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Medicine

Analisi in tempo reale pressione-volume di infarto miocardico acuto nei topi

Published: July 2, 2018 doi: 10.3791/57621

Summary

Infarto miocardico acuto in topi induce cambiamenti acuti ma in modo incompleto caratterizzati in funzione ventricolare di sinistra (LV). Cateterizzazione di LV in topi sottoposti a occlusione dell'arteria coronaria serve come un nuovo metodo per una valutazione in tempo reale della funzione di LV.

Abstract

Infarto miocardico acuto può portare a insufficienza cardiaca acuta e shock cardiogeno. La valutazione dell'emodinamica è critica per la valutazione di qualsiasi potenziale approccio terapeutico diretto contro la disfunzione ventricolare sinistra acuta (LV). Attuali modalità di formazione immagine (ad es., l'ecocardiografia e la risonanza magnetica) hanno diverse limitazioni, poiché i dati sulla pressione di LV non possono essere misurati direttamente. Cateterizzazione di LV in topi sottoposti a occlusione dell'arteria coronaria potrebbe servire come un nuovo metodo per una valutazione in tempo reale della funzione di LV.

All'inizio della procedura, i topi sono stati anestetizzati seguita da intubazione endotracheale. Per cateterizzazione LV, arteria carotica di destra era esposta tramite incisione medio-collo. Il catetere è stato introdotto e inserito nella cavità LV. È stato condotto il thoracotomy di sinistra e l'arteria coronaria principale sinistra (LCA) è stata legata. Per indurre la riperfusione, la sutura è stata rilasciata dopo 45 min. pressione-volume dei dati è stati registrati in ogni momento.

Legatura della LCA ha provocato una diminuzione nella funzione sistolica del ventricolo come evidenziato da una riduzione del 30% nel volume sistolico, frazione di espulsione di LV (EF) e gittata cardiaca. DP/dt massimo come parametro per la contrattilità di LV è stato anche significativamente ridotto e funzione diastolica è stata alterata severamente (minimo dP/dt-40%). Riperfusione in un periodo di 20 min non ha condotto ad un recupero completo della funzione di LV.

Analisi in tempo reale pressione-volume servito come una valida procedura di monitoraggio della funzione cardiaca durante infarto miocardico acuto in topi. Mantenere l'anestesia stabile e un approccio chirurgico standardizzato era cruciale per garantire risultati validi. Come la fase iniziale di infarto miocardico acuto è critica per la morbosità e la mortalità, il metodo delineato potrebbe essere utile per la valutazione preclinica di nuove strategie per la cardioprotezione.

Introduction

La malattia cardiovascolare è la causa più comune di morte nella civiltà occidentale1. Infarto miocardico acuto è un evento critico, che è associato con alta mortalità acuta e cronica2. Anche se la rivascolarizzazione è raggiunto tramite emergenza intervento coronarico percutaneo (PCI), la mortalità rimane alta, specialmente entro le prime 48 h dopo l'inizio dei sintomi in pazienti con infarto miocardico acuto3. Shock cardiogeno causato da acuta riduzione della funzione ventricolare di sinistra (LV) è delle principali cause di mortalità in ospedale in questi pazienti3. Questa riduzione iniziale in funzione di LV è causata da danno del miocardio dopo ischemia e riperfusione. Questa cosiddetta ischemia/riperfusione (I / R) lesione è mediato dai cambiamenti nel metaboloma cellulare come eccessiva generazione di specie reattive dell'ossigeno4,5.

Per esplorare possibili meccanismi protettivi che conduce ad una diminuzione in danno del miocardio in un ambiente preclinico, modelli murini affidabili sono essenziali inclusi metodi per la valutazione dell'alberino-I/R LV funzione6. In questa impostazione, l'ecocardiografia transthoracic7 e la formazione immagine a risonanza magnetica (MRI)6 sono ampiamente usati per fenotipizzazione funzionale8,9. Tuttavia, questi metodi non sono adatti per la valutazione della disfunzione severa di LV e shock cardiogeno in un infarto miocardico acuto in corso e non possono mostrare direttamente i dati sulla pressione di LV. L'apparato di Langendorff utilizzando cuore isolato in un'analisi ex vivo fornisce informazioni circa il sottostante pathomechanisms della presto-fase I / R ferita10. Questo metodo è limitato a causa della sua incapacità di riprodurre in vivo meccanismi adattativi come la regolazione del sistema nervoso autonomo o regolazione ormonale e l'omeostasi acido-base. Non esiste attualmente un metodo disponibile per una fenotipizzazione funzionale completa di shock cardiogeno e disfunzione ventricolare sinistra durante un'esibizione continua del miocardio mi / lesioni R.

