况, 参数化或非参数测试用于确定治疗和控制组之间的cII突变频率差异的意义 (即、诱导与自发突变频率).不同治疗组诱导的cII突变频率的比较是由各种 (配对的) 统计试验 (如适用) 进行的。Adams 和 Skopek 的超几何测试通常用于比较整个诱导和自发突变谱57, 尽管其他测试 (如χ2测试或方差分析) 也可用于比较频率在诱导-和控制突变谱之间, 或在不同的化学物质/药剂引起的各种突变光谱中, 或在相同的剂量变化中, 每种特定类型的突变 (例如、过渡、颠换、插入或删除)化学/代理。

图 3是对已发表的研究中的变种人频率数据的汇编, 我们已经表明, 用各种化学物质治疗小鼠胚胎成纤维细胞的相对cII突变频率增加的程度和/或根据测试化合物的诱变性 "效力", physicalagents 可能会因数个百倍而异。在cII突变频率的统计学上显著的褶皱增加是用丙烯酰胺12、glycidamide14、aflatoxinB1 (AFB1)22、三苯氧胺18来处理的小鼠胚胎成纤维细胞,δ-氨基乙酰丙酸 (δ) 加低剂量紫外线 A (UVA: λ > 320−400 nm)15, 苯并 (a) 芘二醇环氧 (B (a) PDE)19, equilethal 剂量的 UVA, UVB (λ = 2 80−320 nm), 和模拟阳光紫外线 (SSL) 21 (见图 3)。

图 4是对突变的 "序列特异性" 的演示, 其中我们显示了在 UVBrelativetocontrol23照射的 mouseembryonicfibroblasts 中, 在cII转基因中诱导特定类型的突变。UVB 诱导的突变谱特征是嘧啶 dinucleotides 单或串联 C→T 跃迁的相对频率显著增加。

Figure 1
图 1: λ的示意图选择cII化验。该检测是基于检索λLIZ 梭向量, 其中包含cII转基因作为突变的报告基因, 从转基因啮齿动物的培养细胞的基因组 DNA在体外处理与试验化合物或相应动物的组织/器官使用经过测试的化学/代理 (A和B) 处理体内。被解救的载体被包装成λ噬菌体头, 可以感染适当的宿主大肠杆菌(C和D)。然后在选择性条件下生长受感染的细菌, 以便在cII转基因1,2,3,25,中对突变进行评分和分析.52 (E)。在F和G中概述了由 DNA 测序确定诱导的cII突变频率和突变谱的建立。诱导-自发突变谱以不同的格式进行可视化。为了说明目的, 我们突出显示了一种格式, 在该模式中, 诱导的cII突变被键入在引用序列之上, 而自发突变 (控件) 在引用序列 (H) 下键入。突变基的高度表示其突变频率 (即, 基数越高, 变异越频繁)。在变异的基础上的数字表明该基地突变的百分比频率。已删除的基带下划线。插入的基地用箭头显示。在基地之下的数字是参考核苷酸位置。数据来自已发布的研究23。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2: 在滴度板上计数斑块.为了更容易识别斑块, 盘子被放在一个白色的灯箱旁边, 在黑暗的背景下, 盖子被移除。滴度20板 (A) 和滴度100板(B)。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 3
图 3: 与对照组比较, 用各种化学药剂和/或物理剂处理小鼠胚胎成纤维细胞中的cII转基因突变频率.数据来自对丙烯酰胺12、glycidamide14、aflatoxinB1 (AFB1)22、三苯氧胺18、δ氨基乙酰丙酸 (δ) 加低剂量紫外光 A (UVA: λ > 320−400 nm)15 的已发表研究 (A)pyrenediol 环氧 (B (a) PDE)19和 equilethal 剂量的 UVA, UVB (λ = 280−320 nm), 和模拟阳光紫外线 (SSL)21。为了有效地在小鼠胚胎成纤维细胞中代谢三苯氧胺, 我们使用了由 Aroclor 1254 诱导的大鼠肝脏制剂和余子试剂22组成的 S9-activation 系统 (S9 混合)。在p < 0.05 中, 处理和控制样本的所有差异在统计学上有显著意义。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 4
图 4: 紫外线照射下的小鼠胚胎成纤维细胞中的cII基因突变光谱相对于控制.数据来自已发布的研究23。所有转换的链镜像对应项 (例如、G→A 和 C→T) 和之颠 (例如、G→T 和 C→A 或 G→C 和 C→G) 组合在一起.插件: 插入;删除。UVB 诱导的突变谱特征是嘧啶 dinucleotides 单或串联 C→T 跃迁的相对频率显著增加。请单击此处查看此图的较大版本.

