Summary
Birincil fare oligodendrocytes, immunomagnetic izolasyonu vitro kültür için hücreleri hızlı ve spesifik yalıtım sağlar açıklar.
Abstract
Verimli ve sağlam yalıtım ve birincil oligodendrocytes (OLs) kültür olduğunu oligodendroglia gelişimi yanı sıra, multipl skleroz gibi hastalıkların demiyelinizan biyoloji vitro incelenmesi için değerli bir araç ve Pelizaeus-Merzbacher-gibi hastalığı (PMLD). İşte, biz basit bir mevcut ve verimli seçimi yöntemi immunomagnetic izolasyonu için sahne üç O4+ preoligodendrocytes hücrelerden yenidoğan fare pups. Olgunlaşmamış OL teşkil beri fazla bu yalıtım Yöntem sadece sağlar yüksek hücresel verim % 80 Doğum sonrası gün 7, kemirgen-beyin beyaz maddenin (P7), aynı zamanda zaten oligodendroglial soy taahhüt OLs belirli yalıtım, azalan astrocytes gibi bulaşıcı hücreleri ve diğer hücrelerden fare beyin izole imkanı. Bu yöntem daha önce rapor teknikleri bir değişiklik olduğunu ve oligodendrocyte hazırlık saflık yaklaşık 4 h % 80 oranında yukarıda sağlar.
Introduction
Oligodendrocytes (OLs) merkezi sinir sistemi (MSS)1myelinating hücrelerdir. Yalıtım ve sıkı bir şekilde düzenlenmiş bir ortamda birincil oligodendrocytes kültür olduğunu oligodendroglia gelişimi yanı sıra multipl skleroz2 gibi hastalıkların demiyelinizan biyoloji vitro incelenmesi için değerli bir araç . Bu bir verimli ve sağlam oligodendrocyte yalıtım ve kültür Yöntem3gerektirir. Bu çalışmada, biz hızlı ve belirli bir değiştirilmiş yalıtım tekniği uygulamak için bir ayırt edici oligodendrocyte hücre yüzey marker ifadesi kullandı.
Dört farklı aşamaları oligodendrocyte olgunlaşma tespit edilmiştir, farklı hücre yüzey işaretleyicileri ifade her gelişim aşaması (Şekil 1) için her karakterize. Bu hücre yüzey işaretleyicileri belirli antikor4,5tarafından tanınır ve belirli aşamalarında OLs yalıtmak için kullanılabilir. İlk aşamada, oligodendrocyte öncü hücreleri (OPCs) çoğalırlar, göç ve özellikle hızlı trombosit-türevi büyüme faktörü reseptör (PDGF-Rα)6, gangliosid A2B5, proteoglikan NG27,8 kapasitesine sahiptir. , polysialic asit sinir hücre adezyon molekülü9 ve yağ asidi bağlayıcı protein 7 (FABP7)10. OPCs birkaç kısa işlemler sinirsel öncül hücreleri11karakteristik olan hücre vücudun karşıt direkleri yayılan iki kutuplu morfoloji var.
Şekil 1: fare oligodendrocyte geliştirme sırasında hücre yüzey işaretlerinin ifade. A2B5, GalC (O1) NG2 O4 ve PDGF Rα özellikle oligodendrocytes belirli antikorları kullanarak belirli gelişimsel aşamada yalıtmak için kullanılabilir gibi OLs yüzey işaretleyicileri hücre. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
İkinci aşamada, OPCs preoligodendrocytes için ortaya çıkmasına ve hücre zarı hızlı sadece OPC işaretleri, aynı zamanda O4 antikor12,13ve GPR17 protein14, tarafından tanınan sulfatide (sülfürlü galactolipid) Hangi kadar olgunlaşmamış oligodendrocyte (OL) sahne devam ederse. Bu aşamada preoligodendrocytes multipolar kısa işlemler genişletir. Preoligodendrocytes büyük OL sahne olgunlaşmamış OLs15küçük bir nüfusa sahip fare ve fare serebral beyaz madde postnatal gün 2 (P2) bulunmaktadır.
Üçüncü aşamada, olgunlaşmamış OLs O4 hızlı, ifade A2B5 ve NG2 işaretlerinin kaybetmek ve galactocerebroside C16hızlı başlar devam ediyor. Bu aşamada OLs oligodendroglial soy işlenir ve uzun ramified dalları17,18ile sonrası Mitotik hücre olur. Olgunlaşmamış OL teşkil P7, kemirgen beyaz madde % 80'den fazla ve şu anda15,19,20,21ilk MBP+ hücreler gözlenir. Bu nedenle, izolasyon P7, OLs yüksek hücresel verim sağlamak.
OL geliştirme son ve dördüncü aşamada olgun OLs myelinating proteinler (miyelin temel protein (MBP), proteolipid protein (PIP), ilişkili miyelin glikoprotein (MAG) ve miyelin oligodendrocyte glikoprotein (MOG)22,23 hızlı. ,24,25,26. Bu aşamada olgun OLs Membran Kaplamalar aksonlar çevresinde enwrapping bu formu kompakt genişletmek ve myelinate için edebiliyoruz. Bu fare ve fare beyninde MBP+ hücreleri P1419,20,21, giderek bol olmak gözlem ile örtüşmektedir.
Oligodendrocyte Fewster ve 196727meslektaşları tarafından ilk yalıtım beri kemirgen CNS OLs, izolasyon için çeşitli yöntemler de dahil olmak üzere immunopanning28,29,30hayata geçirdik, floresans aktif hücre hücre yüzey özgü antijenlere28,31, farklı degrade Santrifüjü32,33,34,35 istismar (FACS) sıralama ve farklı CNS glia36,37fark bağlılık dayalı sallayarak yöntemi. Ancak, mevcut kültür yöntemleri kısıtlamaları, saflık, verim ve38yordamları gerçekleştirmek için gereken süre açısından özellikle bulunmaktadır. Bu nedenle, daha verimli izolasyon yöntemleri oligodendrocytes için gereklidir.
Bu yazıda, biz basit bir mevcut ve verimli seçimi yöntemi immunomagnetic izolasyonu için sahne üç O4+ preoligodendrocytes hücrelerden yenidoğan fare pups. Bu yöntem Emery vd tarafından bildirilen teknikleri bir değişiklik olduğunu 39 ve Dincman vd. 40 ve %80 4 h yukarıda bir oligodendrocyte hazırlık saflık sağlar.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Bu çalışmada kullanılan fareler için SUNY eyalet Tıp Merkezi bölümü, laboratuvar hayvan kaynakları (DLAR) protokol numarası 15-10492 kurallarına göre bakım.
Not: Birincil oligodendrocytes yenidoğan (P5-P7 vahşi tipli C57Bl/6N) izole edildi fareler. Bu aşamada, yüksek hücresel verim sağlamak kemirgen beyaz madde % 80'den fazla olgunlaşmamış OLs oluşturmaktadır. Tüm arabellek ve reaktif kompozisyon Malzemeler tablosonunda mevcuttur.
1. Coverslips hazırlık
Not: Poly-D-lizin (PDL) / kaplı laminin coverslips OL yalıtım önce hazırlanmış.