Un approccio sincronizzato con combinazione di cateterizzazione di pressione-volume (PV) e l'occlusione transitoria chirurgico principale arteria coronaria di sinistra (LCA) potrebbe essere utile ma tecnicamente impegnativo. Emodinamica stabile extracardiache durante il I / lesioni R sono essenziali per ottenere risultati validi poiché instabile anestesia o perdite di sangue potrebbero influenzare pesantemente i risultati. Un romanzo si avvicinano per emodinamica fenotipizzazione di I / R lesioni tramite LV PV cateterizzazione e transitori LCA OCCLUSIONE potrebbe portare nuove intuizioni su LV disfunzione nell'infarto miocardico acuto e shock cardiogeno e servire come un metodo per analisi future su cardioprotezione.

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Protocol

Tutti gli esperimenti sono stati completati in conformità e rispetto di tutte le normative pertinenti ("Convenzione europea per la protezione degli animali vertebrati utilizzati per sperimentale e altri fini scientifici (direttiva 2010/63/UE) e la cura degli animali è stato conformità alle linee guida istituzionali. Tutti gli esperimenti sono stati effettuati con topi C57BL/6JRj maschio all'età di 6 mesi.

1. preparazione

  1. Preparare un microscopio chirurgico e un rilievo di riscaldamento, nonché una sonda rettale per monitorare la temperatura corporea. Pulire e sterilizzare tutti gli strumenti chirurgici.
  2. Preparare 2 pezzi di 10 cm filo di seta 5-0 per la legatura del vaso, 5 cm di filo in polipropilene 6-0 e tubo in silicone di 2 mm per legatura della LCA.
  3. Preparare la cuvetta di calibrazione del catetere PV di pre-riscaldamento a 37 ° C e preparare un 100 µ l Hamilton siringa riempita con 15% di cloruro di sodio (NaCl) in H2O per la calibrazione di Salina.
  4. Catetere a posto il PV (3 cm, 1,4 F) a 37 ° C pre-riscaldata 0,9% NaCl in H2O (salino) almeno 30 minuti prima della misurazione. Collegare il catetere al dispositivo di acquisizione dati e collegare il dispositivo ad un convertitore analogico/digitale. Collegare entrambi i dispositivi a un computer.
  5. Installare il software. Eseguire la taratura pressione guidata e conduttanza come richiesto dal software-guida del flusso di lavoro8.

2. anestesia e Analgesia

  1. Anestetizzare il mouse utilizzando ketamina 100 mg/kg di peso corporeo e xilazina cloridrato 10 mg/kg di peso corporeo tramite l'iniezione intraperitoneale. All'inizio dei / chirurgia R, amministrare 0,05 mg/kg corpo peso buprenorfina per via intraperitoneale per mantenere l'analgesia.
  2. Dopo 10 min, eseguire un'intubazione endotracheale utilizzando un catetere di 20 G per via endovenosa (iv) e ventilare il mouse con 40% di ossigeno (O2) e 2% (v) isoflurano. Impostare i parametri di ventilazione appropriata (ad es., 220 µ l di colpo, 150/min per un mouse C57BL/6JRj 25-30 g).
  3. Monitorare continuamente il corpo temperatura tramite sonda rettale. Fissare la piastra riscaldata del mouse con la testa rivolta verso lo sperimentatore. Temperatura corporea normale mouse è 36.5-38 ° C. Mantenere la temperatura corporea all'interno di 1 grado di regolazione della temperatura della piastra riscaldata.