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Discussion

λ选择cII检测用于检测从 BB 啮齿动物的器官/组织中提取的细胞基因组 DNA 中回收的cII转基因中的突变 (3)。这些转基因动物的基因组包含多个串联拷贝的染色体集成λLIZ 穿梭载体, 运载cII (294 bp) 和lacI (1080 bp) 转基因, 作为突变的报告基因1,2,25. λ选择cII检测的基础是从转基因动物细胞/组织的基因组 DNA 中检索λLIZ 梭载体, 然后将被解救的载体包装成λ噬菌体头, 从而感染合适的宿主。大肠杆菌。随后, 受感染的细菌在选择性条件下生长, 以便在cII转基因中评分和分析突变 (见图 1)1,3。λ选择cII检测已广泛用于各种化学品和/或物理代理的致突变性测试 (参考文献249)。该方法已成功应用于转基因鼠/大鼠细胞培养中, 用各种化学物质和/或物理制剂处理体外, 而相应动物的组织/器官在体内进行了不同的试验。化学品/代理4,5,6,7, 8,910,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,34,58,59,60,61,62,63,64,65,66,67,68,69,70,71,72,73,74,75。

λ选择cII测定转基因啮齿动物培养细胞中的试验化合物, 在许多方面代表了一个可行的替代在体内致突变性实验在相应的动物处理与测试化学/代理3. 作为一般规则,体外模型在体内的动物模型中提供了显著的优势, 因为它们的劳动密集型和成本更低, 需要的时间要少得多, 最重要的是, 不要涉及直接使用动物2,50,52。同时,体外模型可能无法完全重述突变的所有方面, 这是由于培养的细胞与实验动物之间的药物的药代动力学和药效学特性差异所致. 体内2,3. 例如, 化学品的暴露途径吸入 (例如, 香烟烟雾或电子烟蒸气) 只能作出服从体外在细胞培养后, 从气态或蒸气转化的测试形式到液体或凝结水, 复杂化他们的药代动力学。另外, 培养细胞的不完全或无代谢能力体外将某些化学物质转化为 dna 反应的物种可能不代表 dna 损伤驱动的致突变性的动物暴露在体内的活体到毒性化学品2 ,3。虽然, 通过将外部代谢激活系统 (即、S9 混合) 添加到体外细胞培养模型22中, 可以对此缺点进行补偿, 以改变范围。

此外, 真实生活的复制人类接触到的毒性化学物质/代理比与实验动物在体内3更受限于体外细胞培养模型。一般而言, 人类在几年的时间内暴露于慢性剂量的毒性剂, 长达几十年,76,77,78。与啮齿类动物的寿命相对较长 (即、天/周vs几年) 相比, 在文化中细胞的有限寿命使得在前模型2中, 对 genotoxins 的人类暴露的建模更加具有挑战性, 3。然而, 与体外细胞培养模型的致突变分析可以提供一个特定化学/代理 (s) 的毒性电位的初步指示, 结果可用作设计 "精制"体内实验的指南它的功能是 "减少" 的动物数量2,3。

总之, λ选择cII测定转基因啮齿动物的培养细胞中的试验化合物, 或相应的动物处理的测试化学/代理, 是一个宝贵的方法, 诱变试验。我们已经成功地使用了该方法, 其他研究组遍布全球4,5,6,7,8,9,10, 11,12,13,14,15,16,17,18,19, 20,21,22,23,24,34,58,59,60, 61,62,63,64,65,66,67,68,69, 70,71,72,73,74,75。最近, 我们扩大了这种方法的应用, 开发了一种新的技术, 其中λ的修改选择cII分析和下一代测序, 使高通量分析突变的时间-, 成本-,和劳动有效的方式23。

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Disclosures

所有的作者声明没有利益冲突。

Acknowledgments

我们要感谢所有同事和合作者对我们最初的研究所作的贡献, 这份手稿中的结果已经在本稿中提到 (为了说明目的)。作者的工作得到了国家卫生研究院牙科和颅面研究研究所 (1R01DE026043) 和加州大学烟草相关疾病研究计划 (ab) 的资助 (TRDRP-26IR-0015) 和 ST (TRDRP-25IP-0001)。研究的发起者在研究设计、数据收集、数据分析、数据解释、报告撰写或提交出版物的决定中都没有作用。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Agar MO Bio Laboratories, Inc. 12112-05 Bacteriological grade
BigDye Terminator v3.1 Cycle Sequencing Kit Thermo Fisher Scientific 4337455 None
Casein Peptone Alfa Aesar H26557 None
Gelatine J. T. Baker 2124-01 Powder
Glycerol Fisher Scientific BP 229-1 / M-13750 None
LB Agar Fisher Scientific BP 9724-500 None
QIAquick PCR purification kit Qiagen 8104 50 PCR purification reactions
Sodium Acetate Trihydrate Fisher Scientific M-15756 None
Taq5000 DNA Polymerase  Qiagen 201207 None
Thiamine Hydrochloride Macron Fine Chemicals 2722-57 None
Transpack Packaging Extract Stratagene Corp., Acquired by BioReliance | Sigma-Aldrich Corp. 200223 50 packaging reactions
Tris Base Fisher Scientific BP 152-1 / EC 201-064-4 None
Trypton Biosciences RC-110 None

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