Summary
Infarctus aigu du myocarde chez la souris induit des changements aigus mais incomplètement caractérisées en fonction du ventricule gauche (VG). LV cathétérisme chez les souris subissant l’occlusion de l’artère coronaire est une nouvelle méthode pour une évaluation en temps réel de la fonction ventriculaire.
Abstract
Infarctus aigu du myocarde peut conduire à une insuffisance cardiaque aiguë et un choc cardiogénique. L’évaluation de l’hémodynamique est critique pour l’évaluation de toute approche thérapeutique potentielle dirigée contre la dysfonction ventriculaire gauche aiguë de (LV). Modalités d’imagerie actuelles (e.g., échocardiographie et imagerie par résonance magnétique) présentent plusieurs limites puisque impossible de mesurer directement les données de pression de LV. LV cathétérisme chez les souris subissant l’occlusion de l’artère coronaire pourrait constituer une nouvelle méthode pour une évaluation en temps réel de la fonction ventriculaire.
Au début de la procédure, les souris ont été anesthésiés suivie d’une intubation endotrachéale. Au cathétérisme LV, l’artère carotide droite a été exposée par incision de milieu-cou. Le cathéter a été introduit et placé dans la cavité de LV. Thoracotomie a été réalisée et l’artère coronaire principale gauche (LCA) a été ligaturé. Pour induire la reperfusion, la suture est sortie après que 45 min. pression-volume données ont été enregistrées en permanence.
Ligature de la LCA provoqua une diminution de la fonction systolique VG comme en témoigne une réduction de 30 % en volume systolique, la fraction d’éjection (Fe) LV et le débit cardiaque. DP/dt maximal comme paramètre pour la contractilité LV a été également significativement réduite et de la fonction diastolique a été sévèrement réduite (dP/dt minimum -40 %). Reperfusion sur une période de 20 min ne conduit pas à un rétablissement complet de la fonction ventriculaire.
Analyse en temps réel la pression-volume a servi une procédure valide pour surveiller la fonction cardiaque au cours de l’infarctus aigu du myocarde chez les souris. Maintien d’anesthésie stable et une approche chirurgicale standardisée a été cruciale pour assurer la validité des résultats. Comme la phase précoce de l’infarctus aigu du myocarde est essentielle pour la morbidité et la mortalité, la méthode délimitée pourrait être bénéfique pour l’évaluation préclinique de nouvelles stratégies pour la cardioprotection.
Introduction
Les maladies cardiovasculaires sont la cause la plus fréquente de décès dans la civilisation occidentale1. Infarctus aigu du myocarde est un événement critique, qui est lié à la forte mortalité aiguë et chronique2. Même si la revascularisation est obtenu par l’intermédiaire d’urgence intervention coronarienne percutanée (ICP), la mortalité reste élevée, en particulier dans les premières 48 h après l’apparition des symptômes chez les patients atteints d’infarctus aigu du myocarde3. Le Choc cardiogénique causé par la réduction aiguë de la fonction du ventricule gauche (VG) est une cause majeure de mortalité hospitalière dans ces patients3. Cette réduction précoce en fonction ventriculaire est causée par des lésions du myocarde après ischémie et reperfusion. Ce que l'on appelle ischémie/reperfusion (je / R) blessure est médiée par des changements cellulaire métabolome comme production exagérée de de4,espèces réactives de l’oxygène5.
Pour explorer les mécanismes de protection possibles conduisant à une diminution des dommages myocardiques en milieu préclinique, modèles murins fiables sont essentielles, y compris les méthodes d’évaluation de poteau-I/R LV fonction6. Dans ce cadre, l’échocardiographie transthoracique7 et l’imagerie par résonance magnétique (IRM)6 sont largement utilisés pour phénotypage fonctionnel8,9. Cependant, ces méthodes ne conviennent pas pour l’évaluation de grave dysfonctionnement VG et un choc cardiogénique dans un infarctus aigu du myocarde en cours et ne peut pas afficher directement les données sur la pression VG. L’appareil de Langendorff utilisant des coeur isolé dans un test ex vivo fournit des informations sur le sous-jacent pathomécanismes des premières phases I / R blessure10. Cette méthode est limitée en raison de son incapacité à reproduire in vivo des mécanismes d’adaptation tels que la régulation du système nerveux autonome ou régulation hormonale et homéostasie d’acide-base. Aucune méthode n’est actuellement disponible pour un phénotypage fonctionnel complet de choc cardiogénique et dysfonction ventriculaire gauche durant un cours myocardique je / blessure de R.