3. cateterizzazione ventricolare sinistra

  1. Disinfettare il petto e collo con tre scrub alternati di betadine e 70% di alcol.  Attendere il disinfettante della pelle a secco. Rimuovere i peli del petto utilizzando un sistema di rasatura animale.
  2. Eseguire un'incisione mediana longitudinale di 10 mm 5 mm sotto il labbro inferiore verso lo sterno utilizzando piccole forbici chirurgiche.
  3. Sezionare la parte destra e sinistra della ghiandola sottomandibolare tramite preparazione smussato utilizzando una pinza. Separare il tessuto muscolare e grasso nella regione paratracheal giusto per esporre la carotide comune destra. Mobilitare e separare la nave per una lunghezza totale di 5-10 mm dal tessuto connettivo tramite un'attenta preparazione smussato sottobordo della nave con un forcipe curvo.
    Nota: Evitare la manipolazione meccanica del nervo vago o del corpo carotico a tutto il tempo come questo può causare bradicardia e ipotensione severa.
  4. Passare i due fili di seta preparati sotto la nave. Legare il vaso distale con un nodo stretto e posizionare un nodo sciolto sulla regione prossimale esposta che ancora permette il passaggio del catetere.
  5. Fissare i fili del nodo cranico (stretto) a fianco della testa dei topi di applicare una leggera tensione sul vaso come questo faciliterà l'introduzione del catetere. Posizionare una pinza vascolare emostato sul vaso prossimale prossimale del nodo sciolto a reversibilmente bloccare il flusso sanguigno.
  6. Eseguire un'incisione a forma di Cuneo 1 mm prossimale al nodo cranico per aprire il recipiente con micro-forbici.
    Nota: Una piccola goccia di sangue indicherà la corretta esecuzione di questo passaggio.
  7. Inserire il catetere con attenzione per 10 mm. iniziare la registrazione dei dati del catetere.
    Nota: Stretching l'incisione con un forcipe può rendere questo processo più facile.
  8. Estrarre la pinza vascolare. Aggiungere 1-2 gocce di soluzione fisiologica per l'incisione per facilitare il movimento del catetere. Continuare a introdurre il catetere per circa un altro 10 mm. Dopo aver superato il nodo prossimale con la punta del sensore, fissare il nodo con attenzione appena sufficiente a prevenire sangue reflusso a fianco le parti più sottili del catetere senza alterare il movimento del catetere.
    Nota: La dimensione del sensore all'estremità del catetere impedisce il reflusso di sangue durante l'estrazione il clamp vascolari.
  9. Delicatamente continuare a inserire il catetere fino a quando la pressione analisi mostra il profilo di pressione arteriosa, che indica che il catetere è posizionato nell'aorta (Figura 3A).
    Nota: Il catetere raggiungendo la valvola aortica indicherà di resistenza alla luce e movimento sincronizzato di impulso del catetere.
  10. Quando si verifica la resistenza cercando di avanzare attraverso la valvola aortica, tirare il catetere indietro 5 mm e avanzare nuovamente fino a cateterizzazione LV sarà indicata in un cambiamento nell'analisi del fotovoltaico come pressione diastolica raggiunge 0 - 20 mmHg (Figura 3B). Notare le variazioni di volume monitoraggio per confermare ulteriormente ventricolare sinistra posizionamento della punta del sensore (Figura 3). Affrancare il nodo prossimale più stretto per impedire il movimento del catetere.