- Yer #1 Alman cam coverslips 50 mL konik tüp içine ve %70 35 mL ekleyin alkol onları temizlemek için.
- Tüp kapatmak, bir nutating Mikser yerleştirin ve hafifçe sallanır sırasında oda sıcaklığında en az 30 dk için kuluçkaya. Coverslips gecede inkübe.
- % 70 alkol atın.
- Coverslips 3 kez deiyonize su ile yıkamak, su vakum aspirasyon ile her zaman kaldır.
- 30-35 mL PDL 50 µg/mL coverslips kapsayacak şekilde 50 mL Tüp, yeterince coverslips için ekleyin.
- Coverslips bir nutating Mikser üzerinde içeren 50 mL tüp yerleştirin ve hafifçe sallanır sırasında oda sıcaklığında en az 30 dk için kuluçkaya.
- Coverslips vakum aspirasyon ile her zaman su kaldırma 3 kez deiyonize suyla yıkayın.
- Coverslips 60 mm Petri deiyonize su içeren yemekleri aktarın.
- P200 pipet ucu coverslips Petri kabına tüm yüzeyini örten bir katman olarak düzenlemek için kullanın.
- Dikkatle, su yemekleri vakum aspirasyon ile kaldırın.
- Coverslips etrafında su fazlalığı kaldırmak ve onlara gecede açık kapaklı ve UV mahallede ışığı altında kuru.
Not: PDL kaplı cam coverslips steril Petri yemeklerinde 4 ° C'de üç aya kadar saklanabilir. - Coverslips 24-şey levha, her şey, iyi forseps kullanarak bir tane yerleştirin.
- Coverslips de yapma kenarları kuyu duvarı dokunmayın emin merkezine hareket.
- B27NBMA içinde seyreltilmiş 10 µg/mL laminin 100 µL ekleyin ( Tablo reçetesigörmek) her coverslip ortasında başlayan ve tüm alanı kapsayacak şekilde kenar kısımlara doğru dairesel şekilde hareket.
Not: laminin OL bakım ilgilenmektedir ve farklılaşma olgun OLs içine teşvik, vitro kültür41,42,43,44için önemli bir OL hayatta kalma faktörü çünkü. - Bir 37 ° C kuluçka OLs kaplama hazır olana veya en az 1 h için % 5 CO2 plaka kuluçkaya.
2. fare beyin korteksi ayrılma
- Doğum sonrası 5-7 günlük eski C57Bl/6N fare pups hızlı işten çıkarma tarafından daha önce % 70 etanol içinde temizlenmiş makas ile kurban.
Not: serebral cortices 5-6 yenidoğan fare pups üzerinden her hazırlık için kullanılmıştır. Ortalama olarak, bir fare beyin 1-1.5 x 106 OLs verir. - Kafa derisi deri orta çizgi boyunca küçük parçalara makasla kesme ve kafatası ortaya çıkarmak için geri çek.
- Kafatası dikkatle arkasında kafatasının ön alan beyin zarar görmesini önlemek için makasla yukarı kaldırarak doğru açılmasını başlayarak orta çizgi boyunca kesin. Sonra kafatasının arkasına açılış kullanarak her göz çukuru kafatasının boyunca doğru kesti.
- İyi forseps yavaşça orta uzak cortices alay ve B27NBMA 7 mL içeren 60 mm doku kültürü yemek için aktarmak için kullanın. 2.2 2.4 ile disseke cortices havuzu her beyin için yineleyin.
- Cortices 5 mL ayrılma arabellek de içeren yeni bir 60 mm doku kültürü tabak transfer (B27NBMA, 20-30 U/mL Papain ve 2500 U DNaz ben).
- #15 neşter bıçak kullanarak yaklaşık 1 mm3 küçük parçalar halinde cortices zar ve 20 dk bir 37 ° C'de % 5 CO2 kuluçka için kuluçkaya.
- 1 mL sığır büyüme serum (BGS enzimatik reaksiyon durdurmak için) ekleyin.
- Cortices ayrışma media ile birlikte bir 15 mL konik tüp 10 mL serolojik damlalıklı kullanarak aktarın.
- Yavaşça yavaşça yukarı pipetting tarafından beyin dokusundan ayırmak başlar ve 10 mL serolojik damlalıklı 6 - 8 kez kullanarak aşağı kullanarak bakım baloncuklar en aza indirmek.
- 2-3 dakika için yerleşmek ve süpernatant temiz bir tüp aktarmak doku parçaları izin.
- B27NBMA %3 10 içeren mL ekleyin BGS/2500 U DNaz ben doku için cips.
- Yavaşça yukarı ve aşağı pipetting sırasında beyin dokusundan ayırmak için 5 mL serolojik pipet kullanın 6 - 8 kez. Baloncuklar en aza indirmek için dikkatli olun.
- Doku parçaları 2-3 dakika için yerleşmek izin verir.
- Süpernatant temiz bir tüp aktarın. B27NBMA %3 10 içeren mL ekleyin BGS/DNaz ben doku için cips.
- Yavaşça P1000 damlalıklı bahşiş medya karışımı pipetting kullanarak beyin dokusu ayırmak ve beyin dokusu yukarı ve aşağı. Tekrar adımları 2,13 ve 2.14 doku yok büyük boyutta kalıncaya kadar veya B27NBMA kadar % 10 içeren BGS/DNaz yorgun, hangisi ilk olursa. Baloncuklar en aza indirmek için dikkatli olun.
- Havuzu hücre süspansiyon ile önceki supernatants.
- 50 mL tüp yer 70 µm hücre süzgeç. 10 mL serolojik damlalıklı kullanarak, havuza alınan hücre süspansiyon yavaşça 70 µm hücre süzgeç geçmek.
- B27NBMA %10 içeren 1 mL ekleyerek hücre süzgeç yıkama BGS/DNaz ben.
- Hücre süzgeç atmak. 30-%10 içeren mL için B27NBMA ile ses getirmek BGS/DNaz ben.
- Hücre süspansiyon için iki 15 mL konik tüp aktarın. Hücre süspansiyon için 200 x g, 10 dk santrifüj kapasitesi.
- Süpernatant hücreleri havaya maruz bırakmadan kaldırmak. Süpernatant hücre artıkları nedeniyle bulutlu olacak. B27NBMA %3 10 içeren mL ekleyin BGS Pelet için.
- Dikkatle P1000 damlalıklı kullanarak hücre Pelet ayırmak. %15 10 içeren mL için B27NBMA ile ses getirmek BGS.
- Hücre süspansiyon bir taze 40 µm hücre süzgeç geçmek.
- B27NBMA %10 içeren 1 mL ekleyerek hücre süzgeç yıkama BGS. Hücre süzgeç atmak.
- %30 10 içeren mL için B27NBMA ile ses getirmek BGS.
- Hücre süspansiyon için 2 x 15 mL konik tüpler aktarın. Hücre süspansiyon için 200 x g, 10 dk santrifüj kapasitesi.