Une approche synchronisée avec combinaison de cathétérisme de pression-volume (PV) et l’occlusion transitoire chirurgicale principale artère coronaire gauche (LCA) pourrait être bénéfique, mais techniquement exigeantes. Stabilité hémodynamique extracardiaque durant j’ai / blessure R sont essentielles pour la validité des résultats depuis unstable anesthésie ou perte de sang pourrait fortement influencer les résultats. Un roman approche pour le phénotypage hémodynamique d’I / R blessure via PV LV cathétérisme et transitoires LCA occlusion pourrait apporter de nouveaux aperçus sur le choc cardiogénique et dysfonction VG dans l’infarctus aigu du myocarde et sert de méthode pour des analyses sur cardioprotection.
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Protocol
Toutes les expériences ont été achevées en conformité et le respect de tous les règlements pertinents (« Convention européenne pour la Protection des animaux vertébrés utilisés pour expérimental et d’autres fins scientifiques (Directive 2010/63/UE) et les soins aux animaux était en conformément aux lignes directrices. Toutes les expériences ont été réalisées avec les souris C57BL/6JRj mâles à l’âge de 6 mois.
1. préparation
- Préparer un microscope chirurgical et un coussin chauffant ainsi qu’une sonde rectale pour surveiller la température du corps. Nettoyer et stériliser tous les instruments chirurgicaux.
- Préparer 2 morceaux de 10 cm de fil de soie de 5-0 pour ligature de navire, 5 cm de fil en polypropylène 6-0 et tube silicone 2 mm pour la ligature de la LCA.
- Préparer la cupule de calibrage de cathéter de PV de préchauffage à 37 ° C et préparer un 100µl Hamilton seringue remplie de 15 % de chlorure de sodium (NaCl) dans H2O pour étalonnage saline.
- Cathéter de place le PV (3 cm, F 1,4) à 37 ° C préchauffé à 0,9 % NaCl en H2O (solution saline) au moins 30 min avant la mesure. Raccorder le cathéter sur le matériel d’acquisition de données et connectez le périphérique à un convertisseur analogique/numérique. Connecter les deux périphériques à un ordinateur.
- Configurer le logiciel. Effectuer calibration guidée logiciel pression et étalonnage de conductance comme exigé par le guidage logiciel de flux de travail8.
2. anesthésie et analgésie
- Anesthésier la souris à l’aide de kétamine 100 mg/kg de poids corporel et de xylazine chlorhydrate 10 mg/kg de poids corporel par injection intrapéritonéale. Au début d’I / chirurgie R, administrer des corps de 0,05 mg/kg poids buprénorphine par voie intrapéritonéale pour maintenir une analgésie.
- Après 10 min, effectuer une intubation endotrachéale à l’aide d’un cathéter (iv) par voie intraveineuse de 20 G et ventilez la souris avec 40 % d’oxygène (O2) et 2 % (v) l’isoflurane. Définir les paramètres de ventilation approprié (par exemple, 220 µL AVC volume, 150/min pour une souris C57BL/6JRj de 25-30 g).
- Surveiller en permanence le corps température par sonde rectale. Fixer la souris sur la plaque chauffée avec la tête dirigée vers l’enquêteur. Température normale du corps de la souris est de 36,5-38 ° C. Maintenir la température corporelle au sein de 1 degré par réglage de la température de la plaque chauffante.
3. gauche cathétérisme ventriculaire
- Désinfecter la poitrine et le cou avec trois gommages alternance de bétadine et 70 % d’alcool. Attendez de désinfectant de la peau de sécher. Enlever les poils du torse en utilisant un système de petits animaux rasage.