4. ischemia/riperfusione chirurgia

  1. Eseguire incisione cutanea dallo sterno caudale verso il axilla di sinistra per una lunghezza totale di 15 mm. procedere con smussato preparazione degli strati due muscolari fino a quando le costole possono essere visualizzate.
  2. Aprire il torace tramite incisione tra la terza e la quarta costola sinistra. Utilizzare ganci chirurgici per ottenere accesso al pericardio. Resecare il pericardio sopra il cuore. Prima di continuare con la legatura di LCA, attendere 30 s senza toccare l'animale per registrare i dati di PV per analisi valida.
  3. Localizzare il LCA emergenti sotto l'auricola sinistra e scendendo sul lato sinistro del cuore verso l'apice. Utilizzare una sutura in polipropilene 6-0 per circondare l'arteria con un ciclo di 2 mm sotto l'auricola sinistra. Inserire un tubo di silicone sotto l'anello e inserire un nodo stretto sopra.
    Nota: Ingrigire distale miocardio serve come controllo positivo per LCA OCCLUSIONE6. Io / R chirurgia dovrebbe essere eseguita entro 5 min indipendentemente dal ricercatore operativo.
  4. Tagliare la sutura a 1 mm di lunghezza. Sbloccare i ganci chirurgici e chiudere manualmente gli strati di muscolo sopra l'incisione. Aspettare 45 min registrando continuamente dati PV.
  5. Dopo 45 min, riaprire l'incisione e rimuovere il tubo di silicone per indurre la riperfusione. Registrare i dati per un altro 20 min.
    Nota: Un cambiamento di un colore rosso che vede prima di ischemia indica successo riperfusione.

5. taratura

Nota: La calibrazione del sistema fotovoltaico catetere è costituito di 4 passaggi obbligatori, due dei quali devono essere eseguite dopo la misurazione. Calibrazione deve essere ripetuto dopo ogni esperimento per garantire risultati validi.

  1. Eseguire la taratura di pressione e conduttanza prima dell'esperimento come descritto nel passo 1,5.
  2. Eseguire la calibrazione salina quando il catetere è ancora posizionato nel ventricolo sinistro dopo l'esperimento stesso è finito. Localizzare la vena giugulare di destra laterale dell'arteria carotica nell'area preparata. Iniettare 10 µ l 25% NaCl in H2O tramite un Hamilton siringa durante la registrazione dei dati.
  3. Calcolare la calibrazione utilizzando il software di acquisizione mettendo in evidenza la fase ascendente in curva di volume (Figura 5). Ripetere questo processo per un totale di 3 volte. Evitare la perdita di sangue dopo l'estrazione della siringa utilizzando una pinza vascolare per comprimere rapidamente la puntura.
  4. Eseguire la calibrazione del volume per calibrare l'acquisizione di dati di volume dall'analisi dei volumi standardizzati. Ottenere circa 500 µ l di sangue di topo da cardiaca puntura con una siringa da 1 mL leggermente eparinizzata (ad es., 5 µ l 200 eparina IE). Tirare indietro il catetere PV 10-15 mm per evitare di danneggiare il catetere.
  5. Riempire il sangue ottenuto nella cuvetta calibrazione pre-riscaldata 37 ° C (Figura 5A). Evitare le bolle come potrebbe interferire con i risultati. Aggiungere la punta del catetere in ogni bene e registrare i dati. Ottenere una curva standard di analisi guidata (figura 5B). Ripetere il processo per un totale di 3 volte.
  6. Eutanasia, topi da dissanguamento o dislocazione cervicale mentre sufficiente isoflurano anestesia viene mantenuta in ogni momento.

6. analisi dei dati

  1. Dopo aver completato la procedura di calibrazione, eseguire analisi di dati guidata. Pertanto, evidenziare la sezione appropriata (almeno dieci cicli) all'interno della sezione di analisi del Flusso di lavoro PV ed eseguire analisi di base. Escludere i cicli con deviazioni a causa di ventilazione o manipolazione se necessario (Figura 3D).
  2. Eseguire analisi di base di PV prima del passaggio della valvola aortica (solo la pressione arteriosa), immediatamente prima e dopo l'occlusione LCA. Procedere per lo svolgimento di analisi di base di PV e in intervalli di 5 minuti durante l'ischemia e dopo riperfusione. Alla fine dell'esperimento, è possibile eseguire analisi dei dati di pressione dopo la retrazione del catetere dal ventricolo sinistro (pressione arteriosa).
  3. Analizzare almeno 10 cicli consecutivi per evitare l'errore di campionamento. Quando verificano forti interferenze di ottenuti valori con la ventilazione, transitoria interruzione della ventilazione per un massimo di 5 s può essere considerato.
  4. Utilizzare i seguenti parametri che vengono calcolati nell' Analisi di base (Figura 3D) per caratterizzare la funzione di LV:
    1. Volume sistolico (µ l)
    2. Frazione di eiezione: volume corsa / fine-diastolica volume (%)
    3. Gittata cardiaca: volume corsa * frequenza cardiaca (µ l/min)
    4. Indice cardiaco: portata cardiaca / superficie (µL/(min*cm²) del corpo
    5. Corsa di lavoro: zona interna della curva di PV (mmHg * µ l)
    6. Pressione massima (Pmax); Pressione media (Pmedia)
    7. dP/dt massimo (mmHg/s) come un parametro di funzione sistolica del ventricolo
    8. min dP/dt (mmHg/s) come parametro per la conformità di LV
    9. Costante di tempo di rilassamento isovolumetrico: Tau (ms)