- Çoğu süpernatant hücreleri havaya maruz bırakmadan kaldırmak. Hücre topakları buz soğuk manyetik hücre (MCS) arabellek sıralama 5 mL resuspend.
3. hücre sayımı ve Viabilite tespiti
- Hücre süspansiyon 100 µL Trypan mavi çözüm 400 µL 1:5 seyreltme %0,4 (w/v) elde etmek için bir 1.5 mL microcentrifuge tüp ile sulandırmak.
- Bir cam bir hemasitometre odası ve dolgu üzerinde 10 µL P10 pipet kullanarak ve kaçınarak hücre seyreltme ile iki odaları bantlayın ortalayın. Çözüm kılcal eylem tarafından kapak cam altında geçecek.
- Hemasitometre mikroskop sahnesinde yerini ve 40 X büyütme kullanarak odağı ayarlayın.
Not: Bir el karşı her beş kareler (dört köşe ve bir merkezi) kullanarak hücre sayısı kaydedilir. Yalnızca uygun olmayan hücreleri boya emer ve mavi, canlı iken görünür ve sağlıklı hücreler yuvarlak ve Refraktif görünür ve bırakmak mililitre başına uygulanabilir ve toplam hücre sayısı tayini için mavi renkli boya absorbe değil.
4. yalıtım O4+ Oligodendrocytes
- Hücre süspansiyon vasıl 200 x g 10 dk santrifüj kapasitesi.
- Dikkatle süpernatant vakum aspirasyon, hücrelerin havaya maruz kaçınarak kullanarak atmak.
- Pelet 90 µL MCS arabelleği başına 1 x 107 toplam hücreleri anti-O4 boncuk 1 x 107 hücre başına 10 µL eklenmesiyle takip resuspend.
- Hücre süspansiyon ve boncuk hafifçe parmak ile 15 mL konik tüp 4 - 5 kez flicking tarafından karıştırın.
- 4-5 timesevery 15 mL konik tüp parmak ile flicking 4 ° C'de 15 dakika karışımı kuluçkaya 5 dak.
- Karışımı yavaşça tüp 2 mL 1 x 107 hücre başına MCS arabellek ekleyerek yıkayın. 200 x g 10 dk at mix santrifüj kapasitesi.
- Süpernatant dikkatli vakum aspirasyon, hücrelerin havaya maruz kaçınarak kullanarak atmak. Hücre Pelet MCS arabelleği her 1 x 107 hücreler için 500 µL resuspend.
- Manyetik ayırıcı bir manyetik ayırıcı standına bağlayın. Manyetik ayırıcı için bir seçim sütununu ekleyin ve bir 40 µm hücre süzgeç sütun üstüne yerleştirin. İki 15 mL veya bir 50 mL konik tüp aracılığıyla akış toplamak için ayırma sütununun altında yerleştirin.
- 40-µm hücre süzgeç ve ayırma sütun MCS arabellek 3 mL ile ön durulama ve arabellek sütunu boyunca kuru izin olmadan çalıştırmak izin.
- Hücre süspansiyon ve boncuk hücre süzgeç ve seçim sütununu içine ekleyin.
- 40 µm hücre süzgeç MCS arabelleği 1 mL ile yıkayın.
- Hücre süzgeç atın ve hücreleri, boncuk ve arabellek sütunu boyunca kuru izin olmadan çalıştırmak izin.
- 3 kez ile 3 mL MCS arabellek ayırma sütun ve 1 saat OL nükleer silahların yayılmasına karşı medya ile yıkayın.
- Ayrılık sütun manyetik ayırıcıyı kaldırmak, hızlı bir şekilde 15 mL konik tüp içine yerleştirin ve hemen OL nükleer silahların yayılmasına karşı medya 5 mL ekleyin.
- Üstünde tepe-in belgili tanımlık sütun ve sıkıca bas 15 mL konik tüp etiketli hücrelere dışarı floş için lavabo pompası yerleştirin.
- Hücre sayımı ve canlılığı Trypan mavi ve hemasitometre madde 3 te belirtildiği şekilde kullanarak belirlemek için hücre süspansiyon, 100 µL kaldırın.
Not: Hücre canlılığı % 80'i yukarıda OLs kültürü ile devam etmek için kabul edilebilir olarak kabul edilir, ancak canlılığı 90 %'den büyük en uygunudur.
5. kaplama izole O4+ Oligodendrocytes
- Hücre süspansiyon için yoğunluğu (coverslip başına 5 x 105 hücre) kaplama desire seyreltik OL nükleer silahların yayılmasına karşı medya kullanımı.
Not: devam etmeden önce bir doku kültürü mikroskop kullanarak uygun hücre yoğunluğu onaylanması bu yüzden yoğunluğu tohum OL çok önemlidir. Yoğunluk 10.000 hücre/coverslips aşağıda tohum zavallı hücre yaşam için neden olabilir. Yoğunluk için 10.000 25.000, OL, kaplama morfolojik farklılaşma yavaş45yaşında. Hücre hayatta kalmasını sağlamak için en az 50.000 hücreleri/coverslips tohum bir yoğunluk OLs plaka. - Doku kültürü hood için kuluçka makinesi üzerinden laminin kaplanmış coverslips içeren 24-şey plaka taşımak.
- Laminin her coverslip kaldırın ve OL süspansiyon 100 µL ile değiştirin.
- 37 °C/5% CO2 kuluçka en fazla OL yapışma sağlar coverslips tanıtmak için 45 dk OLs kuluçkaya.
- Kuluçka sonra 24-iyi tabaklar da kuluçka kaldırın. Her sel de, 500 µL OL nükleer silahların yayılmasına karşı medya ile 24-şey plaka.
- OLs 37 °C/5% CO2 kuluçka ek 24 h için geri koyun.
- OLs, kaplama sonra 24 h nükleer silahların yayılmasına karşı medyayı çıkarın ve farklılaşma ikna etmek için OL farklılaşma medya ile yerine.
- OLs da kuluçka makinesine koyun ve hücreleri fiksasyon için hazır olana çıkarmak değil.
Not: pH değişiklikleri OLs için zararlıdır ve hücre canlılığı azaltmak, bu nedenle gereksiz kuluçka makinesi OLs kültürler kaldırılması-meli var olmak kaçmak.
6. ayirt boyama
- Hücre tespiti için yüzey işaretleyicileri (NG2, O1 ve O4) kuyulardan medyayı çıkarın.
- Fare Hibridoma supernatants (saf) O113 ve O4 (saf)13 karşı birincil antikor içeren 250 µL ekleyin ve NG2 karşı poliklonal tavşan (1:150 B27NBMA içinde seyreltilmiş).
Not: ticari olarak mevcut anti-O1 ve anti-O4 antikorları kullanılacak ise, üretici tarafından önerilen dilutions kullanmak için tavsiye edilir. - 45 dk 37 °C/5% CO2 kuluçka makinesine maksimum için birincil antikor hücrelerle kuluçkaya.
- İle iki kez % 0.05 Ara-20/1 X PBS yıkayın. %4 paraformaldehyde ile hücreleri tamir (%4 PFA) Oda sıcaklığında 10 dakika için.