- Effectuer une incision médiane longitudinale de 10 mm 5 mm sous la lèvre inférieure vers le sternum à l’aide de petits ciseaux chirurgicaux.
- Disséquer la partie gauche et droite de la glande sous-maxillaire via émoussé préparation à l’aide d’une pince. Séparer le tissu de muscle et la graisse dans la région de paratrachéal droit d’exposer l’artère carotide commune droite. Mobiliser et séparer le navire d’une longueur totale de 5 à 10 mm de tissu conjonctif via une préparation soigneuse émoussé aux côtés du navire avec une pince courbée.
NOTE : Éviter une manipulation mécanique du nerf ou le glomus carotidien en tout temps car cela peut provoquer une bradycardie et une hypotension grave. - Passer les deux fils de soie disposés sous le bateau. Ligaturer le vaisseau distal avec un nœud serré et placer un noeud lâche sur la région proximale exposée qui permet encore le passage du cathéter.
- Fixer les fils du noeud crânien (serré) à côté de la tête des souris pour appliquer une légère tension sur le navire que cela facilitera la mise en place du cathéter. Placer une pince vasculaire Surgicel bord proximal proximale du nœud lâche de façon réversible obstrue l’écoulement du sang.
- Effectuer une incision en forme de coin 1 mm proximal au noeud crânien pour ouvrir le navire avec des ciseaux micro.
NOTE : Une petite goutte de sang indiquera la bonne exécution de cette étape. - Insérer le cathéter soigneusement pour 10 mm. démarrer l’enregistrement des données de cathéter.
Remarque : S’étendant de l’incision avec une pince peut rendre ce processus plus facile. - Extrait de la pince vasculaire. Ajouter 1 à 2 gouttes de solution saline à l’incision pour faciliter le déplacement du cathéter. Continuer à introduire le cathéter pour un autre 10 mm environ. Après avoir passé le noeud proximal avec l’embout du capteur, attacher le noeud avec soin juste assez pour empêcher le sang reflux aux côtés des parties les plus minces du cathéter sans entraver le déplacement du cathéter.
Remarque : La taille du capteur à l’extrémité du cathéter empêche le reflux du sang lors de l’extraction de la pince vasculaire. - Doucement continuez à insérer le cathéter jusqu'à ce que la pression analyse montre la pression sanguine artérielle profil indiquant que le cathéter est placé dans l’aorte (Figure 3 a).
Remarque : Le cathéter pour atteindre la valve aortique s’accompagnera par résistance légère et le mouvement synchronisé à l’impulsion du cathéter. - En éprouvant la résistance essayant de faire progresser à travers la valve aortique, retirer le cathéter arrière 5 mm et avance à nouveau jusqu'à ce que le cathétérisme LV sera indiqué un changement dans l’analyse de PV comme pression diastolique atteindra 0 - 20 mmHg (Figure 3 b). Noter les changements dans le volume de contrôle pour confirmer les placement ventriculaire gauche de la pointe du capteur (Figure 3). Fixer le noeud proximal plus étroitement pour éviter tout mouvement de cathéter.
4. ischémie/Reperfusion chirurgie
- Inciser peau de bréchet caudale vers l’aisselle gauche pour une longueur totale de 15 mm. Procédez avec préparation émoussée des couches deux musculaires jusqu'à ce que les côtes peuvent être visualisées.
- Ouvrir la thorax par incision entre les troisième et quatrième côtes gauche. Utilisez les crochets chirurgicaux pour accéder au péricarde. Résection du péricarde au-dessus du cœur. Avant de continuer avec la ligature de LCA, attendre 30 s sans toucher l’animal pour enregistrer des données de PV pour analyse valable.
- Localiser l’ACV émergeant dans l’oreillette gauche et descendant sur le côté gauche du cœur vers l’apex. Utilisez une suture en polypropylène de 6-0 pour encercler l’artère avec une boucle de 2 mm sous l’oreille gauche. Placer un tube de silicone petit sous la boucle et un nœud serré ci-dessus.