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Representative Results

Dopo cateterizzazione LV, reversibile LCA legatura è stata realizzata per 45 min seguita da 10 min di riperfusione. Dati di PV è stati registrati a tutte le volte (Figura 1).

Corretto posizionamento del catetere PV è stato confermato ottenendo il grafico caratteristico di LV PV (Figura 2A). Posizionamento del catetere di LV hanno mostrato la gamma di pressione ventricolare tipica con un minimo di 0 - 20 mmHg mentre falso posizionamento del PV-catetere nell'aorta avrebbe mostrato una curva di pressione arteriosa tipica con una pressione minima di 30-60 mmHg (pressione arteriosa diastolica ) e una piccola escursione alla fine della sistole che indica la valvola aortica di chiusura (Figura 3B e 3C). Riuscita occlusione della LCA visivamente è stata confermata da imbiancamento del miocardio LV distale (Figura 2B).

Dopo l'occlusione di LCA, dati di PV è stati acquisiti in intervalli di 5 min. Analisi dei dati di pressione ha dimostrato nessun cambiamento nella massima pressione sistolica di LV che indica perfusione periferica conservata ed anestesia stabile (Figura 4A). L'analisi del volume di LV ha rivelato una diminuzione significativa in entrambi EF (52% vs. 40%, p = 0,008) e volume della corsa assoluta (Figura 4B e 4C). Questi cambiamenti sono avvenuti entro la fase in anticipo di ischemia e dati funzionali LV è rimasti invariati nella successiva fase di ischemia. DP/dt massimo come parametro della contrattilità LV ha mostrato una riduzione del 30% nei topi sottoposti a ischemia del miocardio. Lavoro di colpo era 30% ridotto (Figura 4 e 4E). Come parametro per la funzione diastolica, minimo dP/dt è stato diminuito significativamente indicante la conformità alterata di LV (Figura 4F). Riperfusione di estrazione del tubo in silicone visivamente è stato convalidato. Riperfusione non ha mostrato cambiamenti significativi nell'analisi dei dati PV entro un periodo di 20 min (Figura 4A-4D). Animali falsità-azionati non hanno mostrato una riduzione significativa in LV sistolico o diastolico parametri (Figura 4I-4J).

Al termine dell'acquisizione dei dati, sono stati effettuati cuvetta taratura e Salina (Figura 5).

Figure 1
Figura 1: schema del metodo. Sequenza di cateterizzazione (LV) ventricolare sinistra, l'occlusione dell'arteria coronaria principale sinistra (LCA) e riperfusione.