- Üç kez % 0.05 ile her 5 min için ara-20/1 X PBS yıkayın.
- Alexa 488 Birleşik keçi Anti-fare IgM ya da anti-tavşan IgG ikincil antikor (1: 400) B27NBMA içinde oranında seyreltin.
- % 0.05 Ara-20/1 X PBS coverslips kaldırın. Karanlık oda sıcaklığında 1 h için ikincil antikor hücrelerle kuluçkaya.
- Üç kez % 0.05 ile her 5 min için ara-20/1 X PBS yıkayın.
- Çift Kişilik iç işaretçileri (GFAP'nin) algılama için boyama için % 0.05 Ara-20/1 X PBS ve blok/permeabilize hücre bloğu/permeabilization arabellek oda sıcaklığında 15 dakika ile kaldırma. Aksi takdirde 6.17 adıma geçin.
- Blok/permeabilization arabellek kaldırın ve 250 µL tavuk anti-blok/permeabilization arabellekte seyreltilmiş GFAP'nin (1: 100) ekleyin.
- Anti-GFAP'nin oda sıcaklığında 1 h için hücrelerle kuluçkaya. Üç kez % 0.05 ile her 5 min için ara-20/1 X PBS yıkayın.
- Alexa 594 Birleşik keçi Anti-tavuk IgG ikincil antikor (1: 400) B27NBMA içinde sulandırmak.
- % 0.05 Ara-20/1 X PBS coverslips kaldırın. Karanlık oda sıcaklığında 1 h için ikincil antikor hücrelerle kuluçkaya.
- Üç kez % 0.05 ile her 5 min için ara-20/1 X PBS yıkayın.
- 4' ile 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) counterstain ve hücreleri DAPI içeren ortam takma antifade ile monte edin.
- Coverslips gecede karanlık oda sıcaklığında tedavi edelim.
- Lekeli hücreleri bir epifluorescence mikroskopla görüntü.
Not: Bu protokol için tek tip çekim hızı kullanarak 40 X büyütme oranında hücreleri görüntüsü.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Bu çalışmada O4 için geliştirilmiş yalıtım yöntemini kurmak oldu+ hedef hücreleri en olası manipülasyon gerektiren birincil fare oligodendrocytes. Kaplama coverslips hücrelerinin tüm yordamına ötenazi ve yavrularını üzerinden yaklaşık 4 h alır ve burada gösterilen veriler üç bağımsız deneyler temsil eder. Doku ayrılma sonra ortalama 4.3 ± 0,46 x 107 hücre her bağımsız deneme için % 91'i ± %5,6 canlılığı ile izole edildi. Anti-O4 kullanarak immunomagnetic yalıtım manyetik lastikteki öğesini sonra ortalama 6.9 ± 0,38 x 106 OLs elde edilmiştir (1-1.5 x 10 fare6 ) olduğu %16,2 ± %1,6 Toplam hücre başlangıçta ayrışmış; canlılığı %96,3 ± % 3,5 yapıldı.
Resim 2: Immunomagnetically izole OLs ifade olgunlaşmamış işaretleri, 1DIV. (A)OLs faz kontrast mikroskop Haritayı çift ve üç kişilikli morfoloji altında. OLs hızlı NG2 (B), O4 (C) ve O1 (D). Çok az astrocytes 1DIV mevcuttu (C, kırmızı), ölçek çubuğu 50 µm. = 3 bağımsız deneylerden toplanan verileri. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
İmmunomagnetically izole hücre antijenik fenotip incelemek için ayirt boyama gerçekleştirilen 24 s (1DIV) ve 72 h (3DIV) hücreleri kaplama sonra yapıldı. 1DIV, hücre bı - ya da tripolar (Şekil 2A-B), faz kontrast mikroskop altında olduğu ortaya çıktı bir karakteristik özelliği erken evre OLs (OPCs ve preoligodendrocytes) Proliferasyona. Bu hücrelerin % 66,1 ± 8.4 NG2 etiketli (Şekil 2B) ve hücrelerin % %58 ± 9.4 O4 etiketli (Şekil 2C) idi. O1 (GalC)-etiketleme, bir işaret oligodendrocyte soy daha olgun hücrelerinin çok daha az yaygın (%7,4 ± %6.0, Şekil 2B). Bu marker profil hücreleri çoğunluğu bu noktada öncesi oligodendrocytes daha küçük yüzdeleri olgunlaşmamış ve olgun oligos ve muhtemelen bazı oligodendrocyte progenitör hücreler (OPCs) ile olduğunu göstermektedir. Astrocytes, boyama, 0,57 ± %1,0 (Şekil 2C) oluşan GFAP'nin tarafından kanıtladığı gibi. Bu veriler değiştirilmiş tekniği ile izole oligodendrocytes yüksek oranda saflaştırılmış ve çoğunluk ifade deseninin bir işaretçi için tipik bir olgunlaşmamış oligodendrocytes göstermek öneririz.
Şekil 3: ifade 3DIV, Olgun OLs işaretlerinin. (A)OLs faz kontrast mikroskop göstermek daha karmaşık morfoloji altında. 3DIV, NG2 ifadesi, (B) azalır ölçüde, O4 (C) ve O1 (D) artış. Kaç astrocytes 3DIV görülebilir (C, kırmızı), ölçek çubuğu 50 µm. = 3 bağımsız deneylerden toplanan verileri. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Oligodendrocyte morfoloji 3DIV, 1DIV, hücreleri daha karmaşık ortaya çıktı (Şekil 3A). Zaman bu noktada, hücreleri için erken oligodendrocyte işaretçisi NG2 çok daha düşük karşılaştırıldığında 1DIV. NG2 etiketli hücreleri olumlu sıklığını 31.2 ± %17,1 oluşur (karşı 66,1 ± 8.4 oranında 1DIV, t-test p < 0,0001, Şekil 3B, Şekil 4A). Her ne kadar burada analiz değil, hücrelerdeki NG2 için pozitif olarak kabul boyama ortalama yoğunluğu 3DIV 1DIV için karşılaştırıldığında, düşürüldü. En hücreleri (%81.9 ± %4.884, Şekil 3 c) O4-1DIV daha yüksek olan etiketleme, gösterdi (%58 ± % 9.4, t-test p < 0.0001, Şekil 4B). Ayrıca, neredeyse yarım hücreleri (%47.2 ± % 16.4, şekil 3D) O1 için boyama gösterdi (GalC), bir işaretleyici hücreleri daha olgun bir fenotip ayırt düşündüren daha olgun oligodendrocyte soyundan. O1 artış+ 3DIV hücreleri de önemli 1DIV için göre (% %7,4 ± 6.0, t-test p < 0.0001, Şekil 4 c). Varlığı astrocytes bu kez son derece düşük kaldı noktası (% 0,8 ± %1,5, Şekil 3 c) ve 1DIV için karşılaştırıldığında önemli ölçüde farklı değildi (%0,57 ± % 1.0, önemli değil (ns), Şekil 4 d). Bu sonuçlar zaman içinde izole immunomagnetically oligodendrocytes olgunlaşma astrocytes gibi diğer hücre tiplerinin çok az kirlenme ile üç aşaması içine vitro ayırt etmek mümkün olduğunu gösteriyor.