NOTE : Gris myocarde distale sert de témoin positif de LCA occlusion6. J’ai une chirurgie R doit être effectués moins de 5 min indépendamment de l’enquêteur d’exploitation. - Couper la suture à 1 mm de longueur. Libérer les crochets chirurgicaux et fermer manuellement les couches musculaires au-dessus de l’incision. Attendre 45 min tout en enregistrant en continu les données PV.
- Après 45 min, ré-ouvrir l’incision et retirer le tube de silicone pour induire la reperfusion. Enregistrer des données pendant 20 min.
Remarque : Un changement d’une couleur rouge comme on le voit avant l’ischémie indique reperfusion réussie.
5. Etalonnage
Remarque : Le calibrage du système PV cathéter se compose de 4 étapes obligatoires, dont deux doivent être effectuées après la mesure. Étalonnage doit être répétée après chaque expérience pour assurer la validité des résultats.
- Effectuer le calibrage de la pression et l’étalonnage de la conductance avant l’expérience, tel que décrit à l’étape 1.5.
- Procéder au calage du salin lorsque le cathéter est toujours placé dans le ventricule gauche, une fois terminée l’expérience elle-même. Localiser le latéral droit veine jugulaire de l’artère carotide dans la zone préparée. Injecter 10 µL 25 % NaCl en H2O via un Hamilton seringue tandis que l’enregistrement des données.
- Calculer l’étalonnage à l’aide du logiciel d’acquisition en mettant en évidence la phase ascendante de la courbe de volume (Figure 5). Répétez ce processus pour un total de 3 fois. Éviter la perte de sang après extraction de la seringue en utilisant une pince vasculaire pour compresser rapidement le pneu crevé.
- Procéder au calage du volume pour étalonner l’acquisition de données de volume par l’analyse des volumes normalisés. Obtenir le sang de souris environ 500 µL de ponction cardiaque avec une seringue héparinée légèrement 1 mL (p. ex., 5 µL par héparine 200 de IE). Retirer le cathéter PV 10-15 mm pour éviter d’endommager le cathéter.
- Remplir le sang obtenu dans la cupule de calibration préchauffé de 37 ° C (Figure 5 a). Évitez les bulles car il peut interférer avec les résultats. Ajouter l’extrémité du cathéter dans chaque puites et enregistrements des données. Obtenir une courbe d’étalonnage par analyse guidée par logiciel (Figure 5 b). Répétez le processus pour un total de 3 fois.
- Euthanasier souris par exsanguination ou dislocation cervicale alors que l’anesthésie isoflurane suffisante est maintenue en tout temps.
6. analyse de données
- Après avoir terminé les étapes d’étalonnage, effectuer une analyse de données guidée par logiciel. Donc, mettez en surbrillance la section appropriée (au moins dix cycles) au sein de la section de l’analyse du Flux de travail de PV et effectuer une analyse de base. Exclure des cycles avec des déviations en raison de la ventilation ou la manipulation si nécessaire (Figure 3D).
- Effectuer l’analyse de base de PV avant le passage de la valve aortique (pression artérielle), immédiatement avant et après l’occlusion de l’ACV. Continuez en effectuant l’analyse de base de PV et à des intervalles de 5 min. pendant l’ischémie et après la reperfusion. À la fin de l’expérience, effectuer une analyse de données de pression après retrait du cathéter du ventricule gauche (pression artérielle).
- Analyser au moins 10 cycles consécutifs afin d’éviter l’erreur d’échantillonnage. Quand une perturbation importante de l’expérience obtenu les valeurs avec la ventilation, l’interruption temporaire de la ventilation pour un maximum de 5 s sont envisageables.