Figure 2
Figura 2: procedure chirurgiche. (A) cateterizzazione ventricolare sinistra disposto tramite l'arteria carotica comune di destra. (B) l'occlusione dell'arteria coronaria principale sinistra con tubo in polipropilene sutura e silicio. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 3
Figura 3: dati di pressione-volume rappresentativo. (A) pressione arteriosa rappresentante indicato da una pressione minima di > 30 mmHg e una tipica escursione alla fine della sistole che indica la chiusura della valvola aortica. (B) rappresentante la pressione ventricolare sinistra i valori dei dati visualizzando diastolica < 20 mmHg. Diagramma pressione-volume ventricolare sinistro rappresentativo di (C). (D) Screenshot di software basato su analisi di base di PV. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 4
Figura 4: dati di pressione/volume in topi sottoposti a ischemia/riperfusione. (A) sistolica pressione ventricolare (Pmax) a sinistra. (B) sinistra ventricolare (LV) frazione di eiezione (EF) (%). (C) LV volume sistolico (µ l). Massimo (D) dP/dT (dP/dt max) (mmHg/s). Lavoro di colpo (E), LV (SW). (F) minimo dP/dt (dP/dt min) (mmHg/s). (G) costante di tempo di rilassamento isovolumetrico Tau (ms). (H) pressione/volume diagramma del miocardio prima e 45min dopo induzione di ischemia. (-J) Stroke volume (SV) (µ l) e massimo dP/dt (dP/dt max) (mmHg/s) in animali falsità-azionati rispetto agli animali dopo 15/30 min di ischemia. (A-G) i dati sono presentati come media ± SEM. * p < 0,05 via Student t-test o abbinate in rapporto t-test, n = 4 topi/gruppo (A + D-G)) o n = 3 topi/gruppo (B, C). + 45: 45 min di ischemia; Rep: riperfusione. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Figure 5
Figura 5: Post-hoc calibrazione. (A) schema di cuvette di calibrazione. Volumi in µ l. (B) analisi di regressione lineare rappresentativo dei dati ottenuti volume per eseguire la calibrazione di cuvette. (C) dati volume rappresentativo dopo iniezione di 10 µ l di cloruro di sodio 25% in H2O nella vena giugulare di destra per eseguire la calibrazione Salina. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Discussion

Monitoraggio FV di emodinamica LV nell'infarto miocardico acuto serve come un nuovo metodo per la valutazione in tempo reale in vivo di shock cardiogeno e l'alterata funzione di LV in ho / lesioni R. Cateterizzazione PV può fornire un ampio spettro di parametri per quanto riguarda la funzione sistolica e diastolica di LV. Oltre ai parametri volumetrici di LV in genere ottenuti tramite ecocardiografia o MRI (camera volumi, EF, gittata sistolica e gittata cardiaca), analisi del fotovoltaico produce un profilo più completo della funzione di LV fornendo contemporaneamente misure di LV sistolica prestazioni (contrattilità dP/dt, lavoro di corsa) e la conformità di LV (-dP/dt, Tau) come parametro per la funzione diastolica.

Come insufficienza cardiaca acuta in pazienti con infarto miocardico acuto è un preannunciatore critico per primi in ospedale morbosità e mortalità2, monitoraggio del danno emodinamico acuto e shock cardiogeno nell'infarto miocardico acuto potrebbe servire come un prezioso strumento per individuare possibili meccanismi protettivi in un quadro sperimentale.

Diversi fattori si è rivelato per essere critico per l'acquisizione dati di successo. Anestesia stabile era cruciale per dati PV validi poiché isoflurano ha mostrato che un effetto di forte cardiodepressive con gocce in pressione, LV EF e volume sistolico. Preparazione di atraumatic dell'arteria carotica era importante evitare ipovolemia dovuto perdita di sangue. Inoltre, compressione del nervo vago e il glomo carotideo possono provocare lesioni a grave compromissione dell'emodinamica.

Taratura Salina e cuvetta è sembrato essere un altro passo fondamentale per mantenere dati validi. Per la calibrazione di Salina, l'iniezione di soluzione NaCl 15% portato a aumentata conduttanza indicato tramite un aumento temporaneo di volume (Figura 5). Mantenere la stessa velocità durante l'iniezione era cruciale per dati stabili. Nell'effettuare la calibrazione cuvetta, era importante evitare bolle all'interno la cuvette per garantire risultati validi.

I dati ottenuti PV inoltre indicano l'importanza di un'acquisizione simultanea dei dati di pressione e volume per una caratterizzazione emodinamico valido poiché pressione dati da solo non hanno mostrato significativi cambia in tutto l'esperimento (Figura 4A ). L'analisi combinata di PV offerti entrambi i parametri della linea di base per la funzione sistolica del ventricolo (ad es., frazione di eiezione) così come parametri per LV contrattilità (dP/dt) e relax LV (-dP/dt, Tau).