Şekil 4: miktar ifade 1DIV ve 3DIV OL işaretlerinin (A-D). 1DIV %66 hücre NG2 idi+, hücrelerin % 58 olduğunu O4+, hücrelerin % 7 idi O1+ ve hücrelerin % 0.5 idi GFAP'nin+. 3DIV hücrelerin % 31'i NG2 vardı+, hücrelerin % 81'i edildi O4+, hücrelerin % 47 idi O1+ ve hücrelerin %0,7 GFAP'nin+. Ortalama değerleri ± SD burada, sunulan *** p gösterir < 0.0001, ns = önemli değil. Veri 3 bağımsız deneylerden toplanmıştır. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Bu iletişim, biz son derece saf olgunlaşmamış fare oligodendrocyte kültürler verimli yalıtım için bir yöntem mevcut. Daha önce yayımlanmış protokolleri39,40' a göre bu yöntem GFAP'nin pozitif astrocytes çok daha düşük düzeyde ve sigara ile karakterize diğer hücrelerin çok düşük bir yüzde ile daha yüksek bir saflık vermiştir. Bu olgunlaşmamış OLs zaten oligodendroglial soy kararlı olduğunu işaret etmek önemlidir. Böylece, bu hücreler farklılaşma erken aşamalarında çalışma için yararlı olmaz.
Dincman Protokolü40 değişiklikler temel fibroblast büyüme faktörü (bFGF) bizim nükleer silahların yayılmasına karşı ortamdan kaldırılması oldu. Bu bildirilmiştir o vitro, güçlü bir mitogenic faktör olarak rol bFGF sadece OPCs farklılaşma engeller ama aynı zamanda süreçleri46,47sayısını azaltır. Ayrıca, bFGF oligodendrocyte dedifferentiation ve oligodendroglial lineage 48pasajlı hücrelerinde yaygın artırır. Bu nedenle, akla yatkın bu O4 sınırlı sayıda+ hücreleri ve A2B5 artan sayıda+ ve NG2+ Dincman çalışma40 içinde gözlenen hücre kültüründe bFGF etkisi nedeniyle olabilir.
Hücreleri izole için yöntem olarak O4 bağlama kullanarak rağmen sadece %59 hücrelerin O4 olan+ , 1DIV. Bu sonuçlar niteliksel O4 bağlama için yalıtım kullanarak, hücreleri biraz daha az % 50 O4 idi bulan Dincman ve iş arkadaşlarınızla40 benzer+ , 1DIV. PDGF sonrası mitotik geliştirme tarafından gecikmeler gösterilmiştir geçici geri alma O4+GalC- ataları A2B5 için+O4 daha sonra bile devam eden PDGF varlığında- ön progenitor benzeri hücre 49. bu nedenle, ilk gün vitro yayılması işlemi sırasında bazı olgunlaşmamış OLs O4 üzerinden bir ters karşılaşabileceğiniz olası+NG2+ O4 için-NG2+hala kalan taahhüt ederken, oligodendrocyte soy. Bu hipotez O4 olan yalıtım yaklaşık % 80 hücrelerin hemen sonra Dincman'ın bulma40 tarafından desteklenen+.
3DIV bu iletişim kuralı daha biraz daha yüksek bir OL saflık üreten biz kendi yöntemleri ile kafa kafaya bir karşılaştırma yapmak değildi ama başkaları tarafından39,40 tanımladı. Dincman ve ark. protokolü için karşılaştırıldığında 40, GFAP'nin pozitif hücre kültürleri alt sayısı içinde nükleer silahların yayılmasına karşı medya FGF eksikliği nedeniyle olabilir. Emery ve Dugas iletişim kuralı39 ile kültür yemekleri arasında yer alan sıralı geçirilmesi kullanır; astrocytes ve kültür yemekleri50 ' ye kolayca ekleyebilir ve hücreler sıralı her geçiş sonra immunopanning iletişim kuralı sırasında taşınır. Sunulan Yöntem bizim arıtma kesir bulaşıcı astrocytes tanıtan risk değil.
Bizim değiştirilmiş yöntemi daha hızlı gerçekleştirmek için yaklaşık 4 h alarak diğer iki karşılaştırılır. Biz bu gereksiz adımları ve diğer iletişim kuralları tarafından dahil kimyasalları ortadan kaldırarak elde. Örneğin, 5-6 h alır, Dincman Protokolü40' a, göre biz hem sinir dokusu ayrılma bir seti kullanımı ve ölü hücreleri kaldırmak için fare Anti-fare IgM boncuk ile OL hücre süspansiyon kuluçka atlanmış. Bunun yerine, papain ve ölü hücreleri ile cortices düşük hızlı centrifugations (200 x g) gerçekleştirerek çıkarıldı fare beyin ayrılma gerçekleştirilen.
İmmunopanning seçiminizin kaldırılmasını ve Papain arabellek doku sırasında önceden equilibrate için kullanılan O2Co2 direkt gereksinimini kaldırma yaklaşık 9 h alır, Emery Protokolü39, önemli bir değişiklik yapıldı sindirim. Bunun yerine, biz immunomagnetic seçimi ve fare beyin cortices ve Papain tampon karışımı doğrudan kuluçka CO2 kuluçka makinesine kullanılır.
Doğrudan bu çalışmada test rağmen anti-O4 lastikteki OLs sıçan, fare insan ve transgenik beyin dokusundan izole etmek için de kullanılabilir. Bu araştırma laboratuvarları ile OLs fare dışındaki kaynaklardan çalışmak faydalanmak için birden fazla doku kaynağı OLs yalıtım potansiyeli ile kullanmak için teknik çok yönlülük vurgular.
Sonuç olarak, bu çalışmada açıklanan değiştirilmiş OPC yalıtım yöntemi myelination ve hastalık demiyelinizan çalışmalarda uygulanan olabilir birincil fare oligodendrocytes elde etmek için hızlı ve belirli bir alternatif sağlar.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar hiçbir açıklamalar var.