- Utilisez les paramètres suivants qui sont calculés en Analyse de base (Figure 3D) pour caractériser la fonction VG :
- Volume systolique (µL)
- Fraction d’éjection : volume de course / fin de diastole volume (%)
- Débit cardiaque : volume de course * fréquence cardiaque (µL/min)
- Index cardiaque : débit cardiaque / body superficie (µL/(min*cm²)
- Temps de travail : zone intérieure de la courbe de PV (mmHg * µL)
- Pression maximale (Pmax) ; Pression moyenne (Pmoy)
- dP/dt Max (mmHg/s) en tant que paramètre de la fonction systolique ventriculaire
- min dP/dt (mmHg/s) comme paramètre pour la conformité LV
- Constante de temps de relaxation isovolumétriques : Tau (ms)
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Representative Results
Après cathétérisme de LV, ligature de LCA réversible fut jouée pendant 45 min, suivie d’une reperfusion de 10 min. PV des données a été enregistrées à tous les fois (Figure 1).
Mise en place correcte du cathéter PV a été confirmé en obtenant le graphe caractéristique de PV LV (Figure 2 a). Placement de cathéter LV a montré la gamme typique de la pression ventriculaire avec un minimum de 0 - 20 mm Hg alors que faux placement du cathéter-PV dans l’aorte aurait montré une courbe typique de la pression artérielle avec une pression minimale de 30 à 60 mmHg (pression artérielle diastolique ) et une petite excursion à la fin de systole indiquant la valve aortique de fermeture (Figure 3 b et 3C). L’occlusion réussie de la LCA a confirmé visuellement blanchir du myocarde LV distal (Figure 2 b).
Après l’occlusion de la LCA, données PV a été acquise dans des intervalles de 5 min. Analyse de données de pression ne démontré aucune variation maximale systolique LV indiquant la perfusion périphérique préservée et anesthésie stable (Figure 4 a). L’analyse du volume LV a révélé une diminution significative dans les deux EF (52 % vs. 40 %, p = 0,008) et le volume systolique absolue (Figure 4 b et 4C). Ces changements, qui s’est passé dans la phase précoce d’ischémie et de données fonctionnelles LV est demeurées inchangées dans la phase ultérieure de l’ischémie. DP/dt maximal en tant que paramètre de la contractilité de LV ont montré une réduction de 30 % chez les souris en cours de l’ischémie myocardique. Travail de course était 30 % réduit (Figure 4 et 4E). Comme paramètre pour la fonction diastolique, dP/dt minimum diminue significativement altérée LV conformité (Figure 4F). Reperfusion par extraction du tube silicone a été validée visuellement. Reperfusion n’a pas montré des changements significatifs dans l’analyse de données PV dans un délai de 20 min (Figure 4 a-4D). Les animaux opérés n’ont pas montré une réduction significative en BT paramètres systoliques ou diastoliques (Figure 4I-4J).
À la fin de l’acquisition de données, étalonnage de cuvette et saline étalonnage ont été réalisées (Figure 5).
Figure 1 : schéma de la méthode. Séquence de cathétérisme de (LV) ventriculaire gauche, occlusion de l’artère coronaire principale gauche (LCA) et de reperfusion.