Interessante, l'occlusione acuta del LCA in pazienti solitamente provoca un grave deficit della funzione di LV con necessità immediata per supporto emodinamico meccanico ed è associato con un alto tasso di mortalità tasso11,12. L'occlusione di LCA nei topi hanno mostrato meno danno emodinamico e morte di occlusione-associated LCA durante la procedura non è stata osservata. Come segno di stabilità emodinamica persistente durante l'ischemia, la pressione sanguigna sistolica LV era stabile a tutte le ore (Figura 4A). Tuttavia, questo effetto potrebbe essere causato da più distale legature in topi rispetto alle occlusioni di LCA in esseri umani.

Presi insieme, in tempo reale monitoraggio dell'infarto miocardico acuto in topi emodinamico potrebbe servire come un nuovo metodo per lo studio di meccanismi cardioprotective in grave disfunzione di LV con l'obiettivo di migliorare presto-fase trattamento dei pazienti in fase acuta infarto del miocardio.

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Disclosures

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Acknowledgments

Gli autori riconoscono le seguenti fonti di finanziamento: altro Kröner-Fresenius-Stiftung (Tienush Rassaf); Hans und Gertie Fischer Stiftung (Tienush Rassaf), concedere dalla facoltà di medicina, Università di Duisburg-Essen, Germania (Tienush Rassaf, Lars Michel); Ernst-und Berta Grimmke-Stiftung (Christos Rammos).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Betaisodona Loesung Mundipharma 4162-1606/89x30mm Povidon-Iod
Calibration cuvette Millar instruments 910-1049 Calibration cuvette
Contura professional hair trimmer Wella HS-60 Small animal shaving system
Eclipse Needle 27G BD REF 305770 27G needle
Forceps FST 11203-25, 11069-08, 11616-15, 11506-12, 11051-10 Surgical forceps
Forceps Aesculap Braun BN731R, BD 311R Surgical forceps
Foris FS2434 Eizo 0FTD2033 Monitor
Hamilton Syringe 100 µl needle Hamilton 80621 100µl syringe with needle
Heated Small animal OP table Harvard Apparatus 15001 Heated OP table
Heparin-Natrium 25000 Ratiopharm N68542.04 Heparin
Ketamin 10% 100 mg/ml bela-pharm FS1670041 Ketamin
Labchart Pro 8 + Pro modules AD Instruments MLS260/8 PV data analysis software
LAS EZ Leica LAS EZ Microscope camera software
Leica IC80 HD Leica IC80 HD Microscope camera
Leica M80 Leica M80 Microscope
Micro-tip catheter transducer Millar instruments SPR-839 PV catheter
MiniVent Harvard Apparatus 845 ventilation
MPVS Ultra Millar instruments PL3508B48/M PV catheter data acquisition device
Octenisept Schülke 20000832-A disinfectant
Plastipak 1ml PD REF 303172 1ml syringe
PowerLab 8/35 AD Instruments PL3508 analog/digital converter
Prolene 6-0 Ethicon XNEH7814.P31 Polypropylene suture
Retraction Kit FST 18200-20 retraction of surgical situs
Seraflex 5-0 Naila IC108000 silk suture
Small and micro-scissors FST Essen 14059-11, 15007-08, 14064-11 Surgical scissors
Small silicon tube Reichelt Chemietechnik tube for LCA occlusion
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S7653 Sodium Chloride
testo 108 testo 5631080 rectal thermometer
Thinkcentre desktop computer Lenovo PC0EJS2V Computer
Vasofix Safety 20G Braun 4269110S-01 intubation catheter
Windows 10 Microsoft KW9-00240 Operating system
Xylazin 2% Ceva 6324464.00.00 Xylazine hydrochloride

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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Medicina problema 137 Ischemia/riperfusione (I / lesioni R) infarto miocardico lasciato cateterizzazione ventricolare PV-catetere lasciato la funzione ventricolare emodinamica
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Michel, L., Stock, P., Rammos, C.,More

Michel, L., Stock, P., Rammos, C., Totzeck, M., Rassaf, T., Hendgen-Cotta, U. B. Real-time Pressure-volume Analysis of Acute Myocardial Infarction in Mice. J. Vis. Exp. (137), e57621, doi:10.3791/57621 (2018).

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