Acknowledgments
Bu çalışmada hibe Ulusal multipl skleroz Derneği (RG4591A1/2) ve Ulusal Sağlık Enstitüleri (R03NS06740402) tarafından desteklenmiştir. Yazarlar Dr. Ivan Hernandez ve laboratuvar üyeleri laboratuvar alanı, ekipman ve tavsiyeler için teşekkür ederiz.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10ml serological pipets | Fisher Scientific | 13-676-10J | |
| 10ml syringe Luer-Loc tip | BD, Becton Dickinson | 309604 | |
| 15ml conical tubes | Falcon | 352097 | |
| 24-well tissue culture plates | Falcon | 353935 | |
| 40µm cell strainer | Fisher Scientific | 22368547 | |
| 50ml conical tubes | Falcon | 352098 | |
| 5ml serological pipets | Fisher Scientific | 13-676-10H | |
| 60mm tissue culture plates | Falcon | 353002 | |
| 70µm cell strainer | Fisher Scientific | 22363548 | |
| Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG (H+L) secondary antibody | Invitrogen | A11001 | |
| Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgM (H+L) secondary antibody | Invitrogen | A21042 | |
| Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgM (H+L) secondary antibody | Invitrogen | A11008 | |
| Alexa Fluor 594 goat anti-chicken IgG (H+L) secondary antibody | Invitrogen | A11042 | |
| Anti-O4 beads- Anti-O4MicroBeads | Miltenyi Biotec | 130-094-543 | |
| Apo-Transferrin human | Sigma | T1147 | |
| Autofil complete bottle top filter assembly, 0.22um filter, 250ml | USA Scientific | 6032-1101 | |
| Autofil complete bottle top filter assembly, 0.22um filter, 250ml | USA Scientific | 6032-1102 | |
| B27 Supplement | Invitrogen | 17504-044 | |
| Boric acid | Sigma | B7660 | |
| Bovine Growth Serum (BGS) | GE Healthcare Life Sciences | SH30541.03 | |
| BSA | Fisher Scientific | BP-1600-100 | |
| CNTF | Peprotech | 450-50 | |
| d-Biotin | Sigma | B4639 | |
| Desoxyribonuclease I (DNAse I) | Worthington | LS002007 | |
| EDTA | Fisher Scientific | S311 | |
| Epifluorescence microscope with an Olympus DP70 camera | Olympus | Bx51 | |
| Feather disposable scalpels | Andwin Scientific | EF7281C | |
| Forskolin | Sigma | F6886 | |
| German glass coverslips, #1 thickness, 12mm diameter round | NeuVitro | GG-12-oz | |
| GFAP antibody | Aves | GFAP | |
| Glucose | Fisher Scientific | D16-1 | |
| GlutaMAX | Invitrogen | 35050-61 | |
| Insulin | Invitrogen | 12585-014 | |
| Magnetic separator stand - MACS multistand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
| Magnetic separator-MiniMACS separator | Miltenyi Biotec | 130-042-302 | |
| Millex PES 0.22µm filter unit | Millipore | SLG033RS | |
| Mounting media- Prolong Gold with DAPI | Thermo Fisher | P36930 | |
| N-acetyl-cysteine (NAC) | Sigma | A8199 | |
| Natural mouse laminin | Invitrogen | 23017-015 | |
| Neurobasal Medium A | Invitrogen | 10888-022 | |
| Neurotrophin-3 (NT-3) | Peprotech | 450-03 | |
| NG2 antibody | Millipore | AB5320 | |
| Papain | Worthington | LS003126 | |
| PBS without Ca2+ and Mg2+ | Sigma | D5652 | |
| PDGF | Peprotech | 100-13A | |
| Petri dishes | Falcon | 351029 | |
| Poly-D-Lysine | Sigma | P6407 | |
| Primocin | Invivogen | ant-pm-2 | |
| Progesterone | Sigma | P8783 | |
| Putrescine | Sigma | P5780 | |
| Selection column-LS columns | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
| Sodium Selenite | Sigma | S5261 | |
| Trace elements B | Corning | 25-000-CI | |
| Triiodothyronine (T3) | Sigma | T6397 | |
| Triton-X | Sigma | T8787 | |
| Trypan Blue Solution | Corning | 25-900-CI | |
| Tween 20 | Sigma | P1379 | |
| B27NBMA | 487.75 mL Neurobasal Medium A; 10 mL B27 Supplement; 1 mL Primocin; 1.25 mL Glutamax; Filter sterilize and store at 4 °C until use. | ||
| B27NBMA + 10% BGS | 27 mL B27NBMA; 3 mL Bovine growth serum | ||
| CNTF solution stock (10 µg/ml; 1000X) | Order from Peprotech (450-50). Make up at 0.1 to 1 mg/ml according to Manufacturer’s instruction (may vary from lot to lot) in buffer (e.g. DPBS + 0.2% BSA). Store at -80 °C. Working solution (10 µg/ml, 1000X) 1. Make on 0.2% BSA (Fisher scientific BP-1600-100) in DPBS solution and filter sterilize. 2. Dilute master stock aliquot to 10µg/ml in sterile, chilled 0.2% BSA/DPBS. 3. Aliquot (20µl/tube) and snap freeze in liquid nitrogen. 4. Store aliquots at -80 °C. |
||
| d-Biotin stock solution (50 µg/ml; 5000X) | Resuspend d-Biotin (Sigma-B4639) in double-distilled H2O at 50 µg/ml (e.g. 2.5 mg in 50 ml of ddH2O). Resuspension might take fair amount of agitation/vortexing, or mild warming briefly at 37°C. If the d-Biotin still will not solubilize, it is fine to make up a less concentrated (e.g. 10µg/ml), and to add a higher volume to the B27NBMA (1/1000), instead of 1/5000). Store at 4°C. | ||
| DNase I stock solution | 1. Dissolve at 12,500 U Deoxyribonuclease I / ml in HBSS chilled on ice. 2. Filter sterilize on ice 3. Aliquot at 200 µl and freeze overnight at -20°C. 4. Store aliquots at -20 to -30°C. |
||
| Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (w/o Ca2+ and Mg2+) | Dissolve pouch in 1 Liter of water to yield 1 liter of medium at 9.6 grams of powder per liter of medium. Store at 2-8 °C. | ||
| Forskolin stock solution (4.2 mg/ml; 1000X) | Add 1 ml of sterile DMSO to 50 mg Forskolin in bottle (Sigma-F6886) and pipette until resuspended. Transfer to a 15 ml centrifuge tube and add 11 ml of sterile DMSO to bring to 4.2 mg/ml. Aliquot (e.g. 20 µl) and store at -20°C. | ||
| Hank’s balanced salts (HBSS) (Sigma | 1. Measure 900 ml of water (temperature 15-20 °C) in a cylinder and stir gently. 2. Add the power and stir until dissolved. 3. Rinse original package with a small amount of water to remove all traces of the powder. 4. Add to the solution in step 2. 5. Add 0.35 gr of sodium bicarbonate (7.5% w/v) for each liter of final volume. 6. Keep stirring until dissolved. 7. Adjust the pH of the buffer while stirring to 0.1-0.3 units below pH= 7.4 since it may rise during filtration. The use of 1N HCl or 1N NaOH is recommended to adjust the pH. 8. Add additional water to bring the final volume to 1L. 9. Sterilize by filtration using a membrane with a porosity of 0.22 microns. 10. Store at 2-8 °C. |
||
| Insulin stock solution (4000 µg/ml) | Thaw the bottle and aliquot 25 µl per microcentrifuge tube and store at -20°C. | ||