Figure 2 : interventions chirurgicales. (A) cathétérisme ventriculaire gauche placé via l’artère carotide commune droite. (B) occlusion d’artère coronaire principale gauche avec tube en polypropylène de suture et de silicium. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Figure 3 : données de pression-volume représentatif. (A) la pression artérielle représentatif indiqué par une pression minimale de > 30 mmHg et une excursion typique à la fin de systole indiquant la fermeture de la valve aortique. (B) représentant pression ventriculaire gauche diastolique valeurs de données montrant < 20 mmHg. Diagramme pression-volume ventriculaire gauche représentatif de (C). (D) capture d’écran d’analyse de base logicielle PV. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Figure 4 : données de pression/volume chez la souris en cours de l’ischémie/reperfusion. (A) systolique ventriculaire artérielle (Pmax) à gauche. (B) gauche (LV) fraction d’éjection ventriculaire (EF) (%). Volume systolique (C), LV (µL). (D) Maximum dP/dT (dP/dt max) (mmHg/s). Travail d’accident vasculaire cérébral (E), LV (SW). (F) Minimum dP/dt (min dP/dt) (mmHg/s). (G) la constante de temps de relaxation isovolumétriques Tau (ms). (H) pression/volume diagramme avant et 45 min après l’induction de l’ischémie myocardique. (J’ai-J) Accident vasculaire cérébral volume (SV) (µL) et maximale dP/dt (dP/dt max) (mmHg/s) chez les animaux opérés par rapport aux animaux après 15/30 min d’ischémie. Données (A-G) sont présentées sous forme de moyenne ± SEM. * p < de 0,05 par étudiant t-test ou appariés ratio test t, n = 4 souris/groupe (A + D-G)) ou n = 3 souris/groupe (B, C). + 45 : 45 min d’ischémie ; Rép. : reperfusion. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Figure 5 : Post hoc étalonnage. (A) Représentation schématique du godet de calibrage. Volumes en µL. (B) une analyse de régression linéaire représentatif des données sur le volume obtenu pour effectuer l’étalonnage de la cuvette. (C) les données de volume représentatif après injection de 10 µL de 25 % de chlorure de sodium en H2O dans la veine jugulaire droite pour effectuer l’étalonnage saline. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
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Discussion
PV de surveillance de l’hémodynamique LV dans l’infarctus aigu du myocarde sert une nouvelle méthode pour en temps réel en vivo évaluation de choc cardiogénique et insuffisance LV dans I / blessure de R. Cathétérisme de PV peut fournir un large éventail de paramètres en ce qui concerne la fonction systolique et diastolique ventriculaire. Outre les paramètres volumétriques de LV, généralement obtenues par échographie ou l’IRM (volumes de chambre, EF, volume systolique et débit cardiaque), l’analyse PV donne un profil plus complet de la fonction ventriculaire en fournissant en même temps des mesures de pression systolique de LV performance (contractilité dP/dt, le travail de l’accident vasculaire cérébral) et conformité de LV (-dP/dt, Tau) comme paramètre pour la fonction diastolique.
Comme l’insuffisance cardiaque aiguë chez les patients avec infarctus aigu du myocarde est un prédicteur critique pour précoce en milieu hospitalier la morbidité et de mortalité2, suivi des troubles hémodynamiques aiguës et un choc cardiogénique dans l’infarctus aigu du myocarde pourrait servir un outil précieux pour identifier les mécanismes de protection possibles dans un cadre expérimental.
Plusieurs facteurs s’est avéré pour être critique pour l’acquisition de données réussie. L’anesthésie stable était crucial pour données PV valides depuis isoflurane a montré qu'un effet fort cardiodepressive avec drops en pression, LV EF et le volume systolique. Préparation atraumatique de l’artère carotide a été importante d’éviter l’hypovolémie en raison de la perte de sang. En outre, compression ou une blessure du nerf vague et le glomus carotidien pourrait entraîner une insuffisance grave de l’hémodynamique.
Saline calibrage et étalonnage de cuvette semblaient être une autre étape essentielle pour maintenir des données valides. Pour l’étalonnage saline, injection d’une solution de NaCl de 15 % conduit à conductance accrue, indiquée par une augmentation temporaire de niveau de volume (Figure 5). Conservant la même vitesse lorsque l’injection a été cruciale pour données fixes. Lorsqu’il effectue un étalonnage de la cuvette, il était important d’éviter les bulles dans les cuvettes pour garantir des résultats valides.
Les données obtenues de PV indiquent en outre l’importance d’une acquisition simultanée de la pression et le volume de données pour une caractérisation hémodynamique valide étant donné que les seules données ne montrent pas significatives de la pression change tout au long de l’expérience (Figure 4 a ). L’analyse combinée de PV a offert les deux paramètres de base pour la fonction systolique ventriculaire (par exemple, la fraction d’éjection) ainsi que les paramètres pour la contractilité LV (dP/dt) et relaxation LV (-dP/dt, Tau).