| Laminin solution | Slowly thaw laminin in the cold (2°C to 8°C) to avoid gel formation. Then, aliquot into polypropylene tubes. Store at 5° C to -20° C in aliquots (e.g. 20 µl) and do not freeze/thaw repeatedly. Laminin may be stored at these temperatures for up to six months. | ||
| Magnetic Cell Sorting (MCS) Buffer | Prepare the solution containing phosphate-buffered saline (PBS), pH 7.2, and 0.5% bovine serum albumin (BSA), 0.5 mM EDTA, 5µg/ml Insulin, 1 g/L Glucose. Sterilize and degas by filtration the buffer by passing it through a 0.22 µm Millex filter. Store the buffer at 4°C until use | ||
| N-Acetyl-L-cysteine (NAC) stock solution (5mg/ml; 1000X) | Dissolve N-Acetyl-L-cysteine (Sigma-A8199) at 5 mg/ml in DMEM (e.g. 50 mg NAC in 10 ml B27NBMA). Filter sterilize and aliquot (e.g. 20 µl). Store at -20°C. | ||
| NT3 stock solution (1 µg/ml; 1000X) | Master stock: Order from Peprotech (450-03). Make up at 0.1 to 1 mg/ml according to manufacturer’s instructions (may vary from lot to lot), in buffer (e.g. DPBS + 0.2% BSA). Store at -80°C. Working stock (1µg/ml; 1000X): 1. Make on 0.2% BSA in DPBS solution and filter sterilize. 2. Dilute master stock aliquot to 1 µg/ml in sterile, chilled 0.2% BSA/DPBS. 3. Aliquot (e.g. 20µl/tube) and snap freeze in liquid nitrogen. 4. Store aliquots at -80°C. |
||
| PDGF stock solution (10 µg/ml; 1000X) | Master stock: Order from Peprotech (100-13A). Make up at 0.1 to 1 mg/ml according to manufacturer’s instructions (may vary from lot to lot) in buffer (e.g. DPBS) + 0.2% BSA). Store at -80°C. Working stock (1µg/ml; 1000X): 1. Make on 0.2% BSA in DPBS solution and filter sterilize. 2. Dilute master stock aliquot to 1µg/ml in sterile, chilled 0.2% BSA/DPBS. 3. Aliquot (e.g. 20µl/tube) and snap freeze in liquid nitrogen. 4. Store aliquots at -80°C. |
||
| Poly-D-lysine (1mg/ml; 100X) | Resuspend poly-D-lysine, molecular weight 70-150 kD (Sigma P6407) at 0.5mg/ml in 0.15M boric acid pH 8.4 (e.g. 50mg in 50ml borate buffer). Filter sterilize and aliquot (e.g. 100µl/tube). Store at -20°C. Prior to use, dilute the 100X stock (1mg/ml) to 50 µg/ml in sterile water. | ||
| Oligodendrocyte proliferation media | see Supplementary Table 1 | ||
| Oligodendrocyte differentiation media | see Supplementary Table 1 | ||
| Sato supplement (100X) | see Supplementary Table 1 | ||
| References: the list of reagents and recipes were adopted from the protocols previously described by Emery et. al. 2013 (Emery, B. & Dugas, J. C. Purification of oligodendrocyte lineage cells from mouse cortices by immunopanning. Cold Spring Harb Protoc. 2013 (9), 854-868, doi:10.1101/pdb.prot073973, (2013)) and Dincman et. al. (Dincman, T. A., Beare, J. E., Ohri, S. S. & Whittemore, S. R. Isolation of cortical mouse oligodendrocyte precursor cells. J Neurosci Methods. 209 (1), 219-226, doi:10.1016/j.jneumeth.2012.06.017, (2012)) |
References
- Emery, B. Regulation of oligodendrocyte differentiation and myelination. Science. 330 (6005), 779-782 (2010).
- Yang, Z., Watanabe, M., Nishiyama, A. Optimization of oligodendrocyte progenitor cell culture method for enhanced survival. J Neurosci Methods. 149 (1), 50-56 (2005).
- Niu, J., et al. An efficient and economical culture approach for the enrichment of purified oligodendrocyte progenitor cells. J Neurosci Methods. 209 (1), 241-249 (2012).
- Zhang, S. C. Defining glial cells during CNS development. Nat Rev Neurosci. 2 (11), 840-843 (2001).
- Pfeiffer, S. E., Warrington, A. E., Bansal, R. The oligodendrocyte and its many cellular processes. Trends Cell Biol. 3 (6), 191-197 (1993).
- Hart, I. K., Richardson, W. D., Heldin, C. H., Westermark, B., Raff, M. C. PDGF receptors on cells of the oligodendrocyte-type-2 astrocyte (O-2A) cell lineage. Development. 105 (3), 595-603 (1989).
- Nishiyama, A., Lin, X. H., Giese, N., Heldin, C. H., Stallcup, W. B. Interaction between NG2 proteoglycan and PDGF alpha-receptor on O2A progenitor cells is required for optimal response to PDGF. J Neurosci Res. 43 (3), 315-330 (1996).
- Pringle, N. P., Mudhar, H. S., Collarini, E. J., Richardson, W. D. PDGF receptors in the rat CNS: during late neurogenesis, PDGF alpha-receptor expression appears to be restricted to glial cells of the oligodendrocyte lineage. Development. 115 (2), 535-551 (1992).
- Grinspan, J. B., Franceschini, B. Platelet-derived growth factor is a survival factor for PSA-NCAM+ oligodendrocyte pre-progenitor cells. J Neurosci Res. 41 (4), 540-551 (1995).
- Sharifi, K., et al. Differential expression and regulatory roles of FABP5 and FABP7 in oligodendrocyte lineage cells. Cell Tissue Res. 354 (3), 683-695 (2013).
- Chittajallu, R., Aguirre, A., Gallo, V. NG2-positive cells in the mouse white and grey matter display distinct physiological properties. J Physiol. 561 (Pt 1), 109-122 (2004).
- Bansal, R., Warrington, A. E., Gard, A. L., Ranscht, B., Pfeiffer, S. E. Multiple and novel specificities of monoclonal antibodies O1, O4, and R-mAb used in the analysis of oligodendrocyte development. J Neurosci Res. 24 (4), 548-557 (1989).
- Sommer, I., Schachner, M. Monoclonal antibodies (O1 to O4) to oligodendrocyte cell surfaces: an immunocytological study in the central nervous system. Dev Biol. 83 (2), 311-327 (1981).
- Boda, E., et al. The GPR17 receptor in NG2 expressing cells: focus on in vivo cell maturation and participation in acute trauma and chronic damage. Glia. 59 (12), 1958-1973 (2011).
- Dean, J. M., et al. Strain-specific differences in perinatal rodent oligodendrocyte lineage progression and its correlation with human. Dev Neurosci. 33 (3-4), 251-260 (2011).
- Yu, W. P., Collarini, E. J., Pringle, N. P., Richardson, W. D. Embryonic expression of myelin genes: evidence for a focal source of oligodendrocyte precursors in the ventricular zone of the neural tube. Neuron. 12 (6), 1353-1362 (1994).
- Armstrong, R. C., Dorn, H. H., Kufta, C. V., Friedman, E., Dubois-Dalcq, M. E. Pre-oligodendrocytes from adult human CNS. J Neurosci. 12 (4), 1538-1547 (1992).
- Gard, A. L., Pfeiffer, S. E. Oligodendrocyte progenitors isolated directly from developing telencephalon at a specific phenotypic stage: myelinogenic potential in a defined environment. Development. 106 (1), 119-132 (1989).