Fait intéressant, occlusion aiguë de l’ECV chez les patients habituellement provoque un déficit sévère de la fonction ventriculaire avec nécessité immédiate pour la prise en charge hémodynamique mécanique et est associée à une mortalité élevée tarifaire11,12. Occlusion de la LCA chez la souris ont montré moins troubles hémodynamiques et mort LCA occlusion associée au cours de la procédure n’a pas été observée. Comme un signe de stabilité hémodynamique persistante pendant l’ischémie, la pression artérielle systolique LV a été stable en tout temps (Figure 4 a). Cependant, cet effet pourrait être causé par des trompes plus distales chez la souris par rapport aux occlusions LCA chez l’homme.
Prises ensemble, en temps réel hémodynamiques suivi d’infarctus aigu du myocarde chez la souris pourraient servir comme une nouvelle méthode pour l’étude des mécanismes cardioprotecteurs en grave dysfonctionnement VG visant à améliorer le traitement de la phase primaire de patients subissant une aiguë l’infarctus du myocarde.
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Disclosures
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Acknowledgments
Les auteurs remercient les sources de financement suivantes : Else Kröner-Fresenius-Stiftung (Tienush Rassaf) ; Hans und Gertie Fischer Stiftung (Tienush Rassaf), don de la faculté de médecine, Université de Duisburg-Essen, Allemagne (Tienush Rassaf, Lars Michel) ; Berta Ernst-und Grimmke-Stiftung (Christos Rammos).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Betaisodona Loesung | Mundipharma | 4162-1606/89x30mm | Povidon-Iod |
| Calibration cuvette | Millar instruments | 910-1049 | Calibration cuvette |
| Contura professional hair trimmer | Wella | HS-60 | Small animal shaving system |
| Eclipse Needle 27G | BD | REF 305770 | 27G needle |
| Forceps | FST | 11203-25, 11069-08, 11616-15, 11506-12, 11051-10 | Surgical forceps |
| Forceps | Aesculap Braun | BN731R, BD 311R | Surgical forceps |
| Foris FS2434 | Eizo | 0FTD2033 | Monitor |
| Hamilton Syringe 100 µl needle | Hamilton | 80621 | 100µl syringe with needle |
| Heated Small animal OP table | Harvard Apparatus | 15001 | Heated OP table |
| Heparin-Natrium 25000 | Ratiopharm | N68542.04 | Heparin |
| Ketamin 10% 100 mg/ml | bela-pharm | FS1670041 | Ketamin |
| Labchart Pro 8 + Pro modules | AD Instruments | MLS260/8 | PV data analysis software |
| LAS EZ | Leica | LAS EZ | Microscope camera software |
| Leica IC80 HD | Leica | IC80 HD | Microscope camera |
| Leica M80 | Leica | M80 | Microscope |
| Micro-tip catheter transducer | Millar instruments | SPR-839 | PV catheter |
| MiniVent | Harvard Apparatus | 845 | ventilation |
| MPVS Ultra | Millar instruments | PL3508B48/M | PV catheter data acquisition device |
| Octenisept | Schülke | 20000832-A | disinfectant |
| Plastipak 1ml | PD | REF 303172 | 1ml syringe |
| PowerLab 8/35 | AD Instruments | PL3508 | analog/digital converter |
| Prolene 6-0 | Ethicon | XNEH7814.P31 | Polypropylene suture |
| Retraction Kit | FST | 18200-20 | retraction of surgical situs |
| Seraflex 5-0 | Naila | IC108000 | silk suture |
| Small and micro-scissors | FST Essen | 14059-11, 15007-08, 14064-11 | Surgical scissors |
| Small silicon tube | Reichelt Chemietechnik | tube for LCA occlusion | |
| Sodium Chloride | Sigma-Aldrich | S7653 | Sodium Chloride |
| testo 108 | testo | 5631080 | rectal thermometer |
| Thinkcentre desktop computer | Lenovo | PC0EJS2V | Computer |
| Vasofix Safety 20G | Braun | 4269110S-01 | intubation catheter |
| Windows 10 | Microsoft | KW9-00240 | Operating system |
| Xylazin 2% | Ceva | 6324464.00.00 | Xylazine hydrochloride |
References
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