- Bjelke, B., Seiger, A. Morphological distribution of MBP-like immunoreactivity in the brain during development. Int J Dev Neurosci. 7 (2), 145-164 (1989).
- Hardy, R. J., Friedrich, V. L. Jr Progressive remodeling of the oligodendrocyte process arbor during myelinogenesis. Dev Neurosci. 18 (4), 243-254 (1996).
- Hartman, B. K., Agrawal, H. C., Kalmbach, S., Shearer, W. T. A comparative study of the immunohistochemical localization of basic protein to myelin and oligodendrocytes in rat and chicken brain. J Comp Neurol. 188 (2), 273-290 (1979).
- Wei, Q., Miskimins, W. K., Miskimins, R. Stage-specific expression of myelin basic protein in oligodendrocytes involves Nkx2.2-mediated repression that is relieved by the Sp1 transcription factor. J Biol Chem. 280 (16), 16284-16294 (2005).
- Stolt, C. C., et al. Terminal differentiation of myelin-forming oligodendrocytes depends on the transcription factor Sox10. Genes Dev. 16 (2), 165-170 (2002).
- Emery, B., et al. Myelin gene regulatory factor is a critical transcriptional regulator required for CNS myelination. Cell. 138 (1), 172-185 (2009).
- Reynolds, R., Wilkin, G. P. Development of macroglial cells in rat cerebellum. II. An in situ immunohistochemical study of oligodendroglial lineage from precursor to mature myelinating cell. Development. 102 (2), 409-425 (1988).
- Scolding, N. J., et al. Myelin-oligodendrocyte glycoprotein (MOG) is a surface marker of oligodendrocyte maturation. J Neuroimmunol. 22 (3), 169-176 (1989).
- Fewster, M. E., Scheibel, A. B., Mead, J. F. The preparation of isolated glial cells from rat and bovine white matter. Brain Res. 6 (3), 401-408 (1967).
- Gard, A. L., Williams, W. C. 2nd, Burrell, M. R. Oligodendroblasts distinguished from O-2A glial progenitors by surface phenotype (O4+GalC-) and response to cytokines using signal transducer LIFR beta. Dev Biol. 167 (2), 596-608 (1995).
- Gard, A. L., Pfeiffer, S. E. Glial cell mitogens bFGF and PDGF differentially regulate development of O4+GalC- oligodendrocyte progenitors. Dev Biol. 159 (2), 618-630 (1993).
- Barres, B. A., Raff, M. C. Proliferation of oligodendrocyte precursor cells depends on electrical activity in axons. Nature. 361 (6409), 258-260 (1993).
- Behar, T., McMorris, F. A., Novotny, E. A., Barker, J. L., Dubois-Dalcq, M. Growth and differentiation properties of O-2A progenitors purified from rat cerebral hemispheres. J Neurosci Res. 21 (2-4), 168-180 (1988).
- Vitry, S., Avellana-Adalid, V., Lachapelle, F., Baron-Van Evercooren, A. Migration and multipotentiality of PSA-NCAM+ neural precursors transplanted in the developing brain. Mol Cell Neurosci. 17 (6), 983-1000 (2001).
- Duncan, I. D., Paino, C., Archer, D. R., Wood, P. M. Functional capacities of transplanted cell-sorted adult oligodendrocytes. Dev Neurosci. 14 (2), 114-122 (1992).
- Goldman, J. E., Geier, S. S., Hirano, M. Differentiation of astrocytes and oligodendrocytes from germinal matrix cells in primary culture. J Neurosci. 6 (1), 52-60 (1986).
- Althaus, H. H., Montz, H., Neuhoff, V., Schwartz, P. Isolation and cultivation of mature oligodendroglial cells. Naturwissenschaften. 71 (6), 309-315 (1984).
- McCarthy, K. D., de Vellis, J. Preparation of separate astroglial and oligodendroglial cell cultures from rat cerebral tissue. J Cell Biol. 85 (3), 890-902 (1980).
- Szuchet, S., Yim, S. H. Characterization of a subset of oligodendrocytes separated on the basis of selective adherence properties. J Neurosci Res. 11 (2), 131-144 (1984).
- Chew, L. J., DeBoy, C. A., Senatorov, V. V. Jr Finding degrees of separation: experimental approaches for astroglial and oligodendroglial cell isolation and genetic targeting. J Neurosci Methods. 236, 125-147 (2014).
- Emery, B., Dugas, J. C. Purification of oligodendrocyte lineage cells from mouse cortices by immunopanning. Cold Spring Harb Protoc. 2013 (9), 854-868 (2013).
- Dincman, T. A., Beare, J. E., Ohri, S. S., Whittemore, S. R. Isolation of cortical mouse oligodendrocyte precursor cells. J Neurosci Methods. 209 (1), 219-226 (2012).
- Buttery, P. C., ffrench-Constant, C. Laminin-2/integrin interactions enhance myelin membrane formation by oligodendrocytes. Mol Cell Neurosci. 14 (3), 199-212 (1999).
- Chun, S. J., Rasband, M. N., Sidman, R. L., Habib, A. A., Vartanian, T. Integrin-linked kinase is required for laminin-2-induced oligodendrocyte cell spreading and CNS myelination. J Cell Biol. 163 (2), 397-408 (2003).
- Colognato, H., Ramachandrappa, S., Olsen, I. M., ffrench-Constant, C. Integrins direct Src family kinases to regulate distinct phases of oligodendrocyte development. J Cell Biol. 167 (2), 365-375 (2004).
- ffrench-Constant, C., Colognato, H. Integrins: versatile integrators of extracellular signals. Trends Cell Biol. 14 (12), 678-686 (2004).
- Oh, L. Y., Yong, V. W. Astrocytes promote process outgrowth by adult human oligodendrocytes in vitro through interaction between bFGF and astrocyte extracellular matrix. Glia. 17 (3), 237-253 (1996).
- Besnard, F., Perraud, F., Sensenbrenner, M., Labourdette, G. Effects of acidic and basic fibroblast growth factors on proliferation and maturation of cultured rat oligodendrocytes. Int J Dev Neurosci. 7 (4), 401-409 (1989).
- Armstrong, R., Friedrich, V. L., Holmes, K. V., Dubois-Dalcq, M. In vitro analysis of the oligodendrocyte lineage in mice during demyelination and remyelination. J Cell Biol. 111 (3), 1183-1195 (1990).
- Grinspan, J. B., Stern, J. L., Franceschini, B., Pleasure, D. Trophic effects of basic fibroblast growth factor (bFGF) on differentiated oligodendroglia: a mechanism for regeneration of the oligodendroglial lineage. J Neurosci Res. 36 (6), 672-680 (1993).
- Mason, J. L., Goldman, J. E. A2B5+ and O4+ Cycling progenitors in the adult forebrain white matter respond differentially to PDGF-AA, FGF-2, and IGF-1. Mol Cell Neurosci. 20 (1), 30-42 (2002).
- Schildge, S., Bohrer, C., Beck, K., Schachtrup, C. Isolation and culture of mouse cortical astrocytes. J Vis Exp. (71), (2013